曹力元,牟 為
上海交通大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,上海 200025
程序性壞死(necroptosis)是近年來(lái)新發(fā)現(xiàn)的一種細(xì)胞死亡方式。傳統(tǒng)理論認(rèn)為,細(xì)胞死亡分為凋亡和壞死。其中細(xì)胞凋亡(apoptosis)是指有核細(xì)胞在一定條件下通過(guò)啟動(dòng)自身內(nèi)部信號(hào)通路,主要通過(guò)內(nèi)源性DNA 內(nèi)切酶的激活而發(fā)生的細(xì)胞自然死亡過(guò)程,是一種主動(dòng)有序的細(xì)胞死亡方式。而壞死(necrosis)是細(xì)胞受到強(qiáng)烈理化或生物因素的作用而產(chǎn)生的一種無(wú)序死亡過(guò)程,其發(fā)生是不可控的,且往往具有不可逆性。隨著相關(guān)研究的逐漸深入,研究人員發(fā)現(xiàn)了另外一種細(xì)胞死亡方式,具有與壞死類似的形態(tài)學(xué)特征,但卻受細(xì)胞內(nèi)特定的信號(hào)通路調(diào)控,并且在凋亡被抑制的條件下,作為一種替代方式來(lái)介導(dǎo)細(xì)胞死亡。2005 年,Degterev 等[1]首次提出了程序性壞死的概念,即指細(xì)胞的一種程序性死亡(programmed cell death)方式(程序性死亡還包括凋亡和焦亡)。他們發(fā)現(xiàn),一種小分子化合物necrostatin-1(Nec-1)可以抑制程序性壞死的發(fā)生,進(jìn)一步證明了程序性壞死的可調(diào)控性。在程序性壞死的信號(hào)通路中,最核心、最經(jīng)典的通路由3 個(gè)重要部分組成:受體相互作用蛋白激酶1(receptor interacting protein kinase 1,RIPK1)、受體相互作用蛋白激酶3(receptor interacting protein kinase 3,RIPK3)和混交激酶域蛋白(mixed lineage kinase domain-like protein,MLKL)。由此得出一個(gè)與傳統(tǒng)理論不同的觀點(diǎn),即壞死也可以是細(xì)胞的一種程序性死亡方式,其發(fā)生和發(fā)展是可調(diào)控的。本文重點(diǎn)討論程序性壞死在疾病中的作用,包括在腫瘤和炎癥性疾病中的雙重作用,并探討程序性壞死的誘導(dǎo)劑和抑制劑,以及誘導(dǎo)或抑制程序性壞死所具有的科研和臨床意義。
程序性壞死與多種疾病相關(guān)。以往的研究認(rèn)為,程序性壞死參與了炎癥性疾病和缺血再灌注等疾病的發(fā)展過(guò)程;近年來(lái)的研究[2-3]表明,程序性壞死與惡性腫瘤也密切相關(guān),其有望成為抗癌治療的一個(gè)新靶點(diǎn)。
以往很多程序性壞死相關(guān)疾病的研究是聚焦于炎癥性疾病,然而近年來(lái),越來(lái)越多的研究開(kāi)始關(guān)注程序性壞死在腫瘤中的作用。研究[2]表明,程序性壞死相關(guān)分子RIPK1、RIPK3 和MLKL 與放射治療(放療)后的腫瘤再增殖密切相關(guān)。此外,乳腺癌和肺癌等腫瘤細(xì)胞能夠誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞發(fā)生程序性壞死,進(jìn)而導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞外滲和轉(zhuǎn)移。使用程序性壞死抑制劑Nec-1 或條件性敲除內(nèi)皮細(xì)胞Ripk3 基因能夠減少腫瘤細(xì)胞誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞壞死,抑制腫瘤細(xì)胞外滲和轉(zhuǎn)移[4]。