郝曉娜,張 健,楊亞威,余志堅,曹永強,楊貞耐,*
(1.北京食品營養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,北京工商大學,北京 100048;2.東君乳業(yè)(禹城)有限公司,山東 德州 253000)
發(fā)酵劑:乳酸乳球菌Lactoccocus lactis XZ3303和Lactococcus lactis ssp. cremoris QH27-1由內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學提供,L. plantarum 1-2由本實驗室凍干保藏(活菌數(shù)11.0(lg(CFU/g)));商品凝乳酶:Stamix 1150NB德國科漢森股份有限公司;脫脂乳粉 新西蘭恒天然集團有限公司。
705型-80 ℃超低溫冰箱 美國Thermo Electron公司;50 L干酪槽 上海浦麗盛三環(huán)食品設(shè)備工程有限公司;MLS-3750高壓蒸汽滅菌鍋 日本Sanyo公司;BCN-1360B超凈工作臺 北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司;DVB-CAR-PDMS手動固相微萃取進樣器 美國Supelco公司;7890A-7000 氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國Agilent公司;CP124S分析天平 德國Sartorius公司;HZQ-Q恒溫培養(yǎng)箱 上海一恒實驗設(shè)備有限公司;CT3質(zhì)構(gòu)儀 美國Brookfield公司。
1.3.1 發(fā)酵菌株活化與接種
乳酸乳球菌XZ3303、QH27-1分別按體積分數(shù)3%接種于12 g/100 mL脫脂乳中,30 ℃培養(yǎng)6~8 h,活化3 代后用作干酪的生產(chǎn)發(fā)酵劑,接種量為1.5%(體積分數(shù),下同)。
1.3.2 實驗分組及益生菌的添加
益生菌添加方式實驗分組如表1所示。益生菌干酪1和益生菌干酪2分別向100 mL巴氏殺菌乳中添加0.1、1 g L. plantarum 1-2凍干粉,至乳中益生菌L.plantarum 1-2活菌數(shù)分別為8.0(lg(CFU/mL))和9.0(lg(CFU/mL))。益生菌干酪3在排乳清后向100 g凝乳中拌入0.1 g的L. plantarum 1-2凍干粉,至凝乳中L. plantarum 1-2活菌數(shù)為8.0(lg(CFU/g))。
表1 干酪制作實驗分組Table1 Experimental groups of cheeses
1.3.3 干酪制作流程
圖1 切達干酪制作流程圖Fig. 1 Schematic illustration of Cheddar cheese production
干酪制作過程如圖1所示。對照組干酪(未添加益生菌)的制作:鮮牛乳經(jīng)65 ℃、30 min巴氏殺菌后,冷卻至31 ℃,添加發(fā)酵劑(添加量體積分數(shù)1.5%);31 ℃保溫發(fā)酵45 min,添加凝乳酶,靜置40 min待乳凝固,用干酪刀切割成約長8 mm的立方塊,緩慢攪拌以防止凝塊黏連,凝塊升溫至38 ℃(每5 min升高1 ℃),當pH值降到6.1~6.2時,排除乳清,并于38 ℃堆釀。pH值降至5.4~5.5時,揉碎凝塊,添加質(zhì)量分數(shù)2%食鹽,然后裝入干酪模具壓榨。真空包裝,并于4 ℃條件下成熟0、4、8、12 周[9]。
