房德芳,石微,房新建,蘇瓊
(1江蘇省連云港中醫(yī)藥高等職業(yè)技術(shù)學(xué)校,江蘇連云港222006;2連云港市第二人民醫(yī)院)
HOXA3在乳腺癌組織中的表達(dá)及其對患者預(yù)后、細(xì)胞生物學(xué)特性的影響
房德芳1,石微1,房新建2,蘇瓊1
(1江蘇省連云港中醫(yī)藥高等職業(yè)技術(shù)學(xué)校,江蘇連云港222006;2連云港市第二人民醫(yī)院)
目的研究同源盒基因3(HOXA3)在乳腺癌組織中的表達(dá)及其對患者預(yù)后、乳腺癌細(xì)胞生物學(xué)的影響。方法用qPCR法檢測30例乳腺癌組織、癌旁組織中HOXA3 mRNA,同時(shí)對TCGA數(shù)據(jù)庫中的患者根據(jù)HOXA3平均值分為HOXA3高表達(dá)與低表達(dá),并通過生存分析比較生存率與轉(zhuǎn)移率的差異。乳腺癌細(xì)胞系MCF-7隨后分為CON、siRNA1、siRNA2組,分別轉(zhuǎn)染無效siRNA、HOXA3 siRNA1、HOXA3 siRNA2小干擾RNA,48 h后通過qPCR、Western blotting法檢測HOXA3 RNA和蛋白表達(dá),篩選出干擾能力較強(qiáng)的siRNA后,將siRNA轉(zhuǎn)染至MCF-7細(xì)胞中,以轉(zhuǎn)染無效siRNA為CON組,使用Transwell與CCK8檢測細(xì)胞遷移與增殖變化,并使用Western blotting法檢測EMT標(biāo)記物Snail、N-cadherin、Vimentin、E-cadherin蛋白。結(jié)果HOXA3 mRNA在癌及癌旁組織中的相對表達(dá)量分別為17.50±1.44、1.0±0.05,二者比較,P<0.05。HOXA3蛋白在癌及癌旁組織中的相對表達(dá)量分別為13.42±0.18、2.57±0.04,二者比較,P<0.05。HOXA3高表達(dá)者整體生存率與轉(zhuǎn)移率均降低(P均<0.05)。轉(zhuǎn)染48 h后,CON組、siRNA1組、siRNA2組HOXA3 RNA相對表達(dá)量分別為1.0±0.12、0.62±0.01、0.16±0.03,三組比較,P均<0.05。CON組、siRNA2組遷移細(xì)胞數(shù)量分別為40.57±1.68、18.33±1.01,兩組比較,P<0.05;與CON組比較,siRNA2組增殖能力減弱,P<0.05。與CON組比較,siRNA2組E-cadherin蛋白表達(dá)升高(P<0.05),Vimentin、N-cadherin、Snail蛋白表達(dá)降低(P均<0.05)。結(jié)論HOXA3在乳腺癌患者癌組織中高表達(dá),且與患者預(yù)后、轉(zhuǎn)移相關(guān),同時(shí)HOXA3表達(dá)可減弱乳腺癌細(xì)胞遷移與增殖,這一作用可能與EMT有關(guān)。
乳腺癌;同源盒基因3;上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化;細(xì)胞轉(zhuǎn)移
乳腺癌是女性最為常見的癌癥之一,占新發(fā)病例的23%及致死病例的14%[1],目前來說,盡管對于乳腺癌的早期預(yù)防、對敏感基因如BRCA1的缺失進(jìn)行檢測大大提高了乳腺癌患者的5年生存時(shí)間,乳腺癌的轉(zhuǎn)移依然成為一個亟待解決的問題[2]。乳腺癌轉(zhuǎn)移是一個極其復(fù)雜的過程,基本步驟包括癌細(xì)胞侵襲周圍組織,并通過內(nèi)滲進(jìn)入到循環(huán)系統(tǒng),癌細(xì)胞隨后堵塞于毛細(xì)血管中,并通過外滲進(jìn)入到遠(yuǎn)隔器官中[3],在這一過程中,主要的3個步驟內(nèi)滲、外滲、遠(yuǎn)隔器官的生長均需癌細(xì)胞能適應(yīng)相應(yīng)的微環(huán)境,同時(shí)能通過上皮-間質(zhì)(EMT)、間質(zhì)-上皮(MET)轉(zhuǎn)換實(shí)現(xiàn)侵襲與增殖能力的增加,EMT指細(xì)胞具有極性的上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)殚g質(zhì)細(xì)胞的過程,EMT后的類間質(zhì)細(xì)胞侵襲、遷移能力明顯增強(qiáng),同時(shí)侵入性偽足形成增多,使得細(xì)胞對細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)降解能力增強(qiáng)形成[4],因此EMT過程亦被視為乳腺癌、卵巢癌等癌癥細(xì)胞侵襲的重要環(huán)節(jié),因此尋找EMT中的關(guān)鍵蛋白,并開發(fā)特異的抑制劑,從而達(dá)到靶向治療的效果已成為研究熱點(diǎn)。