王寶娟 崔利鋒 李冬霞 張云虹 楊偉鋒 馬國安
(1.河北省衡水市第二人民醫(yī)院,河北 衡水 053000;2.河北省衡水市哈勵遜國際和平醫(yī)院,河北 衡水 053000)
急性肺損傷(ALI)是由各種肺內(nèi)外致病因素引起的以肺內(nèi)大量炎癥細胞浸潤和滲出、肺泡上皮及毛細血管內(nèi)皮屏障發(fā)生急性炎癥損傷,肺泡、肺間質(zhì)水腫等為主要特征的肺部炎性綜合反映,臨床上主要表現(xiàn)為急性進行性血氧過低的呼吸窘迫癥、非心源性肺水腫等,最終導(dǎo)致呼吸衰竭,其臨床病死率高達30%~50%[1-2],是呼吸系統(tǒng)的危急重癥之一,嚴重威脅到人類的生命健康。細菌內(nèi)毒素是臨床上造成ALI的主要病因之一,其中又以革蘭陰性細菌內(nèi)毒素為主導(dǎo),而其內(nèi)毒素的主要活性成分為脂多糖(LPS)。氣管內(nèi)滴入LPS與呼吸道細菌感染的過程相似,LPS進入肺內(nèi)后能夠引起肺內(nèi)炎癥細胞增多、肺微血管通透性增高等病理改變[3],從而造成肺部的嚴重炎性反應(yīng)及炎性損傷,進而影響肺部結(jié)構(gòu)功能改變,最終導(dǎo)致ALI的發(fā)生[4]。
苓甘五味姜辛湯源于《金匱要略》,全方由茯苓、甘草、五味子、干姜、細辛組成。方中干姜為君,既能溫肺散寒以化飲,又能溫運脾陽以化濕;細辛溫肺散寒,助干姜治其已聚之痰;茯苓健脾滲濕利水,既能杜其生痰之源,又能導(dǎo)水飲之邪從小便而去,二者共為臣藥,從源流配合消除痰濕,以復(fù)肺之宣降之用;五味子斂肺氣以平咳喘,與細辛配伍,一收一散,共奏斂不留邪、散不傷正之功,且能調(diào)節(jié)肺司開合之職;甘草調(diào)和諸藥。全方共奏具有溫肺化飲之功效,常用于寒飲內(nèi)停之咳喘。目前臨床多用于治療咳嗽、慢性支氣管炎、慢性阻塞性肺疾病、支氣管哮喘等肺系疾?。?-8]。本研究擬觀察苓甘五味姜辛湯對LPS致ALI大鼠動脈血T淋巴細胞亞群和支氣管肺泡灌洗液 (BALF)中白細胞介素-1β(IL-1β)、白細胞介素-6(IL-6)、白細胞介素-8(IL-8)和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的影響,并探討其對ALI的可能作用及其機制?,F(xiàn)報告如下。
1.1 實驗動物 選取健康清潔級的2月齡SD大鼠90 只,雌雄各半,體質(zhì)量(200±20) g,由中國食品藥品檢定研究院提供,合格證號:SCXK(京)2012-0068。飼養(yǎng)條件:無特殊病原菌(SPF)級環(huán)境,恒溫22~25℃,恒濕50%~65%。
1.2 試藥與儀器 苓甘五味姜辛湯方藥組成:茯苓12 g,甘草 9 g,五味子 5 g,干姜 9 g,細辛 5 g,桂枝 9 g。將藥材加4倍量水煎煮60 min,紗布過濾后將濾液另器置放,濾渣再加入3倍量水煎煮30 min后過濾,2次煎煮液混合后水浴濃縮至原藥材含量為0.8 g/mL,4℃放置備用,臨用時用蒸餾水稀釋。地塞米松注射液(批號130257,天津天藥藥業(yè)股份有限公司);LPS(批號20161019,Sigma公司,德國);FITC標記的抗大鼠CD3單克隆抗體、PE標記的抗大鼠CD4和CD8單克隆抗體(美國 Caltag公司);IL-1β、IL-6、IL-8 和 TNF-α 酶聯(lián)免疫吸附測定試劑盒(法國Diaclone公司)。主要儀器設(shè)備:大鼠固定操作臺 (PENN-CENTURY公司,美國);3K15 型低溫高速離心機(Sigma公司,德國);CO2培養(yǎng)箱(Yamato公司,日本);光學(xué)顯微鏡(Olympus公司,日本);DYZ-22A型雙恒定時電泳儀(北京市六一儀器廠);DYY-Ⅲ橋式電泳槽 (北京市六一儀器廠);BD-LSR型流式細胞儀 (Becton Dichinson公司,美國);2016型切片機(上海萊卡儀器有限公司)。