益生菌干酪1、2的制作:按照上述對照組干酪的工藝流程,原料乳滅菌后添加發(fā)酵劑,同時按照圖1添加益生菌L. plantarum 1-2。益生菌干酪3的制作與對照組干酪的工藝流程相似,僅在向凝塊中添加食鹽后添加益生菌L.plantarum 1-2于凝塊中,混勻。
1.3.4 干酪的理化及微生物指標測定
1.3.4.1 干酪得率的測定
在干酪制作過程中,準確稱量并記錄原料乳、發(fā)酵劑、食鹽的用量以及干酪成品的產(chǎn)量,用于干酪得率計算。干酪得率是干酪加工過程中的重要參數(shù)之一,可反映工藝參數(shù)的經(jīng)濟合理性,評定干酪的生產(chǎn)效益,衡量產(chǎn)率提高工藝改進的有效性。干酪得率計算方法如下式:
1.3.4.2 干酪含水量的測定
依據(jù)GB 5009.003—2010《食品中水分的測定》中的方法測定干酪含水量。
1.3.4.3 干酪pH值的測定
稱取10 g干酪樣品,磨碎后加入12 mL 50 ℃蒸餾水,勻漿處理1 min,樣品充分勻漿后,將樣品放置于50 ℃水浴中保溫處理30 min,5 000×g、20 ℃條件下離心15 min,去除上層脂肪,取下層溶液測定pH值。
1.3.4.4 干酪微生物指標的測定
分別在干酪成熟的第0、4、8、12周取樣,平板涂布測定干酪樣品中L. plantarum 1-2的活菌數(shù)。準確稱取11 g干酪加入99 mL 2 g/100 mL檸檬酸鈉溶液(40 ℃),勻漿處理2 min,用生理鹽水將樣品稀釋到適當倍數(shù),吸取50 μL稀釋液均勻涂布于M17培養(yǎng)基上,培養(yǎng)24 h,計算益生菌L. plantarum 1-2的活菌數(shù)。
1.3.5 干酪質(zhì)構(gòu)指標的測定
質(zhì)構(gòu)儀測定干酪硬度、內(nèi)聚性和彈性3 個指標。去掉干酪樣品上下及邊緣約5 mm的部分,將干酪樣品切成1.5 cm×1.5 cm×1.5 cm大小的樣品。將樣品在室溫條件下放置30 min,使其溫度均衡,并避免樣品在測試過程中發(fā)生溫度變化。質(zhì)構(gòu)儀參數(shù)設(shè)定如下:測試前速度2.0 mm/s,測試速度0.4 mm/s,返回速度0.4 mm/s,循環(huán)2 次,數(shù)據(jù)頻率20 點/秒,觸發(fā)點負載5 g,壓縮比50%,探頭型號TA11/1000。
1.3.6 干酪揮發(fā)性風味物質(zhì)的測定
通過氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法分析對比干酪風味成分。稱取5 g干酪樣品,磨碎后加入到30 mL萃取瓶中,將萃取瓶加蓋密封,置于50 ℃水浴鍋中平衡20 min,固相微萃取50 ℃吸附40 min后插入氣相色譜進樣口,250 ℃條件下解吸5 min。
1.3.6.1 色譜條件
程序升溫:初始溫度為40 ℃,在此溫度下保持3 min,然后以5 ℃/min的速度升溫至200 ℃,保持0 min,再以10 ℃/min的速度升溫到250 ℃,保持3 min,后運行3 min。載氣(He)恒定流速為1.2 mL/min,進樣口溫度250 ℃,分流比為5∶1。
1.3.6.2 質(zhì)譜條件
電子電離源,電子能量70 eV,傳輸線溫度280 ℃,離子源溫度230 ℃,四極桿溫度150 ℃,質(zhì)量掃描范圍m/z 40~250。
1.3.6.3 干酪風味物質(zhì)的數(shù)據(jù)分析
質(zhì)譜圖經(jīng)計算機檢索同時與NIST08質(zhì)譜圖相匹配,并結(jié)合人工圖譜解析及相關(guān)資料分析,確認揮發(fā)性物質(zhì)的各個化學成分,根據(jù)化合物的峰面積,按面積歸一化法計算出各成分的相對含量。
