李丹,易偉民,范馨文,翟愛華,關(guān)琛
(黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江大慶163319)
乳清分離蛋白(whey protein isolated,WPI)是一種優(yōu)質(zhì)的動物性蛋白資源,由于其具有營養(yǎng)價值高、易消化吸收、含有多種活性成分等特點(diǎn),乳清分離蛋白日漸受到重視[1]。資料顯示,每年美國由制作干酪而產(chǎn)生的乳清達(dá)3 300萬噸,但僅有55%的乳清得到了進(jìn)一步加工,其余未加工的乳清隨污水排放,既造成資源浪費(fèi)又造成環(huán)境污染[2]。因此,生產(chǎn)一些高附加值產(chǎn)品使乳清蛋白被充分利用顯得尤為重要。近年來,與乳清分離蛋白有關(guān)的研究也有很多[3-4],然而幾乎沒有與脫酰胺有關(guān)的研究。
酶法脫酰胺主要使蛋白質(zhì)分子側(cè)鏈的谷氨酰胺轉(zhuǎn)化為谷氨酸,使肽鏈內(nèi)的負(fù)電荷有所增加,最終使得蛋白質(zhì)的許多功能性質(zhì),如溶解性、表面疏水性、抗氧化性、與二價金屬離子螯合的能力等特性均受到不同程度的影響[5]。Matsudomi[6]、Hamada[7]等指出,脫酰胺作用基本不影響蛋白的一級與二級結(jié)構(gòu),食物蛋白的脫酰胺度達(dá)2%~6%時就能顯著提高食物中蛋白質(zhì)的相關(guān)功能特性,尤其是溶解性。聶小華等[8]采用HCl對大米蛋白進(jìn)行脫酰胺處理,結(jié)果表明,脫酰胺處理使大米蛋白功能性質(zhì)均得到顯著提高,而且脫酰胺大米蛋白的表面疏水性也發(fā)生了明顯下降。
本研究采用谷氨酰胺酶(EC 3.2.1.5),對乳清分離蛋白進(jìn)行限制性脫酰胺,從而制得具有較低脫酰胺度的蛋白產(chǎn)物,并對其產(chǎn)物的界面性質(zhì)及Fe2+/Zn2+等二價金屬離子的螯合能力進(jìn)行了評價和比較。研究結(jié)果可以為多功能食品的開發(fā)提供很好的基料,為乳清分離蛋白更好地應(yīng)用于食品加工業(yè)提供理論基礎(chǔ)。
乳清分離蛋白:天津銀河偉業(yè)進(jìn)出口有限公司;3-(2-吡啶基)-5,6-雙(4-苯磺酸)-1,2,4-三嗪(Ferrozine)、谷氨酰胺酶(EC 3.2.1.5,酶活為 17.3 U/g):美國Sigma公司;大豆油:九三集團(tuán);其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
UV-2401PC紫外-可見分光光度計:日本島津公司;Kjeltec TM 3200全自動凱氏定氮儀:瑞士Foss公司;AR224CN型電子天平:奧豪斯國際貿(mào)易(上海)有限公司;JJ-1型精密定時電動攪拌器:江蘇省金壇市榮華儀器制造有限公司;LD4-1.8型臺式離心機(jī):北京京立離心機(jī)有限公司。
1.2.1 乳清分離蛋白限制性脫酰胺
將一定量的乳清分離蛋白溶液與超純水、不同體積的谷氨酰胺酶溶液(濃度為0.1 g/mL)混合,配制成乳清分離蛋白濃度為5%、酶添加量分別為0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 U/g乳清分離蛋白的反應(yīng)體系。體系分別在 30、33、36、39、42 ℃下反應(yīng) 1 h~20 h,按照以下方法分別測定產(chǎn)物的脫酰胺度。以未加谷氨酰胺酶溶液的乳清分離蛋白溶液為空白。
