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超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時檢測雞肉中氯霉素、四環(huán)素、金霉素和土霉素

2017-09-22 05:43:32梅英杰史新宇董瑾朱西雷張貞理李德剛
食品與發(fā)酵工業(yè) 2017年8期
關(guān)鍵詞:金霉素氯霉素土霉素

梅英杰,史新宇,董瑾,朱西雷,張貞理,李德剛

1(山東理工大學 化學工程學院,山東 淄博,255000) 2(淄博市食品藥品檢驗研究院,山東 淄博,255000) 3 (淄博市產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗所,山東 淄博,255000)

超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時檢測雞肉中氯霉素、四環(huán)素、金霉素和土霉素

梅英杰1,2,史新宇3,董瑾2,朱西雷2,張貞理2,李德剛1*

1(山東理工大學 化學工程學院,山東 淄博,255000) 2(淄博市食品藥品檢驗研究院,山東 淄博,255000) 3 (淄博市產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗所,山東 淄博,255000)

采用固相萃取法對雞肉中氯霉素、四環(huán)素、金霉素和土霉素殘留同時提取、凈化、富集,并建立了用超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法對4種抗生素定性定量檢測的分析方法。前處理部分采用含0.1%三氯乙酸的乙腈為提取溶劑,飽和了乙腈的正己烷溶液去除脂肪,超聲波萃取2次;采用HLB固相萃取柱凈化;色譜部分采用BEH C18色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7μm),乙腈-0.2%甲酸水(含5 mmol/L乙酸銨)為流動相進行梯度洗脫。在最優(yōu)條件下氯霉素、四環(huán)素、金霉素和土霉素在相應(yīng)濃度范圍內(nèi),線性良好,相關(guān)系數(shù)R2均大于0.999,其檢出限分別為0.1、3.2、16.0、9.0μg/kg,日內(nèi)、日間相對標準偏差(n=5)分別小于5.0%和10.0%,平均回收率為80.1%~92.5%。

氯霉素;四環(huán)素;固相萃?。怀咝б合嗌V-串聯(lián)質(zhì)譜

抗生素添加到飼料中,能有效提高飼養(yǎng)物的存活率和生長速度[1]。隨著肉制品的需求不斷加大,以及養(yǎng)殖過程中畜禽疾病頻發(fā),診斷難度增大,導致養(yǎng)殖業(yè)抗生素藥物濫用、過量使用現(xiàn)象日趨嚴重[2]。人們食用含抗生素殘留的肉制品后,抗生素殘留物會在人體蓄積,會對人體健康造成有害影響[3]。另一方面,這些抗生素殘留會伴隨動物尿液、糞便等轉(zhuǎn)移到外部環(huán)境中,而這些排泄物中有些抗生素成分還未失活,在環(huán)境中積累、富集,進而對土壤的生態(tài)環(huán)境和動植物體造成影響。

目前,動物性食品中氯霉素與四環(huán)素類的檢測方法主要有酶聯(lián)免疫法[3]、微生物學法[4]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[5]、液相色譜法[6]與液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[7-9]等。酶聯(lián)免疫法操作簡便,特異性強,常用于批量樣品的快速篩選,但定量準確度較差;微生物學法易于操作,成本低,但檢測周期長,特異性差,干擾多;氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法檢測時需進行衍生化,操作繁瑣費時;液相色譜法采用光譜檢測時定性手段較單一,易出現(xiàn)假陽性結(jié)果;液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法(LC-MS)通過液相色譜將目標物分離,以質(zhì)譜儀為定性定量手段,可有效避免假陽性結(jié)果。超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)(UPLC-MS/MS)相比較傳統(tǒng)的LC-MS,顯著提高了檢測的靈敏度、準確度、重復性,能更好地適應(yīng)現(xiàn)代檢測技術(shù)對高通量、高精度的需要,在抗生素殘留分析應(yīng)用中發(fā)展迅速[10-13]。本文以固相萃取為前處理手段,通過UPLC-MS/MS分析,建立一套完整的分析方法,實現(xiàn)對雞肉中氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素同時提取、同時檢測。

