王金利, 張 敏
(1.無錫市惠山區(qū)人民醫(yī)院, 江蘇 無錫 214187; 2.貴州醫(yī)科大學(xué), 貴州 貴陽 550004)
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AntagomiR-103協(xié)同阿霉素對TGF-β1誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞轉(zhuǎn)化及生長的影響*
王金利1, 張 敏2**
(1.無錫市惠山區(qū)人民醫(yī)院, 江蘇 無錫 214187; 2.貴州醫(yī)科大學(xué), 貴州 貴陽 550004)
目的: 探討antagomiR-103協(xié)同阿霉素(ADM)對TGF-β1誘導(dǎo)肝癌細(xì)胞(Hep G2)發(fā)生上皮-間質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)化(EMT)及Hep G2細(xì)胞存活率的影響。方法: Hep G2細(xì)胞體外培養(yǎng),設(shè)為control組、TGF-β1組、TGF-β1+ADM組、TGF-β1+microRNA inhibitor N.C組、TGF-β1+ADM+microRNA inhibitor N.C組、TGF-β1+antagomiR-103組、TGF-β1+ADM+antagomiR-103組及使用western-blot檢測EMT標(biāo)志蛋白N-Cadherin、E-Cadherin、vimentin的表達(dá)水平;設(shè)control組、TGF-β1組、antagomiR-103組、TGF-β1+antagomiR-103組,用不同濃度的ADM作用于各組細(xì)胞24 h,使用MTT法檢測細(xì)胞存活率,并計算IC50。結(jié)果: 與control組相比,antagomiR-103+ADM組E-Cadherin表達(dá)上調(diào),N-Cadherin、Vimentin表達(dá)下調(diào);細(xì)胞存活率隨ADM濃度的增高而逐漸降低;在ADM濃度相同的條件下,不同藥物預(yù)處理組之間進(jìn)行比較,當(dāng)ADM濃度為25 mg/L時,antagomiR-103+ADM組的細(xì)胞存活率明顯低于其他組。結(jié)論: antagomiR-103聯(lián)合ADM可抑制TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活。
藥物療法,聯(lián)合; 肝腫瘤; 細(xì)胞; antagomiR-103; 阿霉素; 上皮細(xì)胞-間充質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)換; TGFβ-1
目前臨床上治療肝癌一般采取手術(shù)為主,輔以化療的綜合治療方案[1],化療藥物是通過誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡而達(dá)到治療效果,但腫瘤細(xì)胞容易對化療藥物產(chǎn)生多藥耐藥性導(dǎo)致化療失敗[2]。臨床常用于治療肝癌的化療藥物阿霉素(doxorubicin,ADM)是一種周期非特異性抗癌化療藥,對各期細(xì)胞均有很強(qiáng)的細(xì)胞毒性作用,其作用機(jī)制是通過插入并解開DNA的雙螺旋鏈,改變DNA的模板性質(zhì),抑制DNA聚合酶,從而抑制細(xì)胞DNA和RNA合成[3-4]。鄧立力等[5]發(fā)現(xiàn),ADM可以促進(jìn)細(xì)胞表面死亡受體的表達(dá),誘導(dǎo)肝癌細(xì)胞凋亡,肝癌患者在長期使用ADM后很容易產(chǎn)生耐藥性。有研究發(fā)現(xiàn),在腫瘤發(fā)生上皮-間質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transitions,EMT)過程中,miRNA作為具有調(diào)控功能的小分子RNA與腫瘤對化療藥物的反應(yīng)有密切聯(lián)系[6]。本實驗通過微小RNA(microRNA,miRNA)干擾技術(shù),設(shè)計合成miRNA-103的阻斷試劑antagomiR-103,對肝癌細(xì)胞(Hep G2)進(jìn)行干預(yù),將antagomiR-103與ADM共同作用于Hep G2細(xì)胞,觀察兩者對腫瘤細(xì)胞存活率的影響,檢測EMT標(biāo)志蛋白N-Cadherin、E-Cadherin、vimentin的表達(dá)變化。
1.1 材料與設(shè)備
