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一測多評法同時測定小兒金翹顆粒中7種成分的含量

2020-06-09 18:37梁欣雨周曉鋼何兵楊世艷
中國藥房 2020年10期
關(guān)鍵詞:含量測定

梁欣雨 周曉鋼 何兵 楊世艷

中圖分類號 R917 文獻(xiàn)標(biāo)志碼 A 文章編號 1001-0408(2020)10-1179-06

DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2020.10.05

摘 要 目的:建立同時測定小兒金翹顆粒中7種成分含量的方法。方法:采用一測多評法(QAMS)。色譜柱為Lubex Kromasil C18,流動相為乙腈-0.1%磷酸水溶液(梯度洗脫),檢測波長為326 nm,流速為1.0 mL/min,柱溫為40 ℃,進樣量為10 ?L。以綠原酸為內(nèi)參物,計算新綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C的相對校正因子;考察不同色譜系統(tǒng)、色譜柱、流動相比例、流速、柱溫等對相對校正因子的影響,并采用兩點校正法結(jié)合相對保留時間校正法對各成分進行色譜峰定位。分別按QAMS法和標(biāo)準(zhǔn)曲線法檢測7種成分的含量,并進行比較。結(jié)果:新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C檢測質(zhì)量濃度的線性范圍分別為9.27~92.70、37.36~373.60、13.02~130.20、7.15~71.50、4.56~45.60、6.32~63.20、14.69~146.90 ?g/mL(r≥0.999 7);定量限分別為1.38、1.41、1.40、1.99、1.10、1.17、1.10 ng,檢測限分別為0.41、0.42、0.42、0.60、0.33、0.35、0.33 ng;精密度、重復(fù)性、穩(wěn)定性試驗的RSD均小于2%,平均加樣回收率為98.28%~99.15%(RSD<2%,n=9)。新綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C相對于綠原酸的相對校正因子分別為0.995、1.007、0.580、1.243、1.252、1.247;不同色譜條件下其相對校正因子的RSD均小于3%。采用兩點校正法結(jié)合相對保留時間校正法預(yù)測的各待測成分的保留時間與實測值的相對誤差絕對值均小于2%。QAMS法測得的含量分別為2.790~3.416、14.526~17.907、3.763~4.531、1.625~1.982、1.087~1.523、1.434~2.219、3.631~5.078 mg/g,標(biāo)準(zhǔn)曲線法測得的含量分別為2.811~3.438、14.512~17.893、3.739~4.508、1.656~2.012、1.108~1.544、1.460~2.245、3.597~5.045 mg/g;兩種方法測得含量的相對誤差均在±2%以內(nèi)。結(jié)論:兩點校正法結(jié)合相對保留時間校正法能準(zhǔn)確定位各成分色譜峰;所建QAMS簡便、快捷、準(zhǔn)確、可靠,可用于同時測定小兒金翹顆粒中7種成分的含量。

關(guān)鍵詞 一測多評法;小兒金翹顆粒;含量測定;色譜峰定位;兩點校正法;相對保留時間校正法

Simultaneous Determination of 7 Constituents in Xiaoer Jinqiao Granules by QAMS

LIANG Xinyu1,ZHOU Xiaogang2,HE Bing2,YANG Shiyan3(1. The First Clinical College of Chongqing Medical University, Chongqing 400016, China; 2. School of Pharmaceutical Sciences, Southwest Medical University, Sichuan Luzhou 646000, China; 3. Dept. of Ultrasonic Imaging, the Affiliated Traditional Chinese Medicine Hospital of Southwest Medical University, Sichuan Luzhou 646000, China)

