肖羽 馮紅玉 陳惠萍

摘? 要? 通過(guò)用不同濃度的煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸（nicotinamide adenine dinucleotide phosphate， NADPH）合成酶抑制劑碘二苯（diphenylene iodonium， DPI）及過(guò)氧化氫（hydrogen peroxide， H2O2）清除劑二甲基硫脲（dimethylthiourea， DMTU）分別培養(yǎng)水稻（Oryza sativa L.）種子，研究?jī)?nèi)源H2O2對(duì)種子萌發(fā)過(guò)程胚根、胚芽和胚根根尖活力等的影響。結(jié)果表明，DPI及DMTU培養(yǎng)的水稻種子其胚根生長(zhǎng)和胚芽生長(zhǎng)均受到抑制，尤其是DPI對(duì)胚根生長(zhǎng)的抑制作用更為顯著。DPI和DMTU對(duì)水稻種子萌發(fā)的影響均呈現(xiàn)出濃度效應(yīng)，即濃度越高，抑制作用越強(qiáng)。其中，DPI對(duì)水稻種子萌發(fā)的抑制作用比DMTU的更為明顯。此外，胚根根尖的超氧陰離子（superoxide anion， O2）和H2O2含量隨DMTU濃度增大而減少，根尖細(xì)胞受損也越嚴(yán)重。由此推測(cè)，內(nèi)源H2O2可能參與調(diào)控水稻種子萌發(fā)過(guò)程。

關(guān)鍵詞? 內(nèi)源H2O2;種子萌發(fā);DPI;DMTU

中圖分類號(hào)? S511? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼? A

種子萌發(fā)是指具有生活力的種子吸水膨脹后，胚根突破種皮的過(guò)程[1]。種子能否正常萌發(fā)對(duì)其后期是否能夠正常生長(zhǎng)發(fā)育，以及正常結(jié)實(shí)具有重要的作用。種子萌發(fā)受到外部和內(nèi)部因素雙重影響，外部因素主要包括光照、溫度、水分等;內(nèi)部主要受到自身基因、激素及活性氧等影響。

過(guò)氧化氫（hydrogen peroxide， H2O2）是植物正常生理過(guò)程產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物，早先被認(rèn)為僅是具有毒害作用的活性氧[2]。但近年的研究發(fā)現(xiàn)，適當(dāng)濃度的H2O2可作為逆境信號(hào)分子，參與調(diào)控植物的抗逆性[3-4]。已有研究證實(shí)，外源H2O2可以提高鋁脅迫下小麥根尖的抗氧化代謝水平，緩解鋁脅迫導(dǎo)致的氧化損傷，從而增強(qiáng)小麥對(duì)鋁脅迫的適應(yīng)性[5]。適量的外源H2O2還可降低干旱下水稻糊粉層細(xì)胞內(nèi)H2O2的含量，延緩糊粉層細(xì)胞程序性死亡（programmed cell death， PCD）[6]，從而緩解干旱對(duì)水稻種子萌發(fā)的影響。

植物體內(nèi)H2O2主要是由NADPH合成酶途徑產(chǎn)生。碘二苯（diphenylene iodonium， DPI）作為煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸（nicotinamide adenine dinucleotide phosphate， NADPH）合成酶專一性抑制劑，預(yù)處理棉花種子會(huì)降低種子萌發(fā)率[7]。二甲基硫脲（dimethylthiourea， DMTU）是H2O2的清除劑，可降低H2O2含量，從而抑制萵苣種子萌發(fā)[8];DPI和DMTU均可減少干旱條件下水稻糊粉層中過(guò)量的H2O2，以提高淀粉酶活性，緩解干旱對(duì)水稻種子萌發(fā)的抑制作用[9]。DPI和DMTU還可降低中國(guó)石竹超氧化物歧化酶（superoxide dismutase， SOD）和抗壞血酸過(guò)氧化物酶（ascorbate peroxidase， APX）活性[10]，影響山黎豆種子萌發(fā)和初生根生長(zhǎng)[11]。

