(長(zhǎng)春理工大學(xué) 生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,長(zhǎng)春 130022)
自1996年轉(zhuǎn)基因作物在美國(guó)首次商業(yè)化大規(guī)模種植以來(lái),轉(zhuǎn)基因技術(shù)在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)領(lǐng)域得到了快速的應(yīng)用與發(fā)展,并且隨著其種植面積的不斷擴(kuò)大,已經(jīng)對(duì)現(xiàn)代農(nóng)業(yè)的生產(chǎn)方式產(chǎn)生了巨大而深刻的影響。根據(jù)國(guó)際農(nóng)業(yè)生物技術(shù)應(yīng)用服務(wù)組織(ISAAA)于2018年6月發(fā)布的最新統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù),2017年種植轉(zhuǎn)基因作物的國(guó)家已經(jīng)達(dá)到24個(gè),并且全世界轉(zhuǎn)基因作物種植面積由1996年的174萬(wàn)公頃增加到2017年的1.898億公頃,增長(zhǎng)種植面積超過(guò)了110倍[1]。隨著轉(zhuǎn)基因作物的迅猛發(fā)展,關(guān)于轉(zhuǎn)基因生物及其產(chǎn)品成分食用和環(huán)境安全性的爭(zhēng)議也與日俱增,世界各國(guó)都在不同程度上制訂了相應(yīng)的管理制度,主要包括轉(zhuǎn)基因的安全性評(píng)價(jià)制度和轉(zhuǎn)基因成分標(biāo)識(shí)制度等[2-4]。目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)轉(zhuǎn)基因作物及其相關(guān)制品的檢測(cè)主要是針對(duì)其含有的外源蛋白和外源核酸展開(kāi)的,并且已經(jīng)建立了一系列轉(zhuǎn)基因定性和定量檢測(cè)技術(shù),如酶聯(lián)免疫吸附技術(shù)(ELISA)、PCR技術(shù)、等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP)、基因芯片技術(shù)(gene chip)及數(shù)字PCR技術(shù)(digital PCR)等[5-6]。
我國(guó)對(duì)待轉(zhuǎn)基因采取比較謹(jǐn)慎的態(tài)度,于2001年相繼頒布了《農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物安全管理?xiàng)l例》及一系列管理辦法,對(duì)農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物及其產(chǎn)品實(shí)行安全評(píng)價(jià)、產(chǎn)品標(biāo)識(shí)、生產(chǎn)許可、經(jīng)營(yíng)許可、進(jìn)口許可、加工許可等方面管理[7-8]。目前我國(guó)實(shí)施的是沒(méi)有閾值的標(biāo)識(shí)制度,規(guī)定來(lái)源于玉米、大豆、番茄等五種作物的17種轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品必須進(jìn)行標(biāo)識(shí)[9-12]。然而市場(chǎng)上一些散裝售賣(mài)的農(nóng)作物加工品普遍存在缺乏明顯標(biāo)識(shí)的現(xiàn)象,且深加工制品一般核酸會(huì)受到不同程度的破壞,不便于檢測(cè)與監(jiān)管[13]。
本文參照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中提供的植物基因組提取方法,通過(guò)對(duì)試劑盒法、胍-氯仿法和CTAB法提取食品中基因組DNA效果進(jìn)行比較,選擇出DNA回收率高、純度高的方法用于后續(xù)的PCR檢測(cè),然后針對(duì)轉(zhuǎn)基因食品中一些常見(jiàn)的外源基因及調(diào)控元件設(shè)計(jì)出特異性引物,構(gòu)建普通PCR的檢測(cè)方法,并且擴(kuò)增片段都小于200bp以適用于深加工品的檢測(cè),為監(jiān)管部門(mén)對(duì)轉(zhuǎn)基因食品標(biāo)識(shí)的監(jiān)管提供技術(shù)支持。
