閆宗斌， 薛書江， 宋建臣， 許應(yīng)天

(延邊大學(xué)農(nóng)學(xué)院，吉林 延吉 133002)

豬附紅細(xì)胞體(Mycoplasmasuis)，主要附著在豬的紅細(xì)胞表面、血漿及骨髓，引起豬的黃疸性貧血、急性或慢性傳染性貧血[1-3]?；疾∝i臨床特征表現(xiàn)為發(fā)熱、貧血、黃疸等癥狀，嚴(yán)重時可導(dǎo)致豬的死亡[4]。而且，該病常與其他的疾病混合感染，增加了該病的診斷難度[5-7]，當(dāng)前在全球范圍內(nèi)均流行過該病，給養(yǎng)殖業(yè)帶來了一定的經(jīng)濟損失。

目前，豬附紅細(xì)胞體病診斷的方法主要有血液壓片鏡檢、血液涂片染色鏡檢、ELISA等血清學(xué)方法、PCR法、熒光定量PCR法和PCR-ELISA法[7-8]，這些方法的檢測時間、敏感性與特異性等方面都各有一定的局限性。目前，PCR技術(shù)診斷方法相對于其他方法更為快捷，且準(zhǔn)確性高，是最具有一定優(yōu)勢的診斷方法。為尋求最佳的豬附紅細(xì)胞體診斷方法，該試驗進行了豬附紅細(xì)胞體eno基因的PCR診斷方法的研究。

1 材料與方法

1.1 材料

1) 血樣來源 采自延邊某豬場附紅細(xì)胞體病典型臨床癥狀的可疑病例的抗凝血40份。

2) 對照樣品DNA 豬肺炎支原體DNA、多殺性巴氏桿菌DNA、弓形蟲DNA、豬鏈球菌DNA和豬繁殖與呼吸綜合征病毒cDNA樣本均由延邊大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)實驗室保存。

3) 主要試劑 DNA血液提取試劑盒，DNA凝膠回收試劑盒，質(zhì)粒小量提取試劑盒均購自O(shè)mega生物工程公司，100 bp DNA Ladder、ExTaq、DL2 000 Marker、DL5 000 Marker、pMD19-T Simple Vector、pfu DNA聚合酶均購自寶生物(大連)生物工程公司。

1.2 方法

1.2.1 引物的設(shè)計與合成

根據(jù)GenBank上發(fā)表的豬附紅細(xì)胞體基因序列(AB265823.1)，設(shè)計1對特異引物(P1：5’-AGGTAACCCAACCGTAGCAT-3’，P2：5’-TCTTAACTCCCTTTCCTCCAA-3’)，由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

1.2.2 PCR擴增與退火溫度的篩選

用DNA血液提取試劑盒提取豬附紅細(xì)胞體基因組，以提取的豬附紅細(xì)胞體基因組DNA為模板，以P1、P2為引物，進行擴增反應(yīng)，預(yù)期擴增為170 bp，PCR反應(yīng)各成分及劑量如下：引物各1 μL，10×Buffer 2.5 μL，DNTP 1 μL，EX Taq 0.3 μL，滅菌去離子水17.2 μL。擴增豬附紅細(xì)胞體的PCR反應(yīng)程序為：94 ℃預(yù)變性5 min，94 ℃變性45 s，退火45 s，72 ℃延伸85 s，共35個循環(huán)；72 ℃延伸7 min，4 ℃結(jié)束反應(yīng)。設(shè)置退火溫度為52、53、54、55、56、57、58、59 ℃共8個梯度。用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果，選擇特異性強的梯度溫度作為退火溫度。產(chǎn)物經(jīng)凝膠電泳后，用DNA凝膠回收試劑盒進行擴增產(chǎn)物的回收并純化。

1.2.3 pMD-19T重組質(zhì)粒的構(gòu)建轉(zhuǎn)化與鑒定

將回收產(chǎn)物與pMD19-T simple載體4 ℃連接過夜，連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞，在含有Amp的固體LB平板挑選陽性克隆，搖菌過后，按照質(zhì)粒提取試劑盒的方法進行質(zhì)粒提取。提取質(zhì)粒后，進行PCR鑒定，將經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定結(jié)果陽性的重組質(zhì)粒菌液送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序，所得測序結(jié)果用DNAMAN軟件進行多序列比較。

