臧瀟倩 李哲煜 張笑顏 江 雷 任南琪 孫 凱*

1(哈爾濱工業(yè)大學城市水資源與水環(huán)境國家重點實驗室, 哈爾濱 150090)2(中國科學院理化技術研究所, 北京 100101)

評述與進展

基于微流控芯片的細菌趨化性檢測研究進展

臧瀟倩1李哲煜1張笑顏1江 雷2任南琪1孫 凱*1

1(哈爾濱工業(yè)大學城市水資源與水環(huán)境國家重點實驗室, 哈爾濱 150090)2(中國科學院理化技術研究所, 北京 100101)

細菌趨化性是指有運動能力的細菌對環(huán)境化學物質梯度產(chǎn)生響應，趨向某些化學誘導劑或避開某些化學驅避劑的移動行為，是微生物適應環(huán)境變化而生存的一種基本屬性。研究細菌趨化性對于利用細菌治理環(huán)境、控制病原菌侵染機體以及開發(fā)微生物工業(yè)項目等方面都具有重要意義。微流控芯片可以實現(xiàn)對細菌趨化性的定性與定量檢測，與傳統(tǒng)的檢測方法相比，可以更好地對細菌的微環(huán)境進行控制，有較高的靈敏度。近年來，基于微流控技術檢測細菌趨化性研究得到了飛速發(fā)展。本文從微流控芯片的結構、工作方式及主要應用3個方面對近年出現(xiàn)的微流控趨化性檢測裝置進行了介紹和評述。

微流控； 細菌； 趨化性； 微環(huán)境； 評述

2017-04-24收稿；2017-05-18接受

本文系國家自然科學基金項目(No.61674046)資助

* E-mail: ksun@hit.edu.cn

1 引 言

在自然環(huán)境中，適合細菌生長繁殖的場所都有一定的離子濃度和營養(yǎng)成分，細菌能夠感受周圍環(huán)境中的化學物質，并沿著化學物質的濃度梯度定向運動，這種性質稱為趨化性[1]。細菌朝著化學物質高濃度的方向運動，稱為正趨，該化學物質就是引誘劑；反之為負趨，該化學物質為趨避劑。在大多數(shù)情況下，正趨化物能作為細菌的碳源和能源，而負趨化物則對細菌有毒害作用。細菌靠趨化作用趨向有利環(huán)境，避離不良環(huán)境，這樣細菌就能夠有選擇地吸附到某些藻類、甲殼類或貝殼類等動植物的表面得以生存，因而趨化性是細菌在特定環(huán)境中定居的一個重要生態(tài)學因素。細菌趨化性在諸如原位生物除污、生物膜的形成、感染的發(fā)病機制、固氮化作用、微生物在地下環(huán)境和土壤中的遷移以及微生物采油等領域的研究中具有重要意義[2]。

傳統(tǒng)研究細菌趨化性的方法有很多種，每種傳統(tǒng)研究方法各有其優(yōu)缺點[3]，如毛細管檢測法、停留擴散室檢測法、群板檢測法等方法簡單易行，且發(fā)展成熟，但只能進行趨化性定性分析，而不能實現(xiàn)定量檢測；栓細胞檢測法和游動細胞自動追蹤檢測法可以對單個細胞的運動進行跟蹤觀察，為細菌趨化性機理和理論模型的研究提供了方法，但是栓細胞檢測法觀察過程耗時較長，對細胞運動的檢測重復性差，并且不能對濃度梯度產(chǎn)生反應；而游動細胞自動追蹤檢測法每次只能追蹤一個細胞，且需要高度復雜的數(shù)據(jù)記錄設備。這也使得利用傳統(tǒng)檢測方法對細菌趨化性進行定量分析和對細菌運動進行精確表征較難實現(xiàn)。

近年來，微流控芯片技術逐漸發(fā)展成熟[4]，憑借分析快速、成本低、消耗低、重現(xiàn)性好、通量高、多功能、集成好并可以在接近生理環(huán)境下運行等特點，成為近年來熱點前沿分析技術之一，為細菌趨化性的定性及定量研究提供了新的平臺。

2趨化性微流控芯片的材料選擇和結構特點

根據(jù)使用目的, 可見選擇不同的微流控芯片材料、結構及加工手段。為了將微流控芯片應用于細菌趨化性的研究之中，需要在微流控芯片中形成可控的、穩(wěn)定的、可量化的趨化劑濃度梯度，并且在通道內創(chuàng)建適宜微生物生存的微環(huán)境，使微生物保持正常的生理結構與生理機能，且能夠在環(huán)境中自由運動。因此，在趨化性研究中，需要根據(jù)所選擇的研究對象以及所需的實驗條件，對微流控芯片的通道結構及尺寸進行設計與加工，使得裝置內可以形成所需的流體流動狀態(tài)、溶液混合方式、細菌與趨化劑的接觸方式及各種濃度梯度等。

