丁文倩, 李 琳， 儲(chǔ)利勝△， 任翠翠， 方 燕， 楊 琰

(浙江中醫(yī)藥大學(xué) 1藥學(xué)院， 2基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院， 浙江 杭州 310053)

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川芎嗪聯(lián)合骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植抑制腦缺血大鼠神經(jīng)細(xì)胞凋亡*

丁文倩1, 李 琳2， 儲(chǔ)利勝2△， 任翠翠1， 方 燕2， 楊 琰2

(浙江中醫(yī)藥大學(xué)1藥學(xué)院，2基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院， 浙江 杭州 310053)

目的： 研究川芎嗪(tetramethylpyrazine，TMP)聯(lián)合骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells，BMSCs)對(duì)腦缺血大鼠神經(jīng)細(xì)胞凋亡及Bcl-2、Bax表達(dá)的影響。方法:采用全骨髓貼壁法體外培養(yǎng)BMSCs，傳代至第3代用于尾靜脈移植。采用線栓法誘導(dǎo)大鼠右側(cè)大腦中動(dòng)脈阻塞模型，除假手術(shù)組外，大鼠隨機(jī)分為模型組、BMSCs(1×109/L)組、川芎嗪(40 mg/kg)組和聯(lián)合(川芎嗪+BMSCs)組，每組12只。缺血后第1、7和14天采用改良的神經(jīng)損傷嚴(yán)重程度評(píng)分(modified neurological severity scoring，mNSS)進(jìn)行神經(jīng)功能評(píng)價(jià)。缺血后第14 天，甲苯胺藍(lán)染色檢測腦梗死體積，HE染色觀察腦組織病理學(xué)變化，采用原位末端標(biāo)記(TUNEL)法觀察神經(jīng)細(xì)胞凋亡數(shù)，采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR法和Western blot法檢測Bax和Bcl-2的mRNA及蛋白表達(dá)。結(jié)果:與BMSCs組和川芎嗪組比較，聯(lián)合組mNSS評(píng)分顯著減少(P<0.01)，梗死體積顯著減少(P<0.01)，缺血引起的腦缺血周邊區(qū)病理性損傷明顯減輕，TUNEL陽性細(xì)胞數(shù)顯著減少(P<0.01)，Bcl-2的mRNA及蛋白表達(dá)顯著增加，Bax的mRNA及蛋白表達(dá)顯著降低(P<0.01)。結(jié)論:川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植能顯著促進(jìn)腦缺血后大鼠的功能恢復(fù)，減少梗死體積，減輕腦組織缺血性損傷，抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡，機(jī)制可能與調(diào)控Bcl-2和Bax的表達(dá)有關(guān)。

川芎嗪； 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞； 腦缺血； 細(xì)胞凋亡

腦缺血是導(dǎo)致成年人死亡和殘疾的主要原因。目前臨床上急性期除了采用組織型纖溶酶原激活物(tissue-type plasminogen activator，tPA)溶栓治療外，尚缺乏其它有效的治療方法。但tPA存在治療時(shí)間窗窄(<4.5 h)和出血的風(fēng)險(xiǎn)，嚴(yán)重限制其臨床的應(yīng)用[1]。近年來研究發(fā)現(xiàn)，干細(xì)胞移植治療腦缺血有很好的應(yīng)用潛能[2]。其中，骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells，BMSCs)具有取材方便、易擴(kuò)增、低免疫原性和無倫理學(xué)爭議等優(yōu)點(diǎn)，被認(rèn)為是組織工程的種子細(xì)胞。大量動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床研究表明，BMSCs移植不僅能促進(jìn)腦缺血后神經(jīng)功能恢復(fù)，而且是安全的[3]。

腦缺血發(fā)病機(jī)制非常復(fù)雜，其中缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞凋亡是其發(fā)病的主要機(jī)制之一[4]。BMSCs移植不僅能促進(jìn)腦缺血后神經(jīng)修復(fù)，還能抑制缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞凋亡[5]。川芎嗪(tetramethylpyrazine，TMP)是中藥川芎的主要有效成分，具有抗炎、抗氧化和抗凋亡等作用，已被臨床廣泛應(yīng)用于缺血性腦血管病的治療[6]。最近文獻(xiàn)報(bào)道，采用中藥或有效成分聯(lián)合BMSCs治療腦缺血具有更好的療效[7]，但目前尚缺乏川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植治療腦缺血的報(bào)道。因此，本研究首先觀察川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)腦缺血大鼠的治療作用，然后從神經(jīng)細(xì)胞凋亡的角度探討其作用機(jī)制。

