蘇濤 劉丕 柯華婧 楊曉娟 李驥
·短篇論著·
自噬在大鼠急性胰腺炎中的變化
蘇濤 劉丕 柯華婧 楊曉娟 李驥
急性胰腺炎(AP)是各種原因引起胰酶激活、以炎癥局部反應(yīng)為主要特征、伴或不伴有其他器官改變的疾病[1]。目前AP的發(fā)病機(jī)制仍不是很清楚,臨床治療上難度較大。研究顯示[2],AP時(shí)腺泡細(xì)胞中有空泡的積累,且大多數(shù)空泡為自噬空泡,自噬可能與炎癥反應(yīng)及細(xì)胞的死亡關(guān)系密切[3-4]。本研究旨在探討自噬在牛膽酸鈉誘導(dǎo)的大鼠AP發(fā)病過(guò)程中的變化情況。
1.材料:健康清潔雌性SD大鼠54只,體重200~250 g,由南昌大學(xué)醫(yī)學(xué)院動(dòng)物部提供。其他材料包括LC3B兔多克隆抗體(Abcam公司),p62鼠單克隆抗體(Abcam公司),牛磺膽酸鈉(Sigma公司),二步法兔二抗和鼠二抗(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司)。
2.動(dòng)物分組:將54只大鼠按照隨機(jī)分配原則分為假手術(shù)組(SO)、急性水腫性胰腺炎(AEP)組、急性壞死性胰腺炎(ANP)組,每組18只。每組再隨機(jī)分成3、6、12 h 3個(gè)時(shí)間點(diǎn),每時(shí)間點(diǎn)6只。
3.大鼠胰腺炎模型的建立和標(biāo)本的獲取:AEP組采用胰膽管逆行注射1%?;悄懰徕c(0.1 ml/100 g體重)、ANP組注射5%?;悄懰徕c(0.1 ml/100 g體重)的方法建模,假手術(shù)組與模型組相同手術(shù)方式,但不注射藥物。每組大鼠分別于術(shù)后第3、6、12 h取標(biāo)本。
4.觀察的指標(biāo)與檢測(cè):(1)血清淀粉酶:由南昌大學(xué)第一附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科采用全自動(dòng)生化儀檢測(cè)。(2)胰腺組織病理學(xué):由病理醫(yī)師閱片,選取5個(gè)高倍視野,采用改良Schmidt評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)對(duì)胰腺的損傷進(jìn)行評(píng)分。(3)超微結(jié)構(gòu)觀察:取各組3 h點(diǎn)的胰腺組織制作電鏡標(biāo)本,采用JEOL-1200EX透射電鏡觀察,MORADA-G2記錄。隨機(jī)選取10個(gè)不同的視野,記錄每個(gè)視野下自噬體和自噬溶酶體的數(shù)量。(4)免疫組織化學(xué)染色:組織切片經(jīng)免疫組織化學(xué)染色,隨機(jī)觀察5個(gè)不重復(fù)的高倍視野。免疫組化評(píng)分由陽(yáng)性染色深度評(píng)分乘以陽(yáng)性細(xì)胞比率評(píng)分得出。
1.胰腺組織病理學(xué)改變:光鏡下觀察,SO組胰腺無(wú)明顯病理變化。AEP 3 h點(diǎn)可見局部葉間隙水腫,少量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),6、12 h點(diǎn)可見彌漫性葉間隙水腫,小葉分離,腺泡間隙增寬,大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),偶見少量出血。ANP組可見灶狀或大片狀壞死,腺泡結(jié)構(gòu)破壞,炎癥細(xì)胞及紅細(xì)胞浸潤(rùn),并隨時(shí)間延長(zhǎng)而加重。AEP組病理?yè)p傷評(píng)分較SO組顯著增加,ANP組評(píng)分又較AEP組顯著增加,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。AEP組6、12 h點(diǎn)評(píng)分較3 h點(diǎn)顯著增加(P<0.05),但6、12 h點(diǎn)之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。ANP組損傷評(píng)分隨時(shí)間延長(zhǎng)而增加,各時(shí)間點(diǎn)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,表1)。