同源盒(HOX)基因是一類高度保守并在胚胎發(fā)育中發(fā)揮重要作用的蛋白,HOX基因共有39種,分為A、B、C、D四類,HOX的主要功能為調(diào)控細(xì)胞分裂、黏附、增殖與分化[5],HOX基因的異常表達(dá)已在多種腫瘤中如前列腺癌[6]、結(jié)腸癌[7]、肺癌[8]等癌癥中得到證實(shí),在乳腺癌中,HOXA5、HOXA9與p53、BRCA1的調(diào)節(jié)相關(guān)[9],而HOXA1則與乳腺癌細(xì)胞的遷移、他莫昔芬治療抵抗相關(guān)[10],而HOXA3在乳腺癌細(xì)胞中的表達(dá)及作用則尚未見報(bào)道。
1.1 材料 30例人乳腺癌樣本及其相應(yīng)癌旁組織來自連云港市第二人民醫(yī)院,樣本收集過程得到連云港市第二人民醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn),人乳腺癌細(xì)胞系MCF-7購自北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)中心,siRNA由美國Invitrogen公司合成,脂質(zhì)體購自美國Invitrogen公司,TRIzol購自美國Invitrogen公司,RNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒與Takara SYBR Premix Ex Taq檢測試劑盒購自大連寶生生物公司(Takara),Transwell小室購自美國Corning公司,HOXA3一抗購自美國Abcam公司,EMT標(biāo)記物Snail、N-cadherin、Vimentin、 E-cadherin一抗購自美國Cell Signal Technology公司,二抗均購自北京中杉金橋公司,CCK8試劑盒購自日本Dojindo公司。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 人乳腺癌細(xì)胞系MCF-7培養(yǎng)于37 ℃、5%CO2孵箱中,培養(yǎng)基為DMEM+10%FBS,將細(xì)胞分為CON、siRNA1、siRNA2組,分別使用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染無效siRNA、siRNA1、siRNA2小干擾RNA,CON序列為5′-AAUUCUCCGAACGUGUCACGU-3′ ,siRNA1序列為GCATCTTGGCTGTCTGCTAAA,siRNA2序列為GTGTCAAACCCCTGTCAGAGT,脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染步驟根據(jù)Invitrogen公司說明書進(jìn)行。
1.3 HOXA3 mRNA表達(dá)檢測 采用Q-RT-PCR法。細(xì)胞總RNA提取使用酚-氯仿抽提法。細(xì)胞使用TRIzol裂解后,加入0.5倍體積氯仿,劇烈震蕩后15 000 r/min、離心15 min,取上清。加入等體積異丙醇,冰上沉淀20 min后,12 000 r/min離心10 min,取沉淀。沉淀用75%乙醇洗2次,即得到細(xì)胞總RNA。細(xì)胞總RNA隨后使用Takara 反轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄為cDNA,操作步驟根據(jù)Takara反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行,cDNA使用Takara SYBR Premix Ex Taq檢測試劑盒檢測,HOXA3引物序列: 5′-TGCTTTGTGTTTTGTCGAGACTC-3′,5′-CAACCCTACCCCTGCCAAC-3′,內(nèi)參引物GAPDH:5′-TATGCTCTCCTCATGCATTG-3′,5′-GGGACGACCTTCGATCTACC-3′。使用2-ΔΔCt表示HOXA3 mRNA的表達(dá)。