ABSTRACT? ?OBJECTIVE: To establish a method for simultaneous determination of 7 constituents in Xiaoer jinqiao granules. METHODS: QAMS method was adopted. The determination was performed on Lubex Kromasil C18 column with mobile phase consisted of acetonitrile-0.1% phosphoric acid solution (gradient elution). The detection wavelength was set at 326 nm, the flow rate was 1.0 mL/min. The column temperature was 40 ℃, and sample size was 10 ?L. Using chlorogenic acid as the internal reference, the relative correction factors (RCF) of neochlorogenic acid, cryptochlorogenic acid, forsythiaside A, isochlorogenic acid B, isochlorogenic acid A and isochlorogenic acid C were calculated. The effects of different chromatogram system, chromatogram column, the ratio of mobile phase, flow rate and column temperature on RCF were investigaten. According to the two-point correction method combined with the relative retention time correction of the components to be tested, the peak location was carried out. The contents of 7 components were determined by QAMS and SCM respectively and then compared. RESULTS: The linear range of neochlorogenic acid, chlorogenic acid, cryptochlorogenic acid, forsythoside A, isochlorogenic acid B, isochlorogenic acid A, isochlorogenic acid C were 9.27-92.70, 37.36-373.60, 13.02-130.20, 7.15-71.50, 4.56-45.60, 6.32-63.20, 14.69-146.90 ?g/mL (r≥0.999 7). The limits of quantification were 1.38, 1.41, 1.40, 1.99, 1.10, 1.17, 1.10 ng, respectively; and the limits of detection were 0.41, 0.42, 0.42, 0.60, 0.33, 0.35, 0.33 ng, respectively. RSDs of precision, repeatability and stability tests were all less than 2%; average recoveries were 98.28%-99.15% (RSD<2.0%, n=9). RCFs of neochlorogenic acid, cryptochlorogenic acid, forsythiaside A, isochlorogenic acid B, isochlorogenic acid A and isochlorogenic acid C relative to chlorogenic acid were 0.995, 1.007, 0.580, 1.243, 1.252 and 1.247, respectively. RSDs of RCFs were all lower than 3% under different chromatogram conditions. Absolute value of relative error between the relative retention time of components to be tested predicted by two-point correction combined with relative retention time correction and measured value was less than 2%. The contents measured by QAMS were 2.790-3.416, 14.526-17.907, 3.763-4.531, 1.625-1.982, 1.087-1.523, 1.434-2.219, 3.631-5.078 mg/g; the contents measured by SCM method were 2.811-3.438, 14.512-17.893, 3.739-4.508, 1.656-2.012, 1.108-1.544, 1.460-2.245, 3.597-5.045 mg/g; relative errors of the two methods were within±2%. CONCLUSIONS: Two-point correction method combined with relative retention time correction can accurately locate the peaks of each constituent; established QAMS method is simple, rapid, accurate and reliable, it can be used for simultaneous determination of 7 constituents in Xiaoer jinqiao granules.

KEYWORDS? ?QAMS; Xiaoer jinqiao granules; Content determination; Peak location; Two-point correction method; Relative retention time correction

小兒金翹顆粒是由金銀花、連翹、葛根、大青葉、山豆根、柴胡、甘草等中藥組成的復(fù)方制劑,具有疏風(fēng)清熱、解毒利咽、消腫止痛之功效[1],臨床上主要用于治療小兒急性上呼吸道感染、流行性感冒、急性扁桃體炎、小兒手足口病等[2-5]。該制劑中金銀花為君藥,含有綠原酸、新綠原酸、隱綠原酸和異綠原酸A、B、C等多種酚酸類成分,具有較強的抗菌、抗炎、抗氧化等生物活性[6]。連翹酯苷A是臣藥連翹的主要活性成分,具有抗菌、抗病毒、抗氧化等藥理活性[7]?!秶宜幤窐?biāo)準(zhǔn):新藥轉(zhuǎn)正標(biāo)準(zhǔn)(第66冊)》[1]中記載,小兒金翹顆粒以綠原酸為質(zhì)量控制指標(biāo),采用高效液相色譜法(HPLC)檢測。雖然也有文獻(xiàn)報道了小兒金翹顆粒的質(zhì)量控制,但均以綠原酸或連翹苷含量為指標(biāo)[8-9]。由于綠原酸類成分性質(zhì)不穩(wěn)定,在儲存過程中可與其異構(gòu)體發(fā)生相互轉(zhuǎn)化[10],因此以綠原酸單一成分作為評價指標(biāo)具有一定的片面性,無法準(zhǔn)確反映制劑的質(zhì)量。連翹的有效成分連翹苷含量較低,且在本研究前期試驗中發(fā)現(xiàn),其在小兒金翹顆粒中難以檢測,故連翹苷不宜作為評價指標(biāo),而宜選擇含量更高且更穩(wěn)定的活性成分連翹酯苷A作為指標(biāo)成分。

