王艷敏,于加美,石 彤,袁 麗,高瑞昌*
(江蘇大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013)
肌球蛋白是重要的功能性蛋白質(zhì),約占肌原纖維蛋白的55%~60%,占總蛋白的30%左右[1]。諸多研究發(fā)現(xiàn),肌肉組織的凝膠性、持水性和乳化性等均與肌球蛋白結(jié)構(gòu)存在密切的聯(lián)系[2]。肌球蛋白是一種長形不對稱小分子,包含兩條長鏈構(gòu)成的桿狀尾部和兩條短鏈構(gòu)成的球狀頭部,且為鹽溶性蛋白[3],在體外高鹽條件下(0.6 mol/L KCl)蛋白分子主要以單體或可溶性寡聚體的形式存在[4-5],在低鹽條件下由于肌球蛋白纖絲自發(fā)聚集因而表現(xiàn)出低的溶解度[6-9],對于鹽溶性蛋白合適的鹽濃度有利于形成理想的凝膠,但是過量的鹽則會誘發(fā)心血管和高血壓等疾病[10-12],因此,降低鹽濃度的同時提高肌球蛋白溶解度的研究很有必要。
賴氨酸、組氨酸、精氨酸能提高低鹽條件下肌球蛋白的溶解度[13-16],但同時肌球蛋白的熱聚集行為也發(fā)生了較大變化。Shiraki等[17]報道賴氨酸、精氨酸、甘氨酸等氨基酸能夠阻止蛋白質(zhì)的聚集,且相應(yīng)帶電側(cè)鏈起主要作用,親水性的氨基酸比疏水性氨基酸作用更明顯。然而報道多從蛋白溶解度和構(gòu)象研究氨基酸對蛋白的影響,利用更加直觀的手段研究氨基酸對蛋白聚集行為的影響鮮見報道。目前已有學(xué)者利用原子力顯微鏡(atomic force microscope,AFM)技術(shù)研究了蛋白溶液聚集狀態(tài)[18-20]。利用該技術(shù)比較添加氨基酸前后肌球蛋白溶液聚集行為形貌的變化,可從微觀角度直觀反映半胱氨酸對肌球蛋白聚集行為的影響。AFM的應(yīng)用日益廣泛,其在蛋白質(zhì)、核糖核酸、脫氧核糖核酸、核酸與蛋白質(zhì)復(fù)合物、病毒、細胞等生物大分子上的應(yīng)用也一直吸引著生物學(xué)家的目光[21-24]。AFM利用納米級尺寸及pN級力靈敏度的探針在樣品表面進行逐級光柵掃描得到樣品表面的形貌[25]?;诂F(xiàn)有研究,利用AFM觀察蛋白質(zhì)聚集過程中的微觀形態(tài)的變化可行且更加直觀,彌補了現(xiàn)有研究手段的不足。L-半胱氨酸(L-Cys)是一種親水性氨基酸,也是一種還原劑,能夠通過改變蛋白質(zhì)分子之間和內(nèi)部的二硫鍵減弱蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu),使蛋白質(zhì)伸展開。周愛梅等[26]曾報道L-Cys可顯著提高鳙魚魚糜的凝膠能力,對顏色和白度不會產(chǎn)生不利影響,是鳙魚魚糜的良好品質(zhì)改良劑。本實驗研究L-Cys對鰱肌球蛋白熱聚集行為的影響,利用AFM觀測L-Cys存在條件下鰱肌球蛋白熱聚集行為形貌的變化,并改變離子強度來觀察肌球蛋白的聚集狀態(tài)及溶解度的變化,從而在降低淡水魚凝膠制品鹽添加量的同時提高肌球蛋白的溶解度,為生產(chǎn)低鹽淡水魚產(chǎn)品提供參考。
新鮮的花鰱魚在鎮(zhèn)江市學(xué)府路歐尚超市購得,用碎冰塊保持低溫30 min內(nèi)帶回實驗室,取鰱魚背部白肉、去骨、清洗,切成肉糜狀備用。
三(羥甲基)氨基甲烷(trihydroxymethyl aminomethane,Tris)、L-Cys(均為分析純) 國藥集團化學(xué)試劑有限公司;8-苯胺基萘-1-磺酸鹽(N-phenyl-8-naphthylamine-1-sulfonic acid,ANS)(化學(xué)純)上海阿拉丁生化科技股份有限公司;其他化學(xué)試劑均為國產(chǎn)分析純。
