胡曉東，熊風(fēng)，萬(wàn)才云，李觀貴，黃麗施，彭月婷，孫青，鮑忠劍，曾勇

(深圳中山泌尿外科醫(yī)院生殖中心，深圳市圍著床期生殖免疫重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，深圳中山生殖與遺傳研究所，深圳　518045)

?

·實(shí)驗(yàn)研究·

褪黑素對(duì)人卵裂期胚胎發(fā)育的影響及機(jī)制研究

胡曉東，熊風(fēng)，萬(wàn)才云，李觀貴，黃麗施，彭月婷，孫青，鮑忠劍，曾勇*

(深圳中山泌尿外科醫(yī)院生殖中心，深圳市圍著床期生殖免疫重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，深圳中山生殖與遺傳研究所，深圳518045)

目的探討褪黑素對(duì)人第3天(D3)卵裂期胚胎發(fā)育成囊胚的影響及其作用機(jī)制。方法收集2012年10月至2014年10月在本中心行IVF-ET助孕治療患者捐贈(zèng)的D3玻璃化冷凍胚胎，復(fù)蘇后存活率100%且未發(fā)生卵裂球溶解的胚胎納入研究(n=143)，隨機(jī)分為褪黑素組(培養(yǎng)液中加入1×10-7mol/L褪黑素，n=71)和對(duì)照組(不添加褪黑素，n=72)。兩組胚胎均放于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h，統(tǒng)計(jì)囊胚及優(yōu)質(zhì)囊胚形成率；采用魯米諾化學(xué)發(fā)光法檢測(cè)培養(yǎng)液中總活性氧(ROS)水平；實(shí)時(shí)熒光定量PCR法分析抗氧化酶類(lèi)基因CAT、GPx、SOD1、SOD2及凋亡相關(guān)基因Bax、Bcl-2的表達(dá)。結(jié)果褪黑素組的囊胚形成率(42.25%)顯著高于對(duì)照組(26.38%)(P<0.05)，優(yōu)質(zhì)囊胚形成率(30.00%)略高于對(duì)照組(26.32%)，但無(wú)顯著性差異(P>0.05)。培養(yǎng)72 h后兩組胚胎培養(yǎng)液中的ROS水平比較(513.33 vs. 556.67 RLUs)無(wú)顯著性差異(P>0.05)。褪黑素處理后，胚胎內(nèi)過(guò)氧化氫酶基因CAT的相對(duì)表達(dá)量(1.68±0.43)較對(duì)照組(1.00±0.03)顯著上調(diào)(P<0.05)，其他基因包括Bax、Bcl-2、SOD1、SOD2、GPx的表達(dá)則沒(méi)有顯著性差異(P>0.05)。結(jié)論褪黑素能夠促進(jìn)人卵裂期胚胎繼續(xù)發(fā)育形成囊胚，其機(jī)制可能與上調(diào)胚胎中過(guò)氧化氫酶基因CAT的表達(dá)有關(guān)。

褪黑素；人卵裂期胚胎；囊胚；過(guò)氧化氫酶

【Abstract】

Objective： To investigate the effect of melatonin on development of human cleavage-stage embryos to blastocyst in vitro.

Methods： The vitrified Day 3 embryos donated by couples undergone IVF treatment in our center from October 2012 to October 2014 were collected. The embryos which blastomere did not dissolved after warming were included in this study (n=143) and randomly divided into two groups according to the embryos were cultures with/without melatonin： the melatonin group (n=71) and the control group (n=72). The warmed embryos in both groups were cultured in the same incubator for 72 hours at 37℃，5% CO2concentration. The formation rates of blastocyst and high-grade blastocyst were compared between the two groups. Chemiluminescence assay was adopted to quantify the ROS levels in culture media. Gene expression of antioxidant enzymesCAT，GPx，SOD1 andSOD2，and apoptosis related genesBcl-2 andBaxin the embryos were analyzed by real-time fluorescent quantitative PCR.

