張世陽(yáng)，徐修才，焦莉莉，顧永昊，談敏

(安徽醫(yī)科大學(xué)附屬省立醫(yī)院，a 老年醫(yī)學(xué)科,b 中心實(shí)驗(yàn)室,c 眼科，合肥 230001)

·基礎(chǔ)研究·

根皮苷對(duì)糖基化低密度脂蛋白誘導(dǎo)大鼠視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)乳脂肪球表皮生長(zhǎng)因子8的影響

張世陽(yáng)a，徐修才b，焦莉莉a，顧永昊c，談敏a

(安徽醫(yī)科大學(xué)附屬省立醫(yī)院，a 老年醫(yī)學(xué)科,b 中心實(shí)驗(yàn)室,c 眼科，合肥 230001)

目的 研究根皮苷(PHL)對(duì)糖基化低密度脂蛋白(gly-LDL)誘導(dǎo)大鼠視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細(xì)胞(RMVEC)表達(dá)乳脂肪球表皮生長(zhǎng)因子8(MFG-E8)的影響，探討PHL治療糖尿病視網(wǎng)膜病變(DR)的作用及其機(jī)制。方法 體外培養(yǎng)大鼠RMVEC，分別進(jìn)行不同濃度的gly-LDL與聯(lián)合PHL+gly-LDL的處理。采用TUNEL方法觀察不同處理?xiàng)l件下大鼠RMVEC的細(xì)胞凋亡。利用蛋白質(zhì)免疫印跡方法(Western blotting)檢測(cè)大鼠RMVEC 表達(dá)MFG-E8的變化。結(jié)果 與對(duì)照組相比，gly-LDL誘導(dǎo)大鼠RMVEC發(fā)生明顯的細(xì)胞凋亡形態(tài)學(xué)變化，凋亡細(xì)胞的比例顯著增多達(dá)到36.52%(P<0.01)，預(yù)先經(jīng)PHL(800 μmmol/L)孵育后，細(xì)胞凋亡明顯減少至20.45%(P<0.01)；與對(duì)照組(蛋白表達(dá)灰度值0.290±0.008)比較，gly-LDL誘導(dǎo)組蛋白MFG-E8表達(dá)明顯降低，并呈現(xiàn)濃度依賴(lài)性(蛋白表達(dá)灰度值分別為0.215±0.009、0.165±0.002、0.117±0.014與0.092±0.004，P<0.01)；經(jīng)PHL預(yù)處理后，gly-LDL誘導(dǎo)的MFG-E8表達(dá)明顯升高，伴隨PHL給藥濃度的增加，MFG-E8的表達(dá)逐漸上調(diào)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(蛋白表達(dá)灰度值分別為0.343±0.008、0.373±0.002與0.404±0.006，P<0.01)。結(jié)論 PHL可能通過(guò)顯著改善蛋白MFG-E8的表達(dá)，從而抑制gly-LDL誘導(dǎo)的大鼠RMVEC的細(xì)胞凋亡，實(shí)現(xiàn)對(duì)DR的保護(hù)作用。

