蔡榮, 郭賽男, 鄭家浪
浙江海洋大學(xué) 海洋科學(xué)學(xué)院,舟山 316000
鎘(Cd)是非必需金屬元素,即使很低劑量也能對(duì)人類(lèi)和動(dòng)物產(chǎn)生巨大的毒性[1]。在正常的淡水中,Cd2+的濃度介于10到500 ng·L-1之間[2],然而,在我國(guó)的灤河流域Cd2+的濃度為1.120~4.474 μg·L-1 [3],在武漢東湖西南湖區(qū)為8 μg·L-1[4],在龍江重污染河段甚至達(dá)到800 μg·L-1[5]。目前,Cd已經(jīng)成為局部水生生態(tài)系統(tǒng)的主要污染源。
Cd主要通過(guò)誘導(dǎo)氧化應(yīng)激和免疫毒性對(duì)魚(yú)類(lèi)產(chǎn)生廣泛的毒性影響[4]。因此,搜尋一種合適的抗氧化劑或者免疫增強(qiáng)劑以提高魚(yú)類(lèi)對(duì)金屬的耐受性成為目前研究的熱點(diǎn)。例如,水體中加入腐殖酸或者飼料添加肌醇可以明顯增強(qiáng)魚(yú)類(lèi)抗氧化和免疫能力,緩解金屬暴露誘導(dǎo)的損傷[7-8]。發(fā)光二極管(LED)具有能耗低、發(fā)出光單色性高和壽命長(zhǎng)等優(yōu)點(diǎn)。盧菁菁和李敦海[9]的研究表明,不同光質(zhì)LED能影響念珠藻葛仙米生長(zhǎng)并對(duì)生理生化產(chǎn)生顯著影響。Villamizar等[10]暗示藍(lán)LED光 (LDB) 能促進(jìn)鱸魚(yú)的生長(zhǎng)和發(fā)育。其他的一些有關(guān)魚(yú)類(lèi)的研究證明,LDB能緩解饑餓或者高溫誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激[11-12]。但是,到目前為止,沒(méi)有任何研究報(bào)道LDB預(yù)暴露對(duì)隨后金屬暴露的正面影響。最近我們課題組的幾項(xiàng)研究表明,藍(lán)LEDs(LDB)不僅能促進(jìn)魚(yú)類(lèi)的生長(zhǎng)發(fā)育,而且能增強(qiáng)免疫力和緩解氧化應(yīng)激[13-15]。因此,當(dāng)前研究的假設(shè)是LDB預(yù)暴露可以緩解Cd暴露引起的氧化性損傷和免疫毒性。
魚(yú)類(lèi)依賴(lài)抗氧化防御系統(tǒng)和先天免疫系統(tǒng)應(yīng)對(duì)環(huán)境威脅。在抗氧化系統(tǒng)中,超氧化物歧化酶(SOD)和過(guò)氧化氫酶(CAT)是其重要指標(biāo)。在免疫系統(tǒng)中,環(huán)氧合酶-2 (COX-2)和誘導(dǎo)型一氧化氮合成酶(iNOS)都是炎癥過(guò)程中的早期反應(yīng)基因。一方面,這些基因受轉(zhuǎn)錄因子控制。例如,核轉(zhuǎn)錄相關(guān)因子2(Nrf2)和核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)調(diào)控著相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄,在金屬誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激和免疫毒性過(guò)程中起著至關(guān)重要的作用[6, 16]。另一方面,這些轉(zhuǎn)錄因子又受其抑制子調(diào)節(jié)。抑制因子Kelch樣ECH聯(lián)合蛋白1(Keap1)和抑制蛋白激酶(IκBα)分別結(jié)合Nrf2 和 NF-κB,使其處于失活狀態(tài)。當(dāng)機(jī)體處于應(yīng)激狀態(tài),Keap1和IκBα磷酸化導(dǎo)致抑制子從轉(zhuǎn)錄因子解離,進(jìn)而誘導(dǎo)Nrf2和NF-κB的轉(zhuǎn)錄激活。本研究以斑馬魚(yú)為研究模型,分析急性Cd暴露對(duì)斑馬魚(yú)抗氧化系統(tǒng)和免疫反應(yīng)的影響,評(píng)估藍(lán)LEDs (LDB)預(yù)暴露可能的緩解作用,探討可能的分子機(jī)制,為處理金屬毒性提供策略措施,為魚(yú)類(lèi)健康養(yǎng)殖提供理論依據(jù)。