材 料 和 方 法

1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

SPF級(jí)SD雄性大鼠，3周齡體重約80～100 g，3～4月齡體重250～300 g，購自上海西普爾-必凱實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司，合格證號(hào)為SCK(滬)2013-0016，浙江中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心飼養(yǎng)，許可證號(hào)為SYXK(浙)2013-0184。室溫(22±1)℃，相對(duì)濕度40%～60%，12 h/12 h明暗循環(huán)，自由飲食進(jìn)水。

2 藥物與主要試劑

川芎嗪(阿拉丁試劑有限公司)；DMEM/F12培養(yǎng)基(杭州吉諾生物醫(yī)藥技術(shù)有限公司)；優(yōu)級(jí)胎牛血清(Gibco)；鼠源單克隆抗體β-actin(Santa Cruz)；兔源Bcl-2和Bax多克隆抗體(CST)；山羊抗鼠II抗IgG、山羊抗兔II抗IgG和組織總蛋白提取試劑(Thermo)；TUNEL細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(Roche);BCA蛋白濃度測定試劑盒和SDS-PAGE凝膠配制試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司)；TRIzol試劑盒和逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa)；PVDF膜(Millipore)。所用引物由上海生工生物工程股份有限公司設(shè)計(jì)合成，見表1。

表1 引物序列

3 主要儀器

CO2恒溫培養(yǎng)箱(SANYO)；冰凍切片機(jī)和正置熒光顯微鏡(Leica)；紫外可見分光光度計(jì)(Beckman)；電泳槽、轉(zhuǎn)印槽、凝膠成像系統(tǒng)和實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(Bio-Rad)。

4 主要方法

4.1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離、培養(yǎng) 取3周齡SD雄性大鼠，頸椎脫臼法處死后迅速浸泡在75%乙醇中15 min，無菌條件下取出兩側(cè)后肢股骨和脛骨，除去骨干表面肌肉韌帶等組織，剪去兩側(cè)干骺端，用5 mL注射器吸取4 ℃預(yù)冷的DMEM/F12培養(yǎng)基沖洗骨髓腔，收集骨髓沖洗液，1 000 r/min離心10 min，棄上清液，用5 mL含10% 胎牛血清、1%雙抗的DMEM/F12培養(yǎng)基重懸細(xì)胞，接種于25 cm2的培養(yǎng)瓶，置于37 ℃、5% CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)，48 h后首次更換培養(yǎng)基，待細(xì)胞生長至85%～90%時(shí)用0.05%胰酶和0.02% EDTA消化收集細(xì)胞，按1∶2比例傳代培養(yǎng)，待傳代至第3代時(shí)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。4.2 大鼠局灶性腦缺血模型的制備 取3～4月齡SD雄性大鼠，術(shù)前禁食12 h(不禁水)，參照Longa等[8]建立大鼠大腦中動(dòng)脈阻塞(middle cerebral artery occlusion，MCAO)模型。大鼠用10%水合氯醛(400 mg/kg)腹腔麻醉，分離右側(cè)頸總動(dòng)脈、頸外動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈，結(jié)扎并游離頸外動(dòng)脈主干，在頸外動(dòng)脈剪一小切口, 將頭端燒圓的3-0單股尼龍線從切口輕輕插入頸內(nèi)動(dòng)脈，當(dāng)尼龍線插入距頸總動(dòng)脈分叉約18～20 mm處有輕微阻力時(shí)，保持尼龍線位置。缺血90 min后將尼龍線拔出再灌注。假手術(shù)組，尼龍線只插入5 mm左右。術(shù)中光照維持大鼠肛溫在37 ℃左右，術(shù)后將大鼠置于恒溫箱中直至蘇醒。