1 材料與方法

1.1實驗儀器、試劑

1.1.1 實驗儀器

電子天平(MS205DU),METTLER TOLEDO公司;電子天平(ML204/02),梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;氮吹儀(HN200),海能儀器有限公司;固相萃取儀(JTCQ-24B),杭州聚同電子有限公司;高速冷凍離心機(TGL-20M),長沙湘儀離心機儀器有限公司;超聲波清洗儀(SK2200H),上??茖С晝x器有限公司;超純水儀(Integral 5),MILLIPORE公司;超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀(ACQUITY Quattro Premier XE),美國沃特斯公司。

1.1.2 實驗試劑

氯霉素標準物質(zhì)(≥99.8%),中國計量科學研究院;四環(huán)素、金霉素、土霉素單標溶液(100 μg/mL),農(nóng)業(yè)部環(huán)境保護科研監(jiān)測所;乙酸銨(分析純)、三氯乙酸(分析純),天津市福晨化學試劑廠;無水Na2SO4(分析純),萊陽市經(jīng)濟技術(shù)開發(fā)區(qū)精細化工廠;正己烷(HPLC級)、甲酸(HPLC級),天津市科密歐化學試劑有限公司;甲醇(HPLC級)、乙腈(HPLC級),F(xiàn)isher公司。

1.2標準溶液的配制

1.2.1 標準儲備液的配制

準確稱取氯霉素10 mg于100 mL燒杯中,加入約30 mL甲醇溶解,溶解較慢時可超聲5min加速溶解,待標準物質(zhì)完全溶解后,轉(zhuǎn)入100 mL棕色容量瓶中,并用甲醇定容至100 mL,該標準儲備液濃度為100 mg/L,配制好后,放入4 ℃冰箱中保存。

1.2.2 混合標準使用液的配制

分別準確移取濃度均為100 mg/L的氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素各1.0 mL于10 mL棕色容量瓶中,加甲醇至刻度,配制成單標中間液濃度為10 mg/L,配制好后放入4℃冰箱中保存。

用甲醇稀釋分別配制不同濃度系列的混合標準使用液,經(jīng)0.2μm微孔濾膜過濾后待測。

1.3流動相的配制

0.2%甲酸水溶液(含5 mmol/L的乙酸銨):稱取0.38 g乙酸銨于150 mL燒杯中,加50 mL超純水溶解,加入2 mL甲酸,轉(zhuǎn)移至1 000 mL容量瓶,加水定容至刻度。

乙腈:色譜純。

1.4樣品前處理

1.4.1 樣品的制備

購買市售白條雞,取肌肉部分。用高速組織搗碎機將樣品打碎后,將樣品混勻,放入干凈的樣品盤中,保存?zhèn)溆谩?/p>

1.4.2 提取液的配制

0.1%的三氯乙酸溶液:稱取三氯乙酸1.0g加水定容至1 L。乙腈:色譜純。乙腈飽和過的正己烷:取100 mL正己烷于分液漏斗中,加入100 mL乙腈混合至分層,取上層溶液備用。

1.4.3 提取過程

稱取5.00 g樣品于50 mL聚四氟乙烯離心管中,加入5 mL的0.1%三氯乙酸溶液,10 mL乙腈,振蕩混勻1 min后,超聲提取10 min,10 000 r/min離心5 min,上清液轉(zhuǎn)移至另一潔凈離心管中,向殘留物中再加入10 mL乙腈,超聲提取10 min,10 000 r/min離心5 min,合并上層清液,加入5.0 g無水Na2SO4,加入5 mL乙腈飽和的正己烷溶液,渦旋混合1 min后,靜置5 min,取乙腈溶液于室溫下氮氣吹干,加入0.1%三氯乙酸溶液2 mL復溶,備用。

1.4.4 樣品凈化

將Oasis HLB固相萃取柱以3 mL甲醇和3 mL超純水分別純化,將提取液注入固相萃取柱(通過固相萃取柱的流速不宜過快,基本控制在1 min/mL),以6 mL 10%甲醇水溶液淋洗小柱,抽干,加入6 mL V(甲醇)∶V(乙酸乙酯)=15∶85洗脫,抽干5 min,收集洗脫液于室溫下氮氣吹干,用1 mL流動相溶解,過濾備用。

1.5測定條件

1.5.1 液相部分

色譜柱:ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱 1.7 μm、2.1mm×50 mm ;進樣量:10μL;柱溫: 40℃;