AB系斑馬魚(yú)于室內(nèi)預(yù)暴露2周。相同規(guī)格的斑馬魚(yú)(初始體重(0.19 ± 0.02) g, mean ± SEM)為2組,分別用白熾燈和LDB處理4周 (輻照度為0.9 W·m-2)。4周后每組再分為2個(gè)小組,分別在白熾燈下用0和0.97 mg·L-1Cd2+的水體處理4 d。共有4個(gè)處理,每個(gè)處理4個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)80尾魚(yú),包括(1) 正常對(duì)照組;(2) Cd處理組:?jiǎn)为?dú)0.97 mg·L-1Cd2+暴露組;(3)LDB預(yù)處理組;(4) LDB預(yù)處理+Cd暴露組。Cd濃度和輻照度的設(shè)定參照我們近期的研究[6, 14]。試驗(yàn)期間每天早上7點(diǎn)換水100%,隨后加入Cd的母液到理論濃度。斑馬魚(yú)每天按照體重的1%投喂量分別在早上8點(diǎn)、下午3點(diǎn)和晚上9點(diǎn)投喂。試驗(yàn)期間定期檢測(cè)水質(zhì):水溫(25.8 ± 0.4) ℃,光周期12 h L:12 h D,溶解氧(7.46 ± 0.34) mg·L-1,pH值7.49 ± 0.17。對(duì)照組的Cd濃度為0,Cd處理組水體Cd濃度為(0.97 ± 0.04) mg·L-1。采用火焰原子吸收光譜法(FAAS)測(cè)量金屬濃度。
取樣之前,魚(yú)禁食24 h,然后使用0.02%的MS-222麻醉。隨機(jī)取魚(yú)在冰袋上進(jìn)行肝臟和卵巢樣本采集。樣本采集后立即放入凍存管中,然后用液氮速凍,最后置-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
肝臟和卵巢組織用0.1 mol·L-1的磷酸鹽緩沖溶液(PBS, pH 7.4)在玻璃勻漿器中冰浴勻漿。勻漿液離心(20 min、5 000 r·min-1、4 ℃)后取上清液,立即進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)的測(cè)定。
采用黃嘌呤氧化酶法(羥胺法)測(cè)定Cu/Zn-SOD的活力;采用可見(jiàn)光分光光度計(jì)法測(cè)定CAT活力;采用精氨酸轉(zhuǎn)化法測(cè)定iNOS活性;采用放射免疫法測(cè)定COX-2活性[17];采用硫代巴比妥酸法測(cè)定MDA 含量;采用硝酸還原酶法測(cè)定NO含量;采用考馬斯亮蘭法測(cè)定樣品總蛋白。除COX-2外所有指標(biāo)的測(cè)定采用南京建成試劑盒,具體操作按試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。實(shí)驗(yàn)采用4次生物學(xué)重復(fù)和2次技術(shù)性重復(fù)。
組織總RNA的提取和cDNA第一鏈的合成參照我們最近的研究[16]。采用Applied Biosystems Prism 7500實(shí)時(shí)定量PCR儀,參照SYBR?Premix Ex TaqTM(Takara) 試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行qRT-PCR。引物序列詳見(jiàn)表1。每對(duì)引物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)只有單一條帶,不同的引物在擴(kuò)增效率上沒(méi)有顯著差異。以β-Actin和GAPDH幾何平均數(shù)作為相對(duì)定量?jī)?nèi)參[16],采用2-ΔΔCt法分析數(shù)據(jù),計(jì)算目的基因的相對(duì)表達(dá)量。
本實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 19 統(tǒng)計(jì)分析軟件進(jìn)行方差分析和Duncan多重比較。數(shù)據(jù)進(jìn)一步統(tǒng)計(jì)檢驗(yàn)前用單樣本Kolmogorov Smirnow檢驗(yàn)和Levene方差齊次性檢驗(yàn)分別確定其分布型和方差同質(zhì)性。數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,顯著度水平為0.05。
