謝忠利 李 旦 陳遠(yuǎn)書(shū) 于相君 古 旭 何承忠
( 1. 西南林業(yè)大學(xué)云南省高校林木遺傳改良與繁育重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,云南 昆明 650233;2. 西南林業(yè)大學(xué)云南生物多樣性研究院,云南 昆明 650233)
云南松(Pinus yunnanensis)為松科(Pinaceae)松屬(Pinus)常綠喬木,是以云南省為分布中心的西南山地特有樹(shù)種[1],主要分布于北緯23°~29°,東經(jīng)96°~108°,為木材與樹(shù)脂生產(chǎn)的主要樹(shù)種,其產(chǎn)品涵蓋造紙、栲膠、醫(yī)藥等領(lǐng)域,對(duì)生態(tài)建設(shè)和經(jīng)濟(jì)建設(shè)有舉足輕重的作用[2]。然而現(xiàn)存的云南松優(yōu)株數(shù)量極少,彎、扭木衰退現(xiàn)象明顯,制約云南松經(jīng)濟(jì)效益、生態(tài)效益和社會(huì)效益的發(fā)揮。同時(shí),云南松優(yōu)株的結(jié)實(shí)率低,種子繁殖后代分化嚴(yán)重,扦插生根困難成活率低,嫁接技術(shù)要求高難以推廣。通過(guò)離體培養(yǎng)技術(shù)實(shí)現(xiàn)快速繁殖,不僅可推進(jìn)優(yōu)良苗木大規(guī)模高效繁殖和商業(yè)化生產(chǎn),實(shí)現(xiàn)松樹(shù)良種品種化應(yīng)用的捷徑,還可為松樹(shù)遺傳改良過(guò)程中的分子育種搭建平臺(tái),也能為種質(zhì)資源的中長(zhǎng)期保存提供參考[3]。
自1985年,Hakman等[4]從挪威云杉(picea abies)未成熟合子胚培養(yǎng)中首次獲得了體細(xì)胞胚及其再生植株以來(lái),針葉類樹(shù)種的胚胎發(fā)生技術(shù)得以快速發(fā)展。截至目前已有糖松(Pinus lambertiana)[5]、濕地松(P. elliottii)[6]和紅松(P.koraiensis)[7]等30多種松屬樹(shù)種通過(guò)體胚發(fā)生途徑獲得了再生植株。但云南松體胚發(fā)生技術(shù)尚處于探索階段,還沒(méi)有再生植株的報(bào)道。大量研究表明,合子胚的發(fā)育階段直接影響著體胚誘導(dǎo)的成敗,大多數(shù)樹(shù)種的未成熟種子比成熟種子更容易誘導(dǎo)胚性愈傷組織。為此,本實(shí)驗(yàn)選取未成熟云南松種子作為外植體,探究不同外植體類型、采果母樹(shù)基因型、培養(yǎng)基等因素對(duì)云南松胚性愈傷組織誘導(dǎo)的影響,為云南松體胚發(fā)生技術(shù)體系建立奠定基礎(chǔ),也為進(jìn)一步開(kāi)展云南松優(yōu)株規(guī)模化育苗提供一種周期短、繁殖率高、性狀穩(wěn)定的方法。
于2015年7月8日起從西南林業(yè)大學(xué)后山采集12株云南松的球果用于合子胚發(fā)育階段研究,球果采集間隔4 d,每棵樹(shù)共計(jì)采集5次。在篩選出最適種子采集時(shí)間后,于第2年從云龍縣天池國(guó)家自然保護(hù)區(qū)采集8棵云南松優(yōu)株未成熟球果,依次編號(hào)為 072、073、074、075、076、078、079、080,每棵采15~20個(gè)未成熟球果,用于胚性愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基篩選和基因型影響研究。2個(gè)研究階段的球果帶回實(shí)驗(yàn)室,用75%乙醇溶液浸泡8 min,加硅膠密封后存放于4 ℃冰箱中,備用。
1.2.1 種子表面消毒實(shí)驗(yàn)
