戢水玲 高 宏

(1. 中國(guó)科學(xué)院水生生物研究所， 中國(guó)科學(xué)院藻類生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室， 武漢 430072； 2. 中國(guó)科學(xué)院大學(xué)， 北京 100049)

精氨酸是尿素循環(huán)的重要中間代謝物， 在醫(yī)藥和食品工業(yè)上具有廣泛用途:它是復(fù)方氨基酸輸液的主要成分之一， 是氨中毒性肝昏迷的解毒劑和肝功能的促進(jìn)劑， 對(duì)病毒性肝炎療效顯著， 它還經(jīng)常用作飼料、食品等的添加劑。

紫外(Ultraviolet， UV)誘變育種， 是利用波長(zhǎng)為254 nm的紫外線能引起DNA結(jié)構(gòu)發(fā)生改變形成嘧啶二聚體， 尤其是胸腺嘧啶二聚體這一特點(diǎn)， 引起微生物遺傳性狀發(fā)生改變， 然后通過抗性藥物篩選出少數(shù)性狀優(yōu)良的突變株的過程[1]。之前報(bào)道用來精氨酸誘變育種的菌株主要有谷氨酸棒狀桿菌、鈍齒棒狀桿菌、枯草芽孢桿菌和黃色短桿菌， 所使用的抗性標(biāo)記物主要有D-精氨酸、L-刀豆氨酸、6-氮尿嘧啶、磺胺胍和精氨酸氧肟酸等[2]。然而這些菌株利用的氮源主要為有機(jī)氮源， 如: 牛肉膏、蛋白胨、酵母粗提物等。

集胞藻PCC 6803是單細(xì)胞藍(lán)藻， 能進(jìn)行光合自養(yǎng)生長(zhǎng)， 也能利用葡萄糖進(jìn)行混養(yǎng)、異養(yǎng)生長(zhǎng)[3]， 可利用硝酸鹽和亞硝酸鹽作為氮源， 合成自己所需的氨基酸等化合物[4]。在工業(yè)生產(chǎn)所釋放的煙氣中，氮氧化物(NOx)是造成酸雨、霧霾的元兇[5]。然而NOx可與水反應(yīng)形成硝酸根和亞硝酸根， 被藍(lán)藻利用。因此可以在集胞藻PCC 6803中選育高產(chǎn)精氨酸同時(shí)去除NOx的藻株。

在精氨酸誘變育種的抗性標(biāo)記物中， D-精氨酸、L-刀豆氨酸和精氨酸氧肟酸都是L-精氨酸的類似物， 而6-氮尿嘧啶是嘧啶堿基的類似物。在細(xì)胞內(nèi)L-精氨酸對(duì)自身合成途徑中的關(guān)鍵酶N-乙酰谷氨酸激酶有著反饋抑制作用[6]， 通過篩選抗L-精氨酸類似物的突變株， 可以獲得L-精氨酸反饋抑制減弱的突變株， 從而使細(xì)胞能大量積累精氨酸。氨甲酰磷酸是合成精氨酸和嘧啶的前體物， 受精氨酸和嘧啶堿基的積累阻遏， 當(dāng)二者存其一時(shí)， 發(fā)生部分阻遏； 當(dāng)二者共存時(shí)， 幾乎發(fā)生完全阻遏， 因此選育6-氮尿嘧啶抗性有利于氨甲酰磷酸的積累， 從而有利于精氨酸的合成[7]?；诖?， 本研究選擇D-精氨酸和6-氮尿嘧啶作為紫外誘變的抗性標(biāo)記物， 試圖在集胞藻PCC 6803中選育將硝酸鹽轉(zhuǎn)化為精氨酸的藻株， 將來可用于去除工業(yè)廢氣中的NOx。