人肝癌細(xì)胞系Hep G2購自中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞庫,胎牛血清為HyClone公司產(chǎn)品,DMEM培養(yǎng)基為Gibco公司產(chǎn)品,胰蛋白酶為美國Ameresco公司產(chǎn)品,antagomiR-103、antagomiRNA-MUT、has-miR-103、microRNA mimics N.C、microRNA inhibitor N.C由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司設(shè)計合成,阿霉素為深圳萬樂藥業(yè)有限公司產(chǎn)品,E-Cadherin、N-CadherinBioworld和Vimentin抗體均購自Bioworld生物科技有限公司,其他試劑均為國產(chǎn)或進(jìn)口分析純試劑。超凈工作臺(SW-CJ-2FD,蘇州凈化設(shè)備有限公司),倒置顯微鏡(CKX41,日本Olympus公司),超低溫冰箱(MDF-382E,日本SANYO公司),恒溫CO2 培養(yǎng)箱(Model 310,美國Thermo公司),全自動雪花制冰機(jī)(IMS-40,常熟市雪科電器有限公司)。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 人肝癌細(xì)胞株HepG2 使用10%胎牛血清(FBS)+DMEM培養(yǎng)基混合液,置于37 ℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5% 孵箱中培養(yǎng),將2×107/mL的Hep G2細(xì)胞接種于6 cm培養(yǎng)皿中,加入含10%胎牛血清的DMEM置于5% CO2孵箱中培養(yǎng)24 h后,更換無酚紅無血清的DMEM培養(yǎng)2 h,加入含10%胎牛血清的DMEM,繼續(xù)培養(yǎng)24、48 h后收集細(xì)胞,完成后續(xù)試驗。
1.2.2 EMT標(biāo)志蛋白E-Cadherin、N-Cadherin、Vimentin檢測 將體外培養(yǎng)的Hep G2細(xì)胞分為control組、TGF-β1組、TGF-β1+ADM組、TGF-β1+microRNA inhibitor N.C組、TGF-β1+ADM+microRNA inhibitor N.C組、TGF-β1 + antagomiR-103組及TGF-β1+ ADM+antagomiR-103組;收集培養(yǎng)細(xì)胞,加入全細(xì)胞裂解液每皿80 μL,-20 ℃、14 000 r/min離心20 min;收集上清,BCA法測定蛋白濃度,取30 μg總蛋白行SDS-PAGE電泳,在300 mA、1 h的條件下將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,用5 g/L脫脂奶粉TBST稀釋液封閉1 h后用E-Cadherin、N-Cadherin、Vimentin和GAPDH抗體4 ℃孵育過夜,用TBST洗滌后加入相應(yīng)二抗孵育2 h后ECL法進(jìn)行顯影,檢測E-Cadherin、N-Cadherin、Vimentin蛋白的表達(dá)。
1.2.3 細(xì)胞增殖能力 對數(shù)生長期的Hep G2細(xì)胞用0.25%的胰酶消化后,以細(xì)胞濃度為 8×103/mL接種于96孔板內(nèi),每張板設(shè)空白調(diào)零組、陰性對照組、ADM組、ADM+TGF-β1組、ADM+antagomiR-103組及ADM+TGF-β1+antagomiR-103組;ADM設(shè)8個藥物濃度(C1~C8)分別為100、50、25、12.5、6.25、3.125、1.56、0.78 mg/L;ADM+TGF-β1組為加入上述C1~C8的ADM和5 μg/L TGF-β1,ADM+antagomiR-103組為加入上述C1~C8的ADM和100 nmol/L antagomiR-103,ADM+TGF-β1+antagomiR-103組為加入上述C1~C8的ADM和100 nmol/L antagomiR-103及5 μg/L TGF-β1;每組均設(shè)6個復(fù)孔。細(xì)胞加藥后繼續(xù)培養(yǎng)48 h,棄去培養(yǎng)液,向各孔加入MTT液,使細(xì)胞與0.25% MMT在37 ℃、5% CO2孵箱中繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄去上清液,加入DMSO 200 μL低速振蕩10 min,結(jié)晶震蕩溶解后,通過酶標(biāo)儀于490 nm波長處測定各孔光密度,計算IC50值。
1.3 統(tǒng)計學(xué)分析
2.1N-Cadherin、E-Cadherin、vimentin表達(dá)
western-blot結(jié)果顯示,與control組細(xì)胞相比,TGF-β1組中N-Cadherin、Vimentin表達(dá)上調(diào)、E-Cadherin表達(dá)下調(diào);與TGF-β1組細(xì)胞相比,TGF-β1+antagomiR-103組中N-Cadherin、Vimentin表達(dá)下調(diào)、E-Cadherin表達(dá)上調(diào);TGF-β1+ADM+antagomiR-103組中N-Cadherin、Vimentin表達(dá)下調(diào)、E-Cadherin表達(dá)上調(diào);差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。這些結(jié)果說明antagomiR-103與ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞,可以明顯抑制細(xì)胞發(fā)生EMT。