2.1趨化性微流控芯片的材料選擇

研制微流控芯片的過程中，首先要考慮芯片材料的選取，選取原則大體有下述幾點: (1)與工作介質之間要有良好的化學和生物相容性；(2)應有很好的電絕緣性和散熱性；(3)應具有良好的光學性能，對檢測信號干擾小或無干擾；(4)表面要具有良好的可修飾性，可產(chǎn)生電滲流或可固載生物大分子；(5)制作工藝簡單，成本低廉[5]。在利用微流控芯片對細菌趨化性進行檢測時，除滿足上述幾個條件外，還要考慮實驗所用菌種與芯片材料之間的相互作用，使細菌在通道內可以保持正常的生理活性，不發(fā)生吸附或粘附，能夠自由運動。

用于制作微流控芯片的材料主要有石英、玻璃以及有機高分子聚合物，如熱塑性材料聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA)[6,7]和聚碳酸酯(PC)[8]、熱固型材料聚二甲基硅氧烷(PDMS)[9]等。石英和玻璃是最早引入的微流控芯片基片材料，具有良好的電滲性質和優(yōu)良的光學特性，表面吸附和表面反應能力強，化學穩(wěn)定性好，因此在細菌趨化性檢測時，常用作芯片的基片材料。PMMA具有良好的透光性、一定的耐沖擊性和耐久性，但是與微生物的相容性差，存在難以進行表面修飾的問題，且可變性較強，因此實驗過程中再現(xiàn)性差[6,7]。PC是一種強韌的熱塑性樹脂，具有良好的透光性、耐熱性、耐沖擊性和抗氧化性，在適宜溫度范圍內具有良好的機械性能，但是PC材料耐水解穩(wěn)定性不高，耐磨性差，且易受有機化學品侵蝕，因此需要在芯片材料的耐受性范圍內選擇實驗條件[8]。PDMS又稱硅橡膠，是目前制作微流控芯片應用最多的一種材料。該材料透光度/透氣性好、化學惰性強、無毒廉價、韌性好、強度高，且可以通過等離子體氧化直接與自身或其他材料進行粘合或鍵合，不需要粘合劑。但PDMS具有疏水性，會造成通道中積蓄氣泡，通過表面修飾改性能夠解決該問題；PDMS能吸收周圍環(huán)境中的有機溶劑和小分子物質，在用于微生物趨化性實驗時，通道內的生物分子和某些藥物分子會被PDMS材料吸收，對實驗結果造成影響，因此需要對其進行修飾和改性，如利用硅原子[10]、聚電解質多層膜[11]、表面活性劑涂層[12]及磷脂雙層膜[13]等對PDMS進行修飾，以滿足實驗要求[9]。

2.2趨化性微流控芯片的結構特點

用于研究細菌趨化性的微流控芯片除了要滿足材料、溫度等的要求外，還要考慮到細菌的生理活動特征。基于微流控芯片的細菌趨化性研究表明，不同生理特性的細菌所需的實驗條件不同，因此需要對微流控芯片的結構與通道內部環(huán)境進行精確設計與調控[14]。

一方面，細菌會向狹小空間或死角聚集，使該區(qū)域的細菌濃度升高。Park等[15,16]為了探究細菌在微小結構中的行為，設計了一種微結構(圖1A)，中間為250 μm × 250 μm的方形濃縮池，通過40 μm寬的通道與外界相連。實驗時向芯片內通入菌液，使細菌均勻分布，經(jīng)過一段時間后，觀察到細菌會通過微細通道聚集到方形濃縮池中。在此基礎上，該研究組又設計了一種迷宮結構(圖1B)，發(fā)現(xiàn)細菌會在半封閉區(qū)域聚集，從而使菌濃度升高，這是由于細菌自身生理活動分泌出的某些物質，可作為細菌的趨化劑而發(fā)揮作用。可見，在利用微流控芯片進行細菌趨化性實驗時，需要考慮到細菌運動的特性，避免通道中出現(xiàn)死角，積存細菌，或直接利用這一特性在芯片中設計濃縮孔，使細菌聚集，便于對細菌進行量化分析，并且有效降低檢測限。

