鄧 婧，馬小涵，趙天天，易繼武，劉 雄,,*

（1.西南大學食品科學學院，重慶 400715；2.昌都市君親農(nóng)業(yè)科技開發(fā)有限公司，西藏 昌都 854000）

青稞即裸大麥，主產(chǎn)于我國青海、青藏高原等地，具有高蛋白質(zhì)、高膳食纖維、低脂、低糖等特點[1]。青稞含有豐富的β-葡聚糖（β-glucan，BG），平均含量為5%，遠高于其他谷類作物[2]。BG是一類高分子黏性多糖，也是一種水溶性膳食纖維[3]。有研究指出，BG在腸道內(nèi)形成黏性溶液能阻礙淀粉分解和糖類吸收，從而延緩淀粉消化和血糖濃度升高，具有降低餐后血糖和胰島素水平的效果[4-9]。青稞相對大多數(shù)谷物具有較低的血糖生成指數(shù)和淀粉消化率，更有益于人體健康，這與其中的BG密切相關[10]。

目前關于青稞BG的研究多集中在提取工藝的改進和理化性質(zhì)的研究[11-17]，關于青稞BG對淀粉體外消化性影響的研究鮮見報道。因此，本實驗選擇日常主食中重要的糧食品種小麥粉作為對照，在對比青稞全粉和小麥粉體外消化性基礎上，進一步研究青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量對青稞淀粉體外消化性的影響，從青稞BG流變學特性及其與α-淀粉酶的相互作用方面，研究青稞BG抑制淀粉消化機理，旨在為青稞降血糖機理提供理論參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

青稞全粉由昌都市君親農(nóng)業(yè)科技開發(fā)有限公司提供，將青稞去殼后粉碎過80 目篩得到青稞全粉；普通小麥粉 五得利集團；耐高溫α-淀粉酶 阿拉丁試劑有限公司；α-淀粉酶（A3403，酶活力500 U/mg）、胃蛋白酶（P7000，酶活力250 U/mg）、胰酶（P7545，酶活力8 U/mg）、Dextran系列葡聚糖 美國Sigma公司；交聯(lián)BG測定試劑盒 愛爾蘭Megazyme公司；透析袋（1 000 u） 北京索萊寶科技有限公司；凝膠色譜儀、TSK gel G6000PWXL色譜柱 日本Tosoh公司；其他化學試劑均為國產(chǎn)分析純。

1.2 儀器與設備

HH-4恒溫水浴鍋 上海青浦滬西儀器廠；JJ-1電動攪拌器 金壇市科析儀器公司；PHS-3C型酸度計 上海三信儀表廠；4K15型高速離心機 美國Sigma公司；LGJ-10真空冷凍干燥機 北京松源華興科技公司；納米粒度及Zeta電位分析儀 英國馬爾文公司；UV-2450型紫外分光光度計、LC-20A型液相色譜儀 日本島津公司；F-2500型熒光分光光度計 日本日立公司；DHR-1型流變儀 美國TA儀器公司。

1.3 方法

1.3.1 青稞BG的分離純化

青稞BG的分離純化在文獻方法[18-20]基礎上進行一些改進。青稞全粉中按照料液比1∶8（g/mL）加入75%乙醇溶液，80 ℃回流2 h，冷卻后棄上清液，再加入無水乙醇浸沒濕粉15 min，去除乙醇，70 ℃烘干待用，以脫脂和除內(nèi)源酶。稱取一定量脫脂、滅酶后的青稞全粉，按照料液比1∶15（g/mL）加入蒸餾水，調(diào)pH 8.0并于80 ℃攪拌提取2 h，6 000 r/min離心20 min，收集上清液；調(diào)pH 6.4，按照2 U/mL加酶量加入耐高溫α-淀粉酶，于90 ℃恒溫水浴40 min；待溶液冷卻后，調(diào)pH 8.0，按體積比50∶1加入1%胰蛋白酶溶液，于37 ℃恒溫水浴30 min后滅酶，待溶液冷卻后，調(diào)pH 4.5，4 ℃靜置過夜；6 000 r/min離心20 min，收集上清液，上清液減壓濃縮至原體積1/2，加入溶液4 倍體積的95%乙醇溶液，4 ℃靜置過夜，6 000 r/min離心20 min，收集沉淀并以蒸餾水復溶，再于1 000 u透析袋透析72 h，將透析液減壓濃縮后加入溶液4 倍體積95%乙醇溶液，6 000 r/min離心20 min，收集沉淀并冷凍干燥，即得青稞BG。