1.3 動物分組 90只大鼠實驗前適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,按隨機數(shù)字表法分成6組,每組15只,分別為空白對照組、ALI模型組、地塞米松組和苓甘五味姜辛湯高、中、低劑量組(以下簡稱中藥高、中、低劑量組)。
1.4 造模與給藥 1)動物造模。采用LPS暴露式氣管滴注方法制備大鼠ALI模型[10]:末次給藥24 h后,除空白對照組外的5組大鼠用10%水合氯醛3.5 mL/kg腹腔麻醉后,仰臥位固定于手術(shù)板上,頸部消毒,縱向切開頸部皮膚,剝離皮下組織,暴露氣管,用2 mL注射器從氣管兩氣管環(huán)間快速刺入,在大鼠直立位下滴入脂多糖溶液10 mg/kg,輕度晃動數(shù)次以使液體能夠均勻分布于肺內(nèi)后縫合切口以制作ALI模型。大鼠自然清醒后自由活動,禁食,未禁水。2)干預(yù)方法。大鼠給藥劑量按人與大鼠之間體表面積折算[9]等效劑量為4 g/kg,高劑量為2倍等效劑量,低劑量為1/2倍等效劑量,按上述給藥量,用蒸餾水將苓甘五味姜辛湯煎煮液配置成中藥高、中、低劑量濃度分別為0.8、0.4、0.2 g/mL??瞻讓φ战M和模型組給予等劑量的0.9%氯化鈉注射液灌胃,地塞米松組取地塞米松注射液1.0 mg/kg腹腔注射,每日1次,連續(xù)用藥27 d。
1.5 標本采集與檢測 1)實驗取材:10%水合氯醛腹腔注射麻醉大鼠,經(jīng)舌靜脈注入肝素抗凝,收集大鼠腹主動脈血保存待用;處死大鼠后將其仰臥位固定,使用無菌剪刀剪開大鼠頸部和胸部的皮膚組織,暴露胸腔,將大鼠右主支氣管結(jié)扎后,用注射器在主氣管上向肺部注入磷酸鹽緩沖液2 mL進行左肺灌洗,重復(fù)3次后留取支氣管肺泡灌洗液(BALF)備用。2)肺組織病理學(xué)檢測及病理學(xué)評分:取大鼠右肺中葉組織,用10%甲醛溶液固定,常規(guī)石蠟包埋后切片(片厚5 μm),取切片進行蘇木精-伊紅(HE)染色;光鏡下觀察肺組織病理形態(tài)學(xué)改變,并進行病理學(xué)評分[11]。 3)肺濕/干質(zhì)量比測定:取大鼠右肺下葉組織,先除去表面脂肪組織,再用濾紙吸干組織表面的液體后稱量肺組織的濕質(zhì)量;將肺組織置于70℃烘箱48 h至恒重后再次稱量其干質(zhì)量,并計算肺組織濕/干質(zhì)量比(W/D)值,用來評估肺組織水腫程度。4)大鼠動脈血中CD3+、CD4+和CD8+的測定[12]:按照試劑盒說明書的步驟,采用流式細胞技術(shù)對大鼠腹主動脈血中T淋巴細胞亞群進行測定[1]。5)大鼠 BALF 中 IL-1β、IL-6、IL-8 和 TNF-α水平的測定[13]:按試劑盒說明書方法,采用ELISA法測定 IL-1β、IL-6、IL-8和 TNF-α 因子的濃度。