糖尿病視網(wǎng)膜病變;根皮苷;脂蛋白類(lèi),LDL;表皮生長(zhǎng)因子;大鼠,Sprague-Dawley

糖尿病視網(wǎng)膜病變(DR)是糖尿病最常見(jiàn)的微血管并發(fā)癥之一，也是成年人群中視力損害與致盲的主要病因。DR的發(fā)病機(jī)制非常復(fù)雜，有研究認(rèn)為，糖尿病環(huán)境中長(zhǎng)期的高血糖以及脂質(zhì)代謝異常導(dǎo)致低密度脂蛋白過(guò)度的糖基化，后者介導(dǎo)與促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞的凋亡與內(nèi)皮功能障礙是DR發(fā)生與發(fā)展的重要病理生理機(jī)制[1-3]。乳脂肪球表皮生長(zhǎng)因子8(MFG-E8)最初認(rèn)為是小鼠乳腺上皮細(xì)胞表面分泌的一種外周蛋白，晚近的研究發(fā)現(xiàn)MFG-E8參與了細(xì)胞凋亡、細(xì)胞外基質(zhì)重塑以及炎癥介導(dǎo)等多種生物學(xué)功能[4]。前期的蛋白質(zhì)組學(xué)研究表明[5]，蛋白MFG-E8在db/db糖尿病小鼠視網(wǎng)膜組織表達(dá)明顯下調(diào)，提示MFG-E8可能與DR密切相關(guān)。根皮苷(PHL)是一種來(lái)源于蘋(píng)果類(lèi)植物的天然藥物，其治療DR的作用已有多項(xiàng)基礎(chǔ)研究結(jié)果證實(shí)[6-7]。本實(shí)驗(yàn)研究PHL對(duì)于糖基化低密度脂蛋白(gly-LDL)誘導(dǎo)大鼠視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細(xì)胞(RMVEC)表達(dá)MFG-E8的影響，以探討PHL治療DR的作用及其機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 動(dòng)物、試劑與藥品 雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠來(lái)源于常州卡文斯實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司，RPMI1640、M199培養(yǎng)基來(lái)源于美國(guó)Hyclone公司、TUNEL試劑盒購(gòu)自瑞士Biotool公司、BCA蛋白定量試劑盒購(gòu)自江蘇凱基公司、鼠MFG-E8抗體購(gòu)自英國(guó)Abcom公司、兔抗大鼠因子Ⅷ多克隆抗體與兔抗大鼠CD31多克隆抗體購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz公司，PHL購(gòu)自中國(guó)天津尖峰天然藥物研究開(kāi)發(fā)有限公司(批號(hào)：1005004-19，純度98%)。

1.1.2 儀器 細(xì)胞培養(yǎng)箱(Thermo Scientific 8000)、倒置拍照顯微鏡(Leica DMI3000B)、電泳儀(Bio-Rad Mini Protean 3 Cell)、電轉(zhuǎn)儀(大連競(jìng)邁PS-9)與酶標(biāo)儀(Thermo MK3)。

1.2 方法

1.2.1 體外分離、培養(yǎng)與鑒定大鼠RMVEC 體外分離大鼠視網(wǎng)膜以及體外培養(yǎng)大鼠RMVEC方法同文獻(xiàn)[8]，利用倒置顯微鏡觀察原代RMVEC的細(xì)胞形態(tài)。

1.2.2 大鼠RMVEC的體外鑒定 將培養(yǎng)的RMVEC接種于放油載玻片的培養(yǎng)皿中，至細(xì)胞爬滿(mǎn)載玻片80%時(shí)棄培養(yǎng)液，取出培養(yǎng)皿，加入PBS 300 μL清洗2遍，加入150 μL 4% 多聚甲醛固定液，室溫固定30 min。加入150 μL 0.1% Triton x-100，室溫靜置15 min。再加入300 μL的PBS，靜置5 min。然后加入200 μL 5% BSA封閉液，置于37 ℃，5 % CO2培養(yǎng)箱1 h。分別加入50 μL兔抗大鼠CD31多克隆抗體(1∶50稀釋)和兔抗大鼠因子Ⅷ多克隆抗體(1∶50稀釋)，4 ℃過(guò)夜孵育。PBS洗滌后滴加FITC標(biāo)記的羊抗兔二抗(1∶50稀釋)，37 ℃孵育1 h。PBS甘油封片后熒光顯微鏡下觀察。RMVEC純度=免疫陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)。