目前對(duì)于內(nèi)源H2O2影響正常生長(zhǎng)條件下水稻種子萌發(fā)的研究仍較少，因此，本研究用不同濃度NADPH合成酶抑制劑DPI和H2O2清除劑DMTU處理水稻種子，闡明其胚根和胚芽生長(zhǎng)等萌發(fā)狀況，并探究DMTU處理下胚根根尖超氧陰離子（superoxide anion， O2）含量和H2O2含量及細(xì)胞膜透性的變化，以期為進(jìn)一步研究?jī)?nèi)源H2O2調(diào)控水稻種子萌發(fā)的機(jī)理奠定基礎(chǔ)。

1? 材料與方法

1.1? 材料

實(shí)驗(yàn)材料為水稻（Oryza sativa L.）雜交種‘博Ⅱ優(yōu)767種子，購(gòu)自海南儋州種子站。選取均勻飽滿、大小一致、去除稻殼的種子50粒，放入墊有雙層濾紙的培養(yǎng)皿中，并于光照培養(yǎng)箱進(jìn)行培養(yǎng)。培養(yǎng)條件為：光照周期16/8 h（晝/夜），光照強(qiáng)度400 μmol/（m2·s），溫度26 ℃。

1.2? 方法

1.2.1? 實(shí)驗(yàn)處理? 實(shí)驗(yàn)設(shè)為13個(gè)處理：分別包括水（CK）、DPI和DMTU。其中，DPI設(shè)置6個(gè)濃度，分別為10、20、30、40、50、60 μmol/L，同樣DMTU 也設(shè)置有6個(gè)濃度，包括10、20、30、40、50、60 mmol/L，每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù)，每天更換對(duì)應(yīng)的處理液。

1.2.2? 胚芽長(zhǎng)、胚根長(zhǎng)觀測(cè)及測(cè)量? 分別于培養(yǎng)的24 h及48 h觀測(cè)并拍照萌發(fā)水稻種子。培養(yǎng)3 d后，從每個(gè)處理中隨機(jī)選取10粒種子，純水洗凈并用濾紙吸干表面水分，用直尺測(cè)量胚根長(zhǎng)和胚芽長(zhǎng)。

1.2.3? 根系活性氧含量高低及質(zhì)膜透性大小觀察 參照氯化硝基四氮唑藍(lán)（nitrotetrazorium blue chloride， NBT）染色法[12]觀察水稻種子胚根根尖O2含量。分別從各處理中隨機(jī)選取培養(yǎng)3 d的萌發(fā)水稻種子，用手術(shù)刀切取根尖放入NBT染液（1 mmol/L，pH 5.8）中染色5 min，用純水多次沖洗根尖，洗凈后觀察。

參照二氨基聯(lián)苯胺（diaminobenzidine， DAB）染色法[13]觀察水稻種子胚根根尖H2O2含量。同樣隨機(jī)選取培養(yǎng)3 d的萌發(fā)水稻種子，切取根尖于二氨基聯(lián)苯胺染液（1 mg/mL，pH 5.8）中染色30 min后，用純水洗凈、觀察。

參照伊文思藍(lán)染色法[14]觀察質(zhì)膜透性大小。將萌發(fā)3 d水稻種子根尖放入0.125%伊文思藍(lán)染液染色5 min后，取出用蒸餾水洗凈觀察。

以上水稻種子胚根根尖染色后，均采用Olympus（SZX7）體式顯微鏡觀察并拍照。

1.3? 數(shù)據(jù)處理

實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS軟件進(jìn)行方差分析（analysis of variance， ANOVA），對(duì)處理間的差異性多重比較采用最小顯著性差異法（least significant difference， LSD）進(jìn)行分析，用Excel和Photoshop軟件作圖。

2? 結(jié)果與分析

2.1? NADPH合成酶抑制劑DPI對(duì)水稻種子萌發(fā)中胚根生長(zhǎng)和胚芽生長(zhǎng)的影響

由圖1可見(jiàn)，在水培養(yǎng)24 h后，水稻種子的胚根和胚芽均突破了種皮，而不同濃度DPI培養(yǎng)24 h后，只有10 μmol/L處理的種子稍微露出胚根和胚芽，20、30 μmol/L處理的僅露出胚芽部分，其余處理的胚根和胚芽均未露出。浸種48 h后，水培養(yǎng)的胚根遠(yuǎn)長(zhǎng)于胚芽，10～30 μmol/L DPI處理的水稻種子僅露出一小段胚根，而40～60 μmol/L DPI處理的水稻種子則未見(jiàn)胚根露出。雖然不同濃度DPI處理下均可觀察到胚芽，但隨著DPI濃度的升高，胚芽長(zhǎng)度逐漸縮短。以上結(jié)果表明，NADPH合成酶抑制劑DPI以依賴濃度效應(yīng)影響水稻種子胚根及胚芽生長(zhǎng)，且對(duì)胚根生長(zhǎng)的影響效應(yīng)遠(yuǎn)大于對(duì)胚芽的影響。