4.3 動(dòng)物分組及BMSCs移植 大鼠造模后24 h，除假手術(shù)組外，隨機(jī)分為模型組、BMSCs組、川芎嗪(40 mg/kg)組和聯(lián)合(川芎嗪+BMSCs)組。川芎嗪組和聯(lián)合組在缺血后2 h腹腔注射川芎嗪(40 mg/kg)，每天1次，連續(xù)14 d。BMSCs組和聯(lián)合組于缺血后24 h經(jīng)尾靜脈注射1 mL BMSCs(1×109/L)，其它組經(jīng)尾靜脈注射1 mL PBS，每組12只。

4.4 改良的神經(jīng)損傷嚴(yán)重程度評(píng)分(modified neurological severity scoring，mNSS) 參照文獻(xiàn)[9]方法，在腦缺血后第1 、7 和14 天檢測。包括一系列的運(yùn)動(dòng)、感覺、平衡和反射試驗(yàn)。神經(jīng)功能評(píng)分的范圍為0～18分(正常為0分，最嚴(yán)重為18分)。

4.5 腦組織冰凍切片的制備 大鼠腦缺血后第14天行為學(xué)評(píng)價(jià)結(jié)束后，10%水合氯醛腹腔注射麻醉，然后用4℃預(yù)冷的0.9%生理鹽水快速進(jìn)行心臟灌注，再經(jīng)4%多聚甲醛灌注固定，斷頭取腦，4%多聚甲醛于4℃固定過夜，然后用30%蔗糖溶液脫水。從額極起將大鼠大腦切成6片冠狀切片，每片厚2 mm，然后分別作10 μm和20 μm的切片。

4.6 腦梗死體積的檢測 大鼠腦缺血后第14 天行為學(xué)評(píng)價(jià)結(jié)束后，20 μm的腦組織冰凍切片用1%甲苯胺藍(lán)染色。腦組織片拍攝圖像，用ImageJ軟件計(jì)算腦片梗死區(qū)域面積，將每一腦片的缺血面積乘以厚度(2 mm)，再將各腦片數(shù)值相加，得到全腦梗死灶體積的近似值。

4.7 腦組織的病理學(xué)觀察 大鼠腦缺血后第14 天，10 μm的腦組織冰凍切片進(jìn)行HE染色，冰凍切片先用甲醇固定，蘇木精染色5 min，1%的鹽酸乙醇分化數(shù)秒，水洗返藍(lán)，伊紅染色1 min，各步驟之間水洗，梯度乙醇脫水，二甲苯透明，中性樹膠封片，顯微鏡下觀察皮層和紋狀體缺血周邊區(qū)組織形態(tài)。

4.8 TUNEL法檢測細(xì)胞凋亡 大鼠腦缺血后第14 天，10 μm的腦組織冰凍切片，經(jīng)4%多聚甲醛固定30 min后，0.1%檸檬酸鈉-0.1% Triton X-100冰上孵育2 min，3% H2O2-甲醇液孵育10 min，20 mg/L不含DNase I的蛋白酶K于37 ℃孵育20 min，TUNEL反應(yīng)液37 ℃孵育60 min，封片，熒光顯微鏡下觀察。

4.9 實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Bcl-2和Bax的mRNA表達(dá) 大鼠腦缺血后第14 天，取缺血周邊區(qū)腦組織，按TRIzol試劑盒說明書提取總RNA，逆轉(zhuǎn)錄成cDNA，qPCR反應(yīng)總體積10 μL：上游和下游引物各0.2 μL，SYBR Premix Ex Taq Ⅱ(2×) 5 μL，cDNA 1 μL，ddH2O 3.6 μL。反應(yīng)條件為95 ℃ 3 min；95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s，共40個(gè)循環(huán)；72 ℃ 5 min；60 ℃ 30 s，共71個(gè)循環(huán)。結(jié)果采用2-ΔΔCt分析相對(duì)表達(dá)量。4.10 Western blot法檢測Bcl-2和Bax的蛋白表達(dá) 大鼠腦缺血后第14 天，取100 mg缺血周邊區(qū)腦組織，按照總蛋白提取試劑盒方法提取總蛋白，BCA法測定總蛋白含量，取蛋白樣品進(jìn)行凝膠電泳，轉(zhuǎn)膜，封閉，加入I抗(兔抗Bax和Bcl-2多克隆抗體1∶1 000，鼠抗β-actin單克隆抗體1∶1 500)孵育，靜置過夜，洗滌后加入II抗(山羊抗鼠II抗IgG 1∶5 000，山羊抗兔II抗IgG 1∶5 000)，室溫孵育1 h，充分洗滌，置于ECL發(fā)光劑中，顯影，定影，凝膠圖像處理，采用Bandscan 5.0軟件分析條帶的吸光度值。