試劑A:0.1 mol/L氯化鉀、20 mmol/L Tris,鹽酸調(diào)節(jié)pH值至7.5。試劑B:0.45 mol/L氯化鉀、0.2 mol/L乙酸鎂、1 mmol/L乙二醇雙(2-氨基乙基醚)四乙酸、20 mmol/L Tris、5 mmol/L β-巰基乙醇,馬來酸調(diào)節(jié)pH值至6.8。試劑C:0.5 mol/L氯化鉀、20 mmol/L Tris、5 mmol/L β-巰基乙醇,鹽酸調(diào)節(jié)pH值至7.5。8 mmol/L ANS-磷酸緩沖液:將ANS溶解于0.1 mol/L pH 7.0的磷酸緩沖液中。
Multimode 8 AFM 美國布魯克公司;Avanti J-26XP超高速冷凍離心機 德國貝克曼庫爾特有限公司;TGL-16gR飛鴿牌系列離心機 上海安亭科學(xué)儀器廠;IKA T18 分散儀 德國IKA 公司;UV1600紫外-可見分光光度計 北京瑞利分析儀器;Cary Eclipse熒光分光光度計 美國Varian公司;FE 20 pH計 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司。
1.3.1 不同離子強度肌球蛋白溶液的制備
參考Jia Dan等[27]的方法并稍作修改。取新鮮花鰱魚背部肉糜,加入10 倍體積試劑A,利用均質(zhì)機在11 000 r/min條件下均質(zhì)6 min,每隔10 s暫停10 s。置于4 ℃反應(yīng)15 min,離心(3 000×g、6 min、4 ℃),取沉淀物量體積,加入5 倍體積試劑B,同時加入腺苷-5’-三磷酸二鈉鹽水合物,使其終濃度為10 mmol/L的懸浮液,置于4 ℃冰箱靜置90 min,離心(11 000×g,13 min,4 ℃),量取上清液,加入5 倍體積的1 mmol/L碳酸氫鉀溶液,4 ℃條件下放置20 min,離心(11 000×g、13 min、4 ℃),量取沉淀物,加入2.5 倍體積試劑C,4 ℃反應(yīng)10 min,往懸浮液中加入5 倍體積的1 mmol/L碳酸氫鉀溶液,并加入氯化鎂,使混合液終濃度為10 mmol/L,置于4 ℃冰箱過夜。離心(11 000×g、25 min、4 ℃),量取沉淀,得到肌球蛋白顆粒。得到的肌球蛋白顆粒,分別溶解在0.5 mol/L和0.1 mol/L NaCl-20 mmol/L Tris-HCl(pH 7.0)緩沖液中,離心(5 000×g,10 min,4 ℃),取上清液,得到不同離子強度條件下的肌球蛋白溶液備用。分別用雙縮脲法[28]檢測上清液中蛋白含量,并進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳,用Gel-Pro analyzer軟件采用光密度法,對肌球蛋白的純度進行定量分析,肌球蛋白的純度超過90%,與Liu Ru等[29]的結(jié)果一致,滿足實驗要求。
1.3.2 L-Cys對肌球蛋白溶液溶解度的影響
肌球蛋白溶液的終質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL[16],加入L-Cys溶液(pH 7.0)使其終濃度為5 mmol/L[13-14],混勻。將樣品分別進行一段式加熱(90 ℃、30 min)、二段式加熱(40 ℃、60 min+90 ℃、30 min)處理[30],以不加熱作為對照組。參考Guo等[13]的方法,用高速冷凍離心機4 ℃、5 000 r/min離心10 min,分離后取上清液測蛋白濃度,溶解度按下式計算:
1.3.3 L-Cys對肌球蛋白溶液表面疏水性的影響