流動相: A為0.2%甲酸水溶液(含5 mmol/L乙酸銨),B為乙腈;流速0.20 mL/min;梯度條件:0~5 min:A 90%~60%;5~6 min:A 60%~5%,A 5%保持2 min;8.1 min:A 90%。

1.5.2 質(zhì)譜條件

調(diào)整質(zhì)譜參數(shù),得到如表1所示最優(yōu)質(zhì)譜條件。

表1 質(zhì)譜條件

2 結(jié)果與討論

2.1前處理條件優(yōu)化

2.1.1 提取溶劑的選擇

從生物樣品中提取氯霉素和四環(huán)素類比較復雜,生物基質(zhì)中存在的蛋白質(zhì)會影響目標物的提取效率,因此在提取時考慮用強酸溶液或酸性溶液對蛋白質(zhì)進行分離。但是,在較強酸性環(huán)境中(pH<2.0),四環(huán)素類藥物會降解為脫水物,發(fā)生分解。因此,提取時宜選擇弱酸性溶劑。常用的弱酸性溶劑有EDTA-Mcilaine緩沖液(pH 4.0)、酸化乙腈、酸化乙腈-甲醇等。另外,三氯乙酸溶液、檸檬酸鹽緩沖液等也可用于樣品的提取和沉淀蛋白質(zhì)。張鑫等采用EDTA-Mcilaine緩沖液對雞肉中四環(huán)素類抗生素進行了提取,經(jīng)固相萃取凈化后,用UPLC-MS/MS定性定量檢測[14];洪波等采用酸化乙腈對水產(chǎn)品中四環(huán)素進行了提取,用液相色譜進行了定量檢測[15];謝寒冰等采用酸化乙腈-甲醇對豬肉中四環(huán)素類等多種抗生素進行提取,并用液相色譜-四極桿飛行時間質(zhì)譜進行了定性定量檢測[16]。氯霉素性質(zhì)穩(wěn)定,較易提取。提取動物組織中氯霉素時,常用到乙酸乙酯和乙腈溶液。馮雷等以乙酸乙酯為提取劑,對禽肉中的氯霉素進行了提取,用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法進行了定性定量檢測[17];陳劍剛等以乙腈為提取液對蝦肉中氯霉素提取后,用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法進行了定性定量檢測[18]。本文選用0.1%三氯乙酸-乙腈提取體系,在弱酸性條件下有效提取氯霉素、四環(huán)素類抗生素殘留,并同時沉淀樣品中的蛋白質(zhì),效果較好。由于動物組織中存在較多的游離脂肪,會進入到萃取液中,影響萃取效果,因此需對提取溶液進行脫脂處理,選用乙腈飽和的正己烷進行脫脂處理。

2.1.2 提取方式的選擇

在提取過程中,提取方式對目標物的提取速度和完全程度存在一定影響。提取時間在一定程度上決定了提取的完全程度,提取時間長,提取的完全程度高,但提取效率低;提取時間縮短,雖然有助于提取效率提高,但可能會造成提取不完全。實驗室常用的提取方式有:靜置提取、振蕩提取和超聲波提取等。實驗中,對靜置提取,振蕩提取和超聲波提取分別作了比較。發(fā)現(xiàn)3種提取方式分別提取時,短時間內(nèi),超聲波提取的回收率最高,振蕩提取次之,靜置提取最低,這是由于在短時間內(nèi)靜置提取和振蕩提取對樣品的浸潤和滲透能力不足,造成提取效果的降低。而利用超聲波提取時,由于超聲波的“空化”作用,加速了目標物的溶出,提取效率提高。因此,在實驗中選取超聲波提取作為目標物提取方式。

2.1.3 固相萃取條件的選擇與優(yōu)化

固相萃取柱選用Oasis HLB柱,其鍵合相為N-乙烯吡咯烷酮和親脂性的二乙烯基苯聚合物,其回收率好于普通的C18小柱。固相萃取過程中,洗脫液的選擇對目標物回收率有重要影響。由于測試樣品為動物組織,基質(zhì)復雜,為提高目標物的洗脫完全率,本文選用了甲醇/乙酸乙酯混合液作為洗脫劑,分別采用V(甲醇)∶V(乙酸乙酯)=5∶95、10∶90、15∶85、20∶80洗脫液對提取后的基質(zhì)加標樣品進行洗脫并測定,通過比較如圖1所示不同洗脫液對應(yīng)的目標物回收率,最終確定V(甲醇)∶V(乙酸乙酯)=15∶85 作為洗脫液。