1.3.2 青稞淀粉的提取

青稞淀粉的提取在文獻方法[21-23]基礎上進行一些改進。青稞全粉中按照料液比1∶5（g/mL）加入0.5%的NaOH溶液，于40 ℃攪拌提取4 h，調(diào)溶液pH 7.0，5 000 r/min離心10 min，棄上層濃稠液體，刮去上層褐色沉淀，取下層沉淀加水制漿，過200 目篩，5 000 r/min離心10 min，棄上清液，刮去上層灰色沉淀，收集下層白色沉淀，分別用95%乙醇和蒸餾水各洗滌3 次，離心收集沉淀并冷凍干燥，即得青稞淀粉。

1.3.3 不同分子質(zhì)量青稞BG的制備

采用酸水解法[5]制備不同分子質(zhì)量青稞BG。分別配制2%青稞BG溶液，用5 mol/L磷酸作為酸解液并調(diào)節(jié)溶液pH 2.0，于80 ℃恒溫水浴中水解不同時間（15、30、60 min和120 min）。調(diào)pH 7.0，加入溶液4 倍體積95%乙醇溶液，6 000 r/min離心20 min，收集沉淀并以蒸餾水復溶，再于1 000 U透析袋透析72 h，將透析液減壓濃縮后加入溶液4 倍體積95%乙醇溶液，6 000 r/min離心20 min，收集沉淀并冷凍干燥，即得不同分子質(zhì)量青稞-BG。

1.3.4 基本組分測定

脂肪含量測定：GB 5009.6—2016《食品中脂肪的測定》；蛋白質(zhì)含量測定：GB 5009.5—2016《食品中蛋白質(zhì)的測定》；淀粉含量測定：GB 5009.9—2016《食品中淀粉的測定》；粗纖維含量測定：GB/T 5515—2008《糧食中粗纖維素含量測定 介質(zhì)過濾法》；BG含量測定：NY/T 2006—2011《谷物及其制品中β-葡聚糖含量的測定》；還原糖含量測定：3,5-二硝基水楊酸比色法。

1.3.5 青稞BG分子質(zhì)量的測定

采用高效凝膠色譜法，分析條件為：LC-20A型液相色譜系統(tǒng)，TSK gel G6000PWXL凝膠色譜柱，示差折光檢測器，流動相超純水，柱溫30 ℃，流速0.7 mL/min，進樣量20 μL。

1.3.6 青稞BG粒徑分析

使用納米粒度及Zeta電位儀分析不同分子質(zhì)量1 mg/mL青稞BG溶液粒度分布，測定前溶液需超聲分散1 min。

1.3.7 青稞BG流變學性質(zhì)研究

靜態(tài)剪切速率與黏度關系掃描，測定條件為：夾具40 mm，2 °椎板，溫度37 ℃，應變力為1.0%，剪切速率0.1～100 s－1，采集變量點數(shù)目為60 個。然后用牛頓冪律方程進行擬合。擬合公式如下：

式中：δ為剪切應力/Pa；γ為剪切速率/s－1；K為稠度系數(shù)/（Pa·s－n）；n為流體行為指數(shù)，其大小表示液體偏離牛頓指數(shù)的程度，n小于1時樣品溶液為剪切變稀的假塑性，n為1時，溶液為牛頓流體，n大于1時，為脹塑性流體。