Results： The blastocyst formation rate of melatonin group(42.25%)was significantly increased compared to the control group(26.38%)(P<0.05)，while the high-grade blastocyst formation rate was slightly increased but no statistic difference(30.00% vs. 26.32%)(P>0.05). The ROS levels in the culture media after 72 hours culture were comparable between the two groups(513.33 vs. 556.67 RLUs)(P>0.05). The mRNA level ofCATwas significantly increased in the melatonin group compared with the control group [(1.68±0.43)vs.(1.00±0.03)] (P<0.05)，but no significant difference was found in the mRNA level ofGPx，SOD1，SOD2，Bcl-2 andBax(P>0.05).

Conclusions： Melatonin can promote human Day 3 cleavage-stage embryos develop to blastocyst. The mechanism could be associated with up-regulating expression of catalase gene by melatonin.

(JReprodMed2016，25(8)：719-724)

胚胎發(fā)育發(fā)生在有氧環(huán)境中，因自身代謝會(huì)產(chǎn)生一定量的總活性氧(ROS)。ROS積累能夠?qū)е录?xì)胞膜脂質(zhì)過(guò)氧化、損傷DNA、基因表達(dá)異常，造成毒性作用，ROS引起的氧化損傷可導(dǎo)致胚胎發(fā)育阻滯[1]。體內(nèi)條件下，卵泡液與輸卵管液及其上皮含有大量酶類(lèi)以及非酶類(lèi)抗氧化劑，以保護(hù)胚胎免受氧化損傷。這些抗氧化劑包括非酶性抗氧化物如褪黑素，維生素A、C、E，丙酮酸鹽，谷胱甘肽，(亞)?；撬?，半胱胺等，以及自身的酶性抗氧化劑如超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GPx)、過(guò)氧化氫酶(CAT)、過(guò)氧化物氧化還原酶(PRDX)等[2]。然而，體外胚胎培養(yǎng)條件下則失去這些保護(hù)機(jī)制[3]，目前一般采用三氣培養(yǎng)箱的低氧環(huán)境來(lái)減少ROS的產(chǎn)生。雖然也有添加L-肉堿[4]、維生素E[5]等抗氧化劑促進(jìn)胚胎發(fā)育的研究，但是作用并不明顯，仍然缺乏一種非常有效的生理性抗氧化保護(hù)劑。

褪黑素(化學(xué)名稱(chēng)為N-乙酰-5-甲氧基色胺)是哺乳動(dòng)物和人的松果體分泌的一類(lèi)吲哚類(lèi)激素，在包括生殖系統(tǒng)的多個(gè)器官和組織中都有分布，是一個(gè)生理安全性自由基清除劑和抗氧化劑[6]。已有研究表明，在胚胎培養(yǎng)液中添加褪黑素能夠促進(jìn)包括小鼠[7]、綿羊[8]、牛[9]和豬[10]等哺乳動(dòng)物早期胚胎的發(fā)育，促進(jìn)囊胚的形成。然而褪黑素對(duì)人類(lèi)胚胎發(fā)育及囊胚形成的影響卻未見(jiàn)報(bào)道。本研究以人第3天(D3)卵裂期冷凍復(fù)蘇胚胎為材料，研究褪黑素對(duì)人類(lèi)胚胎囊胚發(fā)育的影響，并初步探討褪黑素作用于人卵裂期胚胎的可能機(jī)制。

材料與方法

一、研究對(duì)象

收集2012年10月至2014年10月在我院生殖中心行體外受精-胚胎移植(IVF-ET)患者自愿放棄并捐贈(zèng)用于科研的D3胚胎。所有胚胎均是按照Quinns’s Advantage?玻璃化冷凍試劑盒(SAGE，美國(guó))說(shuō)明書(shū)行玻璃化冷凍的胚胎。根據(jù)其配套的玻璃化解凍試劑盒解凍所有胚胎，復(fù)蘇1 h后進(jìn)行復(fù)蘇存活率評(píng)估及形態(tài)學(xué)評(píng)級(jí)。其中，復(fù)蘇存活率為100%且所有卵裂球均未發(fā)生溶解的胚胎納入本次研究。本研究經(jīng)本院倫理委員會(huì)討論通過(guò)。