雖然內(nèi)皮細(xì)胞程序性壞死可能利于腫瘤轉(zhuǎn)移,但是誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞發(fā)生程序性壞死卻有望成為治療腫瘤的新策略。許多研究[5-6]表明,程序性壞死通路中的關(guān)鍵蛋白在某些腫瘤中是低表達(dá)的,比如RIPK3在原發(fā)性結(jié)腸癌中低表達(dá)[6]。由此可以推斷,在某些腫瘤的發(fā)生發(fā)展過(guò)程中程序性壞死被抑制,這有可能是腫瘤細(xì)胞惡性增殖的原因之一。目前,抗癌藥的機(jī)制主要是靶向誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞發(fā)生凋亡,但存在腫瘤細(xì)胞耐藥問(wèn)題。Han等[3]人發(fā)現(xiàn),在耐藥腫瘤細(xì)胞中可以通過(guò)激活程序性壞死通路來(lái)介導(dǎo)腫瘤細(xì)胞死亡。事實(shí)上,程序性壞死被認(rèn)為是細(xì)胞凋亡受到抑制或阻斷時(shí)發(fā)生的一種替代性死亡方式[7]。雖然前面提到程序性壞死會(huì)促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移,但也有研究[8-9]發(fā)現(xiàn)天然化合物紫草素和酯蟾毒配基能通過(guò)激活程序性壞死從而抑制腫瘤轉(zhuǎn)移。因此,程序性壞死有望成為腫瘤治療的新靶點(diǎn)。
發(fā)生了程序性壞死后,細(xì)胞破裂,細(xì)胞的炎性物質(zhì)(如炎癥因子等)釋放進(jìn)入組織液中,引起炎癥反應(yīng);同時(shí)炎癥反應(yīng)又能引起包括程序性壞死的細(xì)胞壞死。與程序性壞死相關(guān)的炎癥性疾病包括腸炎、腎炎和骨關(guān)節(jié)炎等。以腸炎[10]為例,建立小腸上皮細(xì)胞Fas 相關(guān)死亡域蛋白(Fas-associated protein with a novel death domain,F(xiàn)ADD)基因敲除的小鼠模型后,小鼠馬上發(fā)生了小腸炎和大腸炎。然而敲除Ripk3 基因則能阻止腸炎的發(fā)生,表明程序性壞死參與了腸炎的發(fā)生過(guò)程。RIPK1 和RIPK3 能激活炎癥信號(hào)通路,分泌促炎因子。如RIPK3 能夠激活核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體蛋白3(nucleotide-binding oligometric domain-like receptor protein 3,NLRP3)炎性小體,引起白細(xì)胞介素-1(interleukin 1,IL-1)等細(xì)胞因子的釋放。進(jìn)一步研究[11]表明,RIPK3 在Mlkl 敲除的情況下仍能激活NLRP3,表明在細(xì)胞死亡前炎癥反應(yīng)就已經(jīng)發(fā)生。事實(shí)上,程序性壞死還參與其他疾病,如缺血再灌注損傷、神經(jīng)退行性疾病等的炎癥反應(yīng),加重細(xì)胞或組織損傷。
綜上所述,程序性壞死在疾病中的作用可分為2 個(gè)方面:既能促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移、誘導(dǎo)和加重炎癥性疾病,是一個(gè)危險(xiǎn)因素;又能介導(dǎo)腫瘤細(xì)胞的死亡,提供了一個(gè)潛在的治療策略。