另一方面，細菌能夠通過分裂繁殖或者改變自身形態(tài)穿過微米級通道[17,18]。Mannik等[18]設計了含有亞微米級通道結構的微流控芯片(圖1C)，微細通道由6個腔室分隔開，并且逐級變細，通過各級通道內菌的運動，探究菌的移動情況。結果表明，大腸桿菌在0.4～0.8 μm通道內能利用鞭毛進行自主運動，而在小于0.4 μm(小于大腸桿菌直徑)通道內，會通過分裂繁殖或改變自身形態(tài)穿過通道進入下一個腔室，亞微米級的通道和腔室可以使得細菌有更加豐富的生理形態(tài)，增加了細菌形態(tài)的多樣性。因此，在設計微流控芯片時需考慮到細菌的這一特性，根據(jù)所需的實驗條件設計通道寬度，保證細菌在通道的運動狀態(tài)和活動范圍。

圖1 細菌在微米級通道內的運動情況: (A)GFP標記的大腸桿菌在芯片內分布情況熒光圖像，大腸桿菌通過40 μm寬的微米級通道進入250 μm×250 μm的中央濃縮孔，3 h后孔內的菌濃度比外部菌濃度高近7倍[15,16]；(B)左圖為哈維氏弧菌在迷宮結構芯片中培養(yǎng)8 h后的暗場成像，右圖為反應菌體內部熒光反應的光子計數(shù)成像，表示細菌高度聚集區(qū)域的活躍群體感應現(xiàn)象[15,16]；(C)細菌在微細級通道內的運動行為，(1)實驗芯片結構圖，(2)細菌在0.6 μm的通道內的運動情況，(3)細菌在1.2 μm寬的通道內的運動情況[18]。Fig.1 Movement of bacteria in microchannels: (A) Epifluorescence images of green fluorescent protein(GFP)-labeled E. coli in M9 minimal media as they accumulate into a central 250 μm × 250 μm enclosure via a 40-μm-wide channel. After 3 h the density of cells inside is more than seven times greater than outside[15,16]. (B) Dark-field image of V. harveyi after cultivation for 8 hours in the maze. Photon-counting image of the intrinsic luminescence, indicating active quorum sensing in areas where the cells have accumulated at high density[15,16]. (C) Setup for studying bacterial movement in small constrictions. (1) Schematic of the experiment. (2)Time-lapse fluorescent images of bacterial growth in a 0.6 μm wide channel. (3) Time-lapse images of an E. Coli bacterium that swims through a 1.2-μm wide channel[18].

3 用于細菌趨化性檢測的微流控裝置

用于研究細菌趨化性的微流控芯片需要在通道內形成一定的濃度梯度，根據(jù)其微流控芯片通道內部形成濃度梯度的方式，可以將其分為基于動態(tài)流體的微流控裝置(Flow-based microdevice)和基于靜態(tài)擴散的微流控裝置(Diffusion-based microdevice)[19]，兩者各有優(yōu)缺點和適用范圍。

3.1動態(tài)流體微流控裝置

動態(tài)流體微流控裝置主要通過設計不同構型的微通道，利用通道中液體的層流混合建立濃度梯度[19]。其優(yōu)勢在于可以通過改變芯片微通道構造或液體流速等條件，在通道內快速形成多種分布形式的穩(wěn)定濃度梯度。

第一個“T”型通微流控芯片是由Mao等[21]在2003年設計并提出的(圖2A)。裝置由兩側入口分別通入趨化劑和緩沖劑，兩溶液在主通道匯合，基于通道內兩層流體間的擴散產(chǎn)生濃度梯度，在出口處設計了呈扇形對稱分布的22條回收通道，因此實現(xiàn)了細菌趨化性的定性及定量分析。利用此裝置進行了大腸桿菌對幾種氨基酸的趨化性檢測，其靈敏度高，檢測限相比于毛細管檢測法低了近3個數(shù)量級，作者還通過實驗進一步發(fā)現(xiàn)了大腸桿菌對L-亮氨酸的雙重趨化反應。在這款微流控裝置中，趨化性實驗結果是通過通道末端22個回收通道中的相對菌量測定的，因此細菌在通道內的運動行為會對測量結果有很大影響，通道內流體對細菌運動的干擾會使測量結果存在一定的偏差。其次，主通道上游位置的趨化劑濃度梯度最高，沿通道向下會由于層流液體間的擴散作用逐漸降低，使得細菌的趨向運動發(fā)生變化，加快液體流速會減緩擴散的發(fā)生，但同時也會減小細菌與趨化劑的接觸和響應時間，影響測量結果的精確度。