揮發(fā)性化學成分作為變量,成熟時間、益生菌添加量和益生菌添加方式作為環(huán)境因子,每個樣品不同成熟期的干酪作為一個樣本,應(yīng)用CANOCO 4.5統(tǒng)計分析軟件對數(shù)據(jù)進行分析。首先,根據(jù)梯度長度分析結(jié)果,確定冗余分析模型的適用性。之后,依次設(shè)置軟件分析參數(shù):Available Data=Species and environment data available,Scaling: Linear Methods=Do not post-transform,Transformation of Species D=Log transformation,對風味物質(zhì)進行冗余分析,研究環(huán)境因子、變量、樣本之間的相互關(guān)系。
應(yīng)用Cluster 3.0對風味物質(zhì)和樣品進行聚類。導(dǎo)入文本文件至Cluster 3.0軟件,設(shè)置軟件分析參數(shù):Adjust Data=Log transform data,選擇Hierarchical=Genes和Arrays下的Cluster,點擊Average linkage對揮發(fā)性物質(zhì)和樣本進行聚類分析。
2.1.1 干酪得率分析
表2 干酪得率Table2 Cheese yield
由表2可知,對照組干酪得率顯著低于添加了益生菌L. plantarum 1-2的干酪組,益生菌干酪1、2、3三組干酪得率無顯著差異。這可能是因為L. plantarum 1-2為產(chǎn)EPS的益生菌,能夠有效結(jié)合干酪中游離的水分,從而提高干酪得率。Dabour等[24]研究發(fā)現(xiàn),與不添加產(chǎn)EPS發(fā)酵劑生產(chǎn)的低脂切達干酪相比,添加了產(chǎn)黏液多糖或產(chǎn)莢膜多糖發(fā)酵劑生產(chǎn)的低脂切達干酪的水分含量增加量分別為3.6%和4.8%,干酪得率分別增加了0.28%和1.19%。
2.1.2 干酪含水量分析
干酪含水量不僅會影響干酪得率,還會對干酪的品質(zhì)產(chǎn)生重要影響。因此,在干酪的成熟過程中,加強對干酪含水量的檢測和控制有重要意義。從圖2可以看出,在干酪成熟的過程中,4 種干酪含水量隨著成熟時間的延長而下降,下降趨勢緩慢;且不添加益生菌L. plantarum 1-2的對照組干酪變化較為明顯,而益生菌干酪1、2、3組含水量下降相對緩慢,差異性小??赡苁歉衫页墒炱陂g,酶和微生物水解蛋白質(zhì)使干酪的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)遭到破壞,產(chǎn)生大量游離水,游離水造成干酪成熟期間水分下降[25]。益生菌干酪含水量下降慢的原因可能是益生菌L. plantarum 1-2產(chǎn)生EPS結(jié)合更多的水。Costa等[26]分別利用產(chǎn)EPS的L. lactis ssp.cremoris DPC6532及其不產(chǎn)EPS的同基因型變種菌株L. lactis ssp. cremoris DPC6533作為發(fā)酵劑生產(chǎn)低脂切達干酪,結(jié)果發(fā)現(xiàn)添加了產(chǎn)EPS發(fā)酵劑生產(chǎn)出的干酪含水量和干酪得率顯著高于不產(chǎn)EPS組的干酪。
圖2 干酪成熟期間含水量的變化Fig. 2 Changes in moisture content during cheese ripening