表1 各組不同時(shí)間點(diǎn)胰腺組織病理評(píng)分
注:與SO組比較,aP<0.05;與AEP組比較,bP<0.05;與3 h AEP組比較,cP<0.05;與6 h ANP組比較,dP<0.05
2.血淀粉酶水平變化:AEP組、ANP組血清淀粉酶水平均較SO組明顯升高。
3.胰腺組織超微結(jié)構(gòu)改變:造模后3 h SO組細(xì)胞核核膜較完整,細(xì)胞器形態(tài)正常,偶見自噬溶酶體和自噬體;AEP組可見線粒體腫脹,并見較多自噬溶酶體和自噬體;ANP組見線粒體腫脹,內(nèi)膜損傷明顯,并可見較多自噬溶酶體和自噬體。每個(gè)電鏡視野AEP組自噬體與自噬溶酶體為(3.90±1.60)個(gè),ANP組為(7.10±2.56)個(gè),均較SO組中(1.40±1.17)個(gè)數(shù)量增加(P<0.05),ANP組又較AEP組增加(P<0.05,圖1)。
圖1 SO組(1A)、AEP組(1B)、ANP組(1C)自噬體與自噬溶酶體電鏡圖(×15000)
4.胰腺組織LC3B、p62蛋白表達(dá)量變化:LC3B蛋白主要表達(dá)在腺泡細(xì)胞胞質(zhì)和胰島細(xì)胞胞質(zhì)中,p62蛋白表達(dá)在腺泡細(xì)胞、胰島細(xì)胞胞質(zhì)。SO組各時(shí)間點(diǎn)可見LC3B及p62少量表達(dá),且各時(shí)間點(diǎn)之間的差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;AEP組、ANP組LC3B及p62表達(dá)均較SO組顯著增強(qiáng),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P值均<0.05)。AEP組6、12 h點(diǎn)LC3B表達(dá)較3 h點(diǎn)明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而6、12 h點(diǎn)LC3B表達(dá)及各時(shí)間點(diǎn)p62表達(dá)的差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。ANP組LC3B表達(dá)隨著時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,各時(shí)間點(diǎn)的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,表2,圖2),而各時(shí)間點(diǎn)p62表達(dá)無(wú)明顯變化。
討論自噬是細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器以及其他結(jié)構(gòu)的減員和自然更新的途徑,但其功能損傷時(shí)可引起一系列的病理反應(yīng)[5]。自噬過(guò)程被ATG基因所調(diào)控。LC3是哺乳動(dòng)物細(xì)胞中酵母ATG8基因的同源物,LC3分為Ⅰ(A)型和Ⅱ(B)型。自噬發(fā)生時(shí)LC3-Ⅰ經(jīng)過(guò)與自噬膜結(jié)合合成LC3-Ⅱ。因?yàn)長(zhǎng)C3-Ⅱ始終結(jié)合在自噬體的膜上,所以其含量的多少與自噬體數(shù)量的多少呈正比[6-7]。p62(又名SQSTM1)是一種泛素結(jié)合蛋白,可與LC3-Ⅱ形成復(fù)合物,并將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)入自噬溶酶體中,然后被降解。p62水平與自噬的活性呈反比,是檢測(cè)自噬活性的一個(gè)標(biāo)志蛋白[8]。通過(guò)對(duì)LC3檢測(cè)可以評(píng)價(jià)自噬體的數(shù)量,對(duì)p62檢測(cè)可以評(píng)估自噬的活性。
表2 各組LC3B、p62評(píng)分
注:與SO組比較,aP<0.05;與AEP組比較,bP<0.05;與3 h AEP組比較,cP<0.05;與6 h ANP組比較,dP<0.05
圖2 SO組(2A),AEP組3、6、12 h(2B、2C、2D),ANP組3、6、12 h(2E、2F、2G)LC3B(上)和p62(下)表達(dá)(×200)