非轉(zhuǎn)基因玉米種子黏墾、非轉(zhuǎn)基因大豆種子合豐、陽(yáng)性質(zhì)粒pUC57-TP(見(jiàn)圖1)為本實(shí)驗(yàn)室保存,轉(zhuǎn)基因玉米MON89034、MIR162,轉(zhuǎn)基因大豆GTS40-3-2(5%),陽(yáng)性質(zhì)粒pBJGMM001(見(jiàn)圖2)均由中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所提供[14],豆?jié){粉、豆芽購(gòu)自超市。
圖1 pUC57-TP質(zhì)粒結(jié)構(gòu)
圖2 pBJGMM001質(zhì)粒結(jié)構(gòu)
PCR反應(yīng)試劑(上海生工生物工程股份有限公司),EDTA、異丙醇、NaOH(天津光復(fù)科技發(fā)展有限公司),NaCl、無(wú)水乙醇、氯仿、異戊醇(北京化工廠),PVP40000(寶泰克生物科技公司),Proteinase K(Genview),Tris(BioFroxx),CTAB(上海源葉生物),β-巰基乙醇、Tris飽和酚(北京鼎國(guó)生物)、質(zhì)粒提取試劑盒(北京天根生物科技公司)、植物基因組提取試劑盒(艾德萊生物)。
PCR儀(LifeTouch公司),離心機(jī)(Eppendorf公司),電泳槽,電泳儀,凝膠成像儀Azure c300(azure biosystems公司),微量核酸測(cè)定儀Nanodrop One(美國(guó)Thermo Fisher公司)。
參照GB/T 19495.3-2004中基因組DNA的CTAB提取方法[15]、胍-氯仿法,及購(gòu)買(mǎi)的植物基因組提取試劑盒分別對(duì)豆芽、豆?jié){粉、大豆種子的基因組進(jìn)行提取,每種方法設(shè)置兩組重復(fù)。將DNA沉淀用去離子水溶解,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
通過(guò)凝膠電泳實(shí)驗(yàn)判斷所提取植物及其加工品基因組DNA的完整度,再用微量核酸及蛋白測(cè)定儀Nanodrop One對(duì)提取DNA的濃度和純度進(jìn)行測(cè)定分析。
從-80℃冰箱中取出凍存的菌株,將其按1∶100接種到氨芐青霉素終濃度為100μg/mL的5mL LB培養(yǎng)基中,在37℃下180rpm振蕩過(guò)夜,再將菌液在4℃下離心分離,使用天根Mini Plasmid Kit提取大腸桿菌中的質(zhì)粒,操作步驟參照試劑盒的說(shuō)明書(shū)。
將質(zhì)粒溶液保存在1.5mL離心管中,通過(guò)凝膠電泳實(shí)驗(yàn)判斷質(zhì)粒DNA的提取情況。
根據(jù)CaMV35S啟動(dòng)子、NOS終止子、CaMV35S終止子、NOS啟動(dòng)子、FMV35S啟動(dòng)子、Hpt、CP4-EPSPS、Cry1A.105、Cry2Ab2九種不同基因的核苷酸序列,使用Oligo 7.0設(shè)計(jì)出特異性引物,玉米內(nèi)參zSSIIb、大豆內(nèi)參Lectin的引物序列參照國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)GB/T19495.4-2004《轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測(cè)核酸定性PCR檢測(cè)方法》[16],引物的詳細(xì)信息見(jiàn)表1,并由長(zhǎng)春庫(kù)美生物公司合成和純化,用去離子水稀釋成100μM備用。
PCR反應(yīng)體系見(jiàn)表2,PCR反應(yīng)條件見(jiàn)表3。
表1 引物序列
表2 PCR反應(yīng)體系
表3 PCR反應(yīng)條件
吸取PCR產(chǎn)物10μL,在2%瓊脂糖凝膠中電泳,緩沖液為0.5×TBE電泳緩沖液,設(shè)置水空白對(duì)照、陰性對(duì)照、陽(yáng)性對(duì)照,以DL2000 DNA Marker作為標(biāo)準(zhǔn)尺,在100V電壓下電泳30min,通過(guò)EB染色[17-18],在凝膠成像儀中觀察結(jié)果。
分別用植物基因組試劑盒法、CTAB法和鹽酸胍-三氯甲烷法對(duì)豆芽、豆?jié){粉、大豆種子中的基因組DNA進(jìn)行提取,從電泳結(jié)果和核酸含量測(cè)定中可以看出,相同質(zhì)量的樣品用CTAB法提取到的基因組DNA的含量和純度最高,后續(xù)實(shí)驗(yàn)將采用CTAB法提取食品中DNA進(jìn)行PCR檢測(cè)驗(yàn)證。
圖3 三種不同方法對(duì)不同樣品基因組提取結(jié)果
表4 不同方法提取核酸含量測(cè)定結(jié)果
從圖4、圖5電泳結(jié)果可以看出,所提取的陽(yáng)性質(zhì)粒條帶明亮清晰,可適用于后續(xù)的PCR檢測(cè)。
圖4 pUC57-TP質(zhì)粒提取結(jié)果