注:1為control組,2為TGF-β1組,3為TGF-β1+ADM組,4為TGF-β1+microRNA inhibitor N.C組,5為TGF-β1+ADM+microRNA inhibitor N.C組,6為TGF-β1 + antagomiR-103組,7為TGF-β1+ ADM+antagomiR-103組圖1 各實驗組EMT相關(guān)蛋白的表達(dá)(western blot)Fig.1 Expression of EMT related protein in each experimental group
2.2 ADM對Hep G2細(xì)胞存活率的影響
將Hep G2細(xì)胞分為control組、8個不同濃度ADM組,體外培養(yǎng)24 h后,使用MTT法檢測不同濃度ADM對Hep G2細(xì)胞存活率的影響。結(jié)果顯示,與control組細(xì)胞相比,隨著ADM濃度的增高,細(xì)胞存活率隨之顯著減少,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),見表1。當(dāng)ADM濃度增高至50、100 mg/L時,HepG2細(xì)胞存活率與其他劑量組相比略有增高,原因不明。經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析計算得出ADM的半數(shù)抑制濃度(IC50)為6.699 mg/L,見圖2。
表1 ADM對Hep G2細(xì)胞存活率 的影響Tab.1 The negative effect of ADM onHep G2 cell survival
(1)與control組比較,P<0.01
注:(1)與control組比較,P<0.01圖2 ADM對Hep G2細(xì)胞存活率的影響Fig.2 The negative effect of ADM on Hep G2 cell survival
2.3 ADM對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響
用TGF-β1(5 μg/L)誘導(dǎo)Hep G2細(xì)胞發(fā)生EMT,同時給予不同濃度ADM處理細(xì)胞24 h,MTT法檢測ADM對細(xì)胞存活率的影響。結(jié)果顯示,與TGF-β1組相比,細(xì)胞存活率明顯下降, 差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),見表2。經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析計算,ADM的IC50為8.698 mg/L,是ADM作用于未發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞的IC50的1.3倍,提示ADM對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞的作用減弱,促進(jìn)細(xì)胞凋亡的能力降低,當(dāng)ADM濃度增高至50、100 mg/L時,細(xì)胞存活率與其他劑量組相比略有增高,見圖3。
表2 ADM對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響Tab.2 The negative effect of ADM on TGF-β1 induced EMT's Hep G2 cell survival
注:(1)與control組比較,P<0.01
注:(1)與control組比較,P<0.01圖3 ADM對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響Fig.3 The negative effect of ADM on TGF-β1 induced EMT's Hep G2 cell survival
2.4 antagomiRNA-103與ADM共同作用對Hep G2細(xì)胞存活率的影響
用antagomiR-103(100 nmol/L)和8個不同濃度的ADM共同作用于Hep G2細(xì)胞24 h,MTT法檢測ADM對Hep G2細(xì)胞存活率的影響。結(jié)果顯示,與antagomiR-103組相比,ADM+antagomiR-103組的細(xì)胞存活率明顯下降(P<0.01),見表3。經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析計算,ADM和antagomiR-103共同作用于Hep G2細(xì)胞,其IC50為3.826 mg/L,與ADM單獨作用于Hep G2細(xì)胞的IC50相比明顯降低, ADM組中ADM的IC50是ADM+antagomiR-103組中ADM的IC50的1.75倍,ADM+TGF-β1組中ADM的IC50是ADM+antagomiR-103組中ADM的IC50的2.27倍,見圖4。提示antagomiR-103可以促進(jìn)ADM誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡,兩者有協(xié)同作用。當(dāng)ADM濃度增高至50、100 mg/L時,細(xì)胞存活率與其他劑量組相比略有增高。