1.2.3 gly-LDL的制備 LDL的糖基化制備方法參考文獻(xiàn)[9]。制備的gly-LDL分裝EP管氮?dú)饷芊? ℃避光保存。

1.2.4 細(xì)胞凋亡的檢測(cè) RPMI1640完全培養(yǎng)基將PHL稀釋為800 μmol/L，將gly-LDL稀釋為100 μg/mL進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。PHL提前與RMVEC預(yù)先孵育4 h，然后加入gly-LDL孵育48 h。實(shí)驗(yàn)分3組：對(duì)照組、gly-LDL組以及gly-LDL聯(lián)合PHL組。TUNEL操作參考Biotool試劑盒說(shuō)明書(shū)，軟件ImageJ計(jì)算各組RMVEC細(xì)胞凋亡率。

1.2.5 RMVEC細(xì)胞表達(dá)蛋白MFG-E8的檢測(cè) 分別進(jìn)行兩個(gè)階段的獨(dú)立實(shí)驗(yàn)檢測(cè)不同處理?xiàng)l件下細(xì)胞蛋白MFG-E8的表達(dá)。實(shí)驗(yàn)分組一分為5組：空白對(duì)照組、gly-LDL 12.50、25.00、50.00與100.00 mg/L四個(gè)藥物濃度組。實(shí)驗(yàn)分組二分為5組：空白對(duì)照組(CK)以及CK+gly-LDL、CK+gly-LDL+PHL 200 μmol/L、CK+gly-LDL+PHL 400 μmol/L與CK+gly-LDL+PHL 800 μmol/L(實(shí)驗(yàn)分組二中各組gly-LDL濃度均為100 mg/L)。按照Western blotting常規(guī)操作，包括各組細(xì)胞總蛋白提取濃度測(cè)定、SDS-PAGE制備上樣電泳、轉(zhuǎn)膜、目標(biāo)蛋白抗體孵育以及顯色等標(biāo)準(zhǔn)流程檢測(cè)各相應(yīng)分組RMVEC細(xì)胞MFG-E8蛋白表達(dá)的變化。并利用各顯色條帶的灰度值進(jìn)行半定量分析。

2 結(jié)果

2.1 原代大鼠RMVEC的形態(tài)學(xué)特征 原代培養(yǎng)的RMVEC在24 h細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)，形狀為梭形、三角形或多角形。5 d左右形成細(xì)胞集落。10 d后細(xì)胞融合，呈現(xiàn)鋪路石樣生長(zhǎng),見(jiàn)圖1。

圖1 原代大鼠RMVEC的形態(tài)學(xué)特征(×100)

2.2 原代大鼠RMVEC的體外鑒定 免疫熒光細(xì)胞染色顯示，因子Ⅷ免疫熒光染色，細(xì)胞核周?chē)霈F(xiàn)較強(qiáng)的黃綠色熒光反應(yīng)。CD31因子免疫熒光染色，細(xì)胞呈現(xiàn)特異性黃綠色熒光。大部分活細(xì)胞為免疫陽(yáng)性細(xì)胞，純度達(dá)到90%以上。見(jiàn)圖2。

2.3 gly-LDL對(duì)大鼠RMVEC細(xì)胞凋亡的作用以及PHL的影響 對(duì)照組RMVEC細(xì)胞凋亡率為1.24%，gly-LDL(100 mg/L)誘導(dǎo)48h的RMVEC細(xì)胞凋亡率達(dá)到36.52%，經(jīng)χ2檢驗(yàn)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)，gly-LDL(100 mg/L)誘導(dǎo)組的細(xì)胞凋亡率顯著高于對(duì)照組。PHL(800 μmmol/L)預(yù)先孵育后RMVEC細(xì)胞凋亡率為20.45%，與gly-LDL(100 mg/L)誘導(dǎo)組細(xì)胞凋亡率比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)，PHL (800 μmmol/L)預(yù)先孵育RMVEC可顯著降低細(xì)胞的凋亡。見(jiàn)圖3。

2.4 gly-LDL對(duì)大鼠RMVEC細(xì)胞表達(dá)MFG-E8的影響 與對(duì)照組比較，gly-LDL處理48 h可導(dǎo)致RMVEC細(xì)胞表達(dá)MFG-E8顯著下調(diào)，隨著gly-LDL濃度的增加，MFG-E8的表達(dá)逐漸下調(diào)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。見(jiàn)圖4。