動態(tài)黏彈性掃描，測定條件為：夾具40 mm，2 °椎板，溫度37 ℃，應變力為1.0%，角頻率0.1～100 rad/s，采集變量點數(shù)目為20 個。然后用牛頓冪律方程進行擬合。擬合公式如下：

式中：ω為角頻率；G’為彈性模量；G”為黏性模量；K’、K”、n’、n”均為擬合參數(shù)。

1.3.8 青稞BG對α-淀粉酶的熒光淬滅作用[24-26]

采用10 mm光徑的四面通光石英比色皿，設置固定激發(fā)波長為280 nm，發(fā)射與激發(fā)狹縫寬度為5 nm，分別掃描不含青稞BG、含有不同質(zhì)量濃度青稞BG和不同分子質(zhì)量青稞BG的0.5 mg/mL α-淀粉酶在300～400 nm波長范圍的熒光光譜。

1.3.9 青稞全粉體外模擬消化實驗[27]

分別取10 g青稞全粉和小麥粉，加入一定量蒸餾水于沸水浴中糊化5 min，均質(zhì)處理后加入模擬人工唾液1.6 mL（α-淀粉酶質(zhì)量濃度為1.3 mg/mL），于37 ℃恒溫振蕩搖床中振蕩10 min；調(diào)消化液pH 1.2，加入模擬人工胃液20 mL（胃蛋白酶質(zhì)量濃度為3.2 mg/mL），于37 ℃恒溫振蕩搖床中振蕩2 h（120 r/min）；調(diào)消化液pH 6.8，加入模擬人工腸液2 mL（胰酶質(zhì)量濃度為10 mg/mL），于37 ℃恒溫振蕩搖床中振蕩2 h（120 r/min），冰浴中冷卻終止反應，調(diào)消化液pH值中性；消化液于6 000 r/min離心20 min，收集上清液并定容，采用DNS法測定消化液中還原糖含量，以淀粉水解率表示對淀粉消化的程度，以小麥粉作對照。淀粉水解率公式如下：

1.3.10 青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量對青稞淀粉消化性影響實驗

分別取2 g青稞淀粉，加入一定量蒸餾水于沸水浴中糊化5 min，分別加入50 mL同分子質(zhì)量不同質(zhì)量濃度（5、10、15、20 mg/mL）和同質(zhì)量濃度（10 mg/mL）不同分子質(zhì)量的青稞BG溶液，后續(xù)操作同1.3.9節(jié)。

1.4 數(shù)據(jù)分析

采用Microsoft Excel和SPSS分析軟件對數(shù)據(jù)進行整理與分析，結果均以 ±s表示，實驗重復次數(shù)n=3。

2 結果與分析

2.1 青稞全粉與普通小麥粉基本成分和體外消化性比較

選擇具有代表性的小麥粉作為對照，比較青稞全粉和小麥粉基本成分和體外消化性。由表1可知，青稞全粉中淀粉含量顯著低于小麥粉（P＜0.05），膳食纖維和BG含量顯著高于小麥粉（P＜0.05）。

表1 青稞全粉、小麥粉基本成分和體外淀粉水解率比較Table 1 Comparison of main components and starch digestibility in vitro of highland barley and wheat flour

以小麥粉作為對照，連續(xù)模擬青稞全粉在口腔、胃和小腸中的消化過程。青稞全粉中淀粉水解率（82.83±2.12）%顯著低于普通小麥粉中淀粉水解率（93.06±3.19）%（P＜0.05），表明青稞全粉中淀粉體外消化率低于小麥粉中淀粉體外消化率。谷物在唾液淀粉酶、胰酶的作用下，谷物中的淀粉被水解，不同谷物由于成分上的差異造成其消化程度不同。同一條件下，青稞全粉中淀粉水解率顯著低于普通小麥粉中淀粉水解率，這可能是由于青稞全粉中較高含量的膳食纖維（BG等非淀粉多糖）影響淀粉的消化性所致。為探究這一可能性，分別提取青稞BG和青稞淀粉進行體外模擬消化實驗，驗證這一猜想。