本研究結(jié)果顯示,AEP組、ANP組與SO組比較,LC3B表達(dá)明顯增加,且隨病理?yè)p傷的加重而增加,ANP組與AEP比較,LC3B的表達(dá)量也明顯增加。此外在電鏡下也發(fā)現(xiàn)AEP和ANP組中自噬體和自噬溶酶體數(shù)目明顯增多。說(shuō)明自噬在AP中表達(dá)是增強(qiáng)的。
本結(jié)果顯示,p62蛋白在SO組未見積累,在AEP組和ANP組p62開始積累,但AEP組和ANP組中各時(shí)間點(diǎn)的積累無(wú)明顯變化。電鏡下觀察到AEP組和ANP組線粒體腫脹,其中ANP中可見線粒體損傷明顯。既然在AP中自噬是增加的,那么底物蛋白p62也應(yīng)該不斷的被降解,但結(jié)果恰好相反,可以解釋為自噬的降解水平降低了,表明自噬的功能受損。另外Mareninova等[2]同樣發(fā)現(xiàn)與饑餓時(shí)相比,胰腺炎中自噬的效率減低,使降解受抑制。
本研究的缺陷在于僅僅發(fā)現(xiàn)AP中自噬損傷的現(xiàn)象,但自噬損傷的機(jī)制并不明確,需要進(jìn)一步對(duì)自噬通路以及自噬與胰酶激活關(guān)系進(jìn)行研究。
[1] 中華醫(yī)學(xué)會(huì)消化病學(xué)會(huì)胰腺疾病學(xué)組.中國(guó)急性胰腺炎診治指南(2013,上海)[J].中華胰腺病雜志,2013,13(2):73-78. DOI:10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2013.02.001.
[2] Mareninova OA, Hermann K, French SW,et al. Impaired autophagic flux mediates acinar cell vacuole formation and trypsinogen activation in rodent models of acute pancreatitis[J]. J Clin Invest,2009,119(11): 3340-3355. DOI: 10.1172/JCI38674.
[3] 徐冉,魏瓏瓏,李志強(qiáng).BNIP3在細(xì)胞凋亡與自噬中的作用[J].山東醫(yī)藥,2013,53(28),105-108.DOI: 10.3969/j.issn.1002-266X.2013.28.041.
[4] Jones SA, Mills KH, Harris J. Autophagy and inflammatory diseases[J]. Immunol Cell Biol.2013,91(3):250-258. DOI: 10.1038/icb.2012.82.
[5] 喻琴琴,楊俊,李馨欣.自噬及其抑制劑的研究進(jìn)展[J].實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2013,17(29):417-419.DOI: 10.3969/j.issn.1006-5725.2013.17.053.
[6] Tanida I.Autophagosome formation and molecular mechanism of autophagy[J]. Antioxid Redox Signal, 2011,14(11): 2201-2214. DOI: 10.1089/ars.2010.3482.
[7] Wild P, Mcewan DG, Dikic I. The LC3 interactome at a glance[J]. J CellSci, 2014, 127(Pt 1): 3-9. DOI: 10.1242/jcs.140426.
[8] Yao TP. The role of ubiquitin in autophagy-dependent protein aggregate processing[J]. Genes Cancer, 2011,1(7) :779-786.DOI:10.1177/1947601910383277.
10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2017.06.011
國(guó)家自然基金項(xiàng)目(81560112)
518172 廣東深圳,深圳市龍崗區(qū)人民醫(yī)院消化科(蘇濤);南昌大學(xué)第一附屬醫(yī)院(蘇濤、劉丕、柯華婧、楊曉娟、李驥)
劉丕,Email:liupi1974@sina.com
2016-08-15)
冀凱宏)