在中藥多指標(biāo)定量分析中,由于部分對照品緊缺、昂貴,導(dǎo)致傳統(tǒng)多指標(biāo)定量檢測成本較高。而一測多評法(QAMS)能以一種便宜、易得的對照品為內(nèi)參物,通過相對校正因子測定其他成分的含量[11]。QAMS法的關(guān)鍵是如何準(zhǔn)確定位各成分的色譜峰,但由于儀器、色譜柱不同,待測成分的保留時間會發(fā)生明顯飄移,從而影響其準(zhǔn)確定位。目前,常用的色譜峰定位方法包括相對保留時間校正法和兩點校正法,其中相對保留時間校正法僅適用于保留時間靠前的色譜峰,隨著保留時間的增加,其定位誤差越大[11];兩點校正法適用于相對保留時間靠后的色譜峰,但唯一不足的是保留時間靠前的(特別是第1個)色譜峰定位不準(zhǔn)[11]。基于此,本研究采用QAMS法同時測定小兒金翹顆粒中綠原酸、新綠原酸、隱綠原酸、異綠原酸A、異綠原酸B、異綠原酸C、連翹酯苷A的含量;通過兩點校正法結(jié)合相對保留時間校正法對待測成分進行色譜峰定位,旨在為進一步完善和提高該藥的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供參考。

1材料

1.1 儀器

P680-PDA型HPLC儀,包括四元梯度泵、二極管陣列檢測器、柱溫箱和色譜工作站(美國Dionex公司);LC2030型HPLC儀,包括四元梯度泵、紫外檢測器、自動進樣器、柱溫箱和色譜工作站(日本Shimadzu公司);MS105DU型十萬分之一電子天平(瑞士Mettler-Toledo公司);AS7240A型超聲波清洗器(天津奧特賽恩斯儀器有限公司);Direct-Q3型超純水系統(tǒng)(美國Millipore公司)。

1.2 藥品與試劑

小兒金翹顆粒(四川凱京制藥有限公司,批號:20180912、20181106、20181228,規(guī)格:5 g/袋);小兒金翹陰性對照顆粒(由本課題組按該制劑的處方工藝分別制得的缺金銀花、連翹的陰性樣品);新綠原酸對照品(批號:A0023-19031001,純度:99.67%)、綠原酸對照品(批號:A0022-19030620,純度:99.39%)、隱綠原酸對照品(批號:A0024-19032403,純度:99.07%)、異綠原酸B對照品(批號:A0026-19031602,純度:99.05%)、異綠原酸A對照品(批號:A0025-19032601,純度:98.82%)、異綠原酸C對照品(批號:A0027-19031603,純度:99.84%)、連翹酯苷A對照品(批號:A0590-18061301,純度:99.15%)均購自成都曼斯特生物科技有限公司;乙腈、甲醇為色譜純,其余試劑均為分析純,水為超純水。

2 方法與結(jié)果

2.1 色譜條件

色譜柱:Lubex Kromasil C18(250 mm×4.6 mm,5 ?m);流動相:乙腈(A)-0.1%磷酸水溶液(B),梯度洗脫(0~5 min,10%A→15%A;5~15 min,15%A→30%A;15~16 min,30%A→10%A;16~20 min,10%A);檢測波長:326 nm;流速:1.0 mL/min;柱溫:40 ℃;進樣量:10 ?L。

2.2 溶液的制備

2.2.1 混合對照品溶液 分別精密稱取新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C對照品適量,加75%甲醇溶解,制成上述7種成分質(zhì)量濃度分別為0.927、3.736、1.302、0.715、0.456、0.632、1.469 mg/mL的單一對照品貯備液。取上述各單一對照品貯備液0.8 mL,置于10 mL量瓶中,加75%甲醇稀釋至刻度,搖勻,制成上述7種成分質(zhì)量濃度分別為的0.074、0.299、0.104、0.057、0.036、0.051、0.118 mg/mL混合對照品溶液,避光保存。

2.2.2 供試品溶液 取本品適量,研細(xì),取約1.0 g,精密稱定,置于具塞錐形瓶中,精密加入75%甲醇50 mL,稱定質(zhì)量,超聲(功率:240 W,頻率:40 kHz)處理10 min,冷卻至室溫,再次稱定質(zhì)量,用75%甲醇補足減失的質(zhì)量,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得。