由于DPI對(duì)胚根生長(zhǎng)抑制較嚴(yán)重，致使培養(yǎng)3 d的水稻種子大部分未有胚根露出，因此，本研究?jī)H對(duì)DPI處理的水稻種子胚芽長(zhǎng)度進(jìn)行測(cè)量。從圖2可知，與水培養(yǎng)的胚芽長(zhǎng)度相比，不同濃度NADPH合成酶抑制劑DPI培養(yǎng)水稻種子3 d后，胚芽的長(zhǎng)度受到明顯的抑制，抑制率均超過(guò)50%，且隨著處理濃度的遞增，胚芽長(zhǎng)度顯著地遞減。

由此可見(jiàn)，因DPI減少了水稻種子內(nèi)由NADPH途徑產(chǎn)生的內(nèi)源H2O2，從而影響了水稻種子萌發(fā)過(guò)程胚根及胚芽的生長(zhǎng)，尤其是嚴(yán)重抑制胚根的生長(zhǎng)。這些結(jié)果表明了由NADPH途徑產(chǎn)生的內(nèi)源H2O2在調(diào)控水稻種子萌發(fā)中起著關(guān)鍵的作用。

2.2? H2O2清除劑DMTU對(duì)水稻種子萌發(fā)中胚根和胚芽生長(zhǎng)的影響

如圖3所示，不同濃度DMTU培養(yǎng)水稻種子24 h后，其胚根全部突破種皮，其中10 mmol/L DMTU處理的胚根長(zhǎng)度與正常處理的較為接近，20 mmol/L DMTU處理的胚根長(zhǎng)度與30 mmol/L DMTU處理的也極為接近，且均明顯高于40～ 60 mmol/L DMTU處理的。同時(shí)，不同濃度DMTU處理的胚芽長(zhǎng)度均明顯不如正常處理的，其中，60 mmol/L DMTU處理的胚芽仍未伸長(zhǎng)，10～ 30 mmol/L DMTU處理的胚芽長(zhǎng)度較為接近，40 mmol/L及50 mmol/L DMTU處理的胚芽?jī)H露出一點(diǎn)。水稻種子經(jīng)過(guò)48 h培養(yǎng)后，10 mmol/L DMTU處理的胚芽及胚根長(zhǎng)與正常處理的較為接近，20 mmol/L與30 mmol/L DMTU 處理的胚芽及胚根長(zhǎng)度也較為接近，而50、60 mmol/L DMTU處理的胚根長(zhǎng)度明顯不如其他濃度DMTU處理的。由此可見(jiàn)，水稻種子經(jīng)過(guò)不同濃度H2O2清除劑DMTU處理24 h或48 h后，萌發(fā)情況與DPI處理的相似，均呈現(xiàn)濃度效應(yīng)，亦隨著DMTU濃度增大，對(duì)胚根及胚芽生長(zhǎng)的抑制作用越大。

H2O2清除劑DMTU培養(yǎng)水稻種子3 d后，水稻種子胚根長(zhǎng)隨著DMTU濃度依次遞增而逐漸降低，且降低的幅度較為平緩（圖4）。10 mmol/L DMTU處理的胚根長(zhǎng)約為水處理胚根長(zhǎng)的70%，從30 mmol/L開(kāi)始，相鄰濃度間胚根長(zhǎng)依次減少0.3 cm左右（p<0.05，圖4）。其中10 mmol/L DMTU處理的胚根長(zhǎng)分別為40 mmol/L處理的2倍、50 mmol/L處理的3倍和60 mmol/L處理的5倍左右。