1 材料與方法

1.1 藻株和培養(yǎng)條件

集胞藻PCC 6803野生型(wild type， wt)是由北京大學(xué)趙進(jìn)東教授贈(zèng)送， 集胞藻#13807是分泌精氨酸突變株。除初篩和復(fù)篩時(shí)培養(yǎng)基中NaNO3濃度為12 g/L外， 藻株的培養(yǎng)條件均為30℃、30 μE/(m2.s)持續(xù)光照下BG11培養(yǎng)基混養(yǎng)(1 g/L葡萄糖)培養(yǎng)。

1.2 藻株的紫外誘變

藻株紫外誘變的方法參考Meireles和Tillich的報(bào)道[8，9]。具體方法為: 用254 nm波長(zhǎng)的紫外光輻射對(duì)數(shù)期(A730=0.8)的細(xì)胞， 輻射一定時(shí)間后立即關(guān)掉紫外燈。接著在紅光(632 nm， 避免光修復(fù)[10])下用沒有任何抗性的BG11洗滌藻細(xì)胞一次， 1.5 mL培養(yǎng)基重懸后， 涂布在鋪了NC膜的沒有任何抗性的平板上。將所有平板用錫箔紙包住后在黑暗下放置1d后轉(zhuǎn)移NC膜到添加了相應(yīng)抗性標(biāo)記物的平板上， 30℃、30 μE/(m2.s)持續(xù)光照培養(yǎng)7—10d， 長(zhǎng)出單藻落后劃線， 用來后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

選擇最佳誘變時(shí)間的方法是: 每個(gè)輻射時(shí)間點(diǎn)取500 μL藻細(xì)胞稀釋10–4后取200 μL涂布平板， 將所有平板用錫箔紙包住后在黑暗下放置1d， 之后在30℃、30 μE/(m2.s)持續(xù)光照下培養(yǎng)7—10d， 待長(zhǎng)出單藻落后統(tǒng)計(jì)藻落數(shù)目， 計(jì)算致死率。假設(shè)某個(gè)輻射時(shí)間點(diǎn)的藻落數(shù)為n， 未經(jīng)輻射的藻落數(shù)為m， 則:致死率=(m–n)/m×100%。取致死率約為85%對(duì)應(yīng)的輻射時(shí)間為最佳誘變時(shí)間。

選擇抗性標(biāo)記物臨界濃度的方法是: 取對(duì)數(shù)期的藻細(xì)胞在含有不同濃度梯度的抗性標(biāo)記物培養(yǎng)基中培養(yǎng)， 每個(gè)濃度梯度設(shè)4個(gè)平行， 初始接種A730≈0.05， 培養(yǎng)4d后測(cè)OD730。以添加抗性標(biāo)記物作為實(shí)驗(yàn)組， 以不加作為對(duì)照組， 計(jì)算存活率。存活率=實(shí)驗(yàn)組A730/對(duì)照組A730×100%。取存活率約為3%對(duì)應(yīng)的濃度為抗性標(biāo)記物臨界濃度。

1.3 藻株游離氨基酸的提取

胞外游離氨基酸的提取方法為: 藻細(xì)胞經(jīng)4500×g離心后收集上清液并經(jīng)0.45 μm過濾器過濾后收集濾液部分用作細(xì)胞外游離氨基酸的分析。胞內(nèi)游離氨基酸的提取參考文獻(xiàn)[11]略有改動(dòng): 將離心后的藻細(xì)胞先用無(wú)菌水洗滌2次， 然后用80%的乙醇重懸， 于65℃水浴抽提3h后離心取上清， 經(jīng)0.45 μm過濾器過濾后濾液部分用作胞內(nèi)游離氨基酸分析。

1.4 比色法檢測(cè)精氨酸濃度

初篩采用比色法檢測(cè)精氨酸濃度[12]， 其方法是: 在Eppendorf管中依次加入40 g/L NaOH溶液、80 g/L甲萘酚正丙醇溶液和0.5 mL/L雙乙酰正丙醇溶液各300 μL， 再加入300 μL的待測(cè)樣品。震蕩搖勻后， 在30℃水浴15min后檢測(cè)OD540值， 根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線換算成精氨酸濃度， 計(jì)算每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量， 據(jù)此來評(píng)價(jià)藻株的產(chǎn)酸能力。每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量=(胞內(nèi)精氨酸濃度+胞外精氨酸濃度)/A730。