程序性壞死可由腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)、DNA 損傷、輻射等引起,其中以TNF 誘導(dǎo)發(fā)生的程序性壞死最為經(jīng)典。本文重點(diǎn)討論TNF-α 誘發(fā)程序性壞死的信號(hào)通路。TNF-α 為TNF 的一種分型,是重要的促炎細(xì)胞因子,參與介導(dǎo)多種炎癥反應(yīng)。TNF-α 激活腫瘤壞死因子受體1(tumor necrosis factor receptor 1,TNFR1)可引起多種信號(hào)通路,包括核因子κB(nuclear factor κB,NF-κB)、RIPK1 非依賴性凋亡(RIPK1 independent apoptosis,RIA)、RIPK1 依賴性凋亡(RIPK1 dependent apoptosis,RDA)和程序性壞死。三聚型TNF-α 激活TNFR1,通過(guò)結(jié)合外側(cè)死亡結(jié)構(gòu)域的方式招募RIPK1 和腫瘤壞死因子受體1 相關(guān)死亡域蛋白(TNFR1-associated death domain protein,TRADD);TRADD 招 募 腫 瘤 壞 死因子受體相關(guān)因子2/5(TNF receptor-associated factor 2/5,TRAF2/5)和E3 泛素連接酶cIAP 1/2,形成復(fù)合物complex Ⅰ。如果complex Ⅰ中的TRADD 招募FADD 和半胱天冬酶caspase-8,在細(xì)胞內(nèi)形成復(fù)合物complex Ⅱ a,則介導(dǎo)RIA。如果RIPK1 形成RIPK1 二聚體,與FADD和caspase-8 形成復(fù)合物complex Ⅱ b,則介導(dǎo)RDA。而當(dāng)caspase-8 活性被抑制時(shí),RIPK1 二聚體與RIPK3 結(jié)合形成復(fù)合物complex Ⅱ c(即RIPK1-RIPK3 復(fù)合物,又稱為necrosome),complex Ⅱ c 進(jìn)一步募集并磷酸化MLKL,MLKL 作為細(xì)胞死亡的執(zhí)行者最終會(huì)導(dǎo)致程序性壞死的發(fā)生[7](圖1)。
圖1 程序性壞死的調(diào)控通路及其與不同疾病的關(guān)系Fig 1 Signaling pathways of necroptosis and its role in different diseases
雖然TNF 不僅誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生凋亡,還啟動(dòng)程序性壞死,具有強(qiáng)大的腫瘤細(xì)胞殺傷作用,但當(dāng)大量的TNF 進(jìn)入機(jī)體循環(huán)系統(tǒng)時(shí),會(huì)產(chǎn)生類似膿毒血癥的癥狀,甚至引起中毒性休克,最終導(dǎo)致多器官衰竭和死亡。TNF 嚴(yán)重的不良反應(yīng)使得其在臨床上的應(yīng)用受到了極大的限制,目前僅應(yīng)用于少數(shù)疾病的局部治療,如TNF 與γ-干擾素(interferon-γ,IFN-γ)和米爾法蘭(melphalan)聯(lián)合治療四肢黑色素瘤和軟組織肉瘤[12],采用孤立肢體灌注方法避免TNF 的系統(tǒng)性反應(yīng)??紤]到TNF 應(yīng)用的局限性,尋找一些可替代的程序性壞死誘導(dǎo)劑成為了新的研究方向之一。