將新鮮球果剖開(kāi)取出未成熟種子,將其放入培養(yǎng)瓶中加洗滌劑流水沖洗2 h,之后采用3種方法在超凈工作臺(tái)中進(jìn)行種子表面消毒處理,分別為處理1:75%乙醇溶液消毒3 min,無(wú)菌水沖洗2~3次,0.1%升汞浸泡10 min,無(wú)菌水沖洗4~5次;處理2:75%乙醇溶液消毒30 s,無(wú)菌水沖洗2~3次,2%次氯酸鈉浸泡15 min,無(wú)菌水沖洗4~5次;處理3:75%乙醇溶液消毒30 s,無(wú)菌水沖洗2~3次,0.1%升汞浸泡10 min,無(wú)菌水沖洗4~5次。外植體經(jīng)消毒處理后接種在培養(yǎng)上,每皿接種10個(gè)外植體,接種接2皿,3次重復(fù)。接種21 d后觀測(cè)統(tǒng)計(jì)污染率和成活率。
1.2.2 不同采果時(shí)期的合子胚發(fā)育狀態(tài)觀測(cè)
取出保存于4 ℃的不同時(shí)期采集的球果,把球果剖開(kāi),剝?nèi)∏蚬胁糠N子,用鑷子和剪刀去除種殼,解剖針挑出合子胚,將合子胚置于體視熒光顯微鏡下(M165FC),觀察合子胚形狀并拍照,根據(jù)前人的研究[8]劃分合子胚的發(fā)育時(shí)期。每株采果母樹(shù)每個(gè)采果時(shí)期觀測(cè)20粒種子。
1.2.3 外植體類型篩選實(shí)驗(yàn)
參照前人研究結(jié)果和本實(shí)驗(yàn)對(duì)合子胚發(fā)育狀態(tài)觀測(cè)結(jié)果,根據(jù)吳濤等[8]對(duì)云南松合子胚發(fā)育階段的劃分,選擇合子胚處于第Ⅲ和第Ⅳ發(fā)育階段的1株采果母樹(shù)種子進(jìn)行外植體類型篩選研究。在超凈工作臺(tái)中將表面消毒處理后的種子去除種殼,分別剝?nèi)呷榈暮献优遊4]和合子胚作為外植體,接種于以1/2Y為基本培養(yǎng)基,添加2,4-D 1.1 mg/L,6-BA 0.4 mg/L,KT 0.4 mg/L,AgNO33.4 mg/L,活性炭50 mg/L,肌醇20 g/L,谷氨酰胺(Gln)0.5 g/L,水解酪蛋白(CH)0.5 g/L,蔗糖30 g/L,植物凝膠2.0 g/L的胚性愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基中進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng)。2種外植體類型,每皿接種5個(gè)外植體,接種7皿為7個(gè)重復(fù),共接種14皿。培養(yǎng)21 d后觀測(cè)統(tǒng)計(jì)胚性愈傷組織誘導(dǎo)率。
1.2.4 適宜培養(yǎng)基篩選和母樹(shù)基因型的影響實(shí)驗(yàn)
將8株云南松優(yōu)株的種子進(jìn)行表面消毒處理后,參考其他針葉樹(shù)體細(xì)胞胚誘導(dǎo)的成功試驗(yàn)設(shè)計(jì)[2-7,9-13],將帶胚乳的合子胚接種在以MLV、1/2LM、LM、1/2Y、S、DCR為基本培養(yǎng)基,添加2, 4-D(0.5、1.0、1.1、1.8、2.0、2.2、8.0 mg/L),6-BA(0.32、0.4、0.5、0.63、1.0、1.1、1.5 mg/L),KT( 0.3、 0.4、 0.5、 0.61、 1.0 mg/L), NAA(2.0 mg/L),AgNO3(3.4 mg/L),活性炭(50 mg/L),肌醇(0.1、0.2、1.0、20 g/L),麥芽糖(15 g/L),谷氨酰胺(Gln)0.5 g/L,水解酪蛋白(CH)0.5 g/L,蔗糖30 g/L(添加麥芽糖者除外),植物凝膠2.0 g/L,共計(jì)14種配比組合的誘導(dǎo)培養(yǎng)基。每株采果母樹(shù)接種3皿,每皿接種5個(gè)外植體,3次重復(fù),培養(yǎng)21 d后觀測(cè)胚性愈傷組織產(chǎn)生情況,并計(jì)算誘導(dǎo)率。
1.2.5 胚性愈傷組織鑒定