1.5 高效液相色譜(HPLC)分析精氨酸濃度

復(fù)篩采用HPLC檢測(cè)精氨酸濃度， 其方法參考文獻(xiàn)[13， 14]， 具體方法如下:

高效液相色譜儀是島津LC-20A型， 由兩臺(tái)LC-20A高壓泵， RF-10AXL熒光檢測(cè)器， CAPLUGS RC-11型注射進(jìn)樣閥， CTO-20A柱恒溫箱， CBM-20A系統(tǒng)控制器組成。色譜柱為安捷倫Zorbax Eclipse-AAA色譜柱(Agilent， USA)， 150 mm×4.6 mm， 粒徑3.5 μm。流動(dòng)相A: 40 mmol/L Na2HPO4pH 7.8； 流動(dòng)相B∶乙腈∶甲醇∶H2O (45∶45∶10v∶v∶v)。

色譜儀工作程序設(shè)置的總流量為2 mL/min， 運(yùn)行時(shí)間時(shí)26min。0—1.9min， B%(流動(dòng)相B流速的比例)為0； 1.9—18.1min， B%從0—57%；18.1—18.6min， B%從57%—100%； 18.6—22.3min，B%保持100%； 22.3—23.2min， B%從100%—0；23.2—26min， B%保持為0。檢測(cè)器的設(shè)置為0—16.8min， 激發(fā)光/發(fā)射光=340/450 nm； 16.8—26min， 激發(fā)光/發(fā)射光= 266/305 nm。柱溫箱設(shè)置溫度為40℃。

分析過程: 取待測(cè)樣品15 μL加入到75 μL的硼酸鹽緩沖液(pH 10.2)中， 振蕩混勻； 之后加入15 μL的鄰苯二甲醛衍生試劑(鄰苯二甲醛和3-巰基丙酸各10 mg/mL)， 振蕩混勻； 再加入15 μL的2.5 mg/mL 9-芴甲基氯甲酸酯衍生試劑， 振蕩混勻后加入960 μL的H2O充分混勻后， 經(jīng)0.45 μm過濾器過濾后用注射器吸取50 μL手動(dòng)進(jìn)樣檢測(cè)。

1.6 野生型及其突變株的生長(zhǎng)曲線

取對(duì)數(shù)期的細(xì)胞接種到50 mL無(wú)任何抗性的BG11培養(yǎng)基中， 在30℃、30 μE/(m2.s)持續(xù)光照條件下振蕩(100 r/min)混養(yǎng)培養(yǎng)， 藻細(xì)胞的初始接種濃度OD730為0.05。每個(gè)藻株作3個(gè)平行試驗(yàn)， 每天定時(shí)取樣測(cè)OD730， 繪制生長(zhǎng)曲線。

1.7 數(shù)據(jù)處理

數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel 2010和SPSS 17.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析、作圖等。

2 結(jié)果

2.1 篩選抗D-精氨酸突變株的結(jié)果

作者以集胞藻#13807為紫外誘變出發(fā)株， 檢測(cè)了不同輻射時(shí)間的致死率， 發(fā)現(xiàn)10—30s致死率急劇增加， 其中20—30s致死率為70%—90%， 40s以后藻細(xì)胞全部死亡。由于過高的致死率會(huì)導(dǎo)致藻株變異幅度大， 產(chǎn)生較多負(fù)突變株， 而太低的致死率又很難達(dá)到誘變效果， 因此選擇合適的誘變劑量，對(duì)獲得最佳的誘變效果極為重要。一般來說， 選擇致死率在75%—85%之間的誘變劑量較合適， 因此本研究選取25s作為集胞藻#13807的最佳誘變時(shí)間。