5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示，行為學(xué)評(píng)分采用非參數(shù)Mann-WhitneyU檢驗(yàn)，其余均采用單因素方差分析(one-way ANOVA)進(jìn)行比較，組間均數(shù)兩兩比較采用 Student-Newman-Keuls法，以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

1 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)腦缺血大鼠神經(jīng)功能的影響

腦缺血后第1 天，除假手術(shù)組外的各組大鼠都表現(xiàn)出嚴(yán)重的神經(jīng)功能缺損。缺血后第7 天，與模型組比較，BMSCs組和聯(lián)合組mNSS評(píng)分顯著降低(P<0.01)，但川芎嗪組差異不顯著；缺血后第14 天，與模型組比較，BMSCs組、川芎嗪組和聯(lián)合組mNSS評(píng)分顯著降低(P<0.01)；與BMSCs組和川芎嗪組比較，缺血后第7 天和14 天，聯(lián)合組mNSS評(píng)分顯著降低(P<0.01)，見圖1。

Figure 1.The effect of TMP combined with BMSCs on the levels of mNSS in the rats with cerebral ischemia. Mean±SD.n=12.**P<0.01vsmodel;##P<0.01vsTMP+BMSCs.

圖1 川芎嗪聯(lián)合BMSCs對(duì)腦缺血大鼠mNSS評(píng)分的影響

2 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)腦缺血大鼠梗死體積的影響

腦缺血后第14 天，除假手術(shù)組外的各組大鼠腦組織均有梗死。與模型組比較，BMSCs組、川芎嗪組和聯(lián)合組大鼠大腦梗死體積都顯著減少(P<0.01)。與BMSCs組和川芎嗪組比較，聯(lián)合組大鼠大腦梗死體積顯著減少(P<0.05)，見圖2。

3 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)腦缺血大鼠腦組織病理學(xué)的影響

腦缺血后第14 天，假手術(shù)組神經(jīng)細(xì)胞核仁大，胞質(zhì)豐富；模型組大腦皮層和紋狀體缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞稀疏，核固縮，核仁變??；與模型組比較，BMSCs、川芎嗪和聯(lián)合組均能減輕神經(jīng)細(xì)胞損傷程度，其中聯(lián)合組效果最好，見圖3。

4 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)大鼠腦缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞凋亡的影響

腦缺血后第14 天，與模型組比較，BMSCs組、川芎嗪組和聯(lián)合組TUNEL陽性細(xì)胞顯著減少(P<0.01)；與BMSCs組和川芎嗪組比較，聯(lián)合組TUNEL陽性細(xì)胞顯著減少(P<0.01)，見圖4。

5 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)Bcl-2和Bax mRNA表達(dá)的影響

腦缺血后第14 天，與模型組比較，BMSCs組和聯(lián)合組Bcl-2的mRNA表達(dá)顯著增加，Bax的mRNA表達(dá)顯著降低(P<0.01)，川芎嗪組Bax的mRNA表達(dá)顯著降低(P<0.01)，但Bcl-2的mRNA表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性；與BMSCs組和川芎嗪組比較，聯(lián)合組Bcl-2的mRNA表達(dá)顯著增加，Bax的mRNA表達(dá)顯著降低(P<0.01)，見表2。

Figure 2. The effect of TMP combined with BMSCs on the infarct volume of brain in the rats with cerebral ischemia. Mean±SD.n=6.**P<0.01vsmodel;#P<0.05vsTMP+BMSCs.

圖2 川芎嗪聯(lián)合BMSCs對(duì)腦缺血大鼠腦梗死體積的影響

Figure 3. The effect of TMP combined with BMSCs on the pathological changes of brain in the rats with cerebral ischemia (HE staining, ×400).

