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TET1過表達對宮頸癌細胞增殖遷移能力的影響

2020-02-14 10:25周君陽陳秀英羅心霞黃寬明朱名安
關(guān)鍵詞:劃痕質(zhì)粒宮頸癌

周君陽,于 莉,陳秀英,成 健,羅心霞,王 玨,黃寬明,朱名安,丁 妍

宮頸癌在女性中高發(fā),是常見的婦科惡性腫瘤之一,嚴重威脅著女性的生命健康[1]。早期研究認為人類乳頭狀瘤病毒(human papilloma virus, HPV)感染是宮頸癌的主要致病因素之一,近年來,多項研究表明,宮頸癌細胞表觀遺傳學(xué)的改變是影響其發(fā)生及演進的重要因素[2]。

TET1作為體內(nèi)一種加氧酶,具有高效催化5-甲基胞嘧啶(5-mC)轉(zhuǎn)化為5-羥甲基胞嘧啶(5-hmC)的作用[3]。TET1在多種惡性腫瘤組織中低表達,如前列腺癌、肺癌、膀胱癌、肝癌,具有明顯的去甲基化作用[4]。研究[5]表明,TET1的表達水平與腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移密切相關(guān),而且TET1表達水平的下調(diào)可以活化致癌基因,促進腫瘤細胞增殖,促進腫瘤發(fā)生和轉(zhuǎn)移。該研究擬通過構(gòu)建TET1過表達HeLa細胞,通過細胞增殖試驗、劃痕試驗、Transwell試驗檢測其增殖、侵襲、遷移等能力的變化,探究TET1過表達對宮頸癌細胞生物學(xué)行為的影響。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1質(zhì)粒 p57TALE-VP64過表達質(zhì)粒購于上海泰冷生物技術(shù)有限公司。

1.1.2細胞 選用人宮頸癌細胞系HeLa細胞系(胚胎干細胞研究湖北省重點實驗室保存)。

1.1.3主要試劑 DMEM高糖培養(yǎng)基(美國Gibco,11965-092)、胎牛血清(美國,Gibco公司,10099-141);Lipo3000轉(zhuǎn)染試劑(美國Thermo Fisher公司,L3000001);Transwell小室(美國Corning公司,3422);TET1抗體(美國Aviva Systems Biology公司,OAAB19195);小鼠抗人GAPDH抗體(AF0006)、辣根過氧化物酶標記山羊抗小鼠IgG(H+L)(A0216)、四唑鹽 (thiazolyl blue tetrazolium bromide,MTT)細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒、BeyoECL Star (特超敏ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒,P0018AS,上海碧云天生物技術(shù)公司)。

1.2 方法

1.2.1細胞培養(yǎng) HeLa細胞置于5% CO2、37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),完全培養(yǎng)基配制:90% DMEM培養(yǎng)基+10%胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)。

1.2.2TET1過表達質(zhì)粒構(gòu)建 根據(jù)轉(zhuǎn)錄激活樣效應(yīng)因子(transcription activator-like effectors, TALE)設(shè)計原則,選取TET1啟動子區(qū)不同區(qū)域設(shè)計6條TALE臂,根據(jù)TALE臂堿基序列,將相應(yīng)的模塊與骨架載體進行連接,轉(zhuǎn)化后挑取菌落培養(yǎng),提取質(zhì)粒,選出序列正確的質(zhì)粒進行后續(xù)細胞轉(zhuǎn)染。

1.2.3細胞轉(zhuǎn)染 選取生長狀態(tài)良好的HeLa細胞,計數(shù)后接種至6孔板內(nèi),調(diào)節(jié)細胞密度至1×105/ml,培養(yǎng)過夜。次日進行轉(zhuǎn)染,取2支滅菌的1.5 ml離心管,1管加入TALE-VP64-TET1質(zhì)粒2 μg,優(yōu)化培養(yǎng)基(opti-minima essential medium, Opti-MEM) 50 μl,輕輕吹打混勻;另1管加入2 μl Lipo-fectamine 3000和50 μl Opti-MEM培養(yǎng)基,輕輕吹打混勻,室溫孵育5 min。將兩管液體混合,室溫下溫育5 min,最后將轉(zhuǎn)染復(fù)合物均勻滴加到待轉(zhuǎn)染的細胞培養(yǎng)板中。轉(zhuǎn)染24 h后,用嘌呤霉素篩選穩(wěn)轉(zhuǎn)株,待細胞長到一定密度后檢測過表達效率。

1.2.4細胞增殖試驗 取野生型和過表達型HeLa細胞,接種至96孔板內(nèi),每孔200 μl完全培養(yǎng)基,細胞密度1×104/ml,每組5個重復(fù),置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。于培養(yǎng)第1、3、5、7天進行MTT檢測。