檢測(cè)集胞藻#13807耐受D-精氨酸的臨界濃度，如圖 1所示， 在D-精氨酸為0.6 g/L時(shí)藻細(xì)胞的存活率僅為5%， 表明此濃度的D-精氨酸已經(jīng)完全抑制了藻細(xì)胞的生長(zhǎng)。當(dāng)提高D-精氨酸濃度至0.8 g/L時(shí)藻細(xì)胞的存活率僅為3%， 因此本研究選擇0.8 g/L作為集胞藻#13807耐受D-精氨酸的臨界濃度。

圖 1 集胞藻#13807在不同濃度D-精氨酸培養(yǎng)條件下的存活率Fig. 1 The effect of different D-arginine concentrations on the survival rate of #13807

對(duì)集胞藻#13807經(jīng)紫外誘變得到的突變子先在含有0.8 g/L D-精氨酸的固體平板上劃線， 然后接種到含0.8 g/L D-精氨酸的液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)， 經(jīng)固體、液體培養(yǎng)基兩步抗性篩選后共得到173株用來初篩。對(duì)這173株突變株用比色法檢測(cè)每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量后， 選取了14株總精氨酸產(chǎn)量提高10倍左右的藻株進(jìn)行復(fù)篩， 經(jīng)過HPLC分析選取了產(chǎn)量最高的4株做了3次平行實(shí)驗(yàn)， 如圖 2所示，#13807-111是精氨酸產(chǎn)量顯著提高的突變株， 其每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量相比出發(fā)株提高了2.4倍。

2.2 篩選抗6-氮尿嘧啶突變株的結(jié)果

為了進(jìn)一步提高精氨酸產(chǎn)量， 作者對(duì)#13807-111進(jìn)行了第二輪紫外誘變。首先檢測(cè)了該藻株不同輻射時(shí)間的致死率， 結(jié)果發(fā)現(xiàn)在輻射時(shí)間僅為10s時(shí)致死率已經(jīng)達(dá)到了80%， 而到15s的時(shí)候藻細(xì)胞就全部死亡， 因此選擇10s作為第二輪的最佳誘變時(shí)間。

圖 2 集胞藻#13807及其突變株每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量Fig. 2 Total arginine production per OD730 of #13807 and its mutants

檢測(cè)#13807-111耐受6-氮尿嘧啶的臨界濃度，如圖 3所示， 當(dāng)6-氮尿嘧啶濃度為0.2 g/L時(shí)， 藻細(xì)胞存活率僅為4%， 表明此濃度的6-氮尿嘧啶已經(jīng)完全抑制了藻細(xì)胞的生長(zhǎng)， 因此本輪誘變選擇0.2 g/L作為#13807-111耐受6-氮尿嘧啶的臨界濃度。

圖 3 #13807-111在不同濃度6-氮尿嘧啶培養(yǎng)條件下的存活率Fig. 3 The effect of 6-azauracil on the survival rate of #13807-111

對(duì)#13807-111經(jīng)紫外誘變得到的突變子先在含有0.8 g/L D-精氨酸和0.2 g/L 6-氮尿嘧啶的固體平板上劃線， 然后接種到含0.8 g/L D-精氨酸和0.2 g/L 6-氮尿嘧啶的液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)， 經(jīng)固體、液體培養(yǎng)基兩步抗性篩選后共得到118株用來初篩。對(duì)這118株突變株用比色法檢測(cè)每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量后選取了14株產(chǎn)量提高3倍左右的藻株進(jìn)行復(fù)篩， 經(jīng)HPLC分析獲得了一株精氨產(chǎn)量有所提高的突變株#13807-111-55。

對(duì)野生型、#13807-111和#13807-111-55繪制了生長(zhǎng)曲線， 如圖 4所示， 結(jié)果表明突變株和野生型的生長(zhǎng)速率沒有顯著差別(P＞0.05)。