事實(shí)上,通過(guò)程序性壞死途徑來(lái)殺死腫瘤細(xì)胞的思路已經(jīng)在一種天然化合物——紫草素(shikonin)的相關(guān)研究中得到了證實(shí)。紫草素是從天然植物中提取出來(lái)的一種萘醌,可以誘導(dǎo)多種腫瘤細(xì)胞發(fā)生程序性壞死,發(fā)揮抗腫瘤的作用,如膠質(zhì)瘤、鼻咽癌、骨髓瘤和淋巴瘤等。在膠質(zhì)瘤細(xì)胞系中,紫草素能夠誘導(dǎo)細(xì)胞死亡并引起RIPK1、RIPK3 和MLKL 的表達(dá)水平升高,此過(guò)程能被Nec-1 抑制而不能被caspase 抑制劑Z-VAD-fmk 抑制,說(shuō)明紫草素在膠質(zhì)瘤細(xì)胞中是通過(guò)程序性壞死通路引起細(xì)胞死亡而不是凋亡通路[13]。紫草素引起膠質(zhì)瘤細(xì)胞發(fā)生程序性壞死可能與胞內(nèi)活性氧(reactive oxygen species,ROS)的大量累積有關(guān)。程序性壞死的過(guò)程往往伴隨著ROS 水平升高,ROS 累積能夠引起雙鏈DNA 斷裂。使用線粒體超氧物清除劑抑制ROS 的生成能阻止紫草素誘導(dǎo)的膠質(zhì)瘤細(xì)胞死亡,而使用ROS 促進(jìn)劑能顯著提高細(xì)胞死亡率[14]。雖然研究[14]表明ROS 位于RIPK1 和RIPK3 的下游通路,但是清除ROS 會(huì)抑制RIPK1 和RIPK3 的結(jié)合,而增加ROS能夠促進(jìn)兩者的結(jié)合,說(shuō)明ROS 的生成反過(guò)來(lái)又能促進(jìn)RIPK1-RIPK3 復(fù)合物的形成。除了有望應(yīng)用于膠質(zhì)瘤和骨髓瘤這樣尚無(wú)有效治療方法的疾病,紫草素還可以通過(guò)誘導(dǎo)程序性壞死來(lái)應(yīng)對(duì)腫瘤耐藥問(wèn)題。Han 等[3]發(fā)現(xiàn),紫草素能在人乳腺癌細(xì)胞系MCF-7 中誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生程序性壞死,這種非凋亡途徑的細(xì)胞死亡方式啟發(fā)研究人員進(jìn)一步探索紫草素在耐藥腫瘤細(xì)胞系中的作用。在Han 等[3]的研究中,他們采用過(guò)表達(dá)P 糖蛋白、Bcl-2 和Bcl-xL 的方式構(gòu)建了2 種不同機(jī)制的耐藥細(xì)胞系模型。實(shí)驗(yàn)證明,紫草素能夠誘導(dǎo)過(guò)表達(dá)P 糖蛋白的耐藥細(xì)胞發(fā)生程序性壞死。雖然與非耐藥細(xì)胞相比,紫草素在耐藥細(xì)胞中的殺傷作用需要一定的反應(yīng)時(shí)間,但從最終結(jié)局來(lái)看,過(guò)表達(dá)P 糖蛋白不會(huì)影響紫草素誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生程序性壞死。在過(guò)表達(dá)Bcl-2 和Bcl-xL 的抗凋亡MCF-7 腫瘤細(xì)胞系中,相關(guān)實(shí)驗(yàn)[3]也證實(shí)紫草素可以誘導(dǎo)耐藥細(xì)胞發(fā)生程序性壞死。這些實(shí)驗(yàn)證明,通過(guò)紫草素誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生程序性壞死的研究思路有望進(jìn)一步應(yīng)用于腫瘤的耐藥研究。
苦參堿(matrine)是從中草藥苦參中提取出來(lái)的一種生物堿,在許多研究中被證實(shí)具有抗癌效果,能抑制腫瘤細(xì)胞的增殖,阻止腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移。Xu 等[15]發(fā)現(xiàn),苦參堿能夠在膽管癌(cholangiocarcinoma,CCA)細(xì)胞中誘導(dǎo)程序性壞死,腫瘤細(xì)胞具有典型的壞死樣特征,并且Nec-1 能夠抑制細(xì)胞死亡。