2.1.3 干酪pH值分析
圖3 干酪成熟期間pH值的變化Fig. 3 Changes in pH during cheese ripening
由圖3可知,4 組干酪在成熟前期pH值下降速度較快,并達到最小值。這是由于在成熟前期,大量乳酸菌分解利用干酪中殘留的乳糖生成乳酸,使得干酪pH值迅速下降。而干酪在成熟的中后期乳糖被慢慢耗盡,隨著干酪成熟時間的延長,蛋白質(zhì)發(fā)生水解游離出的NH4+與乳酸中和,導(dǎo)致pH值在成熟中期有小幅度上升[27]。在干酪成熟后期pH值趨于平穩(wěn)。但益生菌干酪組和對照組干酪pH值無顯著差異(P>0.05),說明益生菌L. plantarum 1-2的加入不會使干酪質(zhì)量發(fā)生明顯偏差,這對標準化生產(chǎn)干酪至關(guān)重要。
2.1.4 干酪微生物指標分析
對各組干酪成熟過程中L. plantarum 1-2的存活情況進行測定。由表3可知,隨著干酪成熟時間的延長,干酪中的L. plantarum 1-2活菌數(shù)量降低。盡管益生菌干酪2中的L. plantarum 1-2添加量最多,其活菌數(shù)量下降顯著,這可能由于其在殺菌乳中添加,凝乳切割處理后排乳清時,大量菌體隨乳清排出而造成有效添加量降低。益生菌干酪1和益生菌干酪2中L. plantarum1-2的添加量不同,其成熟過程中活菌數(shù)變化表現(xiàn)出差異性。何志剛等[28]發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌R23在枇杷酒中的菌體生物量總體也呈下降趨勢。益生菌干酪3中L. plantarum 1-2在排除乳清之后添加,減少了菌種隨乳清排出時的損失。益生菌干酪2和益生菌干酪3成熟12 周時,益生菌L. plantarum 1-2活菌數(shù)無顯著性差異,表明益生菌L. plantarum 1-2以9.0(lg(CFU/mL))添加量與主發(fā)酵同時添加到殺菌乳中與排除乳清后添加8.0(lg(CFU/g))對切達干酪成熟12 周后益生菌L. plantarum 1-2的活菌數(shù)無顯著影響。
表3 益生性L. plantarum1-2分別在干酪成熟0、4、8、12 周過程中的存活情況Table3 Viable count of L. plantarum1-2 in probiotic cheese after 0, 4,8, and 12 weeks of ripening(lg(CFU/g))
由圖4可知,隨著干酪成熟時間的延長,4 組干酪的質(zhì)構(gòu)參數(shù)均呈現(xiàn)下降趨勢。在干酪成熟的1~4周內(nèi),干酪的硬度、內(nèi)聚性和彈性迅速下降,這是由于干酪在成熟過程中,酪蛋白被干酪中殘余的凝乳酶及發(fā)酵劑菌株繼續(xù)水解,產(chǎn)生大量水溶性物質(zhì),酪蛋白的空間網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)遭到破壞,從而導(dǎo)致干酪體系變得松散。而在干酪成熟中期和后期(4~12 周),下降有所減緩。由圖4A可以看出,在整個成熟期內(nèi),對照組干酪的硬度始終高于益生菌干酪組,但差異并不顯著(P>0.05)。推測是由于L. plantarum 1-2產(chǎn)生的EPS破壞了蛋白質(zhì)的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),使其空間結(jié)構(gòu)變得疏松,從而導(dǎo)致硬度下降。張卓丹等[29]研究發(fā)現(xiàn),EPS在干酪凝乳過程中,干擾蛋白質(zhì)之間的相互作用,導(dǎo)致干酪凝塊變軟。