2.5 PHL對(duì)大鼠RMVEC表達(dá)MFG-E8的影響 與對(duì)照組(CC)比較，gly-LDL誘導(dǎo)明顯下調(diào)RMVEC細(xì)胞的MFG-E8表達(dá)(P<0.01)，PHL預(yù)先孵育48 h可以顯著上調(diào)gly-LDL誘導(dǎo)的RMVEC細(xì)胞MFG-E8表達(dá)，隨著PHL給藥濃度的增加，MFG-E8的表達(dá)逐漸上調(diào)，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。見(jiàn)圖5。

與對(duì)照組比較，aP<0.01；與gly-LDL組比較，bP<0.01

圖3 gly-LDL(100 mg/L)對(duì)大鼠RMVEC細(xì)胞凋亡的作用以及PHL(800 μmmol/L)的影響

與對(duì)照組比較，aP<0.01

A：柱狀圖；B：電泳圖

圖2 原代大鼠RMVEC的體外鑒定(免疫熒光細(xì)胞染色，×200)

CC組為對(duì)照組；CC+gly-LDL組為gly-LDL誘導(dǎo)組；PHL 200組為聯(lián)合PHL 200 μmmol/L組；PHL 400組為聯(lián)合PHL 400 μmmol/L組；PHL 800組為聯(lián)合PHL 800 μmmol/L組；與對(duì)照組比較，aP<0.01

圖5 PHL對(duì)大鼠RMVEC表達(dá)MFG-E8的影響

3 討論

DR是糖尿病在眼部的最重要并發(fā)癥，現(xiàn)已成為成年人群中視力漸進(jìn)性損害與致盲的主要病因。隨著全球范圍內(nèi)糖尿病患病率的日益升高以及糖尿病病程的自然延長(zhǎng)，DR給患者、家庭以及社會(huì)帶來(lái)更多的危害與負(fù)擔(dān)。研究[10]表明，嚴(yán)格的血糖控制能顯著減低DR進(jìn)展的風(fēng)險(xiǎn)，但在臨床實(shí)踐中長(zhǎng)期控制血糖達(dá)標(biāo)并非易事，而可能發(fā)生低血糖事件帶來(lái)的危害更有可能抵消血糖良好控制的獲益。激光光凝治療DR效果確切，仍是中晚期階段DR治療的重要方法，但存在很多局限性與不良反應(yīng)，如導(dǎo)致視力減退、視野損傷、暗適應(yīng)和對(duì)比敏感度下降等，從而限制了其在臨床上的廣泛應(yīng)用。因此，探討DR早期的病理生理機(jī)制并尋找有效安全的干預(yù)藥物具有重要的意義。