同時(shí),苦參堿能夠引起RIPK3表達(dá)水平升高,進(jìn)而活化其下游的MLKL,促進(jìn)ROS的生成。因此,在苦參堿誘導(dǎo)的CCA 細(xì)胞程序性死亡中,既涉及RIPK1-RIPK3-MLKL 信號(hào)通路,又有RIPK3-MLKL-ROS 通路的參與。事實(shí)上,苦參堿在很多腫瘤研究中被認(rèn)為是通過(guò)誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡發(fā)揮抗癌作用,但在CCA中卻是通過(guò)誘導(dǎo)細(xì)胞程序性壞死而發(fā)揮作用。這表明不同的腫瘤細(xì)胞對(duì)凋亡和壞死的敏感度不一樣,某些腫瘤(如CCA)具有壞死敏感性。因此,在某些壞死通路易激活的腫瘤細(xì)胞中,可以通過(guò)特異性地誘導(dǎo)程序性壞死來(lái)殺死腫瘤細(xì)胞,從而在一定程度上解決腫瘤的耐藥問(wèn)題。
此外,還有很多其他化合物也可以激活程序性壞死通路(表1)。
表1 程序性壞死的誘導(dǎo)劑Tab 1 Inducers of necroptosis
針對(duì)不同的作用靶點(diǎn),程序性壞死的抑制劑可分為RIPK1 抑制劑、RIPK3 抑制劑和MLKL 抑制劑(表2)。在程序性壞死的抑制劑中,Necrostatins 家族的相關(guān)研究最多,其中以Nec-1 最為典型。Nec-1 是一種小分子生物堿,通過(guò)作用于RIPK1 的T 環(huán)結(jié)構(gòu),抑制RIPK1 的活性,從而抑制RIPK1-RIPK3 復(fù)合體的形成,阻斷下游程序性壞死的發(fā)生。在實(shí)驗(yàn)中,應(yīng)用Nec-1 后,通常表現(xiàn)為RIPK1、RIPK3 和MLKL 的mRNA 水平和蛋白表達(dá)水平下降,以及細(xì)胞死亡率下降。
表2 程序性壞死的抑制劑Tab 2 Inhibitors of necroptosis
由于程序性壞死與凋亡的部分上游通路相同,RIPK1的激活在程序性死亡和RDA 信號(hào)通路中至關(guān)重要,研究[29]表明Nec-1 不僅能阻止程序性壞死,也能抑制細(xì)胞凋亡。然而Jie 等[30]卻得出了相反的研究結(jié)果:在炎癥模型中,Nec-1 可以特異性地誘導(dǎo)中性粒細(xì)胞發(fā)生凋亡,從而減輕炎癥反應(yīng),發(fā)揮抗炎作用。此外,還有一些學(xué)者[31]認(rèn)為Nec-1 不影響凋亡的發(fā)生。如此不同的研究結(jié)果提示,程序性壞死與凋亡之間可能通過(guò)復(fù)雜的信號(hào)通路網(wǎng)絡(luò)連接,因此在不同的疾病和條件下應(yīng)用Nec-1 會(huì)產(chǎn)生不同的效應(yīng)。在TNF-α 引起的經(jīng)典信號(hào)通路中,凋亡分為2 種:RIA 和RDA。當(dāng)?shù)蛲鲆訰IA 為主時(shí),由于此時(shí)凋亡的發(fā)生不依賴RIPK1,故Nec-1 不影響凋亡的發(fā)生;而當(dāng)?shù)蛲龅姆绞绞荝DA 時(shí),Nec-1 抑制RIPK1 的活性,導(dǎo)致complex Ⅱ a 無(wú)法形成,故凋亡通路受阻。而導(dǎo)致Jie 等[30]的研究結(jié)果的原因可能是凋亡與程序性壞死在一定條件下可以互相轉(zhuǎn)換,當(dāng)?shù)蛲霰灰种茣r(shí),細(xì)胞通過(guò)程序性壞死途徑死亡,而當(dāng)程序性壞死被Nec-1 抑制時(shí),細(xì)胞轉(zhuǎn)而通過(guò)凋亡途徑死亡[16]。由此可以看出,Nec-1 在不同條件下可以產(chǎn)生不同的效應(yīng),具有細(xì)胞特異性和疾病特 異性。