內(nèi)聚性用于表征干酪在機械作用下裂解的速率,其外在表現(xiàn)是抗拉強度。由圖4B可知,在干酪成熟前期,4 組干酪內(nèi)聚性均呈下降趨勢,但差異不顯著(P>0.05);在干酪成熟后期,對照組干酪內(nèi)聚性顯著高于益生菌干酪(P<0.05)。干酪在成熟過程中,干酪內(nèi)部原有化學鍵的完整性遭到破壞,蛋白質(zhì)間的相互作用發(fā)生變化,在外力的作用下容易發(fā)生永久性變形,導(dǎo)致內(nèi)聚性下降,因此干酪的內(nèi)部結(jié)合力會隨著時間的延長而降低。
彈性參數(shù)用于表征干酪在外力作用后形狀的復(fù)原能力。由圖4C可以看出,干酪的彈性隨成熟時間的延長而呈現(xiàn)下降趨勢,4 周后下降速度趨于平緩。隨著干酪蛋白水解加快,干酪中長鏈的結(jié)構(gòu)蛋白逐漸變短,酪蛋白網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)坍塌,從而導(dǎo)致干酪質(zhì)地變得柔軟,彈性變差。對照組干酪的彈性在整個干酪成熟期間均低于3 個益生菌干酪,在干酪成熟前期差異不顯著(P>0.05);在干酪成熟后期,即第8~12周,對照組干酪的彈性顯著低于益生菌干酪組(P<0.05),推測是由于EPS破壞了蛋白質(zhì)的空間網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),使干酪質(zhì)地變得松軟,但益生菌干酪之間差異并不明顯(P>0.05)。
由表4可知,4 組干酪在不同的成熟時期(0、4、8、12 周)特征性風味物質(zhì)的變化,對照組干酪和益生菌干酪組的風味物質(zhì)的種類和相對含量均存在較大差異。對照組干酪共檢測出風味物質(zhì)26 種,其中烴類化合物6 種、醇類化合物6 種、醛類化合物2 種、酮類化合物4 種、脂肪酸類化合物5 種、酯類化合物3 種;益生菌干酪1、2、3中除上述26 種風味物質(zhì)外,還檢測出乙苯、十二烷、己醇和丙酮4 種揮發(fā)性風味物質(zhì)。Salmeron等[30]在植物乳桿菌發(fā)酵谷物中也鑒定到上述風味物質(zhì)如乙醛、乙醇、丙酮、乙酸乙酯等。由圖5可知,各組干酪中不同種類風味物質(zhì)的分布及相對含量具有一定的相似性,其中醇類物質(zhì)的相對含量最高,醛類物質(zhì)的相對含量最低;隨著成熟時間的延長,醇類和酯類物質(zhì)相對含量有所下降,醛類和脂肪酸類物質(zhì)的相對含量有所上升。
表4 干酪中揮發(fā)性風味物質(zhì)相對含量Table4 Volatile flavor compounds in cheese
圖5 干酪成熟期間對照組干酪(A)、益生菌干酪1(B)、益生菌干酪2(C)和 益生菌干酪3(D)風味化合物的相對含量Fig. 5 Changes in flavor compound contents of control cheese (A),probiotic cheese 1 (B), probiotic cheese 2 (C) and probiotic cheese 3 (D)during cheese ripening
烴類化合物主要來源于原料乳本身[31],而不是在干酪成熟過程中產(chǎn)生,它們的閾值相對較高,因此對干酪整體風味的貢獻較小[32]。烴類化合物在干酪中普遍存在,且種類較多,以C10~C22的烷烴和一些支鏈烯烴為主。與益生菌干酪組相比,對照組僅檢測出6 種烴類化合物(苯、癸烷、甲苯、十一烷、對二甲苯和十三烷),而在3 個益生菌干酪組中均檢測出8 種烴類化合物(還包括乙苯和十二烷),乙苯等雜環(huán)類化合物可賦予干酪堅果味和杏仁味,使干酪風味更加飽滿。