由圖5可見(jiàn)，10 mmol/L DMTU處理對(duì)胚芽生長(zhǎng)影響較小，在處理水稻種子3 d后，其胚芽長(zhǎng)度仍為正常處理的88%。20、30 mmol/L DMTU處理對(duì)胚芽長(zhǎng)度的影響較為接近，僅相差0.1 cm，約為正常處理的70%～65%，這兩者間差異不顯著。與正常處理相比，40 mmol/L DMTU處理的胚芽長(zhǎng)度被抑制了50%，50～60 mmol/L DMTU處理對(duì)胚芽長(zhǎng)度的抑制極其顯著，其中60 mmol/L DMTU處理的胚芽長(zhǎng)度僅為正常處理的30%（p<0.05）。

由此可見(jiàn)，清除種子內(nèi)H2O2抑制了水稻種子萌發(fā)過(guò)程胚根和胚芽的生長(zhǎng)，從而影響種子的萌發(fā)，表明水稻種子的萌發(fā)需要種子內(nèi)一定量的H2O2參與。

2.3? H2O2清除劑DMTU對(duì)萌發(fā)水稻種子胚根根尖O2產(chǎn)生的影響

O2可與NBT反應(yīng)生成藍(lán)紫色不溶于水的顯色物，其顏色深淺代表O2的含量高低，顏色越深，O2積累越多。由圖6可以看出，正常處理的胚根根尖顏色最深，即其O2含量最高;10 mmol/L DMTU處理的胚根根尖顏色僅次于正常處理的，20～ 40 mmol/L DMTU處理的胚根根尖顏色隨著濃度升高而變淺，表明O2含量隨濃度升高而減少;50、60 mmol/L DMTU處理的胚根根尖僅被輕微染色。因此，隨著H2O2清除劑DMTU濃度的升高，萌發(fā)水稻種子胚根根尖顏色逐漸變淺，即根尖O2含量隨之減少，呈現(xiàn)出一定的濃度效應(yīng)。

2.4? H2O2清除劑DMTU對(duì)萌發(fā)水稻種子胚根根尖H2O2產(chǎn)生的影響

植物體內(nèi)H2O2被過(guò)氧化物酶分解后，可與DAB生成不溶于水的棕色產(chǎn)物，因此，根據(jù)顏色的深淺可以反映出細(xì)胞內(nèi)H2O2含量的高低，顏色越深，H2O2的含量就越高。如圖7所示，正常處理的萌發(fā)水稻種子胚根根尖染色最深，10 mmol/L DMTU處理的胚根根尖顏色比正常處理的的稍淺，說(shuō)明10 mmol/L DMTU處理的胚根根尖H2O2含量與正常處理的較為接近，20、30 mmol/ L DMTU兩者處理的根尖顏色也比較接近，50 mmol/L DMTU處理的根尖只有輕微染色，

60 mmol/L DMTU處理的胚根根尖幾乎沒(méi)染上顏色。因此，隨著DMTU處理濃度越高，水稻種子胚根根尖染色越淺，且著色多集中于根尖前端，表明水稻種子胚根中H2O2含量與O2含量趨勢(shì)相同，H2O2清除劑DMTU濃度越大，H2O2含量與O2含量越少。

2.5? H2O2清除劑DMTU對(duì)萌發(fā)水稻種子胚根根尖細(xì)胞透性的影響

伊文思藍(lán)可進(jìn)入細(xì)胞膜透性增大的細(xì)胞，藍(lán)色深淺代表根尖細(xì)胞膜透性大小，顏色越深，細(xì)胞膜透性越大，表明細(xì)胞受傷害程度越高。從圖8可見(jiàn)，隨著DMTU濃度逐漸增大，萌發(fā)水稻種子胚根根尖伊文思藍(lán)染色逐漸加深。正常處理的胚根根尖染色最淺，表明其細(xì)胞膜透性最小，細(xì)胞受傷害最輕;10～30 mmol/L DMTU處理的胚根根尖染色慢慢變深，即細(xì)胞膜透性逐漸增大;從40 mmol/L DMTU處理開(kāi)始染色急劇加深，至60 mmol/L DMTU染色最深，說(shuō)明此時(shí)細(xì)胞受傷害最嚴(yán)重。由此可見(jiàn)，隨著DMTU濃度增加，伊文思藍(lán)染色越來(lái)越深，表明胚根根尖細(xì)胞膜透性變大，即細(xì)胞受傷害程度逐漸增大，而根系活力逐漸變小，胚根正常生長(zhǎng)受到一定的影響。