2.2.3 陰性對照溶液 取小兒金翹陰性對照顆粒,按“2.2.2”項下方法分別制備缺金銀花、連翹的陰性對照溶液。

2.3 系統(tǒng)適用性試驗

分別精密量取“2.2”項下混合對照品溶液、供試品溶液、陰性對照溶液適量,按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄色譜圖,詳見圖1。結(jié)果,新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C與其相鄰色譜峰的分離度均大于2.22;拖尾因子分別為1.07、1.00、1.03、1.01、1.00、1.07、1.10,理論板數(shù)均不低于23 000;陰性對照在對應(yīng)位置處無吸收峰,對測定無干擾。

2.4線性關(guān)系與定量限、檢測限考察

分別精密量取“2.2.1”項下各單一對照品貯備液0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1 mL,置于10 mL量瓶中,加75%甲醇稀釋至刻度,制得系列線性工作溶液,按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積。以待測成分質(zhì)量濃度(c,?g/mL)為橫坐標(biāo)、峰面積(A)為縱坐標(biāo)進行線性回歸,回歸方程與線性范圍見表1。另取“2.2.1” 項下混合對照品溶液適量,用75%甲醇逐級稀釋,分別以信噪比10 ∶ 1、3 ∶ 1計算定量限、檢測限,結(jié)果見表1。

2.5 精密度試驗

取“2.2.1”項下混合對照品溶液適量,按“2.1”項下色譜條件連續(xù)進樣測定6次,記錄峰面積。結(jié)果,新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C峰面積的RSD分別為0.29%、0.17%、0.32%、0.41%、0.36%、0.33%、0.25%(n=6),表明儀器精密度良好。

2.6 重復(fù)性試驗

取小兒金翹顆粒樣品(批號:20180912),每份1.0 g,共6份,精密稱定,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計算樣品中7種待測成分的含量。結(jié)果,新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C含量的RSD分別為1.19%、1.08%、1.26%、1.41%、1.32%、1.20%、1.13%(n=6),表明本方法重復(fù)性良好。

2.7 穩(wěn)定性試驗

取 “2.2.2”項下供試品溶液(批號:20180912)適量,在室溫密閉條件下放置0、4、8、12、24、36 h時,按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積。結(jié)果,新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C峰面積的RSD分別為0.83%、0.66%、0.95%、0.90%、0.87%、0.78%、0.71%(n=6),表明供試品溶液在室溫密閉條件下放置36 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

2.8 加樣回收率試驗

取已知含量的小兒金翹顆粒(批號:20180912),每份0.5 g,共9份,精密稱定,分別加入一定量的單一對照品溶液(按“2.2.1”項下方法制備,含新綠原酸1.925 mg/mL、綠原酸10.219 mg/mL、隱綠原酸2.507 mg/mL、連翹酯苷A 1.094 mg/mL、異綠原酸B 1.016 mg/mL、異綠原酸A 1.312 mg/mL、異綠原酸C 2.968 mg/mL),按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積并計算加樣回收率。結(jié)果,新綠原酸、綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A、異綠原酸C的平均加樣回收率分別為98.63%(RSD=1.39%,n=9)、99.15%(RSD=1.10%,n=9)、98.78%(RSD=1.34%,n=9)、98.37%(RSD=1.53%,n=9)、98.28%(RSD=1.62%,n=9)、98.46%(RSD=1.50%,n=9)、98.85%(RSD=1.19%,n=9)。

2.9 相對校正因子的計算及驗證

2.9.1 相對校正因子的計算 本研究前期試驗發(fā)現(xiàn),由于小兒金翹顆粒中綠原酸含量最高,其對照品價格便宜且易得,故以綠原酸為內(nèi)參物,計算新綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A及異綠原酸C相對于綠原酸的相對校正因子(fi/s),相對校正因子(fi/s)=ai/as[12]。式中,ai為待測成分標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率,as為內(nèi)參物標(biāo)準(zhǔn)曲線低利率。結(jié)果,新綠原酸、隱綠原酸、連翹酯苷A、異綠原酸B、異綠原酸A及異綠原酸C相對于綠原酸的相對校正因子分別為0.995、1.007、0.580、1.243、1.252、1.247。