表3 antagomiR-103與ADM共同作用對Hep G2細(xì)胞存活率的影響Tab.3 The negative effect of antagomiR-103 and ADM on Hep G2 cell survival
(1)與antagomiR-103組相比,P<0.01
(1)與antagomiR-103組相比,P<0.01圖4 antagomiR-103與ADM共同作用對Hep G2細(xì)胞存活率的影響Fig.4 The negative effect of antagomiR-103 and ADM on Hep G2 cell survival
2.5 antagomiR-103與ADM共同作用對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響
用antagomiR-103(100 nmol/L)和8個不同濃度的ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞24 h,MTT法檢測antagomiR-103與ADM對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響。結(jié)果顯示,與control組、antagomiR-103+TGF-β1組相比,ADM+antagomiR-103+TGF-β1組的細(xì)胞存活率明顯下降(P<0.01),見表4。經(jīng)統(tǒng)計學(xué)分析計算,ADM和antagomiR-103共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞,ADM的IC50為3.913 mg/L,與ADM單獨作用于Hep G2細(xì)胞時ADM的IC50相比明顯降低, ADM組中ADM的IC50是ADM+antagomiR-103+TGF-β1組中ADM的IC50的1.71倍;ADM+TGF-β1組中ADM的IC50是ADM+antagomiR-103+TGF-β1組中ADM的IC50的2.22倍,見圖5。提示antagomiR-103與ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞,可以促進(jìn)細(xì)胞凋亡,兩者有協(xié)同作用。當(dāng)ADM濃度增高至50、100 mg/L時,細(xì)胞存活率與其他劑量組相比略有增高。
表4 antagomiR-103與ADM共同作用對TGF-β1 誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞 存活率的影響Tab.4 The negative effect of antagomiR-103 and ADM on TGF-β1 induced EMT's Hep G2 cell survival
(1)與antagomiR-103+ TGF-β1組相比,P<0.01
(1)與antagomiR-103+ TGF-β1組相比,P<0.01圖5 antagomiR-103與ADM共同作用對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響Fig.5 The negative effect of antagomiR-103 and ADM on TGF-β1 induced EMT's Hep G2 cell survival
EMT的發(fā)生與多種因素有關(guān),受到多種細(xì)胞調(diào)控因子的調(diào)控,如TGF-β[7]、FGF[8]、EGF[9]等,可以誘導(dǎo)EMT的發(fā)生,也可以引起腫瘤細(xì)胞的增殖。Akhurst RJ[10]研究發(fā)現(xiàn),腫瘤細(xì)胞系被轉(zhuǎn)入外源性TGF-β1后都出現(xiàn)不同程度的上皮表型缺失,獲得侵襲特征,阻礙TGF-β受體可以阻止EMT的發(fā)生和腫瘤細(xì)胞侵襲。ADM是一種廣譜、高效抗腫瘤的蒽環(huán)類化合物,對各期細(xì)胞有很強(qiáng)的細(xì)胞毒性作用,可破壞細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)和功能,可以通過p53依賴或p53非依賴的途徑來誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[11],這可能是ADM引起細(xì)胞存活率下降的原因之一。
在本實驗中,TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生了EMT的Hep G2細(xì)胞存活率與對照組相比無明顯差異,原因可能是EMT的抗凋亡作用,推測發(fā)生EMT的細(xì)胞激活了抗凋亡的信號通路或抗凋亡的因子生成,如Wnt/β-連環(huán)素信號通路下游靶基因survivin、eyelinDI,可促進(jìn)細(xì)胞周期進(jìn)程、引起細(xì)胞增殖和抑制細(xì)胞凋亡[12]。但是細(xì)胞由上皮細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化為間質(zhì)細(xì)胞表型,可能也是抗凋亡的一個關(guān)鍵因素。TGF-β1可誘導(dǎo)肝臟實質(zhì)細(xì)胞發(fā)生凋亡,存活下來的細(xì)胞發(fā)生EMT,獲得一定的抗凋亡活性[13]。