二、主要試劑與儀器

Quinns’s Advantage?胚胎培養(yǎng)液、Quinns’s Advantage?玻璃化冷凍與解凍試劑盒(SAGE，美國(guó))；褪黑素、二甲基亞砜(DMSO)、魯米諾(5-氨基-2，3-二氫-1，4-二氮雜萘二酮)(Sigma，美國(guó))；實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒Power SYBR Green Cells-to-CT(Life Technologies Corporation，美國(guó))；PCR所用引物由上海生工公司合成；Synergy H1TM全功能酶標(biāo)儀(Biotek，美國(guó))；ABI 7500實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀(Applied Biosystems，美國(guó))。

三、分組及培養(yǎng)方式

根據(jù)Scott采用的胚胎形態(tài)學(xué)分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)[11]對(duì)復(fù)蘇后的胚胎進(jìn)行評(píng)級(jí)，3級(jí)以上胚胎納入本次研究(n=143)，在保證兩組間的胚胎評(píng)級(jí)沒(méi)有顯著性差異的前提下，隨機(jī)分為兩組，褪黑素組(n=71)和對(duì)照組(n=72)。根據(jù)前期預(yù)實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)和相關(guān)文獻(xiàn)經(jīng)驗(yàn)[12-13]，褪黑素組囊胚培養(yǎng)液中加入1×10-7mol/L褪黑素，對(duì)照組則不添加褪黑素。胚胎培養(yǎng)方式均采用Quinns’s Advantage?囊胚培養(yǎng)液進(jìn)行微滴單個(gè)培養(yǎng)，微滴大小40 μl。兩組胚胎均放置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h，觀察并統(tǒng)計(jì)囊胚形成情況。根據(jù)Gardner & Schoolcraft標(biāo)準(zhǔn)[14]對(duì)囊胚進(jìn)行質(zhì)量評(píng)估。

四、培養(yǎng)液ROS檢測(cè)

囊胚培養(yǎng)液中的ROS含量采用魯米諾化學(xué)發(fā)光法檢測(cè)。體外培養(yǎng)胚胎72 h的培養(yǎng)液作為檢測(cè)組，檢測(cè)無(wú)胚胎培養(yǎng)、置于培養(yǎng)箱相同條件下72 h培養(yǎng)液中的ROS水平作為背景值。10 μl培養(yǎng)液中加入0.5 μl濃度為5 mmol/L的魯米諾，采用Synergy H1TM全功能酶標(biāo)儀37℃條件下進(jìn)行檢測(cè)，參照之前文獻(xiàn)[15]采用的方法，每個(gè)樣品測(cè)量15 min，讀取化學(xué)發(fā)光值，最終培養(yǎng)液中的ROS含量用相對(duì)光單位(RLUs)表示。每個(gè)樣品測(cè)兩個(gè)復(fù)孔。

五、熒光定量PCR

采用SYBR Green試劑盒定量分析兩組胚胎中抗氧化酶類(lèi)基因的表達(dá)情況，如銅鋅超氧化物歧化酶基因(SOD1)、錳超氧化物歧化酶基因(SOD2)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶基因(GPx)、過(guò)氧化氫酶基因(CAT)，及凋亡相關(guān)基因，如抗凋亡的B淋巴細(xì)胞瘤-2基因(Bcl-2)、促凋亡的Bcl-2相關(guān)X蛋白基因(Bax)。GPx、CAT、SOD1、SOD2、Bax和Bcl-2基因的引物序列見(jiàn)表1。具體流程參照試劑盒說(shuō)明書(shū)，分別收集培養(yǎng)72 h的褪黑素組和對(duì)照組所有胚胎，PBS溶液清洗2次后加入裂解液稀釋100倍的DNase I，提取RNA。加入20×RT酶混合液，2×SYBR RT緩沖液，在37℃ 60 min，95℃ 1 min條件下逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。取1 μl cDNA模板，5 μl 2×SYBR Green PCR酶混合物，0.2 μl引物，ddH2O補(bǔ)至10 μl體系。利用ABI 7500實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀進(jìn)行擴(kuò)增。擴(kuò)增條件為：95℃預(yù)變性10 min，95℃ 15 s，60℃ 1 min，40個(gè)循環(huán)。選擇β-actin作為內(nèi)參基因，計(jì)算目標(biāo)基因相對(duì)mRNA表達(dá)量。每個(gè)基因重復(fù)3次實(shí)驗(yàn)。