1.2.5劃痕試驗 取野生型和過表達型HeLa細胞,計數(shù)后調(diào)整細胞密度至0.5×106/ml,接種至12孔板內(nèi),37 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)恒溫培養(yǎng)。劃痕前1天晚上將培養(yǎng)液換為DMEM無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)。次日用小槍頭在培養(yǎng)皿底劃出水平劃痕,用PBS洗去多余的細胞,繼續(xù)用DMEM無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)細胞。分別在劃后0、24、48 h拍照記錄。

1.2.6Transwell試驗 將DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基和Matrigel膠按5 ∶1的比例稀釋,以50 μl/孔的濃度均勻鋪在Transwell小室上室內(nèi),37 ℃靜置2 h,使Matrigel膠凝固。取不同TET1基因型HeLa細胞,計數(shù)后調(diào)整細胞密度到1×106/ml。向上室加入100 μl/孔細胞懸液,下室內(nèi)每孔加入500 μl/孔DMEM完全培養(yǎng)基。培養(yǎng)48 h后取出小室,加入4%多聚甲醛室溫固定30 min,PBS充分水洗,1%結(jié)晶紫染液室溫染色15 min,PBS充分水洗,擦去上室中的Matrigel膠及細胞,顯微鏡下觀察拍照。

1.2.7Western blot 提取不同組別HeLa細胞總蛋白,進行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis, SDS-PAGE)電泳。15 V恒壓轉(zhuǎn)膜1 h,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,加入一抗(TET1,稀釋度1 ∶500;GAPDH,稀釋度1 ∶1 000),4 ℃搖床過夜,洗滌緩沖液 (tris buffered saline tween, TBST) 洗膜后,加入辣根過氧化物酶標記山羊抗小鼠二抗,室溫孵育1 h,TBST洗膜后顯影。

2 結(jié)果

2.1 TET1過表達質(zhì)粒的構(gòu)建和鑒定因為TET1的 CDS序列比較長,常規(guī)的克隆方法存在困難,采用TALE特異性識別并結(jié)合靶基因的啟動子,再與VP64增強子結(jié)合,從而增強靶基因的表達(圖1A)。本研究中,針對TET1啟動子區(qū)域,共選擇了6個靶位點。將構(gòu)建成功并測序正確的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染293細胞,通過效率檢測最終確定2號(TALE靶序列為轉(zhuǎn)錄起始位點上游-231至-216)質(zhì)粒用于后續(xù)實驗。將2號質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HeLa細胞后,嘌呤霉素篩選10 d,最后采用反轉(zhuǎn)錄·聚合酶鏈反應(yīng) (reverse transcription-polymerase chain reaction, RT-PCR)及Western blot檢測TET1過表達效率,發(fā)現(xiàn)有2個克隆(Clone 1、Clone 2)穩(wěn)定的過表達TET1(圖1B),并將這2個克隆用于后續(xù)實驗。

2.2 TET1過表達對HeLa細胞增殖能力的影響為了檢測TET1過表達對HeLa細胞增殖能力的影響,本研究采用MTT檢測HeLa細胞增殖狀況。連續(xù)監(jiān)測7 d后,得到3組細胞的增殖曲線(圖2),TET1過表達的Clone 1和Clone 2細胞增殖能力明顯弱于野生型HeLa細胞(tday 5=2.6,tday 7=3.03,P<0.05)。

2.3 TET1過表達HeLa細胞侵襲能力的影響對過表達TET1的HeLa細胞,采用Transwell侵襲試驗檢測其侵襲能力的變化情況。如圖3所示,Transwell小室培養(yǎng)48 h后, Clone 1及Clone 2穿過magtrigel膠及小室的細胞分別是(21±5)和(22±6)個/視野,而野生型細胞組為(38±7)個/視野,與野生型細胞組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,t值分別為4.42和3.88)。 結(jié)果顯示,過表達TET1明顯降低了HeLa細胞的侵襲能力。

圖1 TET1 過表達質(zhì)粒構(gòu)建和鑒定

A: TET1 過表達質(zhì)粒構(gòu)建示意圖;B: RT-PCR及Western blot檢測TET1過表達質(zhì)粒鑒定;Clone 1和Clone 2:分別為TET1過表達HeLa細胞克隆1和克隆2;Wild:野生型HeLa細胞

圖2 TET1過表達對HeLa細胞增殖能力的影響

圖3 TET1過表達對HeLa細胞侵襲能力的影響

A: TET1過表達對HeLa細胞侵襲能力的影響 ×10;B: 柱狀圖分析不同組別遷移的細胞數(shù);與Wild細胞比較:*P<0.05

2.4 TET1過表達對HeLa細胞遷移能力的影響劃痕試驗是判斷細胞遷移能力的經(jīng)典試驗。本研究采用劃痕試驗檢測TET1過表達對HeLa細胞遷移能力的影響。結(jié)果表明,TET1過表達組(Clone 1、Clone 2)細胞24 h及48 h的遷移率分別為(17.48±3.12)%、(18.23±3.57)%及(51.68±6.35)%、(53.25±7.16)%,而野生型HeLa組細胞24 h及48 h的遷移率分別為(29.68±4.63)%及(75.83±8.42)%,后者明顯高于前者(P<0.01, 24 ht值分別為2.75、2.68, 48 ht值分別為4.25、3.78),見圖4。