3? 討論

NADPH氧化酶存在于細(xì)胞質(zhì)膜上，通過(guò)將NADPH中的電子轉(zhuǎn)移給O2生成O2，然后由SOD將O2歧化成H2O2[3-4]。

在本研究中，不同濃度的NADPH氧化酶抑制劑DPI處理水稻種子后，其胚根長(zhǎng)和胚芽長(zhǎng)都受到明顯抑制，并呈現(xiàn)出濃度效應(yīng)，即濃度越高，抑制效果越明顯。其中，20 μmol/L DPI處理的胚芽長(zhǎng)度約為對(duì)照的45%左右，30～60 μmol/L DPI處理的胚根幾乎不生長(zhǎng)?？紫閺?qiáng)等[7]研究表明，用DPI預(yù)處理棉花種子后，種子內(nèi)H2O2含量降低，萌發(fā)率也降低。此外，DPI處理綠豆幼苗外植體48 h后，不定根形成會(huì)完全被抑制，說(shuō)明細(xì)胞中H2O2產(chǎn)生變少，導(dǎo)致綠豆不定根生長(zhǎng)受阻[15]。本

研究結(jié)果顯示，DPI作為NADPH合成酶專一性抑制劑可抑制由NADPH途徑產(chǎn)生的內(nèi)源H2O2，進(jìn)而阻礙水稻種子萌發(fā)及生長(zhǎng)，尤其是胚根的生長(zhǎng)。因此，我們推斷，由此產(chǎn)生的內(nèi)源H2O2與水稻胚根生長(zhǎng)發(fā)育緊密相關(guān)，并且可能是調(diào)控水稻胚根生長(zhǎng)與發(fā)育的重要因子。

在本研究中，水稻種子經(jīng)DMTU處理后，也呈現(xiàn)出濃度效應(yīng)，即胚根及胚芽生長(zhǎng)受到的抑制作用均隨DMTU濃度遞增而增強(qiáng)，且DMTU對(duì)胚根和胚芽的抑制作用相當(dāng)。張鳳芝等[8]的研究也證實(shí)，萵苣種子經(jīng)DMTU處理后，因H2O2被清除，導(dǎo)致外源多鞍對(duì)種子萌發(fā)的促進(jìn)作用降低，從而使種子萌發(fā)受到抑制。此外，對(duì)水稻種子胚根根尖染色觀察分析結(jié)果也表明，隨著DMTU濃度增大，H2O2含量及O2含量逐漸減少，而細(xì)胞膜透性卻逐漸增大，即胚根根尖細(xì)胞受傷害程度加深。林瑩等[16]研究與本研究結(jié)果相似，用NBT對(duì)大豆種子胚軸進(jìn)行染色，正常種子萌發(fā)過(guò)程會(huì)產(chǎn)生O2，胚軸可被NBT完全染色，而老化的種子由于失去活力，萌發(fā)生長(zhǎng)受到影響，導(dǎo)致O2產(chǎn)生較少，因此部分區(qū)域無(wú)染色。

在正常條件下，植物體內(nèi)活性氧產(chǎn)生與清除處于動(dòng)態(tài)平衡，因此，植物能維持正常生命活動(dòng)，但一旦這種平衡被打破，其生命活動(dòng)即受到影響。在本研究中，DPI和DMTU均顯著影響水稻種子胚根和胚芽的生長(zhǎng)，并且DPI比DMTU對(duì)水稻種子萌發(fā)的抑制效果更顯著。張倩倩等[10]研究表明，DPI和DMTU有效地清除和減少正常條件下生長(zhǎng)的石竹幼苗葉和根中O2和H2O2，并且這種效果在根中更為明顯，這與本實(shí)驗(yàn)結(jié)論相一致。通過(guò)對(duì)本實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析，我們推測(cè)可能水稻種子正常萌發(fā)所需的內(nèi)源H2O2主要來(lái)自NADPH氧化酶途徑產(chǎn)生的H2O2，而H2O2清除劑DMTU對(duì)水稻種子萌發(fā)的抑制效果不如DPI，可能是DMTU清除的H2O2中只有部分是來(lái)自由NADPH氧化酶途徑產(chǎn)生的H2O2。本研究還證實(shí)DPI對(duì)水稻種子胚根的影響遠(yuǎn)大于對(duì)胚芽的影響，說(shuō)明NADPH產(chǎn)生的內(nèi)源H2O2主要是通過(guò)調(diào)控水稻種子胚根的發(fā)生來(lái)影響萌發(fā)。此外，DMTU因清除部分NADPH氧化酶途徑產(chǎn)生的H2O2，因此，在一定程度阻礙了胚根及胚芽的生長(zhǎng)，且胚根根尖O2含量和H2O2含量都有所減少，并引起根尖細(xì)胞損傷，從而使水稻種子的正常萌發(fā)受到影響?？傊?，維持內(nèi)源H2O2產(chǎn)生與清除動(dòng)態(tài)平衡對(duì)水稻種子萌發(fā)及生長(zhǎng)至關(guān)重要。