2.2 青稞BG質(zhì)量濃度對青稞淀粉體外消化性的影響

圖1 青稞BG質(zhì)量濃度對青稞淀粉體外消化性的影響Fig. 1 Effect of highland barley β-glucan at different concentrations on starch digestibility in vitro

如圖1所示，青稞淀粉消化分解生成的還原糖含量（單位為mg）按從大到小排序為：904.98±5.44（空白組）＞845.05±5.04（5 mg/mL BG）＞792.38±3.14（10 mg/mL BG）＞756.06±8.32（15 mg/mL BG）＞692.49±14.41（20 mg/mL BG）。隨青稞BG質(zhì)量濃度增加，青稞淀粉消化分解生成的還原糖逐漸降低，且顯著低于空白對照組（P＜0.05），這表明青稞BG質(zhì)量濃度越大，青稞淀粉消化越慢，青稞BG能夠部分抑制青稞淀粉消化程度，提高青稞淀粉的抗消化性。這可能是由于隨青稞BG質(zhì)量濃度增加，消化液黏度增大，流動性降低，青稞BG易形成凝膠部分覆蓋在淀粉顆粒表面，阻礙α-淀粉酶與淀粉顆粒接觸，增加淀粉酶酶解阻力，使青稞淀粉分解速率變慢。

2.3 青稞BG分子質(zhì)量對青稞淀粉體外消化性的影響

如表2所示，青稞BG的分子質(zhì)量和粒徑均隨著水解時間延長而降低。不同分子質(zhì)量青稞BG對青稞淀粉體外消化性的影響情況如圖2所示，加入相同質(zhì)量濃度（10 mg/mL）不同分子質(zhì)量的青稞BG，青稞淀粉消化分解生成的還原糖含量（單位：mg）按從大到小排序為：888.63±18.11（空白組）＞785.11±14.44（BG-120）＞752.42±5.44（BG-60）＞736.08±5.45（BG-30）＞725.18±8.29（BG-15）＞687.04±13（BG-0）。青稞BG分子質(zhì)量越大，青稞淀粉消化分解生成的還原糖越少，且顯著低于空白對照組（P＜0.05）。這可能是由于青稞BG分子質(zhì)量越大，溶液黏度越大，分子質(zhì)量降低會導致青稞BG溶液黏度降低。同一質(zhì)量濃度下，青稞BG分子質(zhì)量越大的溶液黏度越高，溶液黏滯阻力越大，對消化酶的屏障作用越強，抑制淀粉消化程度越顯著。

表2 不同分子質(zhì)量青稞BG的平均分子質(zhì)量和平均粒徑Table 2 Average molecular mass and particle size of different highland barley β-glucans

圖2 青稞BG分子質(zhì)量對青稞淀粉體外消化性的影響Fig. 2 Effect of highland barley β-glucans with different molecular masses on starch digestibility in vitro

2.4 青稞BG流變學性質(zhì)

不同質(zhì)量濃度、分子質(zhì)量青稞BG溶液的剪切流動性和黏彈性及流變曲線牛頓冪律擬合參數(shù)分別見圖3、表3。由圖3A、B可知，不同質(zhì)量濃度、分子質(zhì)量的青稞BG溶液表觀黏度均隨剪切速率的增加而降低，流體指數(shù)n小于1，表現(xiàn)為典型的非牛頓假塑性流體行為。同一剪切速率下，青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量越大，溶液表觀黏度越大。由表3可知，稠度系數(shù)與青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量均呈正相關。