1.4 HOXA3蛋白表達(dá)檢測 采用免疫印跡法。細(xì)胞經(jīng)RIPA裂解液裂解后,加入相應(yīng)體積的Loading buffer,煮沸10 min后,加入到聚丙烯酰胺膠中,濃縮膠80 V,電泳20 min,分離膠100 V電泳40 min,待溴酚藍(lán)跑至膠板底側(cè)時(shí),裝配轉(zhuǎn)膜三明治,依次為黑板-濾紙-聚丙烯酰胺膠-活化的PVDF膜-濾紙-白板,濕法轉(zhuǎn)膜1 h后,5%脫脂奶粉封閉2 h,加入相應(yīng)一抗(1∶1 000),4 ℃孵育過夜,并加入HRP耦聯(lián)的二抗,以GAPDH為內(nèi)參,使用ECL發(fā)光液檢測蛋白的表達(dá),蛋白的相對表達(dá)量=目的蛋白表達(dá)量/GAPDH表達(dá)量。
1.5 生存曲線繪制 乳腺癌患者生存曲線數(shù)據(jù)來源于TCGA公共數(shù)據(jù)庫,以患者基因表達(dá)水平的平均值分組,并使用R語言中survival 包進(jìn)行生存分析,ggplot2包繪制生存曲線。
1.6 細(xì)胞遷移數(shù)檢測 采用Transwell 小室檢測細(xì)胞遷移能力,Transwell下室加入600 μL完全培養(yǎng)基(DMEM+10%FBS),上室加入含有1×106細(xì)胞的200 μL細(xì)胞懸液,14 h后,除去小室上方細(xì)胞,下方細(xì)胞使用結(jié)晶紫染色,顯微鏡20倍視野下對穿過小室的細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù),實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次并取平均值。
1.7 細(xì)胞增殖能力檢測 采用CCK8法,將MCF-7 CON、siRNA2細(xì)胞鋪于96孔板中,5 000/孔,同時(shí)設(shè)立復(fù)孔,待細(xì)胞貼壁后,加入0.1體積的CCK8試劑,避光37 ℃ 孵育 3 h后,使用酶標(biāo)儀檢測OD450,以第0 h的度數(shù)為基準(zhǔn),計(jì)算24、48、72 h與0 h的比值,即細(xì)胞增殖系數(shù)。在確定乳腺癌患者HOXA3高表達(dá)且與預(yù)后相關(guān)后,將HOXA3 siRNA轉(zhuǎn)染至人乳腺癌細(xì)胞系MCF-7中,48 h后使用QPCR與Western blotting法檢測HOXA3 RNA與蛋白表達(dá)。
1.8 EMT標(biāo)記物表達(dá)檢測 在乳腺癌細(xì)胞系MCF-7轉(zhuǎn)染CON(CON組)與HOXA3(HOXA3組)質(zhì)粒48 h后,使用Western blotting法檢測EMT標(biāo)記物Snail、N-cadherin、Vimentin、E-cadherin蛋白。
2.1 HOXA3在乳腺癌及癌旁組織中表達(dá)比較 HOXA3 mRNA在癌及癌旁組織中的相對表達(dá)量分別為17.50±1.44、1.0±0.05,二者比較,P<0.05。HOXA3 蛋白在癌及癌旁組織中的相對表達(dá)量分別為13.42±0.18、2.57±0.04,二者比較,P<0.05。
2.2 HOXA3表達(dá)與預(yù)后間的關(guān)系 HOXA3高表達(dá)者總體生存率為79.35%、轉(zhuǎn)移生存率為62.38%,HOXA3低表達(dá)者總體生存率為89.63%、轉(zhuǎn)移生存率為73.26%,兩者比較,P均<0.05。
2.3 HOXA3高表達(dá)與乳腺癌細(xì)胞系MCF-7遷移和增殖的關(guān)系 48 h后CON組、siRNA1組、siRNA2組HOXA3 RNA相對表達(dá)量分別為1.0±0.12、0.62±0.01、0.16±0.03,三組比較,P均<0.05。在HOXA3蛋白水平上siRNA1、CON組比較無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,siRNA2組降低(P<0.05),因此僅使用siRNA2進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。siRNA2轉(zhuǎn)染至MCF-7 48 h后,使用Transwell檢測遷移的變化,結(jié)果顯示CON組、siRNA2組遷移細(xì)胞數(shù)分別為40.57±1.68、18.33±1.01,兩組比較,P<0.05;而在轉(zhuǎn)染48 h后使用CCK8檢測增殖能力變化,siRNA2組增殖減弱,且在48、72 h時(shí)差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,P均<0.05。