取少量可能胚性愈傷組織采用醋酸洋紅染色,經(jīng)過(guò)制片處理后,在體視熒光顯微鏡(M165FC)和徠卡正置熒光顯微鏡(DM2500)下進(jìn)行觀察。誘導(dǎo)出的愈傷組織分為2種類型。一種為非胚性愈傷組織,形態(tài)表現(xiàn)為淺黃色或黃色,透明半透明,表面粗糙伴有結(jié)節(jié)顆粒,無(wú)絲狀組織產(chǎn)生。制成玻片,在顯微鏡下觀察到此類細(xì)胞未能被醋酸洋紅染色,且細(xì)胞較大,近圓形,結(jié)構(gòu)致密。另一種為胚性愈傷組織,形態(tài)表現(xiàn)為淺白或白色,有透明絲狀組織產(chǎn)生,結(jié)構(gòu)較為疏松,繼代培養(yǎng)后晶瑩剔透。制成玻片,在顯微鏡下觀察到此類細(xì)胞能夠被醋酸洋紅溶液染為紅色,且細(xì)胞核大,胞質(zhì)濃厚,具有分化能力。
1.2.6 培養(yǎng)條件
將接種后的培養(yǎng)皿置于(25±3)℃的培養(yǎng)室內(nèi)進(jìn)行暗培養(yǎng),濕度75%~85%。培養(yǎng)21 d后取出,觀測(cè)統(tǒng)計(jì)愈傷組織誘導(dǎo)情況。
1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析
采用Excel 2007和SPSS 22.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)的整理與分析。多重比較采用Duncan’s新復(fù)極差測(cè)驗(yàn)法進(jìn)行顯著性分析。
大量文獻(xiàn)表明,升汞具有較好的滅菌效果,但滅菌清洗后難除殘毒,對(duì)處理材料有毒害作用,影響其成活或生長(zhǎng)。采用處理1和處理3作消毒處理后,接種培養(yǎng)21 d的帶胚乳的合子胚污染率均為0%,但其存活率也低,分別為43.67%和56.33%;采用處理2消毒處理后,帶胚乳的合子胚污染率為3.3%,而其存活率達(dá)到86.89%,極顯著高于處理1和處理3(表1)。綜合考慮,選擇處理2,即75%乙醇溶液消毒30 s,無(wú)菌水沖洗2~3次,2%次氯酸鈉浸泡15 min,無(wú)菌水沖洗4~5次較適宜用于種子表面消毒,其污染率可控制在3.3%以內(nèi),滿足后續(xù)實(shí)驗(yàn)要求。
表 1 3種消毒方法對(duì)外植體污染的影響Table 1 Effects of 3 disinfection methods on explants pollution
吳濤等[8]將云南松合子胚發(fā)育分為8個(gè)階段。本實(shí)驗(yàn)5個(gè)不同采果時(shí)期的球果整體呈綠色,基部略顯黃褐色,種子的種殼外觀為淺黃色,質(zhì)地軟。在解剖鏡下觀察合子胚,2015年7月8日采集球果的種子合子胚95%以上處于第Ⅰ和第Ⅱ發(fā)育階段;而7月12日的種子合子胚有85%以上處于第Ⅱ和第Ⅲ發(fā)育階段;到7月16日,75%的種子合子胚處于第Ⅲ 和第Ⅳ發(fā)育階段。處于第Ⅰ~Ⅳ發(fā)育階段的合子胚,胚體半透明,輪廓尚不分明,頂端突起、圓頂形;7月20日時(shí),大部分未成熟胚的頂端分生組織原基明顯可見(jiàn),子葉原基開(kāi)始顯露,但未超過(guò)頂端莖尖分生組織,75%處于階段Ⅴ~Ⅵ;7月24日的合子胚已經(jīng)接近成熟,子葉逐漸成形,相互間可見(jiàn)明顯的縫隙,但合子胚發(fā)育的不同步性非常明顯,能觀察到云南松合子胚發(fā)育的全部8個(gè)時(shí)期,其中70%處于Ⅶ~Ⅷ 階段(圖1),處于發(fā)育Ⅰ~Ⅱ階段約為5%。
圖 1 云南松合子胚發(fā)育階段Fig. 1 Zygote embryo of P. yunnanensis in development stages
以合子胚處于第Ⅴ~Ⅵ 階段的球果種子為材料,分別挑取帶胚乳的合子胚和合子胚作為外植體,培養(yǎng)21 d后觀測(cè)愈傷組織和胚性愈傷組織。結(jié)果表明,2種外植體類型均可產(chǎn)生愈傷組織和胚性愈傷組織。以合子胚為外植體時(shí),愈傷組織誘導(dǎo)率高于帶胚乳的合子胚,但二者差異不顯著,而以合子胚為外植體的胚性愈傷組織誘導(dǎo)率低于帶胚乳的合子胚,且二者之間的胚性愈傷組織誘導(dǎo)率差異達(dá)極顯著水平(P<0.01)。以帶胚乳合子胚為外植體胚性愈傷組織誘導(dǎo)率可達(dá)34.3%,以合子胚為外植體胚性愈傷組織誘導(dǎo)率為14.3%,說(shuō)明帶胚乳的合子胚更有利于云南松胚性愈傷組織誘導(dǎo)。