與對(duì)照組相比,急性Cd2+暴露組MDA和NO的含量在肝臟和卵巢中顯著升高(P < 0.05) (圖1)。LDB預(yù)暴露組MDA和NO的含量在肝臟和卵巢中沒(méi)有顯著變化(P > 0.05)。在LDB預(yù)暴露+Cd2+暴露組中,MDA和NO的含量在卵巢中沒(méi)有顯著變化(P > 0.05),在肝臟中仍處于較高的水平(P < 0.05)。
與對(duì)照組相比,急性Cd2+暴露導(dǎo)致了肝臟Cu/Zn-SOD和CAT的酶活和表達(dá)的顯著下降 (P < 0.05) (圖2)。Cd2+暴露也導(dǎo)致卵巢CAT的酶活和表達(dá)以及Cu/Zn-SOD的表達(dá)顯著上升(P < 0.05)。在LDB預(yù)暴露+Cd2+暴露組中,Cu/Zn-SOD和CAT在肝臟中的表達(dá)水平以及在卵巢中的表達(dá)和活性水平維持在正常水平(P > 0.05),并且在肝臟中的酶活顯著上升(P < 0.05)。除了能誘導(dǎo)肝臟CAT的表達(dá)升高外(P < 0.05),LDB預(yù)暴露不能顯著影響以上指標(biāo)(P > 0.05)。
與對(duì)照組相比,急性Cd2+暴露導(dǎo)致了肝臟COX-2和iNOS的酶活和表達(dá)的顯著上升 (P < 0.05),也導(dǎo)致卵巢COX-2和iNOS的酶活顯著上升(P < 0.05),但并不顯著影響卵巢COX-2和iNOS的表達(dá)(P > 0.05) (圖2)。在LDB預(yù)暴露+Cd2+暴露組的肝臟中,COX-2和iNOS的表達(dá)恢復(fù)到對(duì)照水平(P > 0.05),但是COX-2和iNOS的酶活仍顯著上升(P < 0.05)。在LDB預(yù)暴露+Cd2+暴露組的卵巢中,COX-2和iNOS的酶活恢復(fù)到對(duì)照水平(P > 0.05),但是COX-2的表達(dá)水平仍較高(P < 0.05)。除了能誘導(dǎo)肝臟COX-2的表達(dá)下降外(P < 0.05),LDB預(yù)暴露不能顯著影響以上指標(biāo)(P > 0.05)。
與對(duì)照組相比,急性Cd2+暴露組肝臟中Nrf2、Keap1a、Keap1b、NF-κB和IκBαa的表達(dá)水平顯著上升(圖4A) (P < 0.05)。在Cd2+暴露組卵巢中Nrf2和NF-κB的表達(dá)增加,Keap1a和IκBαa的表達(dá)減少(圖4B)(P < 0.05)。在LDB預(yù)暴露+Cd2+暴露組的肝臟中Nrf2、Keap1a、Keap1b、NF-κB和IκBαa的表達(dá)恢復(fù)到正常水平(P > 0.05),IκBαa的表達(dá)水平顯著增加(P < 0.05)。在LDB預(yù)暴露+Cd2+暴露組的卵巢中Nrf2、Keap1a和NF-κB的表達(dá)恢復(fù)到正常水平(P > 0.05),Keap1b和IκBαa的表達(dá)水平顯著增加(P < 0.05)。除減少肝臟NF-κB的表達(dá)和增加IκBαa的表達(dá)以及增加卵巢IκBαb的表達(dá)外(P < 0.05),LDB預(yù)暴露不能顯著影響以上指標(biāo)(P > 0.05)。
圖2 LDB預(yù)暴露對(duì)急性Cd2+暴露斑馬魚(yú)肝臟和卵巢抗氧化酶活性和表達(dá)的影響注: *與對(duì)照相比, P < 0.05。Fig. 2 Effects of LDB acclimation on mRNA levels and activity of antioxidant enzymes in liver and ovary of zebrafish acutely exposed to Cd2+Note: * denotes significant differences (P<0.05) with control group.
圖3 LDB預(yù)暴露對(duì)急性Cd2+暴露斑馬魚(yú)肝臟和卵巢免疫相關(guān)酶活性和表達(dá)的影響注: *與對(duì)照相比, P < 0.05。Fig. 3 Effects of LDB acclimation on mRNA levels and activity of enzymes related to immunity in liver and ovary of zebrafish acutely exposed to Cd2+Note: * denotes significant differences (P<0.05) with control group.