1.2.2 蛋白質(zhì)含量測定
蛋白質(zhì)含量測定采用凱氏定氮法GB/T 5009.5-2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中蛋白質(zhì)的測定》)[9]。
1.2.3 脫酰胺度測定
脫酰胺度測定采用苯酚-次氯酸鹽法[10]。
分別準(zhǔn)確稱取5.0 g苯酚、25 mg亞硝基鐵氰化鈉,并加入雙蒸水定容至500 mL配制試劑A備用。準(zhǔn)確稱取2.5 g NaOH并溶于雙蒸水中,移取4.2 mL次氯酸鈉溶液加入到NaOH溶液中,并容至500 mL配制試劑B。
準(zhǔn)確移取5.0 mL試劑A于試管中,加入20 μL不同濃度的硫酸銨標(biāo)準(zhǔn)溶液(或待測樣品),充分振蕩、混勻。然后準(zhǔn)確移取5.0 mL試劑B加入到上述混合溶液中,充分振蕩、混勻。迅速轉(zhuǎn)移至水浴鍋中,在37℃下水浴顯色20 min。然后冷卻至室溫,在625 nm處測定溶液吸光值。每個濃度做3個平行。
根據(jù)所測定的樣品游離氨含量及總酰胺含量,計算脫酰胺度,計算公式見式(1)。
1.2.4 Fe2+螯合能力測定
采用Ferrozine顯色法測定二價鐵螯合能力[11],略有改動。
準(zhǔn)確吸取0.25 mL樣品溶液(1 mg/mL,終濃度0.10 mg/mL) 與0.15 mL 1 mmol/L的 FeSO4·7H2O 溶液(終濃度0.03 mmol/L,現(xiàn)用現(xiàn)配)混合。加入1.20 mL超純水,使反應(yīng)體系終體積為1.50 mL。混勻后放置2 min,再加入1.00 mL 0.50 mmol/L的Ferrozine顯色劑水溶液(終濃度0.20 mmol/L),充分振蕩、混勻。室溫下靜置反應(yīng)10 min,使Fe2+與Ferrozine充分結(jié)合,形成穩(wěn)定的Fe2+-Ferrozine復(fù)合物,紫外分光光度法562 nm下測定吸光值。樣品對Fe2+的螯合效率計算公式見式(2):
式中:AT為樣品吸光度;AC為對照樣吸光度。
1.2.5 Zn2+螯合能力測定
樣品鋅離子螯合能力的測定參照Wang等[12]的方法,計算方法略有改動。
鋅-肽螯合反應(yīng):分別取1.0 mL 0.05 mol/L ZnSO4(乙醇溶解)于4個25 mL離心管中,并分別緩慢滴入10 mL 2%的乳清分離蛋白和3份不同脫酰胺度的脫酰胺乳清分離蛋白樣品溶液(用體積分?jǐn)?shù)為50%的乙醇溶解),室溫下攪拌反應(yīng)1 h,直至有白色沉淀生成。
螯合鋅含量的測定:分別取上述反應(yīng)液5 mL于4個燒杯中濃縮至近干,加入15 mL無水乙醇,混勻后5 000 r/min離心20 min,取沉淀并用蒸餾水定容至50 mL。用乙二胺四乙酸(elhylene diamine tetraacetic acid,EDTA)絡(luò)合滴定法測定螯合態(tài)鋅的含量。移取20 mL容量瓶中的溶液至錐形瓶中,加兩滴二甲酚橙指示劑(0.5%水溶液),滴加質(zhì)量分?jǐn)?shù)為20%的六亞甲基四胺-鹽酸緩沖液(pH 5.0)至溶液呈穩(wěn)定的紫紅色后再加入4 mL緩沖液,用已標(biāo)定的0.001 mol/L EDTA溶液滴定至溶液由紫紅色變成黃色,記錄EDTA的消耗量。樣品的Zn2+螯合能力計算公式見式(3):
式中:AP為沉淀中Zn2+含量,mg;P為樣品蛋白質(zhì)含量,g。
1.2.6 界面性質(zhì)測定