在本實驗中,ADM單獨作用于TGF-β1誘導(dǎo)的Hep G2細(xì)胞,與control組、TGF-β1組相比,EMT的標(biāo)志性蛋白E-Cadherin、N-Cadherin及Vimentin表達(dá)變化不明顯,差異無統(tǒng)計學(xué)意義;antagomiR-103與ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)的Hep G2細(xì)胞,與TGF-β1組相比,N-Cadherin表達(dá)下調(diào)、E-Cadherin表達(dá)上調(diào)、Vimentin表達(dá)下調(diào),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),這些結(jié)果表明,ADM對TGF-β1誘導(dǎo)的Hep G2細(xì)胞發(fā)生EMT未表現(xiàn)出抑制作用,antagomiR-103與ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)的Hep G2細(xì)胞,對細(xì)胞發(fā)生EMT有抑制作用。antagomiR-103聯(lián)合化療藥物ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞,使用MTT法檢測ADM對Hep G2細(xì)胞存活率的影響, 結(jié)果顯示,細(xì)胞存活率隨著ADM濃度的增高而降低,ADM對TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT的Hep G2細(xì)胞存活率的影響;細(xì)胞存活率隨著ADM濃度的增高而降低,但與單獨使用ADM組相比,在相同濃度ADM作用下,細(xì)胞存活率變化并無明顯差異,可能與TGF-β1的增殖和誘導(dǎo)EMT的作用有關(guān),antagomiR-103與化療藥物ADM共同作用于Hep G2細(xì)胞對其存活率的影響。結(jié)果顯示,細(xì)胞存活率隨著ADM濃度的增高而明顯降低,在ADM濃度為25 mg/L時,與單獨使用ADM組、單獨使用antagomiR-103組細(xì)胞存活率相比明顯降低(P<0.01),有統(tǒng)計學(xué)意義;antagomiR-103與ADM共同作用于TGF-β1誘導(dǎo)發(fā)生EMT 的Hep G2細(xì)胞,MTT檢測細(xì)胞存活率,結(jié)果還顯示,與control組、antagomiR-103+TGF-β1組相比,ADM+antagomiR-103+TGF-β1組的細(xì)胞存活率明顯下降(P<0.01)。
綜上所述,antagomiR-103對TGF-β1誘導(dǎo)的Hep G2細(xì)胞EMT的發(fā)生有抑制作用,與ADM共同作用于Hep G2細(xì)胞也明顯引起細(xì)胞存活率降低,使ADM半數(shù)抑制濃度明顯降低,這些結(jié)果的發(fā)現(xiàn)考慮可能與其它信號通路或miRNA協(xié)同、拮抗作用相關(guān),但是具體的作用機(jī)制本實驗尚未深入探討,將在今后的實驗中繼續(xù)深入研究。利用miRNA的基因干預(yù)調(diào)控阻斷肝癌細(xì)胞的EMT,同時輔以化療藥物治療肝癌具有很高的可行性,將對臨床肝癌轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)的防治具有重大意義。這可能為揭秘腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移的機(jī)制提供更為可靠的理論依據(jù),為腫瘤患者的治療帶來新的希望。
[1] 原發(fā)性肝癌診療規(guī)范(2011年版)[J]. 臨床肝膽病雜志, 2011(11):1141-1159.
[2] Philip J,Johnson.Systemic chemotherapy of liver tumors[J].Semin Surg Oncol, 2000(2):116-124.
[3] Tomris O.Mechanisms and strategies to overcome multilple drug resistance in cancer[J].FEBS Lett, 2006(12):2903-2909.
[4] Perez EA.Impact,mechanisms,and novel chemotherapy strategies for overcoming resistance to anthracyclines and taxanes in metastatic breast cancer[J].Breast Cancer Res Treat, 2009(2):195-201.
[5] 鄧立力,呂慧芳,王文秀,等.阿霉素對肝癌細(xì)胞增殖及TRAIL受體表達(dá)影響的實驗研究[J].中國腫瘤, 2011(7):515-520.
[6] 薛逸荃,曹雪濤. RNA異常與腫瘤調(diào)控研究進(jìn)展[J]. 中國腫瘤生物治療雜志, 2013(1):1-12.