圖1 不同洗脫液對4種目標物回收率的影響Fig.1 Effect of differenteluent on recovery

2.2分析條件優(yōu)化

2.2.1 流動相的確定

液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用分析中,流動相一般選擇黏度低,通用性好的溶液。實驗中分別選用乙腈-水、乙腈-0.2%甲酸水、乙腈-0.2%甲酸水溶液(含5 mmol/L乙酸銨)做流動相進行試驗。試驗表明,3種流動相體系對氯霉素的保留與響應(yīng)影響不大,但四環(huán)素、金霉素、土霉素靈敏度很差,無法滿足要求。采用乙腈-0.2%甲酸水體系時,四環(huán)素、金霉素靈敏度滿足要求,但土霉素靈敏度較低。采用乙腈-0.2%甲酸水溶液(含5 mmol/L乙酸銨)體系時,4種抗生素響應(yīng)均能滿足要求,故本次研究采用乙腈-0.2%甲酸水溶液(含5 mmol/L乙酸銨)作為流動相。

2.2.2 電離模式的選擇

分別配制濃度為1μg/mL的氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素的標準溶液,以流動注射方式進樣,流速為20 μL/min,分別在正離子模式(ESI+)和負離子模式(ESI-)下進行全掃描,掃描完成后,分別比較正、負離子模式下4種抗生素的響應(yīng)值,結(jié)果表明,氯霉素在負離子模式下響應(yīng)正常,正離子模式下基本無響應(yīng);四環(huán)素、金霉素、土霉素在正離子模式下響應(yīng)正常,在負離子模式下基本無響應(yīng),故采集氯離子宜選用負離子模式,四環(huán)素等采用正離子模式采集。本文采用正負離子雙通道同時采集模式實現(xiàn)對這4種抗生素同時檢測。

2.2.3 母離子與子離子的確定

本文采用三重四級桿串聯(lián)質(zhì)譜儀,通過調(diào)整質(zhì)譜參數(shù),得到化合物的一級質(zhì)譜圖,得到目標物的分子量信息,確定目標物的母離子。氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素母離子分別為m/z 320.9、444.97、479.17、461.00,與相關(guān)標準記載及文獻報道一致[7-8,19-20]。

配制氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素的標準液,根據(jù)前述確定的色譜、質(zhì)譜條件進行測定,得到如圖2所示4種抗生素的多反應(yīng)監(jiān)測色譜圖。

圖2 氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素多反應(yīng)監(jiān)測色譜圖Fig.2 Chromatograms ofChloramphenicol,tetracycline,chlortetracycline,oxytetracycline in multiple reaction monitoring (MRM) mode

從圖2可以看出,在最優(yōu)條件下,4種抗生素分離度較好,能達到基線分離,且峰形能夠滿足實驗要求,四種目標物能在10 min內(nèi)完成分離。在正負離子雙通道同時采集條件下,可實現(xiàn)四種目標物的同時檢測。4種目標物的保留時間、母離子、子離子信息如表2所示。

表2 四種目標物的質(zhì)譜信息

注:*定量離子。

本文還研究了基質(zhì)效應(yīng)對測定結(jié)果的影響,研究發(fā)現(xiàn),標準溶液和空白基質(zhì)加標溶液的色譜圖在出峰時間、基線噪聲、響應(yīng)值等方面無明顯不同,這說明樣品經(jīng)前期提取凈化后,基質(zhì)效應(yīng)對檢測結(jié)果基本無影響。

2.3線性范圍

在0.2~500 μg/L內(nèi)配制氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素的混合標準使用液,按照本研究確定的儀器條件進行測定,以標準溶液濃度為橫坐標(Xμg/L),峰面積為縱坐標(Y),擬合一次線性方程,分別得到四種目標物的一次線性回歸方程,見表3。

表3 目標物的線性回歸方程

2.4方法的檢出限和定量限

稱取5.0 g空白基質(zhì)樣品,采用基質(zhì)加標的方法添加4種抗生素,按本文確定的前處理方法和儀器條件進行檢測,按照3倍基線噪聲(S/N=3)計算方法檢出限,按照10倍基線噪聲(S/N=10)計算方法定量限,配制檢出限、定量限等同濃度標準溶液,并經(jīng)儀器檢測驗證。方法檢出限及定量限結(jié)果如表4所示。