以云龍縣天池國(guó)家自然保護(hù)區(qū)8株云南松優(yōu)株為對(duì)象,取其合子胚處于第Ⅴ~Ⅵ發(fā)育階段帶胚乳的合子胚為材料,接種于14種培養(yǎng)基中,研究云南松采果母樹(shù)基因型對(duì)胚性愈傷組織誘導(dǎo)率的影響,結(jié)果見(jiàn)表2。
表 2 不同優(yōu)樹(shù)的胚性愈傷組織誘導(dǎo)效果Table 2 Effects of different elite trees on embryonic callus induction
從表2可看出:080號(hào)優(yōu)樹(shù)帶胚乳的合子胚在14種培養(yǎng)基上均能誘導(dǎo)出胚性愈傷組織,誘導(dǎo)率在4.8%~23.8%之間;其次是079和076號(hào)優(yōu)樹(shù),各有1種培養(yǎng)基未能誘導(dǎo)出胚性愈傷組織;而072號(hào)優(yōu)樹(shù)有6種培養(yǎng)基不能誘導(dǎo)產(chǎn)生胚性愈傷組織。從14種培養(yǎng)基的通用性來(lái)看,6#培養(yǎng)基均能對(duì)8株優(yōu)樹(shù)誘導(dǎo)產(chǎn)生胚性愈傷組織,誘導(dǎo)率在4.8%~23.8%之間;而5#、9#和11#培養(yǎng)基各有3株優(yōu)樹(shù)不能誘導(dǎo)獲得胚性愈傷組織。8株優(yōu)樹(shù)在14種培養(yǎng)基上的胚性愈傷組織平均誘導(dǎo)率差異達(dá)極顯著水平,變異幅度在5.1%~19.5%之間,076號(hào)優(yōu)樹(shù)具有最高誘導(dǎo)率,而075號(hào)優(yōu)樹(shù)的誘導(dǎo)率最低,二者之間差異極顯著。由此可知,基因型對(duì)云南松胚性愈傷組織誘導(dǎo)具有極顯著影響。
以8株云南松優(yōu)樹(shù)帶胚乳的合子胚為外植體,接種于14種培養(yǎng)基,暗培養(yǎng)21 d后的愈傷組織誘導(dǎo)率和胚性愈傷組織誘導(dǎo)率見(jiàn)表3。14種培養(yǎng)基均能誘導(dǎo)出愈傷組織和胚性愈傷組織,且愈傷組織誘導(dǎo)率較高者,誘導(dǎo)產(chǎn)生胚性愈傷組織的可能性也較大,但2類愈傷組織誘導(dǎo)率之間不完全相關(guān),如1#、6#、8#和12#培養(yǎng)基的愈傷組織誘導(dǎo)率較高,在50.5%~59.3%之間,最大值出現(xiàn)12#培養(yǎng)基,最小值出現(xiàn)在8#培養(yǎng)基,差異不顯著,但該4種培養(yǎng)基的胚性愈傷組織誘導(dǎo)率變化范圍為12.1%~17.6%,最大值出現(xiàn)在6#培養(yǎng)基,最小值出現(xiàn)在1#培養(yǎng)基,且差異達(dá)顯著水平。結(jié)合愈傷組織和胚性愈傷組織誘導(dǎo)率,云南松未成熟胚的胚性愈傷組織誘導(dǎo)適宜培養(yǎng)基為3#、6#和12#。
表 3 不同培養(yǎng)基的胚性愈傷組織誘導(dǎo)效果Table 3 Effects of different media on embryonic callus induction
接種在1/2Y+2, 4-D 1.1 mg/L+6-BA 0.4 mg/L+KT 0.4 mg/L+AgNO33.4 mg/L+活性炭 50 mg/L+肌醇20 g/L+谷氨酰胺(Gln)0.5 g/L+水解酪蛋白(CH)0.5 g/L+蔗糖30 g/L+植物凝膠2.0 g/L誘導(dǎo)培養(yǎng)基中3 d后,合子胚開(kāi)始響應(yīng),具體表現(xiàn)為胚膨大,胚軸基部有褐色突起出現(xiàn),子葉分化出“點(diǎn)狀突起”,7 d后接種的合子胚發(fā)育形成愈傷組織(圖2a),15 d后胚性愈傷組織開(kāi)始出現(xiàn),連同非胚性愈傷組織逐漸長(zhǎng)大(圖2b)。