表1　實(shí)時(shí)熒光定量PCR引物

六、統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

結(jié)　　果

一、褪黑素對(duì)人卵裂期胚胎繼續(xù)培養(yǎng)形成囊胚的影響

褪黑素組和對(duì)照組的復(fù)蘇后胚胎質(zhì)量比較無(wú)顯著性差異(P>0.05)(表2)。兩組胚胎在相同條件下培養(yǎng)72 h，觀察囊胚形成數(shù)量及質(zhì)量，結(jié)果顯示，褪黑素組胚胎發(fā)育為囊胚的比例顯著高于對(duì)照組胚胎(42.25% vs. 26.38%，P<0.05)。褪黑素組優(yōu)質(zhì)囊胚的形成率有所提高，但是二者比較無(wú)顯著性差異(30.00% vs. 26.32%，P>0.05)(表3)。

表2　兩組復(fù)蘇胚胎的質(zhì)量比較 [n(%)]

表3　兩組囊胚形成情況比較 [n(%)]

注：與對(duì)照組比較，*P<0.05

二、培養(yǎng)液中ROS水平檢測(cè)

采用魯米諾化學(xué)發(fā)光法檢測(cè)培養(yǎng)液中的ROS含量，結(jié)果顯示褪黑素組囊胚培養(yǎng)液中的ROS水平與對(duì)照組相當(dāng)(513.33 vs. 556.67 RLUs)，無(wú)顯著性差異(P>0.05)(圖1)。

圖1　兩組囊胚培養(yǎng)液中ROS水平比較

三、Bcl-2、Bax、CAT、GPx、SOD1和SOD2基因表達(dá)的定量分析

實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果顯示，褪黑素組胚胎中CAT基因mRNA的相對(duì)表達(dá)量(1.68±0.43)較對(duì)照組(1.00±0.03)顯著升高(P<0.05)，其它基因的表達(dá)兩組間比較無(wú)顯著性差異(P>0.05)(圖2)。

注：與對(duì)照組比較，*P<0.05圖2　熒光定量PCR檢測(cè)Bcl-2，Bax，CAT，GPx，SOD1和SOD2的相對(duì)表達(dá)量

討　　論

目前，輔助生殖技術(shù)是治療不孕不育癥最為有效的方法。經(jīng)過(guò)30多年的發(fā)展，大家開(kāi)始認(rèn)識(shí)到傳統(tǒng)卵裂期胚胎的移植存在種植率不高、移植胚胎數(shù)多、多胎現(xiàn)象嚴(yán)重等問(wèn)題[16]，有學(xué)者開(kāi)始嘗試從卵裂期胚胎移植向囊胚移植甚至單囊胚移植過(guò)渡，認(rèn)為在提高臨床妊娠率的同時(shí)，顯著降低多胎妊娠風(fēng)險(xiǎn)[17]，囊胚培養(yǎng)與移植可能是未來(lái)輔助生殖技術(shù)的發(fā)展趨勢(shì)[18]。這就對(duì)囊胚培養(yǎng)技術(shù)提出了極大的挑戰(zhàn)。雖然目前有研究嘗試對(duì)培養(yǎng)液及培養(yǎng)條件等進(jìn)行優(yōu)化，但囊胚形成率仍不高，若全部進(jìn)行囊胚培養(yǎng)，仍有約10%的患者無(wú)囊胚形成而無(wú)可用胚胎[19]。因此，為了更有效、更安全地實(shí)施輔助生殖技術(shù)，提高囊胚形成率十分關(guān)鍵。本研究將褪黑素作為抗氧化保護(hù)劑添加到培養(yǎng)液中，結(jié)果顯示褪黑素顯著提高了人類(lèi)卵裂期胚胎的囊胚形成率，提示其可能用于改善目前體外培養(yǎng)條件下囊胚形成不高、無(wú)囊胚形成發(fā)生率較高的現(xiàn)況。