圖4 LDB預(yù)暴露對(duì)急性Cd2+暴露斑馬魚(yú)肝臟(A)和卵巢(B)轉(zhuǎn)錄因子及其抑制因子表達(dá)的影響注:*與對(duì)照相比,P < 0.05。Fig. 4 Effects of LDB acclimation on mRNA levels of transcription factors and their inhibitors in liver (A) and ovary (B) of zebrafish acutely exposed to Cd2+Note: * denotes significant differences (P<0.05) with control group.
如表2所示,Nrf2的表達(dá)與其目的基因Cu/Zn-SOD和CAT的表達(dá)在卵巢中呈現(xiàn)顯著的正相關(guān)性,但是在肝臟中呈現(xiàn)顯著的負(fù)相關(guān)性。Nrf2的表達(dá)與其抑制因子Keap1a和Keap1b的表達(dá)在肝臟中呈現(xiàn)顯著的正相關(guān)性。在肝臟中,NF-κB的表達(dá)與其目的基因iNOS和COX-2顯示顯著的正相關(guān)性,與IκBαb的表達(dá)呈現(xiàn)顯著的負(fù)相關(guān)。在卵巢中,NF-κB與IκBαa的表達(dá)呈現(xiàn)顯著的負(fù)相關(guān)。
Cd主要通過(guò)氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)對(duì)機(jī)體產(chǎn)生損傷。MDA是脂質(zhì)過(guò)氧化的指標(biāo),反應(yīng)了氧化應(yīng)激誘導(dǎo)的細(xì)胞功能障礙[18-20]。NO作為魚(yú)類(lèi)免疫系統(tǒng)的一個(gè)重要信號(hào)分子,能誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)并且在魚(yú)類(lèi)免疫系統(tǒng)損傷和細(xì)胞凋亡中起著重要作用[21]。本研究中,Cd暴露顯著提高了斑馬魚(yú)肝臟和卵巢MDA和NO水平,表明Cd暴露導(dǎo)致了氧化性損傷和免疫毒性。該結(jié)果和我們近期的研究相符[6, 13, 16]。此外,我們的研究揭示了LDB預(yù)暴露具有緩解Cd毒性的作用。例如,在Cd暴露+ LDB預(yù)暴露組中,斑馬魚(yú)卵巢MDA和NO的含量恢復(fù)到正常水平。盡管在Cd暴露+ LDB預(yù)暴露組肝臟中MDA和NO含量相對(duì)于對(duì)照仍處于較高水平,但是絕大部分氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)相關(guān)基因的表達(dá)恢復(fù)到正常水平。當(dāng)前的研究結(jié)果表明:早期LDB暴露的斑馬魚(yú)在后期能更好地抵御外源刺激物誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激和免疫毒性。Bayarri等[22]的研究表明藍(lán)光能有效地誘導(dǎo)魚(yú)類(lèi)松果體和視網(wǎng)膜褪黑素的產(chǎn)生。產(chǎn)生的褪黑素經(jīng)由血液循環(huán)到達(dá)肝臟和卵巢,可能緩解應(yīng)激的負(fù)面影響[23]。另一方面,LDB預(yù)暴露很有可能導(dǎo)致了細(xì)胞防御機(jī)制的提前動(dòng)員使之能迅速地響應(yīng)應(yīng)激反應(yīng)[24]。
金屬暴露會(huì)干擾線粒體的功能,產(chǎn)生更多的活性氧(ROS),進(jìn)而形成氧化應(yīng)激[25]。生物體在進(jìn)化過(guò)程中形成了抗氧化防御系統(tǒng)以抵御ROS的損傷。在抗氧化系統(tǒng)中,SOD是一種重要的抗氧化性酶類(lèi),能夠催化超氧陰離子發(fā)生歧化反應(yīng),解除超氧陰離子對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生的毒害作用[26]。CAT是生物氧化中的末端氧化酶,能分解生物體某些代謝物需氧脫氫后所產(chǎn)生的對(duì)機(jī)體有害物質(zhì)的一種酶,具有一定的解毒功能[27]。本研究中,卵巢Cu/Zn-SOD和CAT的表達(dá)以及CAT的活性在單獨(dú)Cd暴露條件下顯著上升,表明抗氧化系統(tǒng)被激活。相似地,斑馬魚(yú)胚胎在115 μg·L-1Cd的水體中暴露4 d,Cu/Zn-SOD和CAT的表達(dá)和Cu/Zn-SOD的活性增加[2],在570 μg·L-1Cd的水體中暴露4 h,CAT的表達(dá)升高[28]。Wang等[29]研究顯示河豚在5 mg·L-1Cd的水體中暴露4 h,肝臟SOD活性增加。然而,抗氧化系統(tǒng)的激活可能并不足以清除過(guò)量的ROS,從而導(dǎo)致卵巢脂質(zhì)過(guò)氧化水平顯著增加。過(guò)量的ROS會(huì)增加氧化性損傷風(fēng)險(xiǎn),反過(guò)來(lái)降低肝臟抗氧化酶的活性[30]。在Cd暴露+LDB預(yù)暴露條件下,Cu/Zn-SOD和CAT在肝臟中的表達(dá)以及在卵巢中的活性和表達(dá)都恢復(fù)到正常水平,在肝臟中的酶活大幅增加。以上的結(jié)果表明,LDB預(yù)暴露有助于緩和Cd誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激。氧化還原的平衡是機(jī)體行使正常免疫反應(yīng)的前提[31]。iNOS和COX-2是炎癥響應(yīng)過(guò)程中的早期基因,被認(rèn)為炎癥標(biāo)記物。在炎癥反應(yīng)模型中,iNOS和COX-2往往被協(xié)同誘導(dǎo)[32]。在Cd暴露組中,iNOS和COX-2在卵巢中的表達(dá)和酶活都顯著上升,表明了Cd引起了強(qiáng)烈的炎癥反應(yīng)。LDB預(yù)暴露緩解了這些指標(biāo)的過(guò)度增加,表明LDB預(yù)暴露具有抵抗Cd誘導(dǎo)的炎癥的作用。相反,在Cd暴露+LDB預(yù)暴露組的肝臟中,iNOS和COX-2的酶活相對(duì)于對(duì)照組仍處于較高水平,暗示LDB預(yù)暴露在肝臟中并沒(méi)有緩解炎癥的作用。然而,我們注意到的是,LDB預(yù)暴露導(dǎo)致Cd誘導(dǎo)的iNOS和COX-2的表達(dá)恢復(fù)到正常水平。我們猜想從mRNA水平到蛋白質(zhì)或者活性水平,存在一個(gè)時(shí)間效應(yīng)。這可能導(dǎo)致盡管iNOS和COX-2的mRNA水平不變,但是它們的活性仍處于較高水平。