Lanning等[22]在文獻[20]的三入口平行流通道基礎上又設計了一種微流控芯片，裝置也呈“T”型，但只有兩個入口(圖2B)。細菌菌液不是作為單獨的液流通入通道內，而是將細菌加入到緩沖溶液及趨化劑中，從兩個入口同時通入芯片，初始階段細菌沿通道橫向呈均勻分布，沿通道向下，兩液體擴散混合產(chǎn)生趨化劑濃度梯度，細菌的分布會逐漸發(fā)生變化，不再呈現(xiàn)均勻分布。該研究使用光散射法對細菌分布進行測量，將觀察所得的分布結果與細菌運動方程[23]的數(shù)值解進行擬合，得到趨化靈敏度系數(shù)[24]。作為對照實驗，在通道內充滿液體后停止通入，使液體不再流動，只在橫向上發(fā)生擴散，取固定位置，觀察細菌分布隨時間的變化情況，結果表明，0.1～1.0 mm/s的流量不會影響大腸桿菌在通道內的趨化遷移，說明細菌在通道內的運動是由趨化性而非水力因素或非生物因素引起的。該裝置保證了細菌初始階段在通道內的均勻分布，更加還原了自然環(huán)境條件下細菌的分布狀況，可用于研究地下水或土壤中細菌的趨化性行為。

Kim等[25]開發(fā)了一種“Y”字型的微流控芯片(圖2C)，其結構特點在于主通道兩側由箭頭形棘齒結構組成的濃縮孔陣列。3個入口包括兩側的趨化劑入口、緩沖劑入口及中間的菌液入口，實驗中主通道內會形成趨化劑的濃度梯度，誘導細菌從中間向兩側做偏移運動，表現(xiàn)出趨化性，并根據(jù)通道兩側濃縮孔中細菌濃度量化表征趨化性。濃縮孔的箭頭形棘齒結構有利于對細菌進行分離誘導，使其只能單向移動進入濃縮孔且不易逸出，可以在濃縮孔中積累細胞，從而提高了細菌趨化反應的檢測靈敏度。這一裝置優(yōu)于其它“Y”型通道的特點在于可以通過分析通道不同距離處濃縮孔內的細菌濃度，對特定趨化劑條件下化學受體的靈敏度進行定量分析及對比，空間與時間兩個維度上實現(xiàn)對細菌趨化性行為進行探究和表征。但由于棘齒型濃縮孔結構對細節(jié)加工的要求較高，且容易在濃縮孔中聚集難以排除的氣泡，因此需要在實驗前與實驗過程中對芯片進行清洗與抽真空處理。

“圣誕樹”型結構[26]是最常見的濃度梯度微流控芯片結構，該結構前端設置有兩個入口，分別通入趨化劑溶液與緩沖溶液，通過層層分流與混合后匯入同一條通道，由于層流作用在通道內形成濃度梯度。Englert等[27]在此基礎上設計了一種微流控芯片(圖2D)，將“圣誕樹”型通道裝置與“Y”型通道相連接，趨化劑溶液與緩沖溶液同時通入芯片，流經(jīng)“圣誕樹”型通道形成濃度梯度后，進入“Y”型通道內，通入“Y”型通道的細菌直接進入到已經(jīng)建立好的濃度梯度溶液中，避免了細菌突然暴露在高濃度趨化劑下而擾亂其化學感受器，并且保證細菌對趨化劑濃度梯度有足夠的反應時間，從而提高了微流控芯片的檢測精度。

動態(tài)流體微流控裝置需要從外部接入壓力注入設備，并且會使細菌暴露在流體剪切力下，使細菌除自身運動外，還受到外部壓力的影響。此外，在流體微流控裝置中，通道內的趨化劑濃度梯度分布沿通道向下會發(fā)生變化，因而細菌在通道內的運動也會受到一定影響。

圖2 動態(tài)流體微流控芯片裝置: (A)扇形分布出口的微流控芯片裝置，設有3個入口及22個均勻分布的出口[21]；(B)“T”型通道裝置，設有兩個入口分別通入菌液和趨化劑[22]；(C)“Y”型通道裝置，主通道的兩側設置有箭頭型棘齒結構濃縮空陣列[25]；(D)“圣誕樹”結構通道裝置，由圣誕樹結構的濃度梯度發(fā)生器和Y型趨化性檢測區(qū)域組成[27]。Fig.2 Flow-based devices for microfluidic chemotaxis assays: (A) A fan-distribution outlets microfluidic chip device with 3 inlets and 22 outlets[21]; (B) A T-shape device with two inlets for bacteria and attractant[22]; (C) Y-shaped device that combined with arrowhead-shaped ratchet structures beside the main channel[25]; (D) Schematic representation of the μFlow device. The device consists of a gradient-mixing module and a chemotaxis observation module[27].