褪黑素是人及其它哺乳動(dòng)物體內(nèi)合成的一類(lèi)生理性激素，已有報(bào)道其作為活性氧清除劑應(yīng)用于動(dòng)物胚胎的研究中。在小鼠模型中，褪黑素能夠誘導(dǎo)2細(xì)胞期冷凍復(fù)蘇胚胎內(nèi)源性谷胱甘肽的表達(dá)以及降低活性氧水平，提高囊胚形成率及胚胎質(zhì)量[20]。褪黑素的添加也能提高綿羊冷凍復(fù)蘇胚胎發(fā)育成囊胚的細(xì)胞數(shù)與孵出率[21]。我們的研究結(jié)果較為類(lèi)似，在人D3冷凍復(fù)蘇胚胎囊胚培養(yǎng)液中添加1×10-7mol/L褪黑素，顯著提高了囊胚形成率，提示褪黑素可能參與人卵裂期胚胎囊胚發(fā)育過(guò)程，并起到促進(jìn)作用。然而，添加褪黑素后，雖然形成囊胚的質(zhì)量有提高趨勢(shì)，但與對(duì)照組比較并沒(méi)有顯著性差異，這與之前報(bào)道的褪黑素提高動(dòng)物胚胎形成囊胚的質(zhì)量[20]不同。分析其原因，一方面可能是由于樣本量的局限性；另一方面，本研究中，只在D3胚胎向后繼續(xù)培養(yǎng)的囊胚培養(yǎng)液中添加褪黑素，與胚胎體外發(fā)育早期就添加褪黑素的相比，對(duì)胚胎發(fā)育的影響可能存在一定的差異。此外，動(dòng)物胚胎的質(zhì)量評(píng)估體系主要是根據(jù)囊胚細(xì)胞數(shù)來(lái)評(píng)估囊胚質(zhì)量；而對(duì)于人類(lèi)胚胎而言，根據(jù)Gardner & Schoolcraft標(biāo)準(zhǔn)，需要綜合考慮囊胚腔直徑、擴(kuò)張程度、內(nèi)細(xì)胞團(tuán)的緊密程度及內(nèi)細(xì)胞團(tuán)和滋養(yǎng)層的細(xì)胞數(shù)，是一個(gè)綜合性的質(zhì)量評(píng)估[14]。兩種不同的質(zhì)量評(píng)估體系可能也是導(dǎo)致人和動(dòng)物胚胎形成囊胚質(zhì)量差異性的原因。另外，本研究中所用的褪黑素作用濃度為1×10-7mol/L，這主要是基于我們前期的濃度梯度摸索實(shí)驗(yàn)(0 mol/L、1×10-9mol/L、1×10-7mol/L和1×10-5mol/L)及相關(guān)文獻(xiàn)經(jīng)驗(yàn)[12-13]，證實(shí)1×10-7mol/L的使用濃度可以獲得滿意的受精率與優(yōu)胚率，加之有文獻(xiàn)報(bào)道高濃度的褪黑素反而會(huì)抑制細(xì)胞分裂從而不利于胚胎的發(fā)育[22]，但1×10-7mol/L是不是褪黑素的最佳作用濃度尚有待進(jìn)一步研究驗(yàn)證。

胚胎的玻璃化冷凍及解凍操作可能會(huì)破壞胚胎自身的抗氧化保護(hù)機(jī)制[23]，因此體外培養(yǎng)過(guò)程中可能需要體外添加抗氧化保護(hù)劑。由于人類(lèi)胚胎的特殊性，本研究選擇了冷凍復(fù)蘇的胚胎研究褪黑素對(duì)人類(lèi)胚胎發(fā)育的影響，并不能很直接地反應(yīng)人類(lèi)新鮮胚胎發(fā)育的情況。Choi等[24]的研究表明，在培養(yǎng)液中添加1×10-10mol/L褪黑素能顯著提高豬新鮮胚胎的囊胚形成率；亦有研究證實(shí)褪黑素有利于新鮮鼠胚的囊胚發(fā)育[20]。上述研究提示，褪黑素可能對(duì)冷凍胚胎和新鮮胚胎的發(fā)育均有積極作用，有可能僅在最適作用濃度上存在區(qū)別。