1.6 統(tǒng)計學(xué)處理 應(yīng)用SPSS22.0統(tǒng)計軟件。計量資料以(x±s)表示,組間比較用單因素方差分析,兩組間比較用q檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 各組大鼠肺組織病理形態(tài)改變及病理學(xué)評分見圖1,表1。顯微鏡下觀察見空白對照組大鼠肺組織形態(tài)、肺泡結(jié)構(gòu)正常,肺泡壁薄,間隔無水腫,無明顯炎癥改變。ALI模型組大鼠肺組織結(jié)構(gòu)出現(xiàn)破壞,部分肺泡塌陷,肺泡水腫明顯,肺泡間隔明顯增厚,肺泡壁有大量中性粒細胞浸潤及滲出物,肺泡腔內(nèi)炎癥細胞浸潤,肺間質(zhì)彌漫性充血水腫。地塞米松組及中藥高劑量、中劑量組的肺組織上述變化較模型組明顯減輕,炎癥細胞浸潤數(shù)量減少,充血、水腫程度減輕,且肺組織結(jié)構(gòu)明顯改善。中藥低劑量組肺組織結(jié)構(gòu)改善不明顯,肺泡腔內(nèi)仍有大量炎癥細胞浸潤,肺間質(zhì)部分充血水腫。病理學(xué)評分方面,ALI模型組評分明顯高于空白對照組(P<0.05),經(jīng)不同藥物干預(yù)后,地塞米松組和中藥高、中劑量組評分均明顯降低(P<0.05),中藥低劑量組評分降低不明顯(P>0.05),中藥各組與地塞米松組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。
圖1 各組大鼠肺組織病理形態(tài)改變(HE染色,200倍)
表1 各組大鼠病理學(xué)評分及W/D比值比較(x±s)
2.2 各組大鼠肺組織W/D比值情況比較 見表1。與空白對照組相比,ALI模型組肺組織水腫明顯,W/D比值明顯增加,差異存在統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。地塞米松組與中藥高劑量組、中劑量組肺組織水腫現(xiàn)象較ALI模型組明顯減輕,W/D比值降低,有顯著差異(P<0.05)。中藥低劑量組肺組織W/D比值較ALI模型組降低不明顯(P>0.05)。
2.3 各組大鼠動脈血 CD3+、CD4+、CD8+和 CD4+/CD8+水平比較 見表2。ALI模型組動脈血中CD3+、CD4+、和CD4+/CD8+水平較空白對照組明顯降低(P<0.05),CD8+水平明顯升高(P<0.05)。 與 ALI模型組比較,中藥高劑量組、中劑量組動脈血中CD3+、CD4+和CD4+/CD8+水平明顯升高(P<0.05),CD8+水平明顯降低(P<0.05);地塞米松組和中藥低劑量組與ALI模型組相比各項指標變化不明顯(P>0.05)。
表2 各組大鼠CD3+、CD4+、CD8+和CD4+/CD8+水平比較(%,x±s)
2.4 各組大鼠 BALF中 IL-1β、IL-6、IL-8和 TNF-α水平比較 見表3。LPS造模后大鼠BALF中IL-1β、IL-6、IL-8和TNF-α水平均升高,與空白對照組比較差異顯著(P<0.05);經(jīng)高、中劑量的中藥處理可顯著降低各項指標的水平,與地塞米松組效果相當,與ALI模型組比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
表3 各組大鼠 IL-1β、IL-6、IL-8 和 TNF-α 水平比較(x±s)