視網(wǎng)膜血管內(nèi)皮細(xì)胞、血管周細(xì)胞以及神經(jīng)元、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞等凋亡是DR早期的重要病理學(xué)基礎(chǔ)，氧化應(yīng)激損傷在促進(jìn)細(xì)胞凋亡作用中發(fā)揮著重要作用[11]。PHL是一種天然的多酚類(lèi)化合物，其主要來(lái)源于蘋(píng)果類(lèi)的植物種屬。人類(lèi)認(rèn)識(shí)PHL已有近百年的歷史，最初PHL用于治療發(fā)熱以及感染性疾病，隨后的研究發(fā)現(xiàn)，PHL及其衍生物作為鈉-葡萄糖協(xié)同轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(SGLT)抑制劑作用于腎小管SGLT蛋白促進(jìn)葡萄糖在腎臟的排泄，因此PHL具有調(diào)節(jié)血糖的效應(yīng)以及被作為中介研究腎臟代謝功能。晚近的研究還發(fā)現(xiàn)[12-13]，PHL具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤、保肝以及類(lèi)雌激素樣作用。相關(guān)報(bào)道與研究為PHL在DR上的應(yīng)用奠定了實(shí)驗(yàn)與理論基礎(chǔ)。目前已有多個(gè)基礎(chǔ)研究深入探討PHL對(duì)于DR的影響與作用。Wakisaka等[7]報(bào)道，體外培養(yǎng)的牛視網(wǎng)膜血管周細(xì)胞在高糖誘導(dǎo)后出現(xiàn)周細(xì)胞內(nèi)葡萄糖過(guò)量積聚、膠原蛋白水平升高、DNA合成減少以及周細(xì)胞胞體的腫脹等血管周細(xì)胞形態(tài)與功能學(xué)的異常，PHL的干預(yù)可以顯著改善高糖刺激下的周細(xì)胞損傷。我們前期的研究在體內(nèi)動(dòng)物整體層面觀察了PHL對(duì)于糖尿病視網(wǎng)膜損害的影響，選擇C57BLKS/J db/db品系小鼠模擬并建立2型糖尿病DR動(dòng)物模型并采用PHL干預(yù)治療，結(jié)果發(fā)現(xiàn)PHL處理能夠明顯減少db/db小鼠視網(wǎng)膜神經(jīng)元細(xì)胞的凋亡以及神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的增生[5]。本研究模擬糖尿病內(nèi)環(huán)境即利用gly-LDL刺激下體外培養(yǎng)的大鼠RMVEC導(dǎo)致細(xì)胞凋亡顯著增加，PHL預(yù)先干預(yù)明顯改善RMVEC的細(xì)胞凋亡，該實(shí)驗(yàn)結(jié)果報(bào)道了PHL可以改善gly-LDL誘導(dǎo)的大鼠RMVEC細(xì)胞凋亡，實(shí)現(xiàn)PHL對(duì)于DR的早期保護(hù)作用。然而，PHL治療DR的作用分子機(jī)制研究尚未闡明。

MFG-E8蛋白即乳脂肪球上皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子，是乳凝集素家族的重要成員。研究發(fā)現(xiàn)MFG-E8參與了細(xì)胞遷移、細(xì)胞增殖、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、細(xì)胞外基質(zhì)重塑以及炎癥介質(zhì)等多種生物學(xué)功能，并可能在衰老、糖尿病等動(dòng)脈粥樣硬化性相關(guān)疾病中扮演著重要角色。前期基于iTRAQ的蛋白質(zhì)組定量研究視網(wǎng)膜差異蛋白組發(fā)現(xiàn)，db/db糖尿病小鼠視網(wǎng)膜組織表達(dá)蛋白MFG-E8較健康對(duì)照組明顯下調(diào)，PHL干預(yù)后該蛋白顯著回調(diào)，提示MFG-E8的代謝失調(diào)可能與DR的發(fā)生有著密切關(guān)系[5]。本研究在離體培養(yǎng)大鼠RMVEC細(xì)胞層面研究gly-LDL刺激下MFG-E8蛋白表達(dá)的變化，結(jié)果顯示RMVEC細(xì)胞在不同濃度的gly-LDL誘導(dǎo)均導(dǎo)致表達(dá)MFG-E8的下調(diào)，MFG-E8的下調(diào)程度且與gly-LDL的濃度呈現(xiàn)劑量依賴(lài)性，給予RMVEC預(yù)處理PHL可明顯改善gly-LDL誘導(dǎo)的MFG-E8表達(dá)下調(diào)，并且隨著PHL濃度的升高，該蛋白MFG-E8的表達(dá)呈現(xiàn)劑量一致的恢復(fù)。MFG-E8介導(dǎo)的PHL保護(hù)糖尿病視網(wǎng)膜損傷的詳細(xì)作用機(jī)制并不清楚。在真實(shí)世界的慢性阻塞性肺疾病、系統(tǒng)性紅斑狼瘡以及類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎等患者血清中MFG-E8水平明顯降低，且與患者的病變嚴(yán)重程度成正相關(guān)，MFG-8可能通過(guò)炎癥介導(dǎo)參與了炎癥相關(guān)性疾病的發(fā)生與進(jìn)展[14-16]。MFG-E8作為連接巨噬細(xì)胞與凋亡細(xì)胞的橋梁分子在細(xì)胞凋亡的過(guò)程中發(fā)揮著獨(dú)特而重要的作用。Ait-Oufella等[17]研究發(fā)現(xiàn)，缺乏MFG-E8基因表達(dá)的小鼠其體內(nèi)凋亡細(xì)胞被吞噬明顯減少，導(dǎo)致凋亡細(xì)胞呈現(xiàn)碎片化的堆積，促進(jìn)了小鼠血管病變的發(fā)生與發(fā)展。凋亡是DR的發(fā)生的病理生理學(xué)基礎(chǔ)，氧化應(yīng)急損傷以及炎癥在DR的進(jìn)展中也發(fā)揮著舉足輕重的作用，MFG-E8是否通過(guò)凋亡、炎癥介導(dǎo)或其他機(jī)制參與DR的發(fā)展以及介導(dǎo)PHL對(duì)于DR的保護(hù)作用，后續(xù)研究將基于RNA干擾技術(shù)沉默目的基因深入探討。