1.2.6.1 乳化性及乳化穩(wěn)定性的測定
分別配置濃度為0.01%、0.02%、0.03%和0.04%的脫酰胺蛋白溶液。取150 mL蛋白溶液與50 mL大豆油混合,12 000 r/min均質(zhì) 1 min,靜置,在 0 min和10 min時從容器底部取50μL乳狀液于試管中,加5mL 0.1%的十二烷基磺酸鈉(sodium dodecylsulphate,SDS),充分混勻,于500 nm處測定吸光度值(以0.1%的SDS調(diào)整儀器零點(diǎn))[13]。乳化活性指數(shù)及乳化穩(wěn)定性的計算方法見公式(4)、(5)。
式中:T=2.303;A0為零時刻的吸光度值;C為蛋白質(zhì)濃度,g/mL;Φ為溶液中油的體積分?jǐn)?shù);A10為靜置10 min后的吸光度值。
1.2.6.2 起泡性及泡沫穩(wěn)定性的測定
準(zhǔn)確稱取2 g乳清分離蛋白(脫酰胺乳清分離蛋白),加入100 mL水,置于裝料杯中,在高速組織搗碎機(jī)中攪打1 min,迅速倒入500 mL量筒中,記錄泡沫體積a;靜置10 min后,再次測量泡沫體積b[14]。起泡性與泡沫穩(wěn)定性計算公式見公式(6)、(7)。
采用SPSS16.0軟件中的單因素方差分析(Oneway ANOVA)和Duncan’s多重比較法進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析,p<0.05為差異顯著,p<0.01為差異極顯著。所有指標(biāo)的數(shù)據(jù)均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示。用Excel 2007軟件作圖。
通過研究發(fā)現(xiàn),酶添加量分別為 0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 U/g乳清分離蛋白時,谷氨酰胺酶對乳清分離蛋白的脫酰胺作用隨酶添加量的增加而增大(如圖1),而酶添加量分別為0.8、1.0 U/g乳清分離蛋白時,脫酰胺度沒有大幅度變化,基本一致。
圖1 酶添加量對乳清分離蛋白脫酰胺度的影響(n=3)Fig.1 The effect of addition level of glutaminase on the degree of deamidation of WPI(n=3)
脫酰胺度隨反應(yīng)時間的延長而增加(如圖2)。
圖2 反應(yīng)時間對乳清分離蛋白脫酰胺度的影響(n=3)Fig.2 The effect of reaction time of glutaminase on the degree of deamidation of WPI(n=3)
當(dāng)反應(yīng)達(dá)到8 h以上時,脫酰胺度趨于平緩狀態(tài)。說明即使繼續(xù)延長反應(yīng)時間,也不會增加脫酰胺度。因此,酶添加量選取0.8 U/g乳清分離蛋白、反應(yīng)時間在8 h以下為宜。
乳清分離蛋白的脫酰胺反應(yīng)還與反應(yīng)溫度及pH值有關(guān)(如圖3、圖4)。
圖3 反應(yīng)溫度對乳清分離蛋白脫酰胺度的影響(n=3)Fig.3 The effect of reaction temperature on the degree of deamidation of WPI(n=3)
圖4 反應(yīng)pH值對乳清分離蛋白脫酰胺度的影響(n=3)Fig.4 The effect of pH on the degree of deamidation of WPI(n=3)