[7] Tanahashi T,Osada S,Yamada A,et al.Extracellular signal-regulated kinase and Akt activation play a critical role in the process of hepatocyte growth factor-induced epithelial-mesenchymal transition.[J].Int J Oncol, 2013(2): 556-564.
[8] Nguyen L,Fifis T,Malcontenti-Wilson C,et al.Spatial morphological and molecular differences within solid tumors may contribute to the failure of vascular disruptive agent treatments.[J].BMC Cancer, 2012(12):522.
[9] Alipio ZA, Jones N, Liao W, et al. Epithelial to mesenchymal transition (EMT) induced by bleomycin or TFG-β1/EGF in murine induced pluripotent stem cell-derived alveolar Type II-like cells[J]. Differentiation, 2011(2): 89-98.
[10]Akhurst RJ,Derynck R.TGF-beta signaling in cancer-a double-edged sword[J].Trends Cell Biol, 2001(11):44-51.
[11]Fornari F,Gramantieri L,Giovannini C,et al.MiR-122/cydinG1 interaction modulates p53 activity and afects doxorubicin sensitivity of human hepatocarcinoma cells[J].Cancer Res, 2009(14):5761-5767.
[12]Robson EJ,Khaled WT,Abell K,et al.Epithelial-to-mesenchymal transition confers resistance to apoptosis in three murine mammary epithelial cell lines[J].Differentiation, 2006(5):254-264.
[13]Del Castillo G,Murillo MM,Alvarez-Barrientos A,et al.Autocrine production of TGF-beta confers resistance to apoptosis after an epithelial-mesenchymal transition process in hepatocytes: Role of EGF receptor ligands[J].Exp Cell Res, 2006(15):2860-2871.
(2016-08-29收稿,2016-11-06修回)
中文編輯: 劉 平; 英文編輯: 劉 華
Effects of AntagomiR-103 and ADM on TGF-β1 Induced EMT and Growth of Hep G2 Cell
WANG Jinli1, ZHANG Min2
(1.thePeople'sHospitalofHuishanDistrict,Wuxi214187,Jiangsu,China; 2.DepartmentofPharmacology,GuizhouMedicalUniversity,Guiyang550004,Guizhou,China)
Objective: To investigate the effect of antagomir-103 synergized by ADM on epithelial mesenchymal transition (EMT) in Hep G2 induced by TGF-β1 and on the cell survival rate of and Hep G2 cells. Methods: Hep G2 cells were cultivated in DMEM with 10% fetal calf serum and divided into the control group, the TGF-β1 group, TGF-β1+ADM group, TGF-β1+microRNA inhibitor N.C group, TGF-β1+ADM+microRNA inhibitor N.C group, the TGF-β1+antagomiR-103 group, and the TGF-β1+ ADM+antagomiR-103 group. Western-blot was adopted to detect the expression level of EMT, E-cadherin, vimentin and N-cadherin in all these groups. On the other hand, the Hep G2 cells were also divided into the control group, TGF-β1group, antagomiR-103 group, TGF-β1+antagomiR-103. With different concentrations of ADM on each above group for 24 h, MTT method was used to detect cell survival rate, and IC 50 was calculated. Results: Compared with control group, the expression of E-cadherin was up-regulated in antagomiR-103+ADM group, while N-cadherin, vimentin expression was down regulated. The cell survival rate decreased with the increase of ADM concentration. The cell survival rate of antagomiR-103+ADM group was significantly lower than that of the other groups at the same ADM concentration and when the ADM concentration was 25 mg/L. Conclusion: antagomiR-103 combined with ADM can inhibit transformation of TGF-β1 induced EMT and growth of Hep G2 cell.
drug therapy,combination; liver neoplasms; cells; antagomiR-103; adriamycin; epithelial-mesenchymal transitions; TGFβ-1
貴陽市科技局基金項目[(2011103)17號]
時間:2016-12-15
http://www.cnki.net/kcms/detail/52.1164.R.20161215.1534.010.html
R329.25; R575.2
A
1000-2707(2016)12-1424-06
10.19367/j.cnki.1000-2707.2016.12.013
**通信作者 E-mail:1071632869@qq.com