2.4 EMT標(biāo)記物表達(dá)比較 與CON相比,E-cadherin表達(dá)升高,Vimentin、N-cadherin、Snail表達(dá)均降低,P均<0.05。
乳腺癌的轉(zhuǎn)移能顯著降低患者生存率、影響患者預(yù)后,而多項(xiàng)研究均表明乳腺癌的轉(zhuǎn)移與EMT密切相關(guān),因此尋找EMT中的關(guān)鍵基因并給予靶向治療成為研究熱點(diǎn)。HOX是一類保守的蛋白,盡管如此,HOX對于EMT的作用已有證實(shí),在神經(jīng)性膠質(zhì)瘤中,HOXA13被證實(shí)能通過激活wnt與TGF-β通路從而促進(jìn)EMT的發(fā)生和影響患者的預(yù)后[11],以往對乳腺癌中HOX家族的研究包括HOXA3、HOXA9、HOXB5、HOXB9等,其中HOXB5與乳腺癌細(xì)胞的EMT特性和侵襲、增殖能力密切相關(guān)[12],HOXA3在結(jié)腸癌[13]、膠質(zhì)瘤[14]及惡性淋巴瘤中[15]已被證實(shí)表達(dá)增高且與疾病的預(yù)后相關(guān),而HOXA3在乳腺癌中表達(dá)情況鮮有報(bào)道。
在本研究中,首先檢測30例乳腺癌患者中癌組織、癌旁組織的HOXA3表達(dá)水平,證實(shí)了HOXA3在乳腺癌組織中的表達(dá)顯著升高,隨后調(diào)取TCGA數(shù)據(jù)庫中乳腺癌患者信息,使用平均值將患者分為HOXA3高表達(dá)與低表達(dá)組,在對患者總體生存率以及轉(zhuǎn)移率進(jìn)行生存分析后發(fā)現(xiàn),HOXA3的高表達(dá)使得患者總體生存率、轉(zhuǎn)移生存率均降低,初步證實(shí)了HOXA3的高表達(dá)與患者的預(yù)后、轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。在確定了HOXA3的異常表達(dá)后,構(gòu)建了HOXA3特異性的siRNA,通過QOCR、Western blotting確定HOXA3 siRNA在RNA和蛋白水平的敲低效果,結(jié)果表明siRNA2在RNA和蛋白水平均具有更好的敲低效果,因此隨后將siRNA2轉(zhuǎn)染至乳腺癌細(xì)胞系MCF-7中,48 h后使用Transwell與CCK8檢測細(xì)胞增殖的變化,結(jié)果表明HOXA3的抑制使得MCF-7細(xì)胞遷移能力降低、增殖受限,進(jìn)一步證實(shí)了HOXA3對于乳腺癌細(xì)胞的遷移、增殖起到重要作用,而隨后檢測EMT相關(guān)標(biāo)記物Snail、N-cadherin、Vimentin、E-cadherin的變化后發(fā)現(xiàn),E-cadherin表達(dá)升高,Snail、N-cadherin、Vimentin表達(dá)降低,表明HOXA3對乳腺癌細(xì)胞增殖、遷移能力的影響與對EMT的作用相關(guān),Knight等[13]研究結(jié)果表明,HOXA3在結(jié)腸癌中表達(dá)增高,與結(jié)腸癌細(xì)胞的EMT特性和侵襲、增殖能力密切相關(guān),與本研究結(jié)果相似。
綜上所述,HOXA3在乳腺癌患者癌組織中高表達(dá),且與患者預(yù)后、轉(zhuǎn)移相關(guān),同時(shí)HOXA3可減弱乳腺癌細(xì)胞遷移、增殖,而這一作用可能與EMT有關(guān)。
[1] Narod SA, Iqbal J, Giannakeas V. Breast cancer mortality after a diagnosis of ductal carcinoma in situ[J]. JAMA Oncol, 2015 ,1(7):888-896.