2.9.2 相對校正因子耐用性考察 為考察相對校正因子在不同色譜條件下的耐用性,本研究適當(dāng)改變了流動相各梯度點的比例(±2%)、流速(±2%)、柱溫(±5 ℃)、水相pH(±0.2)、檢測波長(±5 nm),并平行操作3次。結(jié)果,各待測成分相對校正因子的RSD均小于3%(n=3),表明色譜條件在一定范圍內(nèi)的變化對各待測成分相對校正因子的影響較小。

2.9.3 相對校正因子重現(xiàn)性考察 本研究考察了不同品牌HPLC儀(Dionex、Shimadzu)以及不同色譜柱[Lubex Kromasil C18、AkzoNobel Kromasil C18、Dikma Silversil C18,均為(250 mm×4.6 mm,5 ?m)]對相對校正因子的影響,平行操作3次。結(jié)果,各待測成分相對校正因子的RSD均小于2%(n=3),表明相對校正因子在不同色譜條件下具有良好的重現(xiàn)性。

2.10 待測成分色譜峰的定位

QAMS法通常采用相對保留時間定位色譜峰,即通過對比不同條件下的相對保留時間,若相對保留時間基本一致則認(rèn)定為同一色譜峰[13]。當(dāng)色譜峰眾多且密集時,由于未測量的其余色譜峰均需計算相對保留時間,因此其操作非常繁瑣。假設(shè)其余條件下的相對保留時間與標(biāo)準(zhǔn)相對保留時間一致,再計算其相對應(yīng)的理論保留時間,則可簡化過程,即各色譜峰的預(yù)測保留時間(y)=其余條件下內(nèi)參物綠原酸的保留時間×Lubex Kromasil C18對應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)相對保留時間(x),結(jié)果見表2[以第1根色譜柱為標(biāo)準(zhǔn),相對誤差(RE)=(預(yù)測保留時間-實測保留時間)/實測保留時間×100%]。

由表2可知,采用相對保留時間校正法定位色譜峰時,保留時間越靠前的色譜峰,其實測和預(yù)測保留時間的RE絕對值越小,定位越準(zhǔn)確,這部分色譜峰可采用相對保留時間校正法定位;但隨著保留時間的增加,保留時間靠后的色譜峰的實測和預(yù)測保留時間的RE絕對值越大,保留時間甚至相差2 min以上,難以準(zhǔn)確定位。

有研究發(fā)現(xiàn),在相同的色譜條件下即使采用不同的儀器和色譜柱,各成分的保留時間也存在簡單的線性關(guān)系[14]。根據(jù)此原理,本研究以待測成分在Lubex Kromasil C18的保留時間為橫坐標(biāo)(x),以其余色譜柱的保留時間為縱坐標(biāo)(y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果發(fā)現(xiàn),Lubex Kromasil C18與其余色譜柱保留時間的相關(guān)系數(shù)分別為0.999 7、0.999 4、0.999 7、0.999 0、0.997 8。由于本研究的目的僅為定位色譜峰,且在實際操作中,因其他色譜峰未知,故無法采用多個數(shù)據(jù)點計算保留時間的標(biāo)準(zhǔn)曲線,但若在色譜圖中前后各取一點,以內(nèi)參物綠原酸和最易辨認(rèn)的色譜峰(如最后一個色譜峰異綠原酸C)進行兩點校正[15],同法繪制校正曲線。結(jié)果發(fā)現(xiàn),兩點校正與7個點繪制的標(biāo)準(zhǔn)曲線基本重合,提示兩點校正法可用于預(yù)測各成分的出峰時間,隨后將Lubex Kromasil C18的標(biāo)準(zhǔn)保留時間帶入校正方程,計算各成分的預(yù)測保留時間,結(jié)果見表3。

由表3可知,即使采用不同的儀器和色譜柱,隨著保留時間的增加,采用兩點校正法的預(yù)測保留時間和實測保留時間的RE絕對值較低,且非常接近。但若選擇的點不包含第1個色譜峰,則第1個色譜峰的定位不準(zhǔn)。因此對于第1個色譜峰新綠原酸,可采用相對保留時間校正法預(yù)測定位,其余成分的色譜峰可采用兩點校正法預(yù)測定位,這可使每個色譜峰均能獲得準(zhǔn)確的預(yù)測保留時間(RE<2%)。若色譜峰臨近處還有其他色譜峰,則可根據(jù)各成分的紫外吸收光譜(圖2)、整體峰形或峰面積百分比進一步確認(rèn)[15]。