將分別溶于0.5 mol/L和0.1 mol/L NaCl-20 mmol/L Tris-HCl緩沖液中的新鮮肌球蛋白溶液逐步稀釋成終質(zhì)量濃度分別為0.062 5、0.125、0.25 mg/mL和0.5 mg/mL的溶液,同時加入5 mmol/L的L-Cys溶液(pH 7.0)。參照Yongsawatdigul等[31]的方法,取各質(zhì)量濃度溶液各4 mL,逐個加入8 mmol/L的ANS 40 μL,黑暗處反應(yīng)10 min,用0.5 mol/L和0.1 mol/L NaCl-20 mmol/L Tris-HCl緩沖液做空白對照。熒光分光光度計狹縫校正設(shè)定為5 nm,激發(fā)波長和發(fā)射波長經(jīng)實驗后分別設(shè)定為375 nm和475 nm,測定肌球蛋白樣品的熒光強度。以相對熒光強度對肌球蛋白濃度作圖,初始段的斜率即為肌球蛋白的表面疏水性指標(biāo)。
1.3.4 AFM樣品制備及觀察
1.3.4.1 AFM樣品的制備
提前將云母片剪成5 mm×5 mm大小,用雙面膠黏在具有鐵磁性物質(zhì)如直徑約為1 cm的鐵片上,鐵片厚度不超過1 mm;將蛋白溶液稀釋至20 μg/mL,用雙面膠將云母片外表層剝離,準(zhǔn)確吸取6 μL蛋白-L-Cys混合液滴于新剝離的云母片表面,室溫條件下在超凈臺內(nèi)自然干燥,形成蛋白吸附層;為消除鹽分的干擾,用純凈水(30 ℃,35 μL)沖洗吸附層5 次,超凈臺內(nèi)自然干燥,所有操作均在超凈臺內(nèi)進行。掃描前樣品存放在帶蓋培養(yǎng)皿中,避免空氣中的灰塵落在樣品表面干擾掃描。
1.3.4.2 AFM樣品成像
AFM探針為商用氮化硅針尖,型號為TAP 150(MPP-12100-10),操作模式為分子力模式,微懸臂的長度、厚度、寬度分別為1.5~2.5、115~135、25~35 μm,共振頻率為150~200 kHz,彈性系數(shù)為5 N/m。本實驗圖像掃描范圍均為5 μm×5 μm,每個樣品至少選取10 個不同區(qū)域進行掃描,確保得到可重復(fù)的高質(zhì)量圖像,所有圖像均在NanoScope Analysis離線軟件上進行,圖片只進行Flatten平整化處理,以消除慢掃描方向上的低頻噪音造成的傾斜、扭曲、跳線等的影響,對每條掃描線進行補償,使得到的圖像更加真實。
表1 L-Cys對肌球蛋白溶解度的影響Table 1 Effect of L-Cys on the solubility of myosin solutions%
表1表明L-Cys的添加能影響肌球蛋白的溶解度。未添加L-Cys時,高離子強度條件下肌球蛋白的溶解度均高于低離子強度,原因可能是靜電作用力和表面疏水性的變化改變了肌球蛋白的構(gòu)象[32]。在低離子強度添加L-Cys的條件下,未加熱、一段式加熱、二段式加熱時溶解度分別顯著提高了30.649%、32.483%、27.581%(P<0.05);高離子強度時則分別提高了3.732%、
4.817%、8.672%,但無顯著性差異(P>0.05)。該結(jié)果表明5 mmol/L的L-Cys在低鹽時作用更明顯,與周春霞等[33]的研究結(jié)果一致,高離子強度環(huán)境中,由于大量氯離子的存在,電荷屏蔽作用顯著,L-Cys所帶負電荷被屏蔽。Takai等[15]曾報道低離子強度時蛋白可能更趨向于自組裝,形成較大的纖絲體,然而低離子環(huán)境中,電荷屏蔽作用較小,L-Cys所帶負電荷圍繞在肌球蛋白周圍增加了靜電斥力,阻止了自組裝,從而提高了肌球蛋白的溶解度。另一方面,L-Cys具有還原基團巰基(-SH)可能會改變蛋白質(zhì)分子內(nèi)部的二硫鍵,影響蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu),從而減弱肌球蛋白分子之間的聚集,L-Cys與肌球蛋白之間的特異性作用在低鹽條件下更顯著。
圖1 L-Cys對肌球蛋白溶液表面疏水性的影響Fig. 1 Eff ect of L-Cys on the surface hydrophobicity of myosin solutions