將出發(fā)藻株和兩輪誘變得到的突變株同批次培養(yǎng)， 保證培養(yǎng)條件一致: 所有的藻株都在NaNO3為12 g/L、葡萄糖1 g/L的BG11培養(yǎng)基中混養(yǎng)培養(yǎng)10d后HPLC檢測(cè)胞內(nèi)、胞外精氨酸產(chǎn)量， 結(jié)果如圖5所示， 每OD730值細(xì)胞， 集胞藻#13807和它的突變株胞內(nèi)精氨酸產(chǎn)量差異不顯著(P＞0.05)且都很低，然而它們的胞外精氨酸產(chǎn)量卻有顯著差別(P＜0.05):#13807-111和#13807-111-55的每OD730值細(xì)胞胞外精氨酸產(chǎn)量相比#13807分別提高了47.8倍和62.3倍，這表明本研究選育的抗D-精氨酸突變株#13807-111和抗D-精氨酸和6-氮尿嘧啶突變株#13807-111-55都是分泌精氨酸突變株。這兩株藻中， 對(duì)于每OD730值細(xì)胞， #13807-111的總精氨酸產(chǎn)量相比出發(fā)株集胞藻#13807有顯著提高(P＜0.05)， 而#13807-111-55的總精氨酸產(chǎn)量相比#13807-111只有略微提升(P＞0.05)， 表明篩選D-精氨酸抗性更有利于提高精氨酸產(chǎn)量， 而6-氮尿嘧啶抗性對(duì)提高精氨酸產(chǎn)量影響很小。雖然如此， 通過兩輪紫外誘變篩選抗D-精氨酸和6-氮尿嘧啶的突變株， 作者選育到了每OD730值細(xì)胞胞外精氨酸產(chǎn)量提高62.3倍， 總精氨酸產(chǎn)量提高6.0倍的藻株#13807-111-55， 該藻株是一株分泌精氨酸突變株， 每OD730值細(xì)胞的胞外和總精氨酸產(chǎn)量分別達(dá)到(0.76±0.1) mg/(L.OD730)和(0.82±0.08) mg/(L.OD730)。

圖 4 野生型和突變株在30℃、30 μE/(m2.s)混養(yǎng)條件下生長(zhǎng)曲線Fig. 4 Growth curves of the wild-type and mutants at 30℃ and 30 μE/(m2.s) under mixotrophic growth conditions

圖 5 集胞藻#13807及其突變株每OD730值細(xì)胞精氨酸產(chǎn)量Fig. 5 Arginine production per OD730 of #13807 and its mutants

3 討論

#13807-111是集胞藻#13807經(jīng)紫外輻射25s得到的突變株， 然而檢測(cè)該藻株不同輻射時(shí)間的致死率， 發(fā)現(xiàn)在輻射時(shí)間僅為10s時(shí)致死率已經(jīng)達(dá)到了80%， 而到15s的時(shí)候藻細(xì)胞就全部死亡， 造成這一結(jié)果的可能原因是紫外誘變對(duì)#13807-111某些基因或者位點(diǎn)造成了損傷， 使得它對(duì)紫外輻射更加敏感了， 在很小劑量的紫外輻射條件下都有可能造成藻細(xì)胞死亡。這提示我們?cè)诙啻巫贤庹T變過程中，需要對(duì)每次的出發(fā)株測(cè)試致死率， 從而確定最佳的誘變時(shí)間。

D-精氨酸是L-精氨酸的類似物， 通過篩選抗D-精氨酸的藻株可以選育到精氨酸反饋抑制減弱的突變株， 從而提高精氨酸產(chǎn)量。本研究第一輪誘變通過篩選抗D-精氨酸突變株選育到了精氨酸產(chǎn)量顯著提高的突變株#13807-111， 其每OD730值細(xì)胞總精氨酸產(chǎn)量相比出發(fā)株提高了6.0倍， 表明在藍(lán)藻中篩選D-精氨酸抗性能夠顯著提高精氨酸產(chǎn)量。此外該藻株和#13807-111-55的精氨酸主要分泌到了胞外， 表明這兩株突變株都是分泌精氨酸突變株，這可能是因?yàn)樽贤庹T變?cè)斐傻耐蛔儾粌H減弱了L-精氨酸的反饋抑制使得總精氨酸產(chǎn)量提高， 而且也改變了細(xì)胞膜的通透性使精氨酸分泌到胞外。