醇類化合物通常具有芳香味和植物香味,但因醇類化合物閾值較高,因此對干酪整體風味貢獻不大。醇類化合物通常存在于干酪的水溶性成分中,可以與脂肪酸進一步反應(yīng)形成酯,因此可間接影響干酪風味。此外,通過氨基酸代謝、乳糖代謝以及甲基酮的還原等代謝途徑也可生成相應(yīng)的醇類。對照組干酪中檢測出6 種醇類化合物,即乙醇、3-甲基-1-丁醇、甲基丁烯醇、2-乙基-1-己醇、十六醇和苯乙醇,益生菌干酪1、2和3中還檢測出了己醇,己醇具有樹脂、花、植物的風味。3-甲基-1-丁醇可賦予干酪水果香味和酒香味,從而對改善干酪風味起到重要作用。在整個干酪成熟期內(nèi),益生菌干酪中3-甲基-1-丁醇含量均高于對照組,表明L. plantarum 1-2的添加對干酪風味有貢獻作用。此外,正己醇僅在益生菌干酪中檢測到,說明此風味物質(zhì)由L. plantarum 1-2代謝產(chǎn)生。在切達干酪中,醇類的過度積累會造成風味缺陷[33]。本研究中,醇類化合物含量隨干酪成熟時間延長呈現(xiàn)下降趨勢,有利于減少干酪的酸敗風味。
醛類化合物是脂肪酸和游離脂肪酸發(fā)生自動氧化而生成。在對照組干酪和益生菌干酪中均檢測出2 種醛類化合物,即己醛和壬醛。其中己醛能賦予干酪新鮮味和青草味,壬醛具有板油氣味,這2 種物質(zhì)在干酪中普遍存在。醛類化合物的化學性質(zhì)比較活潑,屬于不穩(wěn)定的中間體化合物,在一定條件下易被還原成相應(yīng)的醇,因此通常而言這類化合物在乳制品中的含量都不高。醛類物質(zhì)主要參與酸類物質(zhì)和酯類物質(zhì)間的相互轉(zhuǎn)化,能夠引起干酪不潔風味的苯乙醛在本實驗中未檢測出。
酮類化合物由多不飽和脂肪酸氧化、熱降解、氨基酸降解和微生物代謝產(chǎn)生,其感知閾值低,風味獨特,可賦予干酪水果香味、花香味和霉味[34-35],并隨著碳鏈的增加香氣更加濃郁[36]。本實驗在對照組中共檢測出4 種酮類化合物,包括2-庚酮、3-羥基丁二酮、2-壬酮和 2,7-二甲基-5-羥基-4-辛酮;在益生菌干酪組中還檢測出丙酮。由圖5可知,與對照組相比,益生菌干酪中酮類物質(zhì)含量較高,尤其是3-羥基丁二酮,該化合物由干酪的檸檬酸代謝所產(chǎn)生的二乙酸轉(zhuǎn)化而來,賦予干酪清新的奶油香氣,使干酪風味變得更為飽滿,進一步提高干酪的感官品質(zhì)[37]。2-壬酮呈果香、甜香、青香及椰子、奶油的氣味[38]。2-庚酮是亞油酸的氧化產(chǎn)物,能賦予干酪水果香味。
脂肪酸類化合物是由乳脂肪經(jīng)脂肪酶水解形成的,有顯著的特征氣味,而且還是烷烴類、酯類和甲基酮等風味物質(zhì)的前體。低碳數(shù)脂肪酸較低的閾值保證了干酪的典型發(fā)酵風味[39]。在4 組干酪中均檢測出了乙酸、丁酸、己酸、辛酸和癸酸。其中乙酸是由乳酸或檸檬酸在發(fā)酵菌株的作用下生成,賦予干酪醋味;丁酸可賦予干酪多汁味、奶油味;己酸具有油脂味;其他飽和脂肪酸主要貢獻干酪的水果酸味和油酸味。辛酸具有清香和微弱的水果酸氣味、淡酸味[40]。本實驗檢測到的酸類化合物均為直鏈脂肪酸,為脂肪的水解產(chǎn)物,含量隨成熟時間的延長而增加,對酯類化合物的形成具有很大貢獻,表明隨著干酪成熟時間的延長脂肪的水解作用逐漸加強。