3.2靜態(tài)擴散微流控裝置

靜態(tài)擴散微流控裝置克服了動態(tài)流體微流控裝置的缺點，它是在靜態(tài)穩(wěn)定的無流體環(huán)境中，建立化學物質的濃度梯度，細菌僅依靠自身擴散表現(xiàn)趨化性。此設備可以不依賴于外部壓力設備， 并且可以保證外部流體對細菌運動的影響達到最小化，但是，擴散微流控裝置在對化學物質濃度梯度分布的控制上靈活性較差。靜態(tài)擴散微流控裝置主要是在微流控芯片通道中或通道下方加入多孔介質，如水凝膠、瓊脂糖層等，能夠在無液體流動的情況下提供穩(wěn)定的趨化劑濃度梯度，此類裝置主要有3種工作方式: 一通道法、兩通道法和三通道法[28]。

一通道法是將趨化劑溶液和緩沖溶液兩平行流體通入通道內并穩(wěn)定后，停止流動，細菌處在由停流擴散產(chǎn)生的趨化劑濃度梯度下，這種方式只能建立不穩(wěn)定的濃度梯度，維持時間較短。Seymour等[29]設計了一個兩入口單通道微流控芯片(圖3A)，兩入口分別通入趨化劑和菌液，待液流穩(wěn)定后關閉注射器泵，由于通道內液體為層流狀態(tài)，可認為在注射器泵關閉時，通道內流體立刻停止流動，只進行靜態(tài)擴散，細菌也會在趨化作用下進行橫向運動。利用此芯片研究了3種海洋微生物對多種趨化因子的趨化反應，還分析了細菌群在營養(yǎng)斑塊內的移動速度，證實了一些海洋細菌能夠進行快速持續(xù)的趨化反應。這一裝置還可實現(xiàn)兩種分析模式: (1)實時觀測細菌群體數(shù)據(jù)，可以確定實驗過程中的趨化遷移率、解離常數(shù)、趨化敏感性及隨機運動系數(shù)；(2)單細胞數(shù)據(jù)，可以獲得趨化性行為的運動速度、運動時間、移動距離及旋轉角度的信息。其優(yōu)點是可以同時測量細菌分布和運動軌跡以及趨化劑濃度分布，并且還可以將細菌運動及分布情況與趨化劑的濃度分布聯(lián)系起來進行測量與分析。

圖3 靜態(tài)擴散微流控芯片裝置: (A)有獨立菌液入口和趨化劑入口的單通道裝置，(1)結構示意圖，(2)為虛線框內的熒光圖像[29]；(B)設有凝膠通道與觀測通道的微流控芯片，在觀測通道內無液體流動[30]；(C)裝置包含兩條主通道和3條垂直通道，圖中顏色表示不同位置處染色劑的不同濃度，濃度與顏色對應值在右側圖例標出[19]。Fig.3 Diffusion-based devices for microfluidic chemotaxis assays: (A)Single channel microfluidic device with separate inlet for bacterias and for chemotaxis, (1)Schematic of the device,(2)Epifluorescent image of the region in the dashed box[29]; (B)Microfluidic device with agarose gel channel and observation channel where is no flow[30]; (C)Microfluidic device with two main channels and three vertical channels, Colors in the figure represent different concentrations of the dye at different locations in the device, The concentration of the dye corresponds to each color is shown in the legend[19].

兩通道法是通過源通道和匯通道在靜態(tài)流體室內產(chǎn)生穩(wěn)定的濃度梯度，將細胞暴露在穩(wěn)定無液體流動的二維濃度梯度下。Si等[30]設計的微流控芯片(圖3B)，通道兩端設有源孔和匯孔，由一條通道連接，源孔一側的通道是由瓊脂凝膠填充的20條平行通道，稱為瓊脂凝膠通道，在匯孔一側的通道為細菌可以自由運動的觀測通道。實驗時，首先向匯孔內加入菌液，靜置1 h，使細菌通過自由擴散進入到觀測通道；再向源孔加入所需檢測的趨化劑溶液，通過擴散進入瓊脂凝膠通道和觀測通道，形成精確的濃度梯度，細菌會產(chǎn)生相應趨化反應。該裝置操作簡單，可以表征及對比分析細菌對幾種不同趨化劑/驅避劑的趨化性反應，還可篩選趨化性種群類型，實現(xiàn)對趨化劑和驅避劑的快速檢測和量化分析。Murugesan等[19]設計的芯片(圖3C)可在約10 mm寬的通道內建立穩(wěn)定的濃度梯度，使趨化性實現(xiàn)可視化，并大大提高了趨化性的檢測范圍，作者選用山梨糖醇為趨化劑，硫酸鎳為驅避劑，分別做了正/負趨化性實驗，以及雙重趨化劑濃度梯度實驗，與此相比，其它微流控裝置只能在幾微米的寬度內建立濃度梯度。在實驗過程中，源/匯通道內的流體處于流動狀態(tài)，且流體壓力極難平衡，非常容易對靜態(tài)流體室內的細菌運動造成大的干擾，甚至導致細菌逃逸。