帶胚乳的合子胚響應(yīng)晚于合子胚,將其接種在3號(hào)培養(yǎng)基中,7 d后開(kāi)始膨大,珠孔末端有“突起”(圖2c),15 d后“突起”生長(zhǎng)明顯,長(zhǎng)出晶瑩剔透的白色柱狀物(圖2d)。誘導(dǎo)出的愈傷組織分為2種類型,一種為非胚性愈傷組織,表現(xiàn)為淺黃或黃色(圖2e),透明或半透明,表面粗糙或?yàn)榻Y(jié)節(jié)狀;另一種為胚性愈傷組織,形態(tài)特征為顏色淺白或白色,半透明,結(jié)構(gòu)較為疏松,表面透明絲狀,經(jīng)繼代培養(yǎng)后常晶瑩剔透(圖2f),醋酸洋紅染色后可觀察到胚性胚柄團(tuán)(圖2h、i),通常細(xì)胞較小,近圓形,細(xì)胞核較大,胞質(zhì)濃厚,具分化能力。
圖 2 胚性愈傷組織的形態(tài)特征Fig. 2 Morphological characteristics of embryogenic callus
大量研究表明,不同的外植體消毒處理方法對(duì)其污染率和愈傷組織誘導(dǎo)有顯著影響。本實(shí)驗(yàn)篩選出來(lái)的最佳消毒處理為75%乙醇溶液消毒30 s,無(wú)菌水沖洗2次,2%次氯酸鈉浸泡15 min,無(wú)菌水沖洗4~5次,其污染率可控制在3.3%,與齊力旺[9]的相比對(duì)外植體的毒害作用更小,成活率更高,可以節(jié)約大量時(shí)間[10],同時(shí)污染率比白卉等[11]的低。其次,次氯酸鈉能分解產(chǎn)生具有殺菌能力的氯氣,易除去,對(duì)環(huán)境的影響也較小,又易購(gòu)買,故選擇次氯酸鈉為處理云南松種子的滅菌劑。
趙曉敏等[12]在探究影響興安落葉松胚性愈傷組織誘導(dǎo)的因子中發(fā)現(xiàn),興安落葉松帶胚乳的合子胚培養(yǎng)有利于胚性愈傷組織的誘導(dǎo)。本實(shí)驗(yàn)采用兩種類型外植體,以帶胚乳的合子胚為外植體,其誘導(dǎo)率是合子胚外植體的兩倍,這與上述結(jié)論相似。但Thompson等[2]在西部落葉松體細(xì)胞發(fā)生的研究中,采用了4種類型幼胚進(jìn)行接種培養(yǎng),認(rèn)為直接培養(yǎng)帶胚乳合子胚沒(méi)有形成胚性培養(yǎng)物,而接種合子胚能誘導(dǎo)出胚性培養(yǎng)物,且誘導(dǎo)率為4種尖型幼胚中最高,達(dá)32%,產(chǎn)生這種差異的可能是物種不同造成的。
母樹(shù)效應(yīng)是影響體細(xì)胞胚胎發(fā)生的內(nèi)在因素,是不可忽略的。Egertsdotter[13]的研究表明,針葉樹(shù)種多為頑拗型植物,其體胚發(fā)生、體胚的質(zhì)量及胚苗轉(zhuǎn)化率更取決于母樹(shù)基因型。Couée等[14]比較20個(gè)家系體胚發(fā)生能力的差異,結(jié)果表明不同家系胚性愈傷組織誘導(dǎo)率從4.6%~49.1%不等。本實(shí)驗(yàn)采用云南松8株優(yōu)樹(shù)帶胚乳的合子胚進(jìn)行胚性愈傷組織誘導(dǎo),不同優(yōu)樹(shù)之間的誘導(dǎo)率差異達(dá)極顯著水平,最高為19.5%,最低只有5.1%,這與前人的研究結(jié)論一致。然而,吳麗君[15]在濕地松、火炬松離體培養(yǎng)植株再生技術(shù)的研究中認(rèn)為,樹(shù)種及其基因型影響體胚發(fā)生的原因可能是不同樹(shù)種、不同基因型的最適誘導(dǎo)培養(yǎng)條件不同。基本培養(yǎng)基、外植體、植物激素對(duì)誘導(dǎo)體胚發(fā)生起著重要作用[16]。Duncan等[17]、Park等[18]認(rèn)為體胚發(fā)生困難的家系或基因型是可以通過(guò)培養(yǎng)基等培養(yǎng)條件的優(yōu)化得以克服的。因此通過(guò)培養(yǎng)基的調(diào)制、激素組合或其他培養(yǎng)條件的優(yōu)化打破母樹(shù)的限制無(wú)疑是今后研究工作的重要內(nèi)容。
致謝:本研究依托西南林業(yè)大學(xué)大型儀器共享平臺(tái)和云南生物多樣性研究院科研實(shí)驗(yàn)平臺(tái)完成!