褪黑素發(fā)揮抗氧化作用的具體機(jī)制包含兩條途徑：(1)不依賴受體途徑：褪黑素有高的親脂性，能夠自由進(jìn)出細(xì)胞膜性結(jié)構(gòu)，與ROS分子直接結(jié)合并進(jìn)行清除，而且褪黑素與ROS反應(yīng)的代謝產(chǎn)物還具有活性氧清除功能[6]。(2)依賴受體途徑：褪黑素與細(xì)胞膜上的褪黑素受體結(jié)合，向細(xì)胞內(nèi)傳遞抗氧化信號(hào)，通過(guò)級(jí)聯(lián)放大效應(yīng)激活細(xì)胞內(nèi)的抗氧化酶類(lèi)(SOD、GPx、CAT、PRDX等)的表達(dá)從而發(fā)揮抗氧化的保護(hù)功能[25]。通過(guò)兩種途徑，最終有效減少ROS的含量，從而促進(jìn)動(dòng)物胚胎的發(fā)育[26]。

培養(yǎng)液是體外培養(yǎng)中胚胎的生長(zhǎng)環(huán)境，培養(yǎng)液中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)及胚胎的代謝產(chǎn)物，對(duì)胚胎的生長(zhǎng)發(fā)育都十分關(guān)鍵。其中，胚胎自身代謝產(chǎn)生及外環(huán)境釋放的ROS物質(zhì)都可能?chē)?yán)重阻滯胚胎發(fā)育[27]。因此，本研究采用魯米諾化學(xué)發(fā)光法檢測(cè)了體外培養(yǎng)72 h后培養(yǎng)液中的總ROS水平。但出乎意外的是，褪黑素組與對(duì)照組培養(yǎng)液中的ROS含量比較并沒(méi)有顯著性差異，提示褪黑素的添加并不能有效去除培養(yǎng)液中的ROS，也就是說(shuō)褪黑素可能是通過(guò)胚胎細(xì)胞膜上的褪黑素受體，向細(xì)胞內(nèi)傳遞氧化應(yīng)激信號(hào)，從而提高對(duì)ROS的耐受，促進(jìn)囊胚形成。因此，本研究分析了褪黑素處理72 h后，胚胎中Bcl-2、Bax、CAT、GPx、SOD1和SOD2基因表達(dá)的情況。結(jié)果顯示CAT基因表達(dá)顯著上調(diào)，這與已有文獻(xiàn)[28]報(bào)道一致；其他基因(Bcl-2、Bax、GPx、SOD1和SOD2)的表達(dá)兩組間比較則沒(méi)有顯著性差異。而之前有文獻(xiàn)報(bào)道，褪黑素能顯著促進(jìn)牛胚胎中抗氧化酶基因GPx、SOD1和抗凋亡基因Bcl-2的表達(dá)，抑制促凋亡基因Bax的表達(dá)，降低細(xì)胞內(nèi)的ROS含量和細(xì)胞凋亡[29]；對(duì)于豬體細(xì)胞核移植胚胎，褪黑素能通過(guò)上調(diào)Bcl-2和下調(diào)Bax的基因表達(dá)促進(jìn)囊胚的形成[30]；而在小鼠胚胎中，褪黑素上調(diào)表達(dá)SOD和Bcl-2基因，減少細(xì)胞內(nèi)的ROS產(chǎn)生和抑制細(xì)胞凋亡，并不影響GPx和Bax等基因的表達(dá)[7]。如果不考慮褪黑素添加時(shí)間對(duì)基因表達(dá)的影響，這種差異可能是由于物種間的差異性造成的，即對(duì)于不同物種的胚胎，在體外發(fā)育過(guò)程中，褪黑素調(diào)控的下游基因可能并不相同。