表2 轉(zhuǎn)錄因子與其目的基因及其抑制因子之間的相關(guān)性分析Table 2 Correlation coefficients between mRNA levels of transcription factors and their target genes and inhibitors
Cd的毒性和ROS的大量聚集有關(guān)。在Cd暴露組中,組織過(guò)高的脂質(zhì)過(guò)氧化水平反映了大量ROS的形成。相應(yīng)地,ROS含量的增加能通過(guò)ROS/Nrf2和ROS/NF-κB信號(hào)通路分別激活抗氧化和炎癥反應(yīng)[33-34]。在Cd暴露+LDB預(yù)暴露條件下,斑馬魚(yú)肝臟和卵巢中Nrf-2和NF-κB的表達(dá)水平恢復(fù)到正常水平,表明LDB預(yù)暴露對(duì)Cd誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)具有改善作用。在這過(guò)程中,卵巢Keap1b和IkBαa和肝臟IkBαa的表達(dá)水平升高。這將有助于形成反饋抑制從而控制Nrf2和NF-κB的豐度[35]。Nrf-2結(jié)合抗氧化基因的啟動(dòng)子區(qū)的ARE序列來(lái)激活下游基因轉(zhuǎn)錄[36]。NF-κB調(diào)控大量炎癥反應(yīng)相關(guān)基因的表達(dá)[37]。相應(yīng)地,卵巢Nrf-2與其目的基因(Cu/Zn-SOD和CAT),肝臟NF-κB與其目的基因(iNOS和COX-2)均顯著正相關(guān)。然而,我們也可以注意到,肝臟Nrf-2與其目的基因,卵巢NF-κB與其目的基因沒(méi)有顯著的相關(guān)性。這可能涉及組織特異性的調(diào)節(jié)機(jī)制。也有可能Nrf2或者NF-κB的蛋白活性而不是它們的轉(zhuǎn)錄水平?jīng)Q定了下游基因的誘導(dǎo)表達(dá)。在后續(xù)的研究過(guò)程中,我們將進(jìn)一步驗(yàn)證我們的假設(shè)。
總之,當(dāng)前的研究結(jié)果表明,急性Cd暴露誘導(dǎo)了斑馬魚(yú)肝臟和卵巢氧化應(yīng)激和免疫毒性,而LDB預(yù)暴露可以起到緩解作用。這個(gè)過(guò)程可能涉及Nrf2和NF-κB信號(hào)通路及其誘導(dǎo)的下游基因表達(dá)和相關(guān)酶的活性。當(dāng)前的研究將為處理環(huán)境因子導(dǎo)致魚(yú)類(lèi)的毒性提供新的預(yù)防措施,為促進(jìn)魚(yú)類(lèi)的健康養(yǎng)殖提供新的思路和理論依據(jù)。
參考文獻(xiàn)(References):
[1]史慧勤, 張利軍, 苑曉燕, 等. 氯化鎘暴露對(duì)斑馬魚(yú)幼魚(yú)神經(jīng)行為毒性作用[J]. 生態(tài)毒理學(xué)報(bào), 2013, (8)8: 374-380
Shi H Q, Zhang L J, Yuan X Y, et al. Toxic effects of cadmium chloride exposure on neurobehavior of zebrafish larvae [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2013, (8)8: 374-380 (in Chinese)
[2]Jin Y, Liu Z, Fang L, et al. Embryonic exposure to cadmium (II) and chromium (VI) induce behavioral alterations, oxidative stress and immunotoxicity in zebrafish (Danio rerio) [J]. Neurotoxicology and Teratology, 2015, 48: 9-17
[3]李永麗, 劉靜玲. 灤河流域不同時(shí)空水環(huán)境重金屬污染健康風(fēng)險(xiǎn)評(píng)價(jià)[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào), 2009, 28: 1177-1184
Li Y L, Liu J L. Health risk assessment on heavy metal pollution in the water environment of Luan River [J]. Journal of Agro-Environment Science, 2009, 28: 1177-1184 (in Chinese)
[4]何玲玲, 陳正洪. 武漢市水環(huán)境重金屬污染的監(jiān)測(cè)[J]. 環(huán)境科學(xué)與技術(shù), 2007, 30: 41-44
He L L, Chen Z H. Monitoring of heavy metal pollution in water environment of Wuhan [J]. Environmental Science and Technology, 2007, 30: 41-44 (in Chinese)