表4 目標物的檢出限及定量限

2.5方法回收率與精密度

采用基質(zhì)加標方式,配制混合標準溶液,按照本文確定的儀器條件,考察方法日內(nèi)精密度(同一天內(nèi)連續(xù)進樣5次,n=5)和日間精密度(每天進樣1次,連續(xù)5天,n=5),得到3種濃度下4種抗生素的日內(nèi)和日間相對標準偏差(RSD),結(jié)果見表5。結(jié)果表明4種抗生素的日內(nèi)、日間相對標準偏差均小于5.0%和10.0%。3個濃度加標回收率在80.1%~92.5%之間。

表5 回收率與日內(nèi)和日間精密度(n=5)

2.6實際樣品的測定

按照本文上述建立的樣品前處理方法對10份雞肉樣品進行處理,在最優(yōu)儀器條件下,對雞肉樣品進行定性定量分析。其中,1份雞肉樣品中只檢出土霉素,定量結(jié)果為31.2 μg/kg,其多反應(yīng)監(jiān)測色譜圖如圖3所示;1份雞肉樣品中檢出土霉素和氯霉素,定量結(jié)果分別為67.3 μg/kg和6.8 μg/kg,其多反應(yīng)監(jiān)測色譜圖如圖4所示。

圖3 陽性樣品1多反應(yīng)監(jiān)測色譜圖Fig.3 MRM chromatograms of positive sample 1

圖4 陽性樣品2多反應(yīng)監(jiān)測色譜圖Fig.4 MRM chromatograms of positive sample 2

3 結(jié)論

通過優(yōu)化樣品前處理過程、色譜條件中的色譜柱、流動相組成及配比、柱溫以及質(zhì)譜條件中的錐孔電壓、毛細管電壓、離子源溫度、脫溶劑氣溫度等因素,確立了雞肉中氯霉素、四環(huán)素、金霉素、土霉素抗生素殘留的UPLC-MS/MS分析方法。4種目標物在相應(yīng)濃度范圍內(nèi)線性良好,相關(guān)系數(shù)(R2)為0.999 2~0.999 6,檢出限分別為0.1、3.2、16.0、9.0 μg/kg。

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Determinationofchloramphenicol,tetracycline,chlortetracyclineandoxytetracyclineinchickenbyultraperformanceliquidchromatography-tandemmassspectrometry

MEI Ying-jie1,2,SHI Xin-yu3,DONG Jin2,ZHU Xi-lei2,ZHANG Zhen-li2,LI De-gang1*

1 (College of Chemical Engineering,Shandong University of Technology,Zibo 255000,China) 2 (Zibo Institute for Food and Drugcontrol,Zibo 255000,China) 3 (Zibo Institute of Product Quality Supervision & Inspection,Zibo 255000,China)

A solid phase extraction column clean-up and ultra performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry (UPLC-MS/MS) method was developed for simultaneous determination of chloramphenicol,tetracycline,chlortetracycline and oxytetracycline in chicken products.In the pre-treatment process,the sample was extracted with 0.1% trichloroacetic acid-acetonitrile and ultrasonic treatment twice,and fat was removed by acetonitrile saturated n-hexane.HLB solid phase extraction column was used to purify.BEH C18(2.1 mm×50 mm,1.7 μm) column was used and acetonitrile-0.2% formic acid (containing 5mmol/L ammonium acetate) was the gradient eluent.Under the above optimized conditions,chloramphenicol,tetracycline,chlortetracycline and oxytetracycline had a good linear correlation in the corresponding concentration ranges (R2> 0.999).The detection limits of four substances were 0.1,3.2,16.0,9.0 μg/kg,respectively.Intra-day and inter-day relative standard deviations (n= 5) were less than 5.0% and 10.0% respectively.The average recoveries were between 80.1% and 92.5%.

chloramphenicol; tetracycline; solid phase extraction; ultra performance liquid chromatography -tandem mass spectrometry(UPLC-MS/MS)

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.011905

學士,工程師(李德剛副教授為通訊作者,E-mail:ldg@sdut.edu.cn)。

2016-05-09,改回日期:2017-02-27

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