酯類化合物具有較低的閾值,通常提供甜味和水果味[41],可以緩解短鏈酸類化合物帶來的尖刺感,使干酪的整體風味更加柔和,然而過多的酯類化合物則容易引起干酪偏水果味的缺陷[42]。短鏈酯類化合物在常溫下?lián)]發(fā)性較強,并且具有較低的閾值,因此具有較大的風味貢獻潛力。本實驗中,這類化合物相對含量均隨干酪成熟時間延長而下降,避免了水果味缺陷的產(chǎn)生。在4 組干酪中共檢測出3 種酯類化合物,分別為乙酸乙酯、乙酸乙烯酯和己酸乙酯。其中乙酸乙酯含量較高,賦予干酪水果香味,隨干酪成熟時間的延長含量逐漸下降。在干酪成熟初期(0 周),乙酸乙酯便大量存在,第12周時,對照組干酪中乙酸乙酯相對含量為7.77%,低于益生菌干酪1(8.08%)、益生菌干酪2(8.54%)和益生菌干酪3(9.65%),說明L. plantarum 1-2的添加對干酪風味具有積極作用。
2.4.1 干酪成熟時間的影響
為了進一步研究干酪成熟時間、益生菌活菌數(shù)和添加方式對干酪風味形成的影響,對干酪的風味物質(zhì)進行統(tǒng)計學分析。去趨勢對應(yīng)分析(detrended correspondence analysis,DCA)結(jié)果顯示梯度長度最大值為0.703,依據(jù)?milauer等[43]方法,統(tǒng)計分析梯度長度小于3,適于線性分析模型,采用RDA線性模型分析。
圖6 干酪風味物質(zhì)的冗余分析Fig. 6 Redundancy analysis of cheese flavor substances
如圖6所示,第1、2主成分對風味物質(zhì)的影響所能解釋的比例為70.9%。干酪成熟時間和橫軸的相關(guān)系數(shù)為0.867 3。箭頭代表不同的影響因素,其方向代表該因素對干酪風味影響的取向,長短代表對風味影響的大小。干酪成熟時間射線最長且沿著各組干酪成熟時間的方向,說明成熟時間與干酪揮發(fā)性風味物質(zhì)含量呈正相關(guān),且影響最大,這是因為無論是益生菌還是干酪中的酶類,其水解和產(chǎn)生揮發(fā)性風味物質(zhì)都是復(fù)雜的生化反應(yīng),部分物質(zhì)互為前體和產(chǎn)物,其形成需要較長的時間。
揮發(fā)性風味物質(zhì)與成熟時間射線的夾角及投影反映了成熟時間因素對該揮發(fā)性風味物質(zhì)影響的相關(guān)性和大小。2,7-二甲基-5-羥基-4-辛酮、2-乙基-1-己醇、乙醇、十六醇、甲苯、乙酸乙酯含量與成熟時間之間為鈍角,所以呈負相關(guān)關(guān)系。苯的含量與成熟時間呈正相關(guān),且在成熟時間射線上的投影最長,說明苯與成熟時間相關(guān)性最強,對照組干酪隨著干酪成熟時間的延長實現(xiàn)從無到有的變化。其次是癸酸、丁酸和乙酸乙烯酯。
2.4.2 L. plantarum 1-2活菌數(shù)的影響
從圖6可知,相比干酪成熟時間對干酪揮發(fā)性風味的影響,益生菌活菌數(shù)對干酪揮發(fā)性風味的影響要小一些。各組干酪在益生菌添加量射線上的投影一致,說明模型的合理性。
丁酸在益生菌添加量射線上的投影最長,說明丁酸受益生菌活菌數(shù)的影響最大,其次是乙酸。賴氨酸可生成丁酸和乙酸,這2 種物質(zhì)是切達干酪中重要的物質(zhì),丁酸表現(xiàn)出汁味和干酪味,乙酸表現(xiàn)出蠟味[43]。乙醇、2,7-二甲基-5-羥基-4-辛酮、十六醇、2-乙基-1-己醇與益生菌添加量的射線呈鈍角,說明這4 種揮發(fā)性風味物質(zhì)與活菌數(shù)呈負相關(guān)。
2.4.3 L. plantarum 1-2添加方式的影響