[5]董璟琦, 張紅振, 王金南, 等. 龍江河突發(fā)環(huán)境事件河流鎘污染化學(xué)形態(tài)模擬[J]. 中國(guó)環(huán)境科學(xué), 2015, 35: 3046-3052
Dong J Q, Zhang H Z, Wang J N, et al. Modeling of cadmium speciation in Longjiang River during an emergent environmental incident [J]. China Environmental Science, 2015, 35: 3046-3052 (in Chinese)
[6]Zheng J L, Yuan S S, Wu C W, et al. Acute exposure to waterborne cadmium induced oxidative stress and immunotoxicity in the brain, ovary and liver of zebrafish (Danio rerio) [J]. Aquatic Toxicology, 2016, 180: 36-44
[7]Meinelt T, Playle R C, Pietrock M, et al. Interaction of cadmium toxicity in embryos and larvae of zebrafish (Danio rerio) with calcium and humic substances [J]. Aquatic Toxicology, 2001, 54: 205-215
[8]Jiang W D, Liu Y, Jiang J, et al. Copper exposure induces toxicity to the antioxidant system via the destruction of Nrf2/ARE signaling and caspase-3-regulated DNA damage in fish muscle: Amelioration by myo-inositol [J]. Aquatic Toxicology, 2015, 159: 245-255
[9]盧菁菁, 李敦海. 發(fā)光二極管光質(zhì)對(duì)念珠藻葛仙米生長(zhǎng)及生理生化特性的影響[J]. 水生生物學(xué)報(bào), 2014, 38: 257-261
Lu J J, Li D H. Effect of light-emitting diode light quality on the growth and physiological and biochemical characteristics of Nostoc sphaerpides [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2014, 38: 257-261 (in Chinese)
[10]Villamizar N, Garcia-Alcazar A, Sanchez-Vazquez F. Effect of light spectrum and photoperiod on the growth, development and survival of European sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae [J]. Aquaculture, 2009, 292: 80-86
[11]Choi C Y, Shin H S, Choi Y J, et al. Effect of LED light spectra on starvation-induced oxidative stress in the cinnamon clownfish Amphiprion melanopus [J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular and Integrative Physiology, 2012, 163: 357-363
[12]Kim N N, Choi Y J, Shin H S, et al. The effect of LED light spectra on antioxidant system by thermal stress in goldfish, Carassius auratus [J]. Molecular and Cellular Toxicology, 2014, 10: 47-58
[13]Yuan S S, Lv Z M, Zhu A Y, et al. Negative effect of chronic cadmium exposure on growth, histology, ultrastructure, antioxidant and innate immune responses in the liver of zebrafish: Preventive role of blue light emitting diodes [J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2017, 139: 18-26
[14]Zheng J L, Yuan S S, Li W Y, et al. Positive and negative innate immune responses in zebrafish under light emitting diodes conditions [J]. Fish and Shellfish Immunology, 2016, 56: 382-387
[15]Yuan S S, Xu H Z, Liu L Q, et al. Different effects of blue and red light-emitting diodes on antioxidant responses in the liver and ovary of zebrafish Danio rerio [J]. Fish Physiology and Biochemistry, 2017, 43(2): 411-419