圖5 pBJGMM001質(zhì)粒提取結(jié)果
以空白對(duì)照(水)、陰性樣本、陽(yáng)性樣本(或陽(yáng)性質(zhì)粒)作為實(shí)驗(yàn)材料,分別對(duì)9種基因的PCR檢測(cè)方法進(jìn)行特異性驗(yàn)證,結(jié)果如圖6所示。從中可以看出9種基因的檢測(cè)方法均能從陽(yáng)性樣本(或陽(yáng)性質(zhì)粒)中得到預(yù)期大小一致的擴(kuò)增產(chǎn)物,而在陰性樣本、空白對(duì)照及不含目標(biāo)基因的轉(zhuǎn)基因樣本中均未出現(xiàn)擴(kuò)增(部分有引物二聚體出現(xiàn)),說(shuō)明該檢測(cè)方法具備高度特異性。
圖7 不同基因PCR檢測(cè)方法的靈敏度
圖6 PCR檢測(cè)方法特異性結(jié)果
將PCR擴(kuò)增得到的9種擴(kuò)增產(chǎn)物送去生工公司測(cè)序,測(cè)序結(jié)果與已知的目標(biāo)基因序列進(jìn)行比對(duì)分析,發(fā)現(xiàn)9種PCR產(chǎn)物的測(cè)序結(jié)果與已知序列基本一致,驗(yàn)證了擴(kuò)增產(chǎn)物的正確性。
將提取的基因組DNA稀釋至200ng/μL,那么50ng/反應(yīng),因?yàn)橛衩谆蚪M大小為2500Mbp,所以約18242 copies/反應(yīng),pBJGMM001質(zhì)粒與pUC57-TP質(zhì)粒大小分別為5078bp、3169bp,200ng/μL玉米基因組拷貝數(shù)分別等同于質(zhì)粒40.623×10-5ng/μL、25.351×10-5ng/μL,然后將陽(yáng)性質(zhì)粒與陰性玉米混合成不同的百分含量,同時(shí)也將MON89034、GTS40-3-2、MIR162與非轉(zhuǎn)基因樣品按質(zhì)量比進(jìn)行混合,制備成5%、1%、0.5%、0.1%的梯度,進(jìn)行靈敏度測(cè)試。從圖7結(jié)果中可以看出,p35S、tNOS、Hpt、t35S、pNOS、pFMV35S、Cry2Ab2的PCR檢測(cè)方法均可從含量0.1%的樣品中擴(kuò)增出與預(yù)期大小一致的PCR產(chǎn)物,而CP4-EPSPS、Cry1A.105能從含量0.5%的樣品中得到擴(kuò)增(詳細(xì)信息見(jiàn)表5),能夠滿足對(duì)食品中轉(zhuǎn)基因成分的檢測(cè)。其中,MIR162中由于含有的t35S片段太短與引物序列不一致,所以并未得到擴(kuò)增。
表5 9種檢測(cè)方法檢測(cè)限與適用性
本研究通過(guò)對(duì)CTAB法、胍-氯仿法和試劑盒法三種植物基因組提取方法進(jìn)行比較,篩選出提取率最大、提取純度最高的CTAB法用于本實(shí)驗(yàn)樣品基因組的提取。以Lectin基因、zSSIIb基因分別為大豆、玉米的內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因,針對(duì)轉(zhuǎn)基因作物中9種常見(jiàn)的外源基因序列為模板,設(shè)計(jì)出9對(duì)引物,建立了定性PCR的檢測(cè)方法,該方法具有高度的特異性,檢測(cè)靈敏度可達(dá)0.1%~0.5%,滿足轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品的檢測(cè)要求。
隨著轉(zhuǎn)基因技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展,轉(zhuǎn)基因作物的種類(lèi)也在不斷增加,據(jù)ISAAA于2018年發(fā)布的最新統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)表明,轉(zhuǎn)基因玉米單品系現(xiàn)有44種,轉(zhuǎn)基因大豆單品系現(xiàn)有25種。目前,國(guó)家發(fā)布的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)文件中公布了18種篩選檢測(cè)基因、15種大豆品系、23種玉米品系PCR檢測(cè)方法的推薦標(biāo)準(zhǔn),本文就其中p35S、tNOS、Hpt、t35S、pNOS、pFMV35S、CP4-EPSPS、Cry1A.105、Cry2Ab2九種基因構(gòu)建了定性PCR檢測(cè)方法,后期將進(jìn)一步增加篩選檢測(cè)和品系檢測(cè)的覆蓋范圍,并開(kāi)發(fā)出定量檢測(cè)的熒光PCR和數(shù)字PCR方法檢測(cè)轉(zhuǎn)基因,為我國(guó)的轉(zhuǎn)基因監(jiān)管提供依據(jù)和技術(shù)基礎(chǔ)。