1.2.4 特異性試驗

以豬肺炎支原體DNA、多殺性巴氏桿菌DNA、弓形蟲DNA、豬鏈球菌DNA和豬繁殖與呼吸綜合征病毒的基因組cDNA為模板，以特異性引物P1、P2進行體系為25 μL的 PCR擴增反應(yīng)。

1.2.5 敏感性試驗

通過紫外分光光度計測定陽性質(zhì)粒濃度，然后將其進行濃度梯度稀釋，以稀釋后的各濃度梯度的質(zhì)粒為模板進行體系為25 μL PCR擴增反應(yīng)，測定該方法的敏感程度。

1.2.6 臨床應(yīng)用試驗

對所采集的40份豬抗凝血應(yīng)用本試驗所建立的PCR方法和相思宇[9]所建立的PCR-ELISA 方法進行檢測，以比較二者的敏感性和符合率。

2 結(jié)果與分析

2.1 PCR擴增結(jié)果

以P5、P6為引物，豬附紅細(xì)胞體陽性血液的DNA為模板,進行PCR擴增，得到大小為170 bp的DNA片段，與預(yù)期的目的片段大小一致(圖1)

M:DL 5 000 Maker;1:PCR產(chǎn)物;2:陰性對照圖1 PCR擴增結(jié)果Fig.1 The result of PCR reaction

2.2 退火溫度的篩選

取濃度相同的豬附紅細(xì)胞體陽性血液DNA，在52～59 ℃梯度區(qū)間進行PCR擴增，用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測，結(jié)果表明，退火溫度為58 ℃時特異性條帶最亮，所以選擇58 ℃為最適退火溫度(圖2)。

M:DL2 000 DNA Marker;1:52 ℃;2:53 ℃;3:54 ℃;4:55 ℃;5:56 ℃;6:57 ℃;7:58 ℃;8:59 ℃;9:陰性對照圖2 退火溫度篩選試驗Fig.2 Optimization of PCR annealing temperature

2.3 重組質(zhì)粒的鑒定

以P1、P2為引物，提取的重組質(zhì)粒為模板進行PCR擴增，所得擴增產(chǎn)物為170 bp，與預(yù)期的目的片段大小一致(圖3)

M:DL5 000 Marker;1-2:重組質(zhì)粒PCR擴增產(chǎn)物;3:空白對照圖3 重組質(zhì)粒的PCR鑒定結(jié)果Fig.3 The identification of the recombination plasmid by PCR

2.4 測序結(jié)果的比對

將鑒定結(jié)果為陽性的重組質(zhì)粒菌液送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行測序。序列測定是長度為170 bp個核苷酸序列。與GenBank登錄的豬附紅細(xì)胞體序列(AB265823.1)同源性為98%，分別位于第9、16、44、68位的4個堿基發(fā)生變異(圖4)。

圖4 核苷酸序列對比圖Fig.4 Nucleotide sequence alignment chart

2.5 特異性試驗

將豬附紅細(xì)胞體陽性DNA、豬肺炎支原體、多殺性巴氏桿菌、弓形蟲、豬鏈球菌、豬繁殖與呼吸綜合征病毒和空白無菌水陰性作為模板，以特異性引物P1、P2，進行PCR擴增反應(yīng)。結(jié)果顯示，除豬附紅細(xì)胞體DNA擴增產(chǎn)物在170 bp處可見1條亮的擴增條帶外，豬肺炎支原體、多殺性巴氏桿菌、弓形蟲、豬鏈球菌、豬繁殖與呼吸綜合征病毒和空白無菌水陰性對照均未在170 bp處觀察到擴增條帶，表明該方法有較好的特異性(圖5)。

M:DL 2 000 Marker;1:豬附紅細(xì)胞體DNA擴增產(chǎn)物;2:豬肺炎支原體;3:多殺性巴氏桿菌;4:弓形蟲;5:豬鏈球菌;6:豬繁殖與呼吸綜合征病毒;7:陰性對照組圖5 特異性試驗鑒定結(jié)果Fig.5 Specific experimental results