[16]Zheng J L, Yuan S S, Wu C W, et al. Chronic waterborne zinc and cadmium exposures induced different responses towards oxidative stress in the liver of zebrafish [J]. Aquatic Toxicology, 2016, 177: 261-268
[17]陳美珺, 梁統(tǒng), 周克元. 原花青素對(duì)脂多糖誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞COX-2酶活性、mRNA及蛋白表達(dá)的影響[J]. 藥學(xué)學(xué)報(bào), 2005, 40: 406-409
Chen M J, Liang T, Zhou K Y. Effect of proanthocyanidins on COX-2 enzyme activity and COX-2 mRNA/protein expression in LPS-induced RAW264.7 cells [J]. Acta Pharmaceutica Sinica, 2005, 40: 406-409 (in Chinese)
[18]Storey K B. Oxidative stress: Animal adaptations in nature [J]. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 1996, 29: 1715-1733
[19]鄧思平, 趙云濤, 朱春華, 等. 鎘對(duì)尖紫蛤抗氧化酶活性及脂質(zhì)過(guò)氧化的影響[J]. 水生生物學(xué)報(bào), 2012, 36: 689-695
Deng S P, Zhao Y T, Zhu C H, et al. Effect of cadmium on the antioxidant enzyme activity and lipid peroxidation in Sanguinolaria acuta [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2012, 36: 689-695 (in Chinese)
[20]李涌泉, 王蘭, 劉娜, 等. 鎘對(duì)長(zhǎng)江華溪蟹酶活性及脂質(zhì)過(guò)氧化的影響[J]. 水生生物學(xué)報(bào), 2008, 32: 374-379
Li Y Q, Wang L, Liu N, et al. Effects of cadmium on enzyme activity and lipid peroxidation in freshwater crab Sinopotamon yangtsekiense [J]. Acta Hydrobiological Sinica, 2008, 32: 374-379 (in Chinese)
[21]Jin Y, Zheng S, Fu Z. Embryonic exposure to cypermethrin induces apoptosis and immunotoxicity in zebrafish (Danio rerio) [J]. Fish and Shellfish Immunology, 2011, 30: 1049-1054
[22]Bayarri M, Madrid J, Sanchez-Vazquez F. Influence of light intensity, spectrum and orientation on sea bass plasma and ocular melatonin [J]. Journal of Pineal Research, 2002, 32: 34-40
[23]Lopez-Patino M A, Conde-Sieira M, Gesto M, et al. Melatonin partially minimizes the adverse stress effects in Senegalese sole (Solea senegalensis) [J]. Aquaculture, 2013, 388: 165-172
[24]Dolci G, Dias V, Roversi K, et al. Moderate hypoxia is able to minimize the manganese-induced toxicity in tissues of silver catfish (Rhamdia quelen) [J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2013, 91: 103-109
[25]Zheng J L, Yuan S S, Shen B, et al. Organ-specific effects of low-dose zinc pre-exposure on high-dose zinc induced mitochondrial dysfunction in large yellow croaker Pseudosciaena crocea [J]. Fish Physiology and Biochemistry, 2017, 43: 653-661
[26]張玉平, 孫振中, 郝永梅. 鎘對(duì)大彈涂魚(yú)肝臟超氧化物歧化酶活性的影響[J]. 水產(chǎn)科學(xué), 2008, 27: 79-81
Zhang Y P, Sun Z Z, Hao Y M. Effects of cadmium on superoxide dismutase activities in liver of bluespotted mudhopper Boleophthalmus pectinirostris [J]. Fisheries Science, 2008, 27: 79-81 (in Chinese)