2.11 含量測定結(jié)果比較

分別采用QAMS法和標(biāo)準(zhǔn)曲線法測定樣品中各成分的含量,平行操作3次,結(jié)果見表4。結(jié)果顯示,2種方法測得含量的RE絕對值均小于2%,表明兩者測定結(jié)果基本一致,QAMS法可用于小兒金翹顆粒中多指標(biāo)成分的測定[RE=(QAMS法測得值-標(biāo)準(zhǔn)曲線法測得值)/標(biāo)準(zhǔn)曲線法測得值×100%]。

3 討論

3.1 相對校正因子計算

本研究采用斜率校正法計算相對校正因子,即以各待測成分與內(nèi)參物標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率之比作為校正因子,該方法相對于多點校正更加簡便、快捷[12]。采用斜率校正法的結(jié)果與標(biāo)準(zhǔn)曲線法結(jié)果之間的差異主要由斜率截距造成,故當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系較好,斜率截距之比>100時,二者之間的差異才能足夠小,以斜率校正法計算校正因子才具有較好的可行性和準(zhǔn)確性[16]。

3.2 色譜峰的定位

有研究認(rèn)為,在色譜峰定位時,以各條件下相對保留時間的RSD<5%作為色譜峰準(zhǔn)確定位的依據(jù)[11]。但本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),即使?jié)M足該條件,保留時間靠后的色譜峰,其預(yù)測保留時間和實測保留時間仍相差較大(RE絕對值>10%),且部分色譜峰實測與預(yù)測保留時間相差超過2 min。這提示在色譜峰較多、密集且色譜峰紫外吸收相似時,特別是在批間整體峰形不規(guī)則的中草藥中采用相對保留時間校正法很難準(zhǔn)確定位各色譜峰。本研究采用兩點校正獲得校正方程,通過方程預(yù)測各條件下的理論出峰時間,從而快速定位色譜峰。結(jié)果發(fā)現(xiàn),除第1個色譜峰外,其余色譜峰均可準(zhǔn)確定位。因此,本研究以相對保留時間校正法定位新綠原酸峰,以兩點校正法定位其他色譜峰。結(jié)果顯示,所有色譜峰預(yù)測和實測保留時間的RE絕對值均小于2%,預(yù)測與實測保留時間相差小于0.3 min,提示所有色譜峰均可實現(xiàn)準(zhǔn)確定位。

3.3 準(zhǔn)確性評價

目前,評價QAMS法準(zhǔn)確性的方法較多,如t檢驗、方差分析、相關(guān)系數(shù)、夾角余弦等[17]。為驗證上述方法的可靠性,本研究前期模擬了因校正因子不準(zhǔn)確所致的較大測量誤差,即將QAMS法測得的任意一個測定值或者所有值同時縮放10倍后再與標(biāo)準(zhǔn)曲線法進行t檢驗和方差分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn),其P值仍大于0.05,無顯著性差異;隨后,將任意一個測定值縮放10%或所有測定值同時縮放10倍后發(fā)現(xiàn),相關(guān)系數(shù)或夾角余弦依然>0.999,仍然具有極高的相似性。因此,本研究在參考相關(guān)文獻(xiàn)[18],采用RE評價QAMS法的準(zhǔn)確性,即任一測定值超過標(biāo)準(zhǔn)曲線法測定值的±2%時,其RE絕對值>2%,提示采用相對誤差評價其準(zhǔn)確性更加科學(xué)合理。

3.4 含量測定結(jié)果分析

本研究結(jié)果顯示,2種方法測得含量的RE絕對值均小于2%,提示2種方法的測定結(jié)果基本一致。QAMS法可用于同時測定小兒金翹顆粒中7種成分的含量。

4 結(jié)語

本研究所建兩點校正法結(jié)合相對保留時間校正法能準(zhǔn)確定位各成分色譜峰;QAMS法簡便、快捷且準(zhǔn)確、可靠,可用于同時測定小兒金翹顆粒中7種成分的含量。

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(收稿日期:2020-01-09 修回日期:2020-04-07)

(編輯:陳 宏)

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