三通道法則通過納米結構膜、凝膠層等多孔材料形成更穩(wěn)定的靜態(tài)流體室，極大地減少了匯/源通道內的流體流動對中間檢測通道的干擾。Weng等[31]設計了一款微流控芯片研究尿素對幽門螺旋桿菌趨化性的影響，該裝置設有3條微通道，中間通道為靜態(tài)流體室，通過納米結構膜與兩側的源/匯通道隔開(圖4A)，實驗時先通入菌液，待菌液充滿通道后封閉出入口，并向兩側的通道中分別通入緩沖劑和尿素溶液，尿素分子會透過納米結構膜擴散進入靜態(tài)流體室，產(chǎn)生濃度梯度。實驗結果，除通過熒光強度進行細菌群體運動趨勢的觀察外，優(yōu)良的結構設計使檢測系統(tǒng)捕捉和記錄到了單個細菌體的旋轉和翻滾行為，并發(fā)現(xiàn)隨尿素濃度梯度增加，幽門螺旋桿菌的運動速率會下降。為了方便靈活調控結構孔徑，Son等[32]開發(fā)了另一種結構方式，即在源/匯通道與細菌檢測通道之間設置PDMS微柱陣列，并通入液體凝膠，待凝膠固化將源/匯通道與檢測通道隔開(圖4B)，實驗時先向檢測通道通入菌液并封住出入口，從而在細菌檢測通道形成靜態(tài)流體室。通過這一裝置對海洋細菌溶藻弧菌的趨化性行為進行了探究，結果表明，與大腸桿菌不同，溶藻弧菌的趨化性運動的強弱并非取決于趨化劑濃度梯度，而主要由其運動速度決定，提出了一種由運動速度建立起來的新的趨化性運動模型。Ahmed等[23]構建了基于水凝膠的微流控芯片(圖4C)，與上述實驗建立的線性濃度梯度相比，此裝置通過中間通道的特殊構型實現(xiàn)了不隨時間變化的非線性濃度梯度分布，探究了線性濃度梯度(圖4C(1))和非線性濃度梯度(圖4C(2))兩種模式下的趨化性反應，通過實驗得到了大腸桿菌在線性及非線性濃度梯度下的趨化性分布情況，結果與數(shù)學模型預測結果較為相符。Kim等[33]也利用結構類似的三通道微流控芯片，探究了沙雷氏菌在氧氣或/和核黃素濃度梯度下的趨化性運動，結果表明，沙雷氏菌會趨向高氧濃度或高核黃素濃度的方向運動；此外，與有氧條件相比，沙雷氏菌在無氧條件下對核黃素的趨化性趨勢顯著增強，證明了雙電子受體在沙雷氏菌的趨化性和運動中的重要性。Zhuang等[34]的實驗研究對象不是個體分散的細菌，而是表面黏附有粘質沙雷氏菌的聚苯乙烯顆粒(圖4D)，通過對細菌驅動的微顆粒的運動軌跡進行統(tǒng)計分析，首次闡明了附著于微結構上細菌群的合作趨化性的基本作用機制，結果表明，不同于單個細菌勻速且定向的趨化性運動，細菌驅動微顆粒的運動速度相對穩(wěn)定，但運動方向是不斷變化的。

圖4 靜態(tài)擴散微流控芯片裝置: (A)通過納米結構膜分割開3條通道，尿素分子可以穿過膜在檢測通道形成濃度梯度[31]；(B)芯片制作完成后，通過凝膠入口通入液體凝膠，在源/匯通道與檢測通道之間形成凝膠層[32]；(C)基于擴散的微流控芯片裝置示意圖，可以建立線性濃度梯度(1)和非線性濃度梯度(2)[23]；(D)基于凝膠層的三通道結構，表面附有粘質沙雷氏菌的聚苯乙烯顆粒作為研究對象通入中間的檢測通道[34]。Fig.4 Diffusion-based devices for microfluidic chemotaxis assays: (A)Three channels was separated by the nanostructured membrane, urea molecules can pass through the membrane and form a concentration gradient in the test channel[31];(B)After the chip was finished, the liquid hydrogel was passed into the inlet and formed a hydrogel layer between the source/sink and the test channel[32];(C)Schematic of a diffusion-based device which can generate gradient for (1) linear and (2) nonlinear gradients[23].；(D)A three-channel microfluidic chip based on hydrogel, the microswimmers that attached by Serratia marcescens bacteria is introduced into the test channel[34].