圖4 TET1過表達對HeLa細胞遷移能力的影響

A: 劃痕試驗檢測24 h及48 h遷移狀況圖 ×10;B:不同組HeLa細胞24 h及48 h遷移率柱狀統(tǒng)計圖;與Wild細胞比較:**P<0.01

3 討論

TET1是TET家族最重要的成員之一,屬于含有α-酮戊二酸及Fe2+的雙加氧酶[6]。TET1能夠催化5-mC轉(zhuǎn)化為5-hmC,進而轉(zhuǎn)化為5-甲酰胞嘧啶和5-羧基胞嘧啶,從而實現(xiàn)DNA去甲基化,發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)[7]。許多腫瘤中存在自噬相關(guān)調(diào)節(jié)基因的甲基化異常現(xiàn)象,TET1作為一種新的去甲基化轉(zhuǎn)錄因子,在多種疾病具有重要的調(diào)控作用。研究發(fā)現(xiàn)TET1具有抑癌作用[8],在肺癌[9]、結(jié)腸癌[10]、乳腺癌[11]組織中,TET1表達明顯減少。多項成瘤實驗表明,如果TET1低水平表達,那么腫瘤細胞侵襲性增強,生長速度加快,癌細胞更易轉(zhuǎn)移;若TET1過表達,腫瘤細胞的侵襲性明顯降低,異種移植瘤的生長受到抑制。最新的研究發(fā)現(xiàn),TET1可以通過促進Wnt通路拮抗劑腫瘤抑制因子β-連環(huán)蛋白抑制基因2和分泌型卷曲相關(guān)蛋白2的DNA去甲基化,抑制Wnt/catenin信號通路,在鼻咽癌中發(fā)揮抗腫瘤能力[12];還可以通過抑制分泌性蛋白Dikkopf-1及SFRP2從而抑制卵巢癌細胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化[13]。綜上,TET1的低水平表達與腫瘤的侵襲、轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。對TET1與宮頸癌細胞生物學(xué)行為的影響的研究,必將對宮頸癌的早期診斷、預(yù)后及治療具有重要意義。

TALE是一種具有高度特異性的調(diào)節(jié)基因。由多個串聯(lián)的氨基酸重復(fù)序列構(gòu)成DNA結(jié)合域,一個重復(fù)序列通常可以識別一個特定堿基。根據(jù)靶基因特異的堿基序列,將相應(yīng)的功能模塊連接在一起,構(gòu)成識別該特異核酸序列的TALE蛋白分子。TALE蛋白分子具有很高的特異性,因為即便有2個堿基錯配,也不能被TALE識別。在分子生物學(xué)領(lǐng)域中,如果將特異的DNA結(jié)合域與蛋白的功能結(jié)構(gòu)域(比如核酸酶、增強子等)連接后導(dǎo)入細胞,就可以影響細胞相應(yīng)基因的表達[14]。

前期研究[15]表明,TET1基因敲除的宮頸癌HeLa細胞增殖能力、侵襲能力增強,TET1基因敲除能增加宮頸癌HeLa細胞的惡性行為。為探討TET1基因過表達的HeLa細胞生物學(xué)行為的影響,本研究采用TALE-VP64系統(tǒng)構(gòu)建TET1過表達質(zhì)粒,再將其轉(zhuǎn)染人HeLa細胞,得到了2個TET1過表達的單克隆HeLa細胞。分別用MTT法、Transwell侵襲試驗、劃痕試驗檢測不同組別HeLa細胞增殖、遷移及侵襲能力的變化情況。與野生型HeLa細胞相比,TET1基因過表達的HeLa細胞的增殖、侵襲、遷移能力明顯降低。本研究表明TET1基因過表達對宮頸癌HeLa細胞有抑癌基因的作用,這一結(jié)果與TET1基因在其他腫瘤疾病中的作用類似,將為治療宮頸癌提供新的作用靶點。

本研究結(jié)果與前期研究結(jié)果相互印證,證明了TET1基因?qū)eLa細胞增殖、侵襲、遷移等生物學(xué)行為具有重要的調(diào)控作用,為研究 TET1 的作用機制及宮頸癌的靶向治療提供了理論基礎(chǔ),但具體的分子機制需要進一步研究。后續(xù)研究將會探討TET1基因調(diào)控宮頸癌惡性行為的具體機制,以期為臨床治療宮頸癌提供新的治療方案。

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