總之，本研究發(fā)現(xiàn)gly-LDL誘導(dǎo)大鼠RMVEC后，能夠?qū)е录?xì)胞的凋亡以及細(xì)胞表達(dá)MFG-E8蛋白的下調(diào)，PHL的預(yù)處理至少可能通過(guò)改善細(xì)胞MFG-E8表達(dá)的失調(diào)抑制RMVEC細(xì)胞的凋亡實(shí)現(xiàn)對(duì)于DR的保護(hù)作用。

[1] JEON WS,PARK SE,RHEE EJ,et al.The association of serum glycated albumin with the prevalence of diabetic retinopathy in Korean patients with type 2 diabetes mellitus[J].Diabetes Res Clin Pract,2016,116(1):46-53.

[3] ZHANG SX,WANG JJ,DASHTI A,et al.Pigment epithelium-derived factor mitigates inflammation and oxidative stress in retinal pericytes exposed to oxidized low-density lipoprotein[J].J Mol Endocrinol,2008,41(3):135-143.

[4] WANG M,WANG HH,LAKATTA EG.Milk fat globule epidermal growth factor VIII signaling in arterial wall remodeling[J].Curr Vasc Pharmacol,2013,11(5):768-776.

[5] ZHANG SY,LI BY,LI XL,et al.Effects of phlorizin on diabetic retinopathy according to the iTRAQ-based proteomics in db/db mice[J].Mol Vis,2013,5(19):812-821.

[6] WAKISAKA M,KITAZONO T,KATO M,et al.Sodium-coupled glucose transporter as a functional glucose sensor of retinal microvascular circulation[J].Circ Res,2001,88(11):1183-1188.

[7] WAKISAKA M,YOSHINARI M,ASANO T,et al.Normalization of glucose entry under the high glucose condition by phlorizin attenuates the high glucose-induced morphological and functional changes of cultured bovine retinal pericytes[J].Biochim Biophys Acta,1999,1453(1):83-91.

[8] 胡健艷,吳強(qiáng),宋蓓雯,等.大鼠視網(wǎng)膜微血管內(nèi)皮細(xì)胞的原代培養(yǎng)及鑒定改進(jìn)[J].眼科,2012,21(4):261-264.

[9] LI XL,LI BY,CHENG M,et al.PIMT prevents the apoptosis of endothelial cells in response to glycated low density lipoproteins and protective effects of grape seed procyanidin B2[J].PLoS One,2013,8(7):e69979.

[10] YUN SH,ADELMAN RA.Recent developments in laser treatment of diabetic retinopathy[J].Middle East Afr J Ophthalmol,2015,22(2):157-163.