由于程序性壞死在許多非腫瘤性疾病的發(fā)生和發(fā)展過(guò)程中起著“推波助瀾”的作用,Nec-1 作為其特異性抑制劑能夠在許多疾病中發(fā)揮保護(hù)作用。在心血管系統(tǒng)疾病中,Nec-1 能顯著縮小小鼠心肌梗死模型的梗死面積,起到心肌保護(hù)作用[32]。在神經(jīng)系統(tǒng)疾病中,以腦出血為例,Nec-1 可以改善小鼠腦水腫、減少顱內(nèi)損傷以及提高腦神經(jīng)功能[33-34]。Nec-1 還可以在急性肝衰竭、急性腎衰竭和缺血再灌注等疾病模型中發(fā)揮保護(hù)作用,緩解疾病進(jìn)展,提高小鼠的生存期和疾病預(yù)后。
除了程序性壞死和凋亡,Nec-1 也可以通過(guò)作用于ROS 通路發(fā)揮其保護(hù)作用。由于ROS 通路位于RIPK1 下游,應(yīng)用Nec-1 可以降低疾病狀況下急劇升高的ROS 水平。在小鼠心肌收縮功能障礙模型中,應(yīng)用Nec-1 能顯著抑制ROS 的生成[35];在缺氧引起的細(xì)胞損傷中,Nec-1能夠提高細(xì)胞活性,抑制ROS 生成及其對(duì)細(xì)胞的損傷[36];在急性肝衰竭小鼠模型中,Nec-1 不僅能夠緩解線粒體功能障礙,抑制肝細(xì)胞胞內(nèi)ROS 的生成,還能緩解胞外ROS 引起的肝細(xì)胞損傷[37]。雖然Nec-1 降低ROS 水平的具體機(jī)制還不是很清楚,但可以確定的是RIPK1 的激活在ROS 相關(guān)通路中發(fā)揮至關(guān)重要的作用。因此應(yīng)用Nec-1不僅能阻斷RIPK1-RIPK3-MLKL 通路,還能抑制RIPK1下游的ROS 通路,從而在多種疾病中發(fā)揮保護(hù)作用。
作為一種新發(fā)現(xiàn)的細(xì)胞死亡方式,程序性壞死及其在疾病中的作用近年來(lái)受到越來(lái)越多的關(guān)注,逐漸成為研究熱點(diǎn)。本文綜述了目前程序性壞死在多種疾病中的不同作用,并且提出了對(duì)應(yīng)的治療策略。在腫瘤疾病中,程序性壞死能介導(dǎo)腫瘤細(xì)胞死亡,發(fā)揮抗腫瘤作用,因此在腫瘤細(xì)胞中誘導(dǎo)程序性壞死可能成為治療腫瘤的新靶點(diǎn);而在其他疾病(如炎癥性疾?。┲?,程序性壞死能引起細(xì)胞死亡和組織損傷,因而抑制程序性壞死可以緩解疾病。所以,進(jìn)一步研究程序性壞死的機(jī)制,尋找或研發(fā)特異性誘導(dǎo)劑和抑制劑,使之應(yīng)用于臨床研究,有望成為疾病治療的新策略。
參·考·文·獻(xiàn)
[1] Degterev A, Huang ZH, Boyce M, et al. Chemical inhibitor of nonapoptotic cell death with therapeutic potential for ischemic brain injury[J]. Nat Chem Biol, 2005, 1(2): 112.
[2] Wang YW, Zhao MH, He SJ, et al. Necroptosis regulates tumor repopulation after radiotherapy via RIP1/RIP3/MLKL/JNK/IL8 pathway[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2019, 38(1): 1-16.
[3] Han WD, Li L, Qiu S, et al. Shikonin circumvents cancer drug resistance by induction of a necroptotic death[J]. Mol Cancer Ther, 2007, 6(5): 1641-1649.