圖1表明未加熱時,在高/低鹽環(huán)境中,添加L-Cys對肌球蛋白溶液的表面疏水性均無顯著性影響(P>0.05)。一段式加熱時,高/低鹽環(huán)境中,L-Cys均能顯著提高肌球蛋白的表面疏水性(P<0.05)。二段式加熱時,低鹽環(huán)境中,L-Cys的加入對肌球蛋白溶液的表面疏水性未產(chǎn)生顯著影響(P>0.05);高鹽環(huán)境中,L-Cys能顯著提高肌球蛋白的表面疏水性(P<0.05)。當(dāng)?shù)鞍鬃冃哉归_,疏水基團暴露,肌球蛋白的表面疏水性增大。未加熱時,肌球蛋白展開程度低,暴露的疏水位點較少,L-Cys作用不足以顯著改變肌球蛋白的表面疏水性。一段式加熱時,加熱溫度過高,肌球蛋白快速變性展開,暴露出大量疏水位點,但此時肌球蛋白的聚集速率大于展開速率,使部分疏水性位點重新被掩埋,但L-Cys的加入緩解了肌球蛋白的聚集,減少了疏水位點被掩埋,因而表現(xiàn)出較高的表面疏水性,原因可能是L-Cys特有的側(cè)鏈結(jié)構(gòu)抑制肌球蛋白的聚集,與Shiraki等[17]的研究結(jié)果一致。二段式加熱時,高/低鹽環(huán)境中,L-Cys對表面疏水性的影響具有不同的趨勢,但數(shù)值上較一段式均未大幅度提高表面疏水性,原因可能是經(jīng)過預(yù)加熱階段肌球蛋白充分展開,展開速率大于聚集速率,在低溫凝膠化階段肌球蛋白通過二硫鍵和疏水鍵發(fā)生有序聚集形成三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)[33],再經(jīng)90 ℃加熱時疏水性位點相比一段式加熱被掩埋的相對較少,從而L-Cys對肌球蛋白表面疏水性的影響弱于一段式加熱,此時加熱對表面疏水性的影響占主導(dǎo)地位而不是L-Cys。
2.3.1 緩沖液及L-Cys溶液AFM成像
圖2 緩沖液和L-Cys溶液AFM成像Fig. 2 AFM images of buffer solution and L-Cys solutions
由圖2A可以看出,緩沖液在云母片表面形成的吸附層在經(jīng)過沖洗去鹽后表面無明顯顆粒狀雜質(zhì),無污染、非常平滑,因此樣品在自然干燥過程中空氣中的塵埃顆粒及析出的鹽分顆粒對樣品觀測的影響不大;圖2a在高度上進一步反應(yīng)出緩沖液吸附層表面無明顯雜質(zhì)顆粒。圖2B為將L-Cys溶解在緩沖液中形成的L-Cys溶液在云母片上形成的吸附層,可以看出L-Cys溶液不存在大的顆粒狀物質(zhì),與蛋白顆粒形貌存在較大的區(qū)別;圖2b表明L-Cys溶液顆粒細小且均勻,與蛋白聚集體高度圖差別較大。
2.3.2 高鹽條件下L-Cys對肌球蛋白聚集行為的影響
圖3 高鹽條件下肌球蛋白溶液和添加L-Cys對肌球蛋白溶液熱聚集行為的影響Fig. 3 Effect of L-Cys on the heat-induced aggregation of myosin solutions at high ionic strength
由圖3A、a可以看出,未加熱時肌球蛋白多以單體或小聚集體的形式吸附在云母片的表面,分布相對均勻,存在輕微的交聯(lián)現(xiàn)象。圖3B、b顯示一段式加熱時,肌球蛋白形成大的聚集體,大小不等的聚集體分布很不均勻,圖像表明肌球蛋白發(fā)生無序且劇烈的聚集,產(chǎn)生橫向交聯(lián),形成不規(guī)則的簇狀聚集體,原因可能是加熱溫度過高,肌球蛋白聚集速率大于展開速率。圖3C、c顯示二段式加熱時形成大的聚集簇,部分小的聚集體發(fā)生交聯(lián)從而進一步聚集成大的聚集體,蛋白聚集體的分布相對均勻。