[ 參 考 文 獻(xiàn) ]
[1]金振洲, 彭鑒.云南松[M]. 昆明:云南科技出版社,2004.
[2]Thompson R G, von Aderkas P. Somatic embryogenesis and plant regeneration from immature embryos of western larch [J]. Plant Cell Reports, 1992, 11(8):379-385.
[3]季孔庶, 王潘潘, 王金鈴, 等. 松科樹(shù)種的離體培養(yǎng)研究進(jìn)展 [J]. 南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2015,39(1): 142-148.
[4]Hakman I, Fowke L C, von Arnold S, et al. The development of somatic embryos in tissue cultures initiated from immature embryos of Picea abies (Norway Spruce) [J]. Plant Science, 1985, 38(1): 53-59.
[5]黃健秋, 衛(wèi)志明. 針葉樹(shù)體細(xì)胞胚胎發(fā)生的研究進(jìn)展 [J]. 植物生理學(xué)通訊, 1995, 31(2): 85-90.
[6]唐巍, 歐陽(yáng)藩, 郭仲琛. 濕地松體細(xì)胞胚胎發(fā)生和植株再生 [J]. 植物資源與環(huán)境, 1997, 6(2): 8-11.
[7]申曉輝, 蔣湘寧, Park Y S, et al. 紅松體細(xì)胞胚胎培養(yǎng)技術(shù)體系的建立 [J]. 成都大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2005, 24(1): 11-14.
[8]吳濤, 陳少瑜, 陳芳, 等. 云南松合子胚發(fā)育及形態(tài)特征 [J]. 西北林學(xué)院學(xué)報(bào), 2008, 23(6): 91-93.
[9]齊力旺. 華北落葉松體細(xì)胞胚胎發(fā)生與遺傳轉(zhuǎn)化系統(tǒng)建立的研究[D]. 北京: 中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院,2000.
[10]王偉達(dá), 李成浩, 張含國(guó), 等. 長(zhǎng)白落葉松愈傷組織誘導(dǎo)與不定芽分化 [J]. 東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2008, 36(2):5-7.
[11]白卉, 王偉功, 曹焱. 紅皮云杉胚性愈傷組織誘導(dǎo)影響因子的研究 [J]. 黑龍江生態(tài)工程職業(yè)學(xué)院學(xué)報(bào),2008, 21(3): 20-22.
[12]趙曉敏, 沈海龍, 楊玲, 等. 興安落葉松胚性愈傷組織誘導(dǎo)影響因子的研究 [J]. 植物研究, 2007, 27(5):538-543.
[13]Egertsdotter U. Plant physiological and genetical aspects of the somatic embryogenesis process in conifers [J]. Scandinavian Journal of Forest Research,2018(4): 1-38.
[14]Couée I, Hummel I, Sulmon C, et al. Involvement of polyamines in root development [J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 2004, 76(1): 1-10.
[15]吳麗君. 濕地松、火炬松離體培養(yǎng)植株再生技術(shù)的研究[D]. 南京: 南京林業(yè)大學(xué), 2008.
[16]袁澍, 賈勇炯, 林宏輝. 誘導(dǎo)植物體細(xì)胞胚發(fā)生的幾個(gè)生理因素 [J]. 植物生理學(xué)通訊, 2003, 39(5):508-512.
[17]Duncan D R, Williams M E, Zehr B E, et al. The production of callus capable of plant regeneration from immature embryos of numerous Zea mays genotypes [J].Planta, 1985, 165(3): 322-332.
[18]Park Y S, Lelu-Walter M A, Harvengt L, et al. Initiation of somatic embryogenesis in Pinus banksiana, P.sylvestris at three laboratories in Canada and France [J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 2006,86(1): 87-101.