[4] Strilic B, Yang L, Albarrán-Juárez J, et al. Tumour-cell-induced endothelial cell necroptosis via death receptor 6 promotes metastasis[J]. Nature, 2016, 536(7615): 215-218.
[5] Liu P, Xu B, Shen W, et al. Dysregulation of TNFα-induced necroptotic signaling in chronic lymphocytic leukemia: suppression of CYLD gene by LEF1[J]. Leukemia, 2012, 26(6): 1293-1300.
[6] Feng X, Song Q, Yu A., et al. Receptor-interacting protein kinase 3 is a predictor of survival and plays a tumor suppressive role in colorectal cancer[J]. Neoplasma, 2015, 62(4): 592-601.
[7] Feoktistova M, Leverkus M. Programmed necrosis and necroptosis signalling[J]. Febs J, 2015, 282(1): 19-31.
[8] Han QR, Ma Y, Wang H, et al. Resibufogenin suppresses colorectal cancer growth and metastasis through RIP3-mediated necroptosis[J]. J Transl Med, 2018, 16(1): 201-213.
[9] Fu ZZ, Deng BY, Liao YX, et al. The anti-tumor effect of shikonin on osteosarcoma by inducing RIP1 and RIP3 dependent necroptosis[J]. BMC Cancer, 2013, 13(1): 580-589.
[10] Welz PS, Wullaert A, Vlantis K, et al. FADD prevents RIP3-mediated epithelial cell necrosis and chronic intestinal inflammation[J]. Nature, 2011, 477(7364): 330-334.
[11] Lawlor KE, Khan N, Mildenhall A, et al. RIPK3 promotes cell death and NLRP3 inflammasome activation in the absence of MLKL[J]. Nat Commun, 2015, 6(1): 6282.
[12] Lienard D, Ewalenko P, Delmotte JJ, et al. High-dose recombinant tumor necrosis factor alpha in combination with interferon γ and melphalan in isolation perfusion of the limbs for melanoma and sarcoma[J]. J Clin Oncol, 1992, 10(1): 52-60.
[13] Huang CJ, Luo YN, Zhao JW, et al. Shikonin kills glioma cells through necroptosis mediated by RIP-1[J]. PLoS One, 2013, 8(6): e66326.
[14] LU B, GONG X, WANG ZQ, et al. Shikonin induces glioma cell necroptosis in vitro by ROS overproduction and promoting RIP1/RIP3 necrosome formation[J]. Acta Pharmacol Sin, 2017, 38(11): 1543-1553.
[15] Xu BB, Xu MY, Tian Y, et al. Matrine induces RIP3-dependent necroptosis in cholangiocarcinoma cells[J]. Cell Death Discov, 2017, 3(1): 16096.
[16] Sawai H. Induction of apoptosis in TNF-treated L929 cells in the presence of necrostatin-1[J]. Int J Mol Sci, 2016, 17(10): 1678-1689.
[17] Park JH, Jung KH, Kim SJ, et al. HS-173 as a novel inducer of RIP3-dependent necroptosis in lung cancer[J]. Cancer Lett, 2019, 444: 94-104.
[18] Thapa RJ, Nogusa S, Chen PR, et al. Interferon-induced RIP1/RIP3-mediated necrosis requires PKR and is licensed by FADD and caspases[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2013, 110(33): E3109-E3118.
[19] He SD, Liang YQ, Shao F, et al. Toll-like receptors activate programmed necrosis in macrophages through a receptor-interacting kinase-3-mediated pathway[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2011, 108(50): 20054-20059.
[20] Degterev A, Hitomi J, Germscheid M, et al. Identification of RIP1 kinase as a specific cellular target of necrostatins[J]. Nat Chem Biol, 2008, 4(5): 313-321.
[21] Harris PA, Bandyopadhyay D, Berger SB, et al. Discovery of small molecule RIP1 kinase inhibitors for the treatment of pathologies associated with necroptosis[J]. ACS Med Chem Lett, 2013, 4(12): 1238-1243.