圖3 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)腦缺血大鼠腦組織病理學(xué)的影響

6 川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植對(duì)Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)的影響

缺血后第14 天，與模型組比較，BMSCs組、川芎嗪組和聯(lián)合組Bcl-2蛋白表達(dá)顯著增加，Bax蛋白表達(dá)顯著降低(P<0.01)；與BMSCs組和川芎嗪組比較，聯(lián)合組Bcl-2蛋白表達(dá)顯著增加，Bax蛋白表達(dá)顯著降低(P<0.01)，見圖5、表3。

討 論

腦缺血引起神經(jīng)細(xì)胞死亡包括壞死和凋亡兩種形式，缺血核心區(qū)內(nèi)神經(jīng)元迅速缺血壞死，而缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞主要表現(xiàn)為凋亡，經(jīng)歷數(shù)小時(shí)至數(shù)天，抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡有助于促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù)[10]。本研究發(fā)現(xiàn)，川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植顯著改善腦缺血后神經(jīng)功能，抑制缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞凋亡，上調(diào)Bcl-2表達(dá)，抑制Bax表達(dá)。

Figure 4. The effect of TMP combined with BMSCs on the neuronal apoptosis (TUNEL staining, ×400). Mean±SD.n=6.**P<0.01vsmodel;##P<0.01vsTMP+BMSCs.

圖4 川芎嗪聯(lián)合BMSCs對(duì)神經(jīng)細(xì)胞凋亡的影響

表2 川芎嗪聯(lián)合BMSCs對(duì)腦缺血大鼠Bcl-2和Bax mRNA表達(dá)的影響

Table 2. The effect of TMP combined with BMSCs on the mRNA expression of Bcl-2 and Bax in the rats with cerebral ischemia (Mean±SD.n=5)

**P<0.01 vs model; ##P<0.01 vs TMP+BMSCs.

盡管國內(nèi)外研究證明了BMSCs移植治療腦缺血的安全性和有效性[3, 11]，但還有很多問題亟待解決，特別是BMSCs向缺血損傷區(qū)遷移率和植入后存活率低是限制其療效的主要原因[12]。近年來文獻(xiàn)報(bào)道，采用藥物聯(lián)合BMSCs移植可促進(jìn)BMSCs向缺血損傷區(qū)遷移和存活，從而顯著提高BMSCs對(duì)腦缺血的治療效果[13]。最近國內(nèi)研究報(bào)道，采用中藥或有效成分聯(lián)合BMSCs移植能顯著提高腦缺血的治療效果[7]，如補(bǔ)陽還五湯和人參皂苷Rg1聯(lián)合BMSCs移植治療腦缺血均有顯著效果[14-15]。川芎是傳統(tǒng)的活血化瘀中藥，也是中醫(yī)治療缺血性腦血管病的常用中藥。川芎嗪是川芎的主要有效成分，具有擴(kuò)血管、抗炎、抗氧化和抗凋亡等多種藥理作用[6]。本研究發(fā)現(xiàn)，與川芎嗪和BMSCs比較，兩者聯(lián)合治療顯著促進(jìn)腦缺血后神經(jīng)功能恢復(fù)，減少梗死體積，改善腦組織病理性損傷，這為川芎嗪聯(lián)合BMSCs治療缺血性腦血管病提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

Figure 5.The effect of TMP combined with BMSCs on Bcl-2 and Bax protein expression determined by Western blot.

圖5 川芎嗪聯(lián)合BMSCs對(duì)Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)的影響

表3 川芎嗪聯(lián)合BMSCs對(duì)腦缺血大鼠Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)的影響

Table 3.The effect of TMP combined with BMSCs on the protein expression of Bcl-2 and Bax in the rats with cerebral ischemia (Mean±SD.n=6)