2.6 敏感性試驗

通過紫外分光光度計測定陽性質(zhì)粒的OD260值，將陽性質(zhì)粒DNA按101，102和103進行梯度稀釋作為模板，以特異性引物P1、P2進行PCR擴增反應(yīng)。結(jié)果顯示，當(dāng)質(zhì)粒濃度稀釋1 000倍時，仍可見清晰條帶，說明本方法的敏感性良好(圖6)。

M:DL 5 000 Marker;1:豬附紅細(xì)胞體DNA擴增產(chǎn)物;2:101倍稀釋;3:102倍稀釋;4:103倍稀釋;5:陰性對照組圖6 敏感性試驗鑒定結(jié)果Fig.6 Susceptibility results

2.7 臨床應(yīng)用試驗

對采集的40份抗凝血應(yīng)用該試驗所建立的PCR方法和相思宇所建立的PCR-ELISA方法進行對比試驗。結(jié)果顯示，該試驗所建立的PCR方法檢測出9份陽性血樣，檢出率為22.5%(9/40)，利用相思宇建立的PCR-ELISA方法檢測出9份陽性血樣，檢出率為22.5%(9/40),結(jié)果證明，該試驗與相思宇所建立的PCR-ELISA方法的敏感性并無顯著性差異，兩者符合率為100%(表1)。

表1 臨床應(yīng)用試驗結(jié)果Table 1 Results of clinical trial

3 討論與結(jié)論

豬附紅細(xì)胞體感染的臨床癥狀與多殺性巴氏桿菌、弓形蟲、豬繁殖與呼吸綜合征病毒、豬肺炎支原體、豬鏈球菌等感染的臨床癥狀相似[10-11]，所以僅靠臨床癥狀無法進行診斷。PCR方法是檢測附紅細(xì)胞體病常用的分子生物學(xué)方法，該方法敏感性極高，特異性強。此方法在國外早有報道，1993年Gwaltney等[12]從感染豬附紅細(xì)胞體的病豬血液中提取出豬附紅細(xì)胞體的基因組，利用PCR技術(shù)對其進行基因擴增，得到長度為492 bp的擴增產(chǎn)物，第1次建立了豬附紅細(xì)胞體的PCR的診斷方法。1999年Joanne等[13]根據(jù)豬附紅細(xì)胞體的16S rRNA基因，設(shè)計合成了特異性引物，并進行PCR擴增，所得試驗結(jié)果表明該方法敏感性極強。近年來，我國在之后的幾年時間也陸續(xù)通過PCR擴增技術(shù)，成功建立附紅細(xì)胞體的檢測方法[14]。

eno蛋白是新發(fā)現(xiàn)的除MSG1蛋白以外的另一個主要黏附蛋白，在豬附紅細(xì)胞體侵入宿主細(xì)胞和黏附細(xì)胞的過程中起著重要作用，具有良好的免疫原性,能引起非常強的免疫反應(yīng)[15-17]。然而至今國內(nèi)還沒有關(guān)于豬附紅細(xì)胞體eno基因的PCR診斷方法。所以該試驗以eno基因為研究對象，設(shè)計1對特異性引物，建立豬附紅細(xì)胞體eno基因的診斷方法。

該課題組曾經(jīng)建立了豬附紅細(xì)胞體PCR-ELISA檢測方法。2種方法都有各自的優(yōu)缺點。PCR-ELISA檢測方法可以進行病原體的定量分析，適合于流行病學(xué)調(diào)查等批量樣本的檢測。而PCR檢測方法只能對病原體進行定性分析，適合于小樣本的疾病診斷。從試驗結(jié)果分析中可知，2種方法的敏感性和特異性之間沒有統(tǒng)計學(xué)顯著差異。因此，在實際應(yīng)用過程中，要根據(jù)實驗?zāi)康暮蛯嶒灄l件等具體情況進行相應(yīng)的選擇。

綜上所述，該試驗設(shè)計出了1對特異性引物，建立了豬附紅細(xì)胞體病的PCR檢測方法，該方法具有快速、準(zhǔn)確、特異性強、敏感性高的優(yōu)點，易于臨床的應(yīng)用。