由圖3C、4D可知，不同質(zhì)量濃度、分子質(zhì)量的青稞BG的G’和G”均隨角頻率增加而增加，且青稞BG質(zhì)量濃度越高，分子質(zhì)量越大，溶液G’和G”越大。由表3可知，稠度系數(shù)K’和K”與青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量均呈正相關，這說明高質(zhì)量濃度、高分子質(zhì)量的青稞BG溶液具有更強的黏彈性表現(xiàn)，這可能是因為高質(zhì)量濃度、高分子質(zhì)量的青稞BG分子間相互作用更強。不同質(zhì)量濃度青稞BG溶液G′擬合的冪律方程斜率（n’=0.85～1.26）大于G”擬合后的斜率（n”=0.55～0.84），不同分子質(zhì)量青稞BG溶液G’擬合的冪律方程斜率（n’=0.62～1.21）大于G”擬合后的斜率（n”=0.56～1.06），這說明青稞BG彈性貢獻隨角速率的增大而增大的程度強于黏性貢獻，表明青稞BG凝膠具備較強韌的凝膠結構。綜上，青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量變化對溶液黏彈性有顯著影響，從而在2.2節(jié)和2.3節(jié)中表現(xiàn)出對青稞淀粉體外消化影響不同的差異。

圖3 不同質(zhì)量濃度、不同分子質(zhì)量青稞BG溶液的剪切流動性和黏彈性Fig. 3 Flowability and viscoelasticity of highland barley β-glucan solutions at different concentrations and molecular masses

表3 不同質(zhì)量濃度、不同分子質(zhì)量BG溶液流變曲線牛頓冪律擬合參數(shù)Table 3 Power law fitting parameters for highland barley β-glucan solutions at different concentrations and molecular masses

2.5 青稞BG對α-淀粉酶的熒光淬滅作用

圖4 不同質(zhì)量濃度青稞BG與α-淀粉酶相互作用的熒光光譜Fig. 4 Effect of highland barley β-glucan at different concentrations on fluorescence spectra of α-amylase

圖5 不同分子質(zhì)量青稞BG與α-淀粉酶相互作用的熒光光譜Fig. 5 Effect of highland barley β-glucan with different molecular masses on fluorescence spectra of α-amylase

蛋白質(zhì)中色氨酸的存在使其具有內(nèi)源熒光[28]，而α-淀粉酶分子含有至少16 個色氨酸殘基[29]，因此α-淀粉酶色氨酸殘基的天然熒光及其變化值可直接反映蛋白質(zhì)本身和周圍環(huán)境的變化。由圖4可知，在280 nm激發(fā)波長下，α-淀粉酶在337 nm波長處有最大熒光發(fā)射峰，且隨著青稞BG質(zhì)量濃度的不斷增大，α-淀粉酶熒光發(fā)射峰強度逐漸減弱。由此可見，青稞BG對α-淀粉酶有熒光猝滅作用，可能是由于青稞BG與蛋白質(zhì)分子中色氨酸殘基發(fā)生靜電和氫鍵相互作用，微擾α-淀粉酶的構象，使色氨酸殘基所處的疏水微環(huán)境發(fā)生明顯變化[28]。此外，由圖5可知，同一質(zhì)量濃度下，隨青稞BG分子質(zhì)量增加，α-淀粉酶在337 nm波長處熒光發(fā)射峰強度逐漸降低，淬滅作用程度增加?？赡苁怯捎谇囡鼴G分子質(zhì)量大小影響α-淀粉酶微結構和抑制作用，青稞BG分子質(zhì)量降低，對α-淀粉酶熒光淬滅作用降低，抑制α-淀粉酶效果下降[30]。