[11] COUCHA M,ELSHAER SL,ELDAHSHAN WS,et al.Molecular mechanisms of diabetic retinopathy:potential therapeutic targets[J].Middle East Afr J Ophthalmol,2015,22(2):135-144.

[12] KATSUDA Y,SASASE T,TADAKI H,et al.Contribution of hyperglycemia on diabetic complications in obese type 2 diabetic SDT fatty rats:effects of SGLT inhibitor phlorizin[J].Exp Anim,2015,64(2):161-169.

[13] OSORIO H,CORONEL I,ARELLANO A,et al.Sodium-glucose cotransporter inhibition prevents oxidative stress in the kidney of diabetic rats[J].Oxid Med Cell Longev,2012(3):542042.

[14] ZHANG S,XIE JG,SU BT,et al.MFG-E8,a clearance glycoprotein of apoptotic cells,as a new marker of disease severity in chronic obstructive pulmonary disease[J].Braz J Med Biol Res,2015,48(11):1032-1038.

[15] ALBUS E,SINNINGEN K,WINZER M,et al.Milk fat globule-epidermal growth factor 8 (mfg-e8) is a novel anti-inflammatory factor in rheumatoid arthritis in mice and humans[J].J Bone Miner Res,2016,31(3):596-605.

[16] KRUSE K,JANKO C,URBONAVICIUTE V,et al.Inefficient clearance of dying cells in patients with SLE:anti-dsDNA autoantibodies,MFG-E8,HMGB-1 and other players[J].Apoptosis,2010,15(9):1098-1113.

[17] AIT-OUFELLA H,KINUGAWA K,ZOLL J,et al.Lactadherin deficiency leads to apoptotic cell accumulation and accelerated atherosclerosis in mice[J].Circulation,2007,115(16):2168-2177.

Effects of phlorizin on the expression of MFG-E8 in rats retinal microvascular endothelial cells in response to glycated low density lipoproteins

ZhangShiyang*,XuXiucai,JiaoLili,GuYonghao,TanMin

(*DepartmentofGeriatrics,AnhuiProvincialHospital,AnhuiMedicalUniversity,Hefei230001,China)

Correspondingauthor:XuXiucai,Email:xuxiucai1972@163.com

Objective To study the effects of phlorizin on the expression of MFG-E8 in rats retinal microvascular endothelial cells (RMVEC) in response to glycated low density lipoproteins (gly-LDL).Methods The primary RMVEC in rats were cultured and identified in vitro.The apoptosis of RMVEC induced gly-LDL was estimated using TUNEL.The expressions of MFG-E8 in RMVEC in the absence or presence of phlorizin were determined by Western blotting.Results Gly-LDL caused an obvious apoptosis of RMVEC compared with the control group (36.52% VS. 1.24%,P<0.01),while pretreatment with phlorizin attenuated gly-LDL mediated cells apoptosis significantly (20.45% VS. 36.52%，P<0.01).Moreover,stimulation of RMVEC with different concentrations of gly-LDL(0,12.50,25.00,50.00,100.00 μg/mL) resulted in a significant decrease in the expression of MFG-E8 (P<0.01),while the pretreatment of RMVEC with different concentrations of phlorizin (200,400,800 μmmol/L) significantly restored the gly-LDL induced decreased MFG-E8 levels in a dose dependent manner for 48h (P<0.01).Conclusions Phlorizin could inhibit RMVEC apoptosis in response to gly-LDL,possibly by the up-regulation of the protein MFG-E8 expression.

Diabetic retinopathy;Phlorhizin;Lipoproteins,LDL;Epidermal growth factor;Rats,sprague-dawley

安徽省自然科學(xué)基金(1408085MH208)

張世陽(yáng)，副主任醫(yī)師，Email:shiyangzhang73@163.com

徐修才，副主任技師，Email:xuxiucai1972@163.com

R587.26

A

10.3969/J.issn.1672-6790.2017.04.029

2016-11-16)