隨著反應(yīng)溫度的提高,乳清分離蛋白脫酰胺度呈先上升后下降的趨勢,當(dāng)溫度為36℃時,脫酰胺度(2.1%)達(dá)到最高。另外,反應(yīng)pH值對乳清分離蛋白脫酰胺度也有不同程度的影響。當(dāng)pH值為7時,乳清分離蛋白脫酰胺度達(dá)到最高,這說明,谷氨酰胺酶在pH7條件下作用于乳清分離蛋白時,其酶活性達(dá)到最高。
因此,可以初步確定乳清分離蛋白限制性脫酰胺反應(yīng)的適宜條件為:乳清分離蛋白溶液濃度5%、酶添加量0.8 U/g乳清分離蛋白、反應(yīng)溫度36℃、反應(yīng)pH為7。在此條件下,反應(yīng)分別進(jìn)行1、4、8 h時,乳清分離蛋白脫酰胺度分別為1.5%、2.3%、2.9%,在以后的研究中分別稱為脫酰胺乳清分離蛋白(deamidated whey protein isolated,DWPI)1、2、3(或 DWPI 1、DWPI 2、DWPI 3)。
2.2.1 乳化性質(zhì)
食品蛋白質(zhì)的功能特性與分子結(jié)構(gòu)具有高度相關(guān)性,因此脫酰胺反應(yīng)也必定影響到乳清分離蛋白的功能性質(zhì)。乳清分離蛋白、脫酰胺乳清分離蛋白的乳化活性及乳化穩(wěn)定性的相關(guān)評價結(jié)果如圖5、圖6所示。本研究選取脫酰胺反應(yīng)1 h和8 h的乳清分離蛋白制品DWPI 1、DWPI 3作為分析對象。
圖5 乳清分離蛋白與脫酰胺乳清分離蛋白的乳化活性指數(shù)(n=3)Fig.5 Emulsifying activity index of WPI and DWPI products(n=3)
圖6 乳清分離蛋白與脫酰胺乳清分離蛋白的乳化穩(wěn)定性(n=3)Fig.6 Emulsifying stability index of WPI and DWPI products(n=3)
由圖5可知,與乳清分離蛋白相比,4個濃度下的脫酰胺乳清分離蛋乳狀液的乳化活性指數(shù)均呈降低趨勢,而乳化穩(wěn)定性都有不同程度的升高,尤其在高濃度下,脫酰胺乳清分離蛋白較乳清分離蛋白而言具有非常高的乳化穩(wěn)定性。當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)濃度為0.03%時,DWPI 1和DWPI 3的乳化穩(wěn)定性接近100%,而WPI的乳化穩(wěn)定性僅為70%。這一結(jié)果顯示,經(jīng)谷氨酰胺酶脫酰胺的乳清分離蛋白制品提高了乳化穩(wěn)定性,而削弱了乳化活性。乳清分離蛋白經(jīng)脫酰胺后,會生成更多的谷氨酸殘基,從而乳清分離蛋白分子增加了許多帶負(fù)電荷的羧基。從而導(dǎo)致修飾后的蛋白質(zhì)分子疏水性降低,蛋白質(zhì)分子間的靜電斥力增大,與水結(jié)合的能力有所提高。從理論上講,蛋白質(zhì)的疏水性降低會導(dǎo)致蛋白質(zhì)修飾產(chǎn)物的乳化活性降低,而蛋白質(zhì)間的靜電斥力和與水結(jié)合的能力增加,導(dǎo)致乳化穩(wěn)定性提高。這也解釋了,脫酰胺乳清分離蛋白的乳化活性比乳清分離蛋白的低,而乳化穩(wěn)定性有所提高的原因。
2.2.2 泡沫性質(zhì)
經(jīng)過對比乳清分離蛋白與脫酰胺乳清分離蛋白制品(DWPI 1、DWPI 3)的另外一個界面性質(zhì)—泡沫性質(zhì)發(fā)現(xiàn),在同一濃度下,脫酰胺乳清分離蛋白的起泡性比乳清分離蛋白的起泡性有所提高,并且隨著脫酰胺度的增加,起泡性隨著增加,而泡沫穩(wěn)定性隨脫酰胺度的增加有所降低(如圖7)。