4 微流控趨化性檢測的應用

研究微生物趨化性對于控制病原菌侵染機體、研究細菌抗藥性、利用細菌治理環(huán)境以及開發(fā)微生物工業(yè)項目等方面都具有重要的研究價值。微流控芯片在細菌遷移和趨化性研究方面的技術已逐漸趨于成熟，因此將微流控檢測法應用于趨化性研究，在生物醫(yī)學、環(huán)境學等領域也引起廣泛關注。

趨化性在微生物的致病機理中起著重要的作用，很多情況下病原細菌需要依靠趨化性進行運動。而在生物醫(yī)學方面，對人體內特定細胞的趨化性進行研究也有著重要的意義。Butler等[35]開發(fā)了一種簡單的微流控裝置(圖5A)，探究了人體內中性粒細胞與燒傷細胞的關系。裝置由一條主通道和側面幾條垂直排列的側向通道構成，實驗中，首先向主通道中通入趨化劑，在壓力作用下趨化劑會流入側向通道，待側向通道內充滿趨化劑溶液后停止通入；然后將中性粒細胞懸浮在緩沖溶液中通入主通道，由于溶液的層流混合擴散作用，在側向通道內會形成趨化劑的濃度梯度，中性粒細胞則會在趨化性作用下向側向通道內運動，根據(jù)側向通道內中性粒細胞的數(shù)量對其趨化性進行定性及定量分析，可以運用該裝置對潛在性自身免疫性疾病進行診斷。

在抗藥性研究方面，可以通過微流控趨化性技術實時觀察跟蹤細菌的變化，從而更加深入地了解細菌的抗藥性。Zhang等[36]設計了一種可產(chǎn)生濃度梯度的微流控芯片(圖5B)，上側通道通入細菌營養(yǎng)液，下側通道通入細菌營養(yǎng)液和環(huán)丙沙星(約高于最小抑制濃度200倍)，在兩通道之間形成了環(huán)丙沙星的濃度梯度，將細菌加入到芯片中間的腔室，在10h時便在含有環(huán)丙沙星的通道內出現(xiàn)了細菌，即為抗藥性細菌，結果表明細菌在不均勻的環(huán)境條件下會更快地出現(xiàn)抗藥性。Balaban等[37]用微流控芯片跟蹤了暴露于抗生素的大腸桿菌的生長，細菌個體在抗生素作用下生長速度慢，但當重新通入培養(yǎng)基時它們也能夠轉變到正常狀態(tài)再生長。Jiang等[38]采用微流控芯片系統(tǒng)(圖5C)對抗生素敏感細菌及耐藥性細菌進行了研究，結果表明無論是耐藥性細菌還是敏感細菌，其中生長速率慢的細菌都表現(xiàn)出更強的抗藥性。

圖5 微流控趨化性研究在致病機理及抗藥性研究中的應用: (A)左側主通道內通入中性粒細胞懸浮液，其中中性粒細胞在趨化性作用下進入右側的測向通道[35]；(B)細菌抗藥性研究芯片簡圖，中間為細菌通入腔室，上下邊緣通道為培養(yǎng)基及抗生素流經(jīng)通道[36]；(C)細菌抗藥性及耐藥性研究芯片裝置，裝置分為4個主通道，每條主通道兩側都有小的細菌培養(yǎng)腔室[38]。Fig.5 Applications in pathogenic and drug resistance of microfluidics-based chemotaxis studies: (A)Microfluidic chip with meutrophils in the main channel[35]; (B)An overview of the microfluidic chip showing the flow of the nutrient streams and the nutrient +Cipro containing streams[36]; (C) Microfluidic chip which can monitor the responses of sensitive and drug resistant strains, including four separated main channels and small chambers on both sides of the channels[38].

此外，微流控趨化性檢測在環(huán)境中的應用也逐漸得到重視，主要包括環(huán)境監(jiān)測、物質的毒性測試、土壤中或水中的細菌對污染物的趨化性等。Buffi等[39]將一種與砷接觸會發(fā)出綠色熒光的大腸桿菌包裹在瓊脂糖小球中放入微流控芯片(圖6A)，使小球聚集在芯片下游的腔室中，當含有砷的水樣通入芯片后，與腔室中小球內部的大腸桿菌接觸反應，使大腸桿菌發(fā)出綠色熒光，根據(jù)大腸桿菌發(fā)出熒光的強弱可檢測水中砷的含量，檢測限可精確到μg/L級別；Zheng等[40]采用了“圣誕樹”型結構的微流控芯片來探究重金屬毒性(圖6B)，這一裝置是通過圣誕樹結構產(chǎn)生濃度梯度，在下半部趨化性檢測部分的小室中通入海洋微藻，微藻由于不同濃度的重金屬影響，其運動行為受到了干擾，最后通過計算芯片小室中海洋微藻的運動來檢測重金屬的毒性。Boehm等[41]開發(fā)了一種可以快速檢測和識別細菌的微流控芯片(圖6C)，該芯片基于電阻抗的方法檢測細菌，通過固定的單克隆抗體，成功檢測出水中濃度為104CFU/mL的大腸桿菌。