綜上所述，本研究嘗試將褪黑素添加到人的胚胎培養(yǎng)液中，揭示了褪黑素對(duì)人卵裂期胚胎生長(zhǎng)發(fā)育的促進(jìn)作用。褪黑素的添加并不能直接改善胚胎培養(yǎng)液中的ROS水平，其可能機(jī)制與通過(guò)上調(diào)胚胎內(nèi)CAT基因的表達(dá)，從而提高胚胎的抗氧化能力有關(guān)。但是，本研究并沒(méi)有對(duì)胚胎內(nèi)CAT蛋白表達(dá)情況及細(xì)胞內(nèi)的ROS含量進(jìn)行檢測(cè)。因此，對(duì)于褪黑素究竟是如何影響CAT的表達(dá)水平以及如何通過(guò)上調(diào)CAT的表達(dá)來(lái)影響人類(lèi)胚胎的發(fā)育，還需要更加深入的研究。

[1]粱琳，陳秀娟. 觀察體外受精中卵泡液的抗氧化能力及其對(duì)卵母細(xì)胞質(zhì)量和胚胎發(fā)育的影響[J]. 生殖醫(yī)學(xué)雜志，2015，24： 532-537.

[2]胡德寶，張寶修，張也，等. 氧化應(yīng)激與胚胎的氧化還原調(diào)節(jié)[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào)，2014，45： 1038-1043.

[3]Fujii J，Iuchi Y，Okada F. Fundamental roles of reactive oxygen species and protective mechanisms in the female reproductive system[J]. Reprod Biol Endocrinol，2005，3： 43.

[4]Abdelrazik H，Sharma R，Mahfouz R，et al. L-Carnitine decreases DNA damage and improves the in vitro blastocyst development rate in mouse embryos[J]. Fertil Steril，2009，91： 589-596.

[5]周瑞年，李瑞文. 添加抗氧化物維生素E對(duì)人類(lèi)胚胎體外發(fā)育的影響[J]. 實(shí)用婦產(chǎn)科雜志，2010，26： 936-938.

[6]Zavodnik IB，Domanski AV，Lapshina EA，et al. Melatonin directly scavenges free radicals generated in red blood cells and a cell-free system： chemiluminescence measurements and theoretical calculations[J]. Life Sci，2006，79： 391-400.

[7]Wang F，Tian X，Zhang L，et al. Melatonin promotes the in vitro development of pronuclear embryos and increases the efficiency of blastocyst implantation in murine[J]. J Pineal Res，2013，55： 267-274.

[8]Berlinguer F，Leoni GG，Succu S，et al. Exogenous melatonin positively influences follicular dynamics，oocyte developmental competence and blastocyst output in a goat model[J]. J Pineal Res，2009，46： 383-391.

[9]Cebrian-Serrano A，Salvador I，Raga E，et al. Beneficial effect of melatonin on blastocyst in vitro production from heat-stressed bovine oocytes[J]. Reprod Domest Anim，2013，48： 738-746.

[10]Shi JM，Tian XZ，Zhou GB，et al. Melatonin exists in porcine follicular fluid and improves in vitro maturation and parthenogenetic development of porcine oocytes[J]. J Pineal Res，2009，47： 318-323.

[11]Scott L，Alvero R，Leondires M，et al. The morphology of human pronuclear embryos is positively related to blastocyst development and implantation[J]. Hum Reprod，2000，15： 2394-2403.

[12]Wang F，Tian X，Zhou Y，et al. Melatonin improves the quality of in vitro produced (IVP) bovine embryos： implications for blastocyst development，cryotolerance，and modifications of relevant gene expression[J/OL]. PLoS One，2014，9： e93641.

[13]Vandaele L，Van Soom A. Intrinsic factors affecting apoptosis in bovine in vitro produced embryos[J]. Verh K Acad Geneeskd Belg，2011，73： 79-104.

[14]Gardner DK，Lane M，Stevens J，et al. Blastocyst score affects implantation and pregnancy outcome： towards a single blastocyst transfer[J]. Fertil Steril，2000，73： 1155-1158.

[15]Lee TH，Lee MS，Liu CH，et al. The association between microenvironmental reactive oxygen species and embryo development in assisted reproduction technology cycles[J]. Reprod Sci，2012，19： 725-732.

[16]Blake DA，F(xiàn)arquhar CM，Johnson N，et al. Cleavage stage versus blastocyst stage embryo transfer in assisted conception[J]. Cochrane Database Syst Rev，2007，(4)： CD002118.