6-氮尿嘧啶是嘧啶堿基的類似物， 而嘧啶堿基阻遏氨甲酰磷酸的合成從而影響精氨酸的合成[7]，因此選育6-氮尿嘧啶抗性有利于精氨酸的合成。之前有報(bào)道稱在枯草芽孢桿菌中， Kato等[15]利用亞硝基胍誘變， 選育到了耐受0.1 g/L 6-氮尿嘧啶的突變株AAr-9， 它的精氨酸產(chǎn)量相比出發(fā)菌株提高了1.7倍， 達(dá)到28 g/L。在本研究中， 利用D-精氨酸抗性選育到了精氨酸產(chǎn)量顯著提高的藻株， 而利用6-氮尿嘧啶抗性選育卻并沒有成功。這可能是因?yàn)樵诳莶菅挎邨U菌中， 通過選育6-氮尿嘧啶抗性來提高精氨酸產(chǎn)量的方法， 在藍(lán)藻中不一定適用， 需要選擇其他的抗性標(biāo)記物來提高精氨酸產(chǎn)量。

1991年， Aruma等[16]對(duì)谷氨酸棒狀桿菌進(jìn)行NTG處理， 獲得了一株精氨酸高產(chǎn)菌H-7096， 經(jīng)離子交換柱可獲得52.8 g/L的精氨酸粗結(jié)晶。2003年，蘇令鳴等[17]以黃色短桿菌為出發(fā)株經(jīng)NTG誘變和選育， 獲得高產(chǎn)精氨酸菌株AN78， 在20 L發(fā)酵罐中培養(yǎng)4d， 產(chǎn)酸率可達(dá)61.1 g/L。本研究#13807-111-55是精氨酸產(chǎn)量顯著提高的突變株， 其胞外和總的精氨酸產(chǎn)量分別為(3.19±0.72)、(3.44±0.65) mg/L，遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于工業(yè)上精氨酸發(fā)酵菌的產(chǎn)量， 因此需要更多的研究來進(jìn)一步提高藍(lán)藻精氨酸產(chǎn)量。首先， 本研究選育抗6-氮尿嘧啶突變株并沒有顯著提高精氨酸產(chǎn)量， 因此可以通過選育抗其他藥物， 例如抗精氨酸氧肟酸、抗磺胺胍、抗L-刀豆氨酸等的突變株來進(jìn)一步提高精氨酸產(chǎn)量。其次， 由于#13807-111-55能利用葡萄糖異養(yǎng)生長(zhǎng)， 因而可以通過不斷優(yōu)化培養(yǎng)條件， 達(dá)到高密度培養(yǎng)的目的， 提高精氨酸產(chǎn)量。第三， #13807-111-55是精氨酸分泌突變株， 能利用硝酸鹽和亞硝酸鹽合成精氨酸并分泌到培養(yǎng)液中， 便于精氨酸的提取純化。因此#13807-111-55是一株潛在的用于生物脫硝同時(shí)分泌精氨酸的藻株。

參考文獻(xiàn):

[1] Miller J H. Mutagenic specificity of ultraviolet light [J].Journal of Molecular Biology， 1985， 182(1): 45—65

[2] Wang X， Tao W Y， Sun Z H，et al. Research progress of L-arginine fermentation [J].Industrial Microbiology，2000， 30(4): 50—54 [王霞， 陶文沂， 孫志浩 等. L-精氨酸發(fā)酵研究進(jìn)展. 工業(yè)微生物， 2000， 30(4): 50—54]

[3] Kong R Q， Xu X D， Hu Z Y. A TPR-family membrane protein gene is required for light-activated heterotrophic growth of the cyanobacteriumSynechocystissp. PCC 6803 [J].FEMS Microbiology Letters， 2003， 219(1):75—79