[2] Gambino G, Tancredi M, Falaschi E. Characterization of three alternative transcripts of the BRCA1 gene in patients with breast cancer and a family history of breast and/or ovarian cancer who tested negative for pathogenic mutations[J]. Int J Mol Med, 2015,35(4):950-956.
[3] Wagenblast E, Soto M, Gutiérrez-ngel S. A model of breast cancer heterogeneity reveals vascular mimicry as a driver of metastasis[J]. Nature, 2015,520(7547):358-362.
[4] Pignatelli J, Tumbarello DA, Schmidt RP. Hic-5 promotes invadopodia formation and invasion during TGF-β-induced epithelial-mesenchymal transition[J]. J Cell Biol, 2012,197(3):421-437.
[5] Hur H, Lee JY, Yun HJ. Analysis of HOX gene expression patterns in human breast cancer[J]. Mol Biotechnol, 2014,56(1):64-71.
[6] Javed S, Langley SE. Importance of HOX genes in normal prostate gland formation, prostate cancer development and its early detection[J]. BJU Int, 2014,113(4):535-540.
[7] 嚴(yán)東旺,于振海,王冬清,等.同源異形盒基因HOXB7在結(jié)腸癌中的表達(dá)及臨床意義[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2013,30(3):438-440.
[8] 李勁松,韓亮,于洋,等.HOXB7對人非小細(xì)胞肺癌A549細(xì)胞增殖的影響[J].腫瘤防治研究,2015,42(11):1119-1123.
[9] Conway K, Edmiston SN, May R. DNA methylation profiling in the carolina breast cancer study defines cancer subclasses differing in clinicopathologic characteristics and survival[J]. Breast Cancer Res, 2014,16(5):450.
[10] Wang X, Li Y, Qi W. MicroRNA-99a inhibits tumor aggressive phenotypes through regulating HOXA1 in breast cancer cells[J]. Oncotarget, 2015,6(32):32737-32747.
[11] Duan R, Han L, Wang Q. HOXA13 is a potential GBM diagnostic marker and promotes gliomainvasion by activating the Wnt and TGF-β pathways[J]. Oncotarget, 2015,6(29):27778-27793.
[12] Lee JY, Hur H, Yun HJ. HOXB5 promotes the proliferation and invasion of breast cancer cells[J]. Int J Biol Sci, 2015,11(6):701-711.
[13] Knight JM, Kim E, Ivanov I. Comprehensive site-specific whole genome profiling of stromal and epithelial colonic gene signatures in human sigmoid colon and rectal tissue[J]. Physiol Genomics, 2016,48(9):651-659.
[14] Di Vinci A, Casciano I, Marasco E. Quantitative methylation analysis of HOXA3, 7, 9, and 10 genes in glioma: association with tumor WHO grade and clinical outcome[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2012,138(1):35-47.
[15] Han B, Lian L, Li X. Chicken gga-miR-130a targets HOXA3 and MDFIC and inhibits Marek′s disease lymphoma cell proliferation and migration[J]. Mol Biol Rep, 2016,43(7):667-676.
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.47.020
R736.3
B
1002-266X(2017)47-0066-03
2017-07-10)