3 結 論

本研究結果表明：青稞全粉中淀粉消化率顯著低于小麥粉中淀粉消化率，具有低血糖功效，這與其中的BG密切相關。青稞BG質(zhì)量濃度和分子質(zhì)量越大，溶液黏度和彈性越大，延緩青稞淀粉消化效果越顯著。高質(zhì)量濃度、高分子質(zhì)量的青稞BG溶液易形成凝膠覆蓋在淀粉顆粒表面，阻礙淀粉酶與淀粉顆粒接觸，從而抑制淀粉的消化。此外，青稞BG形成的高黏性溶液環(huán)境對α-淀粉酶構象和所處的微環(huán)境有一定影響，使α-淀粉酶活性部分被抑制，且青稞BG質(zhì)量濃度越高、分子質(zhì)量越大，抑制效果越明顯。青稞BG能抑制淀粉消化、降低餐后血糖，青稞BG可作為功能性成分，應用于降血糖和保健食品等領域。

參考文獻：

[1]扎桑拉姆. 淺析青稞原料主要營養(yǎng)成分與青稞產(chǎn)業(yè)的發(fā)展[J]. 西藏科技, 2006(10)： 6-7. DOI：10.3969/j.issn.1004-3403.2006.10.002.

[2]張峰, 楊勇, 趙國華, 等. 青稞β-葡聚糖研究進展[J]. 糧食與油脂,2003(12)： 3-5. DOI：10.3969/j.issn.1008-9578.2003.12.001.

[3]LIMBERGER-BAYER V M, DE FRANCISCO A, CHAN A, et al.Barley β-glucans extraction and partial characterization[J]. Food Chemistry, 2014, 154： 84-89. DOI：10.1016/j.foodchem.2013.12.104.

[4]汪海波, 劉大川, 汪海嬰, 等. 燕麥β-葡聚糖對小腸蠕動及淀粉酶活性的影響研究[J]. 營養(yǎng)學報, 2006, 28(2)： 148-151. DOI：10.3321/j.issn：0512-7955.2006.02.023.

[5]張宇. 燕麥β-葡聚糖對淀粉消化吸收和血糖的影響[D]. 無錫： 江南大學, 2015.

[6]申瑞玲, 王志瑞, 董吉林, 等. 燕麥β-葡聚糖對高脂血癥大鼠空腹和餐后脂代謝的影響[J]. 食品科學, 2009, 30(1)： 258-260.DOI：10.3321/j.issn：1002-6630.2009.01.062.

[7]汪海波, 劉大川, 汪海嬰, 等. 燕麥β-葡聚糖對糖尿病大鼠的血糖及糖代謝功能的影響研究[J]. 食品科學, 2005, 26(8)： 387-391.DOI：10.3321/j.issn：1002-6630.2005.08.102.

[8]宋江南, 田明杰, 蘇立宏, 等. 青稞β-葡聚糖對高脂誘導的C57小鼠膽固醇代謝的影響[J]. 中華疾病控制雜志, 2013(2)： 93-98.

[9]李莎莎, 賈冬英, 姚開. 青稞β-葡聚糖對膽固醇的吸附作用研究[J]. 氨基酸和生物資源, 2012, 34(2)： 29-33. DOI：10.3969/j.issn.1006-8376.2012.02.008.

[10]王艷麗, 劉凌, 孫慧, 等. 幾種不同來源β-葡聚糖的體外功能特性[J].食品與發(fā)酵工業(yè), 2013, 39(11)： 68-72.

[11]臧靖巍, 闞建全, 陳宗道, 等. 青稞的成分研究及其應用現(xiàn)狀[J]. 中國食品添加劑, 2004(4)： 43-46. DOI：10.3969/j.issn.1006-2513.2004.04.010.

[12]徐菲, 黨斌, 遲德釗. 超聲波輔助提取青稞β-葡聚糖工藝優(yōu)化[J].食品科技, 2014, 39(12)： 217-221.

[13]王謙, 董海麗. 超高壓提取青稞β-葡聚糖工藝優(yōu)化[J]. 糧食與油脂,2016, 29(5)： 79-81. DOI：10.3969/j.issn.1008-9578.2016.05.023.