[22] Li JX, Feng JM, Wang Y, et al. The B-Raf V600E inhibitor dabrafenib selectively inhibits RIP3 and alleviates acetaminophen-induced liver injury[J]. Cell Death Dis, 2014, 5(6): e1278.
[23] Mandal P, Berger SB, Pillay S, et al. RIP3 induces apoptosis independent of pronecrotic kinase activity[J]. Mol Cell, 2014, 56(4): 481-495.
[24] Park HH, Park SY, Mah S, et al. HS-1371, a novel kinase inhibitor of RIP3-mediated necroptosis[J]. Exp Mol Med, 2018, 50(9): 125.
[25] Li DR, Li C, Li L, et al. Natural product kongensin A is a non-canonical HSP90 inhibitor that blocks RIP3-dependent necroptosis[J]. Cell Chem Biol, 2016, 23(2): 257-266.
[26] Sun LM, Wang HY, Wang ZG, et al. Mixed lineage kinase domain-like protein mediates necrosis signaling downstream of RIP3 kinase[J]. Cell, 2012, 148(1-2): 213-227.
[27] Reynoso E, Liu H, Li L, et al. Thioredoxin-1 actively maintains the pseudokinase MLKL in a reduced state to suppress disulfide bond-dependent MLKL polymer formation and necroptosis[J]. J Biol Chem, 2017, 292(42): 17514-17524.
[28] Yan B, Liu L, Huang SQ, et al. Discovery of a new class of highly potent necroptosis inhibitors targeting the mixed lineage kinase domain-like protein[J]. Chem Commun Camb Engl, 2017, 53(26): 3637-3640.
[29] Wang YQ, Wang L, Zhang MY, et al. Necrostatin-1 suppresses autophagy and apoptosis in mice traumatic brain injury model[J]. Neurochem Res, 2012, 37(9): 1849-1858.
[30] Jie HY, He Y, Huang XC, et al. Necrostatin-1 enhances the resolution of inflammation by specifically inducing neutrophil apoptosis[J]. Oncotarget, 2016, 7(15): 19367-19381.
[31] Fang TT, Cao RP, Wang WL, et al. Alterations in necroptosis during ALDH2-mediated protection against high glucose-induced H9c2 cardiac cell injury[J]. Mol Med Rep, 2018, 18(3): 2807-2815.
[32] Liu YR, Xu HM. Protective effect of necrostatin-1 on myocardial tissue in rats with acute myocardial infarction[J]. Genet Mol Res, 2016, 15(2). DOI: 10.4238/gmr.15027298.
[33] Su XF, Wang HD, Kang DZ, et al. Necrostatin-1 ameliorates intracerebral hemorrhage-induced brain injury in mice through inhibiting RIP1/RIP3 pathway[J]. Neurochem Res, 2015, 40(4): 643-650.
[34] Chang P, Dong WW, Zhang MY, et al. Anti-necroptosis chemical necrostatin-1 can also suppress apoptotic and autophagic pathway to exert neuroprotective effect in mice intracerebral hemorrhage model[J]. J Mol Neurosci, 2014, 52(2): 242-249.
[35] Zhang LP, Feng QM, Wang T. Necrostatin-1 protects against paraquat-induced cardiac contractile dysfunction via RIP1-RIP3-MLKL-dependent necroptosis pathway[J]. Cardiovasc Toxicol, 2018, 18(4): 346-355.
[36] Chen R, Xu JH, She YL, et al. Necrostatin-1 protects C2C12 myotubes from CoCl2-induced hypoxia[J]. Int J Mol Med, 2018, 41(5): 2565-2572.
[37] Takemoto K, Hatano E, Iwaisako K, et al. Necrostatin-1 protects against reactive oxygen species (ROS)-induced hepatotoxicity in acetaminopheninduced acute liver failure[J]. FEBS Open Bio, 2014, 4: 777-787.