[17]Pribenszky C，Mátyás S，Kovács P，et al. Pregnancy achieved by transfer of a single blastocyst selected by time-lapse monitoring[J/OL]. Reprod Biomed Online，2010，21： 533-536.

[18]薛俠，張四林，施文浩，等. 不同授精方式的選擇性單囊胚移植的妊娠結(jié)局分析[J]. 生殖醫(yī)學(xué)雜志，2014，23： 760-762.

[19]高夢(mèng)瑩，李永剛，馬艷萍，等. 囊胚培養(yǎng)與囊胚移植的臨床應(yīng)用[J]. 生殖與避孕，2011，31： 765-768.

[20]Gao C，Han HB，Tian XZ，et al. Melatonin promotes embryonic development and reduces reactive oxygen species in vitrified mouse 2-cell embryos[J]. J Pineal Res，2012，52： 305-311.

[21]Succu S，Pasciu V，Manca ME，et al. Dose-dependent effect of melatonin on postwarming development of vitrified ovine embryos[J]. Theriogenology，2014，81： 1058-1066.

[23]Somfai T，Ozawa M，Noguchi J，et al. Developmental competence of in vitro-fertilized porcine oocytes after in vitro maturation and solid surface vitrification： effect of cryopreservation on oocyte antioxidative system and cell cycle stage[J]. Cryobiology，2007，55： 115-126.

[24]Choi J，Park SM，Lee E，et al. Anti-apoptotic effect of melatonin on preimplantation development of porcine parthenogenetic embryos[J]. Mol Reprod Dev，2008，75： 1127-1135.

[25]Lanoix D，Lacasse AA，Reiter RJ，et al. Melatonin： the smart killer： the human trophoblast as a model[J]. Mol Cell Endocrinol，2012，348： 1-11.

[26]Kang JT，Koo OJ，Kwon DK，et al. Effects of melatonin on in vitro maturation of porcine oocyte and expression of melatonin receptor RNA in cumulus and granulosa cells[J]. J Pineal Res，2009，46： 22-28.

[27]Cseh S，Corselli J，Nehlsen-Cannarella SL，et al. The effect of quick-freezing in ethylene glycol on morphological survival and in vitro development of mouse embryos frozen at different preimplantation stages[J]. Theriogenology，1997，48： 43-50.

[28]Fischer TW，Kleszczyński K，Hardkop LH，et al. Melatonin enhances antioxidative enzyme gene expression (CAT，GPx，SOD)，prevents their UVR-induced depletion，and protects against the formation of DNA damage (8-hydroxy-2’-deoxyguanosine) in ex vivo human skin[J]. J Pineal Res，2013，54： 303-312.

[29]Su J，Wang Y，Xing X，et al. Melatonin significantly improves the developmental competence of bovine somatic cell nuclear transfer embryos[J]. J Pineal Res，2015，59： 455-468.

[30]Pang YW，An L，Wang P，et al. Treatment of porcine donor cells and reconstructed embryos with the antioxidant melatonin enhances cloning efficiency[J]. J Pineal Res，2013，54： 389-397.

[編輯：肖曉輝]

Effect of melatonin on development of human cleavage-stage embryos in vitro

HU Xiao-dong，XIONG Feng，WAN Cai-yun，LI Guan-gui，HUANG Li-shi，PENG Yue-ting，SUN Qing，BAO Zhong-jian，ZENG Yong*

FertilityCenter，ShenzhenZhongshanUrologyHospital，ShenzhenKeyLaboratoryofReproductiveImmunologyforPeri-implantation，ShenzhenZhongshanInstituteforReproductionandGenetics，Shenzhen518045

Melatonin；Human cleavage-stage embryos；Blastocyst；Catalase

2015-12-29；

2016-02-02

深圳市基礎(chǔ)研究項(xiàng)目(JCYJ20150402165325174)；深圳市科技計(jì)劃項(xiàng)目(201202200)；廣東省醫(yī)學(xué)科研基金項(xiàng)目(A2014658)

胡曉東，女，廣東人，本科，副主任醫(yī)師，婦產(chǎn)科學(xué)專(zhuān)業(yè).(*

，Email：szsz01@sina.com)

DOI：10.3969/j.issn.1004-3845.2016.08.010