[14]王謙, 董海麗. 超濾純化青稞β-葡聚糖的研究[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學, 2016,55(6)： 1530-1531. DOI：10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2016.06.042.

[15]羅燕平, 李家林, 張雪飛. 微波輔助提取青稞β-葡聚糖工藝優(yōu)化[J].農(nóng)產(chǎn)品加工： 下, 2016(7)： 35-38. DOI：10.16693/j.cnki.1671-9646(X).2016.07.039.

[16]邵舒, 董吉林, 申瑞玲, 等. 青稞β-葡聚糖凝膠熱特性、動態(tài)粘彈性及微觀結構研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2016, 37(3)： 54-57.DOI：10.13386/j.issn1002-0306.2016.03.002.

[17]申瑞玲, 曹高山, 常廣雙, 等. 青稞β-葡聚糖凝膠形成及其特性研究[J].中國糧油學報, 2009(7)： 55-58.

[18]賈瑩. 青稞麩皮水溶性β-葡聚糖的提取、分離純化和性質(zhì)研究[D].上海： 華東理工大學, 2013.

[19]謝昊宇, 何思宇, 賈冬英, 等. 青稞β-葡聚糖的分離純化及理化特性研究[J]. 食品科技, 2016, 41(1)： 142-146.

[20]馬棟, 鄒妍, 龔倩云, 等. 響應面法優(yōu)化青稞β-葡聚糖提取條件的研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2012, 33(1)： 204-206.

[21]劉新興, 李建穎, 趙彥巧, 等. 青稞淀粉的提取工藝優(yōu)化研究[J]. 食品研究與開發(fā), 2014, 35(5)： 34-37. DOI：10.3969/j.issn.1005-6521.2014.05.010.

[22]鄭學玲, 張玉玉, 張杰. 青稞淀粉理化特性的研究[J]. 中國糧油學報,2011, 26(4)： 30-36.

[23]張慧娟, 王靜, 劉英麗, 等. 堿法提取青稞淀粉的理化性質(zhì)研究[J].中國食品學報, 2016, 16(3)： 75-80. DOI：10.16429/j.1009-7848.2016.03.010.

[24]蘇波, 賈旭, 冷曉蓮, 等. 喜樹堿對胰α-淀粉酶部分性質(zhì)的影響[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā), 2007, 19(3)： 452-454. DOI：10.3969/j.issn.1001-6880.2007.03.023.

[25]王峰, 梁力曼, 顧正彪, 等. 聚乙烯醇、聚乙烯胺與淀粉酶相互作用熒光光譜[J]. 應用化學, 2010, 27(1)： 96-101. DOI：10.3969/j.issn.1000-0518.2010.01.019.

[26]李瓊, 陳磊, 韋慶益, 等. 柚皮素與α-淀粉酶相互作用的研究[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2014, 30(2)： 58-61.

[27]龔凌霄. 青稞全谷物及其防治代謝綜合征的作用研究[D]. 杭州：浙江大學, 2013.

[28]GAWLIK-DZIKI U, DZIKI D, BARANIAK B, et al. The effect of simulated digestion in vitro on bioactivity of wheat bread with Tartary buckwheat flavones addition[J]. LWT-Food Science and Technology,2009, 42(1)： 137-143. DOI：10.1016/j.lwt.2008.06.009.

[29]鄭蕓, 雷芳, 劉芯韻, 等. 咖啡因對胰α-淀粉酶部分理化性質(zhì)的影響[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā), 2007, 19(6)： 1016-1019. DOI：10.3969/j.issn.1001-6880.2007.06.024.

[30]FITTER J, HERRMANN R, DENCHER N A, et al. Activity and stability of a thermostable α-amylase compared to its mesophilic homologue： mechanisms of thermal adaptation[J]. Biochemistry, 2001,40(35)： 10723-10731. DOI：10.1021/bi010808b.