圖7 乳清分離蛋白與脫酰胺乳清分離蛋白的泡沫性質(zhì)(n=3)Fig.7 Foam properties of WPI and DWPI products(n=3)
本研究中,DWPI 3的起泡性為85.2%,為WPI的1.86倍;而WPI的泡沫穩(wěn)定性是DWPI 3的1.6倍。究其原因,起泡性的提高與脫酰胺度有關(guān)。
有研究表明,蛋白質(zhì)水解物具有與金屬離子如鐵、鋅等螯合的能力,進(jìn)而提高礦物質(zhì)的溶解性和生物利用率[15]。本試驗(yàn)測定了乳清分離蛋白及脫酰胺乳清分離蛋白產(chǎn)物DWPI 1、DWPI 2、DWPI 3與二價金屬離子的螯合能力,研究脫酰胺度對乳清分離蛋白與二價金屬離子螯合能力的影響,結(jié)果如表1所示。
從表1中能夠看出,與乳清分離蛋白相比,脫酰胺乳清分離蛋白螯合二價鐵的能力略有增加,當(dāng)脫酰胺度達(dá)到2.9%時,DWPI 3與Fe2+螯合能力達(dá)到(2.98±0.19)%,比乳清分離蛋白的螯合能力提高了49.7%,即乳清分離蛋白殘基上谷氨酰胺轉(zhuǎn)化為谷氨酸的量越多,與二價鐵螯合能力越強(qiáng)。
表1 乳清分離蛋白與脫酰胺乳清分離蛋白產(chǎn)物的Fe2+、Zn2+螯合能力(n=3,p<0.05)Table 1 Iron,zinc chelating activity of WPI or DWPI products(n=3,p<0.05)
同樣,乳清分離蛋白及脫酰胺產(chǎn)物與Zn2+螯合能力的測定結(jié)果顯示,隨著脫酰胺度的增加,脫酰胺蛋白產(chǎn)物的Zn2+螯合能力呈現(xiàn)增大的趨勢,DWPI 3的Zn2+螯合能力較WPI的螯合能力提高了27.3%。Wang等[16]研究結(jié)果表明,蛋白質(zhì)水解物與Zn2+螯合能力不同,是由其游離氨基的含量引起的,因此脫酰胺乳清分離蛋白表現(xiàn)出不同的Zn2+螯合能力也可能與其游離氨含量不同有關(guān)。
食品蛋白質(zhì)螯合金屬離子能力越強(qiáng),其相關(guān)生物活性就越強(qiáng),如對Fe2+螯合能力越強(qiáng),其蛋白質(zhì)抗氧化能力越強(qiáng);對Zn2+螯合能力越強(qiáng),其蛋白質(zhì)ACE抑制作用也相應(yīng)提高[17]。因此,脫酰胺乳清分離蛋白與Fe2+/Zn2+的螯合能力有益于促進(jìn)蛋白的其他生物活性。
以脫酰胺度為評價指標(biāo),通過單因素分析考察酶添加量、反應(yīng)溫度、反應(yīng)pH值及反應(yīng)時間對乳清分離蛋白限制性脫酰胺的影響并確定適宜的脫酰胺條件:乳清分離蛋白的濃度為5%、谷氨酰胺酶添加量0.8 U/g乳清分離蛋白、36℃、pH 7。在此適宜反應(yīng)條件下分別反應(yīng)1、4、8 h,制得3種脫酰胺乳清分離蛋白,其脫酰胺度分別為1.5%、2.3%、2.9%。限制性脫酰胺對乳清分離蛋白的一些功能性質(zhì)有了不同程度的改變,其中脫酰胺反應(yīng)提高了乳清分離蛋白的乳化穩(wěn)定性、起泡性及對二價金屬離子Fe2+/Zn2+的螯合能力,并隨著脫酰胺度的增加而增加;而脫酰胺乳清分離蛋白的乳化活性及泡沫穩(wěn)定性由于限制性脫酰胺作用而有所下降。研究結(jié)果可以為開發(fā)多功能食品提供很好的基料以及理論基礎(chǔ)。