[27]成嘉, 付貴紅, 劉芳, 等. 重金屬鉛對(duì)鯽魚(yú)乳酸脫氫酶和過(guò)氧化氫酶活性的影響[J]. 生命科學(xué)研究, 2006, 10: 372-376
Chen J, Fu G H, Liu F, et al. Effects of heavy metal lead (Pb2+) on activity of LDH and CAT in the black carp, Carassius auratus [J]. Life Science Research, 2006, 10: 372-376 (in Chinese)
[28]Hsu T, Huang K M, Tsai H T, et al. Cadmium(Cd)-induced oxidative stress down-regulates the gene expression of DNA mismatch recognition proteins MutS homolog 2 (MSH2) and MSH6 in zebrafish (Danio rerio) embryos [J]. Aquatic Toxicology, 2012, 126: 9-16
[29]Wang J, Zhu X, Huang X L, et al. Combined effects of cadmium and salinity on juvenile Takifugu obscurus: Cadmium moderates salinity tolerance; salinity decreases the toxicity of cadmium [J]. Scientific Reports, 2016, 6: 30968
[30]Zheng J L, Zhu Q L, Shen B, et al. Effects of starvation on lipid accumulation and antioxidant response in the right and left lobes of liver in large yellow croaker Pseudosciaena crocea [J]. Ecology Indicators, 2016, 66: 269-274
[31]Elvitigala D A S, Priyathilaka T T, Whang I, et al. A teleostan homolog of catalase from black rockfish (Sebastes schlegelii): Insights into functional roles in host antioxidant defense and expressional responses to septic conditions [J]. Fish and Shellfish Immunology, 2015, 44: 321-331
[32]Morales A I, Vicente-Sanchez C, Jerkic M, et al. Effect of quercetin on metallothionein, nitric oxide synthases and cyclooxygenase-2 expression on experimental chronic cadmium nephrotoxicity in rats [J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2006, 210: 128-135
[33]Hu Z, Yu F Gong P, et al. Subneurotoxic copper(II)-induced NF-κB-dependent microglial activation is associated with mitochondrial ROS [J]. Toxicology and Applied Pharmacology, 2014, 276: 95-103
[34]Wang L L, Liu T, Wang C, et al. Effects of atrazine and chlorpyrifos on the production of nitric oxide and expression of inducible nitric oxide synthase in the brain of common carp (Cyprinus carpio L.) [J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2013, 93: 7-12
[35]Lee O H, Jain A K, Papusha V, et al. An auto-regulatory loop between stress sensors INrf2 and Nrf2 controls their cellular abundance [J]. Journal of Biological Chemistry, 2007, 282: 36412-36420
[36]Osburn W O, Kensler T W. Nrf2 signaling: An adaptive response pathway for protection against environmental toxic insults [J]. Mutation Research-Reviews in Mutation Research, 2008, 659: 31-39
[37]Liang Y, Zhou Y, Shen P. NF-kappaB and its regulation on the immune system [J]. Cellular and Molecular Immunology, 2004, 1: 343-35