參考文獻(xiàn)

王? 瓊. 水稻種子萌發(fā)過(guò)程中RAmy1A基因的特異轉(zhuǎn)錄因子的篩選與鑒定[D]. 北京：中國(guó)科學(xué)院大學(xué)， 2016.

Larkindale J， Huang B. Thermotolerance and antioxidant systems in Agrostis stolonifera： involvement of salicylic acid， abscisic acid， calcium， hydrogen peroxide， and ethylene[J]. Journal of Plant Physiology， 2004， 161（4）： 405-413.

Neill S J， Desikan R， Clarke A， et al. Hydrogen peroxide and nitric oxide as signalling molecules in plants[J]. Journal of Experimental Botany， 2002， 53（372）： 1237-1247.

Hung S H. Hydrogen peroxide functions as a stress signal in plants[J]. Botanical Bulletin of Academia Sinica， 2005， 46（1）： 1-10.

徐芳杰. 過(guò)氧化氫作為信號(hào)分子在小麥耐鋁性中的作用及機(jī)理[D]. 杭州：浙江大學(xué)， 2011.

Wang G， Xiao Y， Deng X， et al. Exogenous hydrogen peroxide contributes to heme oxygenase-1 delaying programmed cell death in isolated aleurone layers of rice subjected to drought stress in a cGMP-dependent manner[J]. Frontiers in Plant Science， 2018， 9： 84.

孔祥強(qiáng)， 羅? 振， 張艷軍， 等. 過(guò)氧化氫預(yù)處理促進(jìn)鹽脅迫下棉花種子萌發(fā)的效應(yīng)[C]//全國(guó)棉花青年學(xué)術(shù)研討會(huì)， 2015.

張鳳芝， 胡文婷， 蘇國(guó)興. 多胺降解產(chǎn)生H2O2在萵苣種子萌發(fā)過(guò)程中的作用[J]. 蘇州大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版）， 2011， 27（1）： 84-89.

王光輝. HO-1協(xié)同H2O2調(diào)控干旱誘導(dǎo)的水稻糊粉層PCD的發(fā)生[D]. ?？冢?海南大學(xué)， 2014.

張倩倩， 蔚? 瀟， 賀學(xué)勤. 過(guò)氧化氫清除劑對(duì)H2O2處理下中國(guó)石竹幼苗不同器官抗氧化系統(tǒng)的影響[J]. 北方園藝， 2016（22）： 82-86.

蔣景龍. 外源過(guò)氧化氫抑制山黧豆種子萌發(fā)期初生根的向地性生長(zhǎng)并誘導(dǎo)其發(fā)生水平彎曲[D]. 蘭州： 蘭州大學(xué)， 2012.

Lee S E， Shin H T， Hwang H J， et al. Antioxidant activity of extracts from Alpinia katsumadai seed[J]. Phytotherapy Research， 2003， 17（9）： 1041-1047.

Biondi S. Ectopic expression of maize polyamine oxidase and pea copper amine oxidase in the cell wall of tobacco plants[J]. Plant Physiology， 2004， 134（4）： 1414.

韓明明. 鎘鋅互作下H2O2對(duì)水稻根系生長(zhǎng)發(fā)育的影響[D]. 淄博： 山東理工大學(xué)， 2011.

李師翁. H2O2在綠豆不定根形成與發(fā)育中的信號(hào)作用及其機(jī)理[D]. 蘭州： 蘭州大學(xué)， 2007.

林? 瑩. 老化大豆胚軸細(xì)胞死亡生物學(xué)基礎(chǔ)的研究[D]. 福州： 福建農(nóng)林大學(xué)， 2012.