干酪的加工過程中,排乳清過程降低了干酪的水分含量,一定量的微生物和酶隨乳清一同排出,此過程也會影響干酪成熟過程和產(chǎn)品的穩(wěn)定性[44]。益生菌添加方式對干酪揮發(fā)性風味的影響與益生菌添加量對干酪揮發(fā)性風味物質(zhì)的影響相似。由圖6可知,丁酸受益生菌添加方式的影響最大,其次是乙酸。乙醇、2,7-二甲基-5-羥基-4-辛酮、十六醇、2-乙基-1-己醇與益生菌添加方式呈負相關(guān)。益生菌干酪成熟12 周,丁酸含量最高達對照組的3.96 倍(P<0.05)。
各組干酪在益生菌添加方式射線上的投影一致,并且益生菌干酪1和益生菌干酪2距離接近,這是因為益生菌干酪1和益生菌干酪2添加菌種的方式一致。對照組干酪和益生菌干酪3分布在益生菌干酪1和益生菌干酪2的兩側(cè)。
益生菌添加量和添加方式射線之間的夾角為銳角,說明兩者呈正相關(guān)關(guān)系,相關(guān)系數(shù)為0.778 9。兩者與干酪成熟時間的相關(guān)系數(shù)為0.000 0。說明兩者與成熟時間因素相互獨立。為了研究益生菌添加量和益生菌添加方式之間的相關(guān)性,以干酪中風味物質(zhì)種類和含量為指標聚類分析干酪樣品。由圖7可知,甲苯、乙醇、乙酸乙酯、2,7-二甲基-5-羥基-4-辛酮、3-甲基-1-丁醇、3-羥基丁二酮呈上調(diào)的趨勢,說明干酪的風味以這6 種風味物質(zhì)貢獻為主。3 種益生菌干酪按成熟時間(0、4、8、12 周)分布于4 個區(qū)域,但對照組干酪不同,成熟4 周的樣品和益生菌干酪成熟0 周的樣品聚為一類;成熟8 周的樣品和益生菌干酪成熟4 周的樣品聚為一類;成熟12 周的樣品和益生菌干酪成熟8 周的樣品聚為一類。說明添加益生菌L. plantarum 1-2促進了干酪的成熟。周蕊等[45]同樣得到植物乳桿菌可促進干酪的成熟。不同成熟時期的益生菌干酪2和益生菌干酪3樣品都聚為一類,說明在殺菌乳中添加9(lg(CFU/mL))益生菌L. plantarum 1-2與排乳清后在凝乳中添加8(lg(CFU/g))L. plantarum 1-2,對干酪風味的影響一致。
圖7 干酪樣品中揮發(fā)性風味物質(zhì)含量的熱圖Fig. 7 Heat map from cluster analysis of volatiles in cheese sample
本研究考察了益生菌L. plantarum 1-2活菌數(shù)及其添加方式、干酪成熟時間對切達干酪揮發(fā)性風味形成的影響。氣相色譜-質(zhì)譜檢測出30 種揮發(fā)性風味物質(zhì),添加益生菌改變了干酪中風味物質(zhì)的種類和含量,與對照組相比增加了乙苯、十二烷、己醇和丙酮4 種風味物質(zhì)。成熟時間對干酪風味的影響最大,苯隨干酪成熟時間的延長實現(xiàn)了從無到有的變化。另外,風味物質(zhì)中丁酸受益生菌活菌數(shù)和添加方式的影響最大。益生菌活菌數(shù)與干酪揮發(fā)性風味物質(zhì)含量呈正相關(guān);相同成熟時間,活菌數(shù)越高,揮發(fā)性風味物質(zhì)含量顯著增加或減少。在排乳清后添加益生菌(8(lg(CFU/g)))獲得了與在殺菌乳中添加高活菌數(shù)益生菌(9(lg(CFU/mL)))相似的揮發(fā)性風味物質(zhì)種類與組成,表明適宜的添加方式可以降低益生菌用量、節(jié)約成本并獲得相似的產(chǎn)品品質(zhì)。本研究結(jié)果為在益生菌干酪加工中選擇適宜的益生菌添加方式及用量,提高益生菌干酪的品質(zhì)提供了理論支持。
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