[4] Harano Y， Suzuki I， Maeda S I，et al. Identifi cation and nitrogen regulation of the cyanase gene from the cyanobacteriaSynechocystissp. strain PCC 6803 andSynechococcussp. strain PCC 7942 [J].Journal of Bacteriology， 1997， 179(18): 5744—5750

[5] Niu H and Leung D Y C. A review on the removal of nitrogen oxides from polluted flow by bioreactors [J].Enviornmental Reviews， 2010， 18(1): 175—189

[6] Xu Y， Liang Z Y， Legrain C，et al. Evolution of arginine biosynthesis in the bacterial domain: novel gene-enzyme relationships from psychrophilicMoritellastrains (Vibrionaceae) and evolutionary significance ofN-alpha-acetyl ornithinase [J].Journal of Bacteriology， 2000， 182(6):1609—1615

[7] Chen X L， Xu Z H， Tao W Y. Studies on the genetic engineering strains producing L-arginine [J].Food and Fer-mentation Industries， 2003， 29(12): 97—102 [陳雪嵐， 許正宏， 陶文沂. 產(chǎn)L-精氨酸基因工程菌的研究. 食品與發(fā)酵工業(yè)， 2003， 29(12): 97—102]

[8] Meireles L A， Guedes A C， Malcata F X. Increase of the yields of eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids by the microalgaPavlova lutherifollowing random mutagenesis [J].Biotechnology and Bioengineering， 2003，81(1): 50—55

[9] Tillich U M， Lehmann S， Schulze K，et al. The optimal mutagen dosage to induce point-mutations inSynechocystissp. PCC6803 and its application to promote temperature tolerance [J].PLoS One， 2012， 7(11): 1—8

[10] Lucaslledo J I， Lynch M. Evolution of mutation rates:phylogenomic analysis of the photolyase/cryptochrome family [J].Molecular Biology and Evolution， 2009， 26(5):1143—1153

[11] Eisenhut M， Kahlon S， Hasse D，et al. The plant-like C2 glycolate cycle and the bacterial-like glycerate pathway cooperate in phosphoglycolate metabolism in cyanobacteria [J].Plant Physiology， 2006， 142(1): 333—342

[12] Hao G， Qian H. Study on detection methods of L-arginine in fermentation broth [J].Science and Technology of Food Industry， 2005， 2: 184—186 [郝剛， 錢和. 發(fā)酵液中L-精氨酸定量檢測(cè)方法的研究. 食品工業(yè)科技分析檢測(cè)， 2005， 2: 184—186]

[13] Herbert P， Santos L， Alves A. Simultaneous quantification of primary， secondary amino acids， and biogenic amines in musts and wines using OPA/3-MPA/FMOC-Cl fluorescent derivatives [J].Journal of Food Science，2002， 66(9): 1319—1325

[14] Henderson J W， Ricker R D， Bidlingmeyer B A，et al.Rapid， accurate， sensitive， and reproducible HPLC analysis of amino acids: Amino acid analysis using Zorbax Eclipse-AAA columns and the Agilent 1100 HPLC. Agilent Technologies Inc， Publication Number 5980-1193E，2000， 1-10 http://www.chem.agilent.com/Library/chromatograms/59801193.pdf

[15] Kato J， Kisumi M， Takagi T，et al. Increase in arginine and citrulline production by 6-azauracil-resistant mutants ofBacill subtilis[J].Applied & Environmental Microbiology， 1977， 34(6): 689—694

[16] Azuma T， Aoyagi S， Nakanishi T. Process for producing L-arginine [P]. United States Patent: US5034319， 1991-07-23

[17] Su L M， Wang Y M， Li S. Fermentative production of L-arginine by mutant AN78 [J].Industrial Microbiology，2003， 33(2): 1—3 [蘇令鳴， 王宜敏， 李爽. 黃色短桿菌變異株AN78的發(fā)酵生產(chǎn)L-精氨酸的研究. 工業(yè)微生物，2003， 33(2): 1—3]