近年來,采用氣管內(nèi)滴入LPS的方式制作ALI動物模型的方法已經(jīng)廣泛運用于ALI發(fā)病機理和藥物防治的研究[14]。因為LPS不僅能損傷肺臟,還能激活多種炎癥細胞,使其釋放大量炎癥介質(zhì)或細胞因子,進而導(dǎo)致肺組織損傷[15]。本研究中大鼠氣管內(nèi)滴注LPS后,出現(xiàn)大鼠肺組織結(jié)構(gòu)破壞、肺泡炎癥細胞浸潤等典型的ALI病理改變,提示本研究成功建立了ALI的動物模型。同時ALI模型大鼠肺組織病理學(xué)評分以及W/D比值升高,表明LPS氣管內(nèi)滴藥能引起明顯的大鼠肺組織損傷。而苓甘五味姜辛湯干預(yù)后能明顯減輕損傷,降低肺組織病理學(xué)評分和W/D比值,提示苓甘五味姜辛湯對ALI大鼠的肺臟有明顯的保護作用。
T淋巴細胞亞群是細胞免疫的主要組成部分,其中,CD3+是鑒定 T 細胞的重要標記[16];CD4+能誘導(dǎo)和輔助細胞毒T細胞前身成為細胞毒T細胞,輔助其他免疫細胞功能的發(fā)揮,其數(shù)量的減少代表機體免疫功能的降低[17];CD8+主要分布在抑制性和殺傷性T淋巴細胞表面,通過自身和抑制因子在免疫反應(yīng)中起負向調(diào)節(jié)作用,若其細胞數(shù)量過多反而會對機體造成損傷;CD4+/CD8+則能反映機體免疫功能是否紊亂,并且其下降程度與疾病的嚴重程度、預(yù)后均密切相關(guān)[18]。本研究結(jié)果顯示,ALI大鼠動脈血中CD3+、CD4+和CD4+/CD8+值降低,CD8+升高,提示LPS造模后能引起T淋巴細胞亞群的表達異常,從而導(dǎo)致ALI和免疫抑制。而經(jīng)高、中劑量苓甘五味姜辛湯干預(yù)后,以上指標均有所恢復(fù),表明苓甘五味姜辛湯能提高機體免疫力,糾正機體細胞免疫抑制狀態(tài)。
ALI的主要特點是炎癥介質(zhì)大量合成和釋放,IL-1β,IL-6、IL-8以及TNF-α等促炎介質(zhì)的水平,可反映肺組織炎癥反應(yīng)的強度[19]。IL-1β是急性炎癥反應(yīng)的主要調(diào)節(jié)物質(zhì),并且能夠誘導(dǎo)產(chǎn)生IL-6和IL-8等[20]。IL-6是強有力的促炎因子,主要參與肺損傷時肺內(nèi)炎癥的過度反應(yīng),其不僅能對組織直接造成傷害,還能增強組織細胞對TNF-α的敏感性[21]。IL-8是中性粒細胞最有效和最主要的趨化因子,能促使中性粒細胞活化和遷移,釋放出大量的損傷介質(zhì)引起肺損傷[22]。TNF-α是ALI最重要的啟動因子,能趨化炎癥細胞在肺內(nèi)聚集、黏附,從而損傷肺血管內(nèi)皮細胞[23]。TNF-α還能使炎癥細胞釋放IL-1β、IL-6和IL-8等二級炎癥因子,加重肺組織炎癥損傷[24]。本實驗結(jié)果表明,LPS造模后大鼠 BALF 中 IL-1β、IL-6、IL-8、TNF-α 水平顯著升高,其原因可能是因為ALI后導(dǎo)致肺泡毛細血管屏障下降,白細胞向肺泡內(nèi)遷移,被激活的細胞進而產(chǎn)生 IL-1β、IL-6、IL-8等多種炎性遞質(zhì)以及 TNF-α等前炎性遞質(zhì);而經(jīng)苓甘五味姜辛湯干預(yù)后可顯著降低其水平,表明苓甘五味姜辛湯可以抑制IL-1β、IL-6、IL-8以及TNF-α等炎性因子的合成和釋放,從而減輕肺組織的炎性損傷程度。
綜上所述,苓甘五味姜辛湯能減輕肺損傷,改善肺水腫,提高機體免疫力,糾正機體細胞免疫抑制狀態(tài),抑制 IL-1β、IL-6、IL-8、TNF-α 的合成和釋放,為臨床救治ALI提供了新思路。