由圖3D、d可以看出,未加熱添加L-Cys后肌球蛋白多以小的聚集體或單體的形式存在,與純蛋白相比小的聚集體數(shù)量增多,與溶解度結(jié)果一致,且分布不均勻,未出現(xiàn)輕微交聯(lián)現(xiàn)象,表明L-Cys在未加熱時干擾了肌球蛋白的聚集。圖3E、e結(jié)果顯示,一段式加熱時出現(xiàn)較大的聚集體,聚集體的大小形狀較純蛋白均勻,并且表現(xiàn)出明顯的有序聚集,說明L-Cys緩解了肌球蛋白在一段式加熱時產(chǎn)生的劇烈聚集。圖3F、f顯示二段式加熱時,L-Cys對肌球蛋白溶液的聚集行為有明顯的影響,與純蛋白相比聚集體更小,分布更均勻,阻止了肌球蛋白聚集體發(fā)生橫向聚集,未形成大的聚集體,與Shiraki等[17]曾報道的氨基酸能阻止蛋白的聚集結(jié)果一致。
2.3.3 低鹽條件下L-Cys對肌球蛋白聚集行為的影響
圖4 低鹽條件下肌球蛋白溶液和添加L-Cys對肌球蛋白溶液熱聚集行為的影響Fig. 4 Effect of L-Cys on the heat-induced aggregation of myosin solutions at low ionic strength
由圖4A可以看出,肌球蛋白低鹽條件未加熱時自組裝成較小的聚集體,與高鹽相比聚集體分布不均勻,形狀不規(guī)則,但橫向交聯(lián)明顯增多(圖4a),原因可能是低鹽條件下肌球蛋白更趨向于自組裝成較大的肌球蛋白纖絲[16]。一段式加熱時出現(xiàn)較大的肌球蛋白聚集體,較高鹽條件下分布較均勻,形狀較規(guī)則(圖4B、b)。二段式加熱時出現(xiàn)較小的聚集體,分布較均勻,與高鹽條件下聚集形貌表現(xiàn)出較大區(qū)別(圖4C、c)。由圖4E、e可以看出,未加熱時添加L-Cys后肌球蛋白分散更均勻,小的纖絲體增多,原因可能是L-Cys提高了肌球蛋白的溶解度,較大的纖絲體分解成較小的纖絲體或單體,該結(jié)果與溶解度結(jié)果一致。圖4E、F也可看出添加L-Cys后聚集體明顯減小,與溶解度結(jié)果一致,同時蛋白聚集體的橫向交聯(lián)增加,說明L-Cys在緩解肌球蛋白聚集的同時使其聚集更有序,避免聚集速率過快,形成大的蛋白簇,而且簇與簇間的交聯(lián)能力明顯上升,利于凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的形成。
3 種加熱方式下,低鹽環(huán)境中,L-Cys均能顯著提高肌球蛋白的溶解度;高鹽環(huán)境中,L-Cys的添加對肌球蛋白的溶解度無顯著性影響。未加熱時,高/低鹽環(huán)境中L-Cys對肌球蛋白溶液表面疏水性均無顯著性影響;一段式加熱時,高/低鹽環(huán)境中,添加L-Cys均顯著提高了肌球蛋白溶液的表面疏水性;二段式加熱時,相對一段式加熱L-Cys均未大幅度改變表面疏水性。AFM圖像顯示高鹽條件下添加L-Cys使蛋白聚集體分布更均勻,聚集體更小,緩解了肌球蛋白的聚集,使其聚集更有序;低鹽條件下L-Cys使肌球蛋白分布更分散但不均勻,聚集體更小,橫向交聯(lián)明顯增加,有利于凝膠網(wǎng)絡(luò)的形成。
L-Cys本身帶負電荷,與肌球蛋白自身的負電荷形成干擾,破壞了靜電平衡,從而影響肌球蛋白的聚集行為。低鹽時,電荷屏蔽作用弱,L-Cys所帶負電荷圍繞在肌球蛋白周圍,增大了靜電斥力,從而顯著提高了肌球蛋白的溶解度;一段式加熱時,肌球蛋白的聚集速度大于展開速度,L-Cys可顯著緩解肌球蛋白的聚集,使被掩埋的疏水位點重新暴露,從而顯著提高了表面疏水性;二段式加熱時,預(yù)加熱過程肌球蛋白充分展開,且展開速度大于聚集速度,發(fā)生有序聚集,疏水位點被掩蓋的較少,加熱方式對表面疏水性的影響大于L-Cys。此外,L-Cys特殊的側(cè)鏈結(jié)構(gòu)與肌球蛋白發(fā)生特異性作用,也會干擾肌球蛋白的聚集行為,還需要進一步的研究。