**P<0.01 vs model; ##P<0.01 vs TMP+BMSCs.

BMSCs移植治療腦缺血的作用機(jī)制非常復(fù)雜，除了分化替代和旁分泌作用參與神經(jīng)修復(fù)外，還能抑制缺血周邊區(qū)神經(jīng)細(xì)胞凋亡[5]。細(xì)胞凋亡受特定的基因調(diào)控，其中Bcl-2家族在細(xì)胞凋亡中發(fā)揮重要作用。Bcl-2是一種凋亡抑制蛋白，Bax可對(duì)抗Bcl-2，促進(jìn)細(xì)胞凋亡，Bcl-2/Bax比值決定細(xì)胞受到凋亡信號(hào)刺激后是存活還是凋亡[16]。腦缺血后Bcl-2表達(dá)下降和Bax表達(dá)增加促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞凋亡，上調(diào)Bcl-2表達(dá)或Bcl-2/Bax比值可抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡[4]。有研究報(bào)道，奧拉西坦聯(lián)合BMSCs較兩者單用能顯著減少腦缺血后神經(jīng)細(xì)胞凋亡，上調(diào)Bcl-2表達(dá)[17]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)，BMSCs和川芎嗪均能上調(diào)腦缺血大鼠Bcl-2表達(dá)和下調(diào)Bax的表達(dá)，減少神經(jīng)細(xì)胞凋亡，但川芎嗪和BMSCs的聯(lián)合應(yīng)用能夠顯著減少神經(jīng)細(xì)胞的凋亡，上調(diào)腦缺血后大鼠Bcl-2和下調(diào)Bax mRNA和蛋白的表達(dá)，其作用效果顯著優(yōu)于BMSCs和川芎嗪的單獨(dú)治療組。

綜上所述，川芎嗪聯(lián)合BMSCs移植能促進(jìn)腦缺血后大鼠的神經(jīng)功能恢復(fù)，減少梗死體積，減輕腦組織缺血性損傷，抑制神經(jīng)元細(xì)胞凋亡，其機(jī)制可能與調(diào)控Bcl-2、Bax的表達(dá)有關(guān)。

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(責(zé)任編輯： 陳妙玲， 羅 森)

Tetramethylpyrazine combined with bone marrow mesenchymal stem cell transplantation inhibits neuronal apoptosis in rats with cerebral ischemia

DING Wen-qian1, LI Lin2, CHU Li-sheng2, REN Cui-cui1, FANG Yan2, YANG Yan2

(1CollegeofPharmacy,2CollegeofBasicMedicalSciences,ZhejiangChineseMedicalUniversity,Hangzhou310053,China.E-mail:chulisheng@21cn.com)

AIM: To investigate the effects of tetramethylpyrazine (TMP) combined with bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs) on neuronal apoptosis, and Bcl-2 and Bax expression in rats with cerebral ischemia. METHODS: The BMSCs were isolated by the whole bone marrow adherent method and cultured, and those in the 3rd passage were used for tail-vein transplantation. The rats were subjected to right middle cerebral artery occlusion (MCAO) using suture method, and the rats except sham group were randomly divided into model group, BMSCs (1×109cells/L) group, TMP (40 mg/kg) group and combination (TMP+BMSCs) group with 12 rats in each group. Neurological function was evaluated by modified neurological severity scoring (mNSS) on 1 d, 7 d and 14 d after cerebral ischemia. Toluidine blue staining was performed to detect cerebral infarct volume, HE staining was used to observe brain histopathological change, neuronal apoptosis was observed by TUNEL staining, and the mRNA and protein expression of Bcl-2 and Bax was detected by real-time fluorescence quantitative PCR and Western blot at 14 d after cerebral ischemia. RESULTS: Compared with BMSCs group and TMP group, TMP combined with BMSCs significantly reduced the score of mNSS (P<0.01) and the infarct volume (P<0.01), alleviated the pathological damage in the peripheral area of cerebral ischemia, decreased the number of TUNEL positive cells (P<0.01), increased the expression of Bcl-2 and decreased the expression of Bax at mRNA and protein levels (P<0.01). CONCLUSION: Tetramethylpyrazine combined with transplantation of BMSCs improves the functional recovery, reduces the infarct volume, relieves the ischemic injury of the brain tissue, and attenuates neuronal apoptosis in the rats with cerebral ischemia. The mechanism may be related to regulating the expression of Bcl-2 and Bax.

Tetramethylpyrazine; Bone marrow mesenchymal stem cells; Cerebral ischemia; Apoptosis

1000- 4718(2016)11- 1984- 06

2016- 04- 19

2016- 08- 26

國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No. 81274113)；浙江省公益技術(shù)應(yīng)用研究計(jì)劃(No. 2016C33185)；浙江省教育廳科研項(xiàng)目(No. Z201016310)

R363

A

10.3969/j.issn.1000- 4718.2016.11.011

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