圖6 微流控趨化性研究在環(huán)境中的應用: (A)將細菌趨化性用于探究污水中砷含量的微流控芯片[39]；(B)將圣誕樹結構微藻動力檢測微流控芯片應用于重金屬毒性檢測[40]；(C)懸浮細胞(1)或附著細胞(2)阻抗式細胞傳感器應用于水中細菌的快速檢測[41]。Fig.6 Application of microfluidics-based chemotaxis studies in environment: (A) A microfluidic biosensor for arsenite detection in aqueous samples[39]; (B) Microalgal motility measurement microfluidic chip for toxicity assessment of heavy metals[40]； (C) Schematic drawing of impedance-based bacteria sensor for suspended (1) and attached cells (2)[41].

目前，在環(huán)境領域，微流控芯片的研究主要集中在大腸桿菌、銅綠假單胞桿菌等常見易培養(yǎng)的細菌，如果將微流控芯片技術引入到污水細菌的研究中，把傳統(tǒng)的搖瓶、孔板或反應器轉變?yōu)樾〉男酒?，可能會為污水中細菌的抑制或降解實驗提供一種新的方法，并獲得比傳統(tǒng)實驗方法更多的信息。

5 結 語

由于微流控裝置的材料和結構靈活多變、易于調控，且可以根據(jù)檢測需要選擇合適的工作方式，因此為微生物趨化性檢測提供了新的方法。但是，在未來的發(fā)展中，仍然需要解決一些瓶頸問題，主要包括: (1)功能單一，目前的研究多數(shù)停留在趨化性檢測的定性與定量階段，難以實現(xiàn)有效的混菌篩選。(2)定量分析困難，現(xiàn)有的研究更多集中在趨化劑濃度梯度調控和和流體剪切力影響，對于微生物所處微環(huán)境的更多要素缺少調控。(3)預處理問題，如何減少預處理對微生物活性的影響，尤其是厭氧微生物或者未培養(yǎng)微生物。(4)檢測手段的局限性，雖然熒光標記技術獲得了快速的發(fā)展，但是相對種類龐大的微生物家族仍然不足。微流控與電化學以及拉曼成像技術的結合或將成為解決途徑。

隨著微流控技術的不斷發(fā)展，趨化性檢測技術會趨于更加便攜可控、形式創(chuàng)新的方向發(fā)展，不僅在實驗應用中提供便利，還會在實際工程中發(fā)揮重要作用。

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This work was supported by the National Natural Science Foundation of China (No.61674046).

AdvanceinBacteriaChemotaxisonMicrofluidicDevices

ZANG Xiao-Qian1, LI Zhe-Yu1, ZHANG Xiao-Yan1, JIANG Lei2, REN Nan-Qi1, SUN Kai*1
1(StateKeyLaboratoryofUrbanWaterResourceandEnvironment,
HarbinInstituteofTechnology,Harbin150090,China)
2(TechnicalInstituteofPhysicsandChemistry,ChineseAcademyofSciences,Beijing100101,China)

Chemotaxis is the response ability of motile cells to chemicals gradients in environment and the migration toward higher concentration of chemoattractant or lower concentration of repellent. This mechanism is a basic nature of microorganisms to adapt to the environmental changes. The research of microbial chemotaxis is of great significance in utilizing bacteria to solve environment problems, control the pathogen infection, and develop microbial industrial projects. Microfluidic devices can realize qualitatively and quantitatively detect of bacterial chemotaxis. In comparison with traditional detect methods, microfluidic assay has an accurate control over bacterial microenvironment, with a higher sensitivity. In the past few years, bacterial chemotaxis study based on microfluidic assay was developed rapidly. In this paper, the microfluidic chemotaxis detectors that appeared in recent years were introduced from the aspect of chip structure, working principle and their applications. Finally, we provided insights into the challenges of bacterial chemotaxis and provided future perspectives.

Macrofluidics; Bacteria; Chemotaxis; Microenvironment; Review

24 April 2017; accepted 18 May 2017)

10.11895/j.issn.0253-3820.170259