邢 杰 謝 霆 吳朝光
(海南省人民醫(yī)院心臟外科,海南 ??凇?70311)
?
遠(yuǎn)隔缺血時處理對心臟瓣膜置換術(shù)心肌微小RNA表達及心肌細(xì)胞凋亡的影響
邢杰謝霆吳朝光
(海南省人民醫(yī)院心臟外科,海南???70311)
〔摘要〕目的探討遠(yuǎn)隔缺血時處理對心臟瓣膜置換術(shù)心肌微小RNA表達及心肌細(xì)胞凋亡的作用。方法心胸外科擇期行體外循環(huán)下心臟瓣膜置換手術(shù)的風(fēng)濕性心臟瓣膜病患者60例按照隨機數(shù)字表法分為遠(yuǎn)隔缺血時處理組和對照組,每組30例。兩組均給予心臟瓣膜置換手術(shù),其中遠(yuǎn)隔缺血時處理組在阻斷主動脈后立即實施下肢缺血/再灌注處理。 對照組放置止血帶但不進行充氣。分別在體外循環(huán)開始前及主動脈阻斷鉗開放后5 min內(nèi)剪取右心耳組織作為檢測標(biāo)本。實時定量聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)技術(shù)檢測和驗證miR-1,miR-21,miR-24和miR-195的表達情況,并采用TUNEL法檢測心肌組織心肌細(xì)胞凋亡情況。結(jié)果遠(yuǎn)隔缺血時處理組中miR-1和miR-195的表達較對照組降低明顯(P<0.05),miR-24和miR-21的表達與對照組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。在翻譯水平,遠(yuǎn)隔缺血時處理組的Bcl-2的mRNA表達比對照組顯著上調(diào)(P<0.05),而BAX,PDCD4的mRNA的表達則無明顯改變。心肌缺血前遠(yuǎn)隔缺血時處理組和對照組心肌凋亡細(xì)胞數(shù)目較少,差異無統(tǒng)計學(xué)意義〔(4.3±0.3)% vs (4.1±0.2)%,P>0.05〕。心肌再灌注后兩組心肌凋亡細(xì)胞均較缺血前顯著增加,且遠(yuǎn)隔缺血時處理組心肌凋亡較對照組減輕明顯(P<0.05)。結(jié)論遠(yuǎn)隔缺血時處理可以調(diào)控體外循環(huán)心臟瓣膜置換術(shù)患者心肌MicroRNAs的表達,使miRNA-1和miRNAs-195表達下調(diào),增加抗凋亡蛋白Bcl-2表達和減少促凋亡蛋白BAX表達,心肌細(xì)胞凋亡減少。
〔關(guān)鍵詞〕遠(yuǎn)隔缺血時處理;微小RNA;心肌細(xì)胞凋亡;心臟瓣膜置換術(shù)
心臟外科小樣本量臨床研究證實,遠(yuǎn)隔缺血時處理在 心臟和腎臟等器官保護中發(fā)揮作用,其能夠減少心臟瓣膜置換手術(shù)中心肌肌鈣蛋白(CTn)I釋放,以此來保護心肌〔1〕。但有報道指出,其對心肌等器官的保護效果不明顯〔2,3〕。因此,關(guān)于遠(yuǎn)隔缺血時處理在心臟手術(shù)中的作用目前沒有完全統(tǒng)一的說法,且關(guān)于遠(yuǎn)隔缺血時處理的較大樣本量的臨床研究尚缺乏。微小RNA(miRNAs )在缺血處理的組織及器官中的保護作用機制越來越受到重視〔4,5〕。 miRNAs是一類在進化上高度保守的小分子非編碼RNA,長度為19~25個核苷酸,可發(fā)揮轉(zhuǎn)錄后調(diào)控蛋白質(zhì)編碼基因表達的作用。研究證實,當(dāng)發(fā)生心肌缺血性損傷時,miRNAs被不同程度地表達,參與心肌缺血再灌注過程并發(fā)揮重要的調(diào)控相應(yīng)基因的作用〔6,7〕。本文進一步明確遠(yuǎn)隔缺血時處理對心肌miRNAs表達及心肌細(xì)胞凋亡的影響。
1資料與方法
1.1一般資料2013年1月至2015年1月在我院心胸外科擇期行體外循環(huán)下心臟瓣膜置換手術(shù)的風(fēng)濕性心臟瓣膜病患者60例按照隨機數(shù)字表法分為遠(yuǎn)隔缺血時處理組和對照組,每組30例。其中遠(yuǎn)隔缺血時處理組男12例,女18例,年齡42~65歲,平均(52.1±10.5)歲;對照組男14例,女16例,年齡40~63歲,平均(53.9±8.4)歲。兩組年齡、性別差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),具有可比性。均經(jīng)冠脈造影排除冠心病,且術(shù)前常規(guī)行胸片,心電圖和超聲心動圖檢查,肝腎功能電解質(zhì)等測定。均知情同意,簽署同意書,并經(jīng)倫理委員會通過。納入標(biāo)準(zhǔn):①術(shù)前診斷均符合風(fēng)濕性心臟瓣膜病的診斷標(biāo)準(zhǔn);②行人工機械瓣膜置換或生物瓣膜者。 排除標(biāo)準(zhǔn):合并冠心病或高血壓、合并感染性心內(nèi)膜炎者;先天性心臟瓣膜疾??;合并周圍血管病;不愿意配合者。
1.2方法所有患者術(shù)前準(zhǔn)備,全身麻醉后氣管插管,右頸內(nèi)靜脈及橈動脈分別置管,連續(xù)監(jiān)測體溫、心率、動脈血壓、中心靜脈壓等。全部手術(shù)均由同一外科醫(yī)生操作完成。術(shù)中肝素5 mg/kg,心臟停搏期間維持中度低溫(肛溫在28~31 ℃),灌注流量約為25 L·min-1·體表面積-1。根據(jù)血氣調(diào)整pH為7.35,動脈血CO2濃度(PaCO2)為35 mmHg左右,動脈血氧濃度(PaO2)維持不低于200 mmHg。阻斷升主動脈后,以220~250 ml/min的流速從主動脈根部灌注,對于有明顯主動脈瓣關(guān)閉不全的患者,可直接切開升主動脈,給予冠狀動脈開口直接灌注。后進行正中胸骨切口,升主動脈遠(yuǎn)端插動脈灌注管,建立常規(guī)的體外循環(huán)。視具體情況給予連續(xù)或間斷縫合。心內(nèi)操作完畢后,開放主動脈阻斷鉗,主動脈根部吸引排氣。檢測血流動力學(xué)相關(guān)指標(biāo),一旦正常穩(wěn)定,即可停機。常規(guī)關(guān)胸。其中遠(yuǎn)隔缺血時處理組在阻斷主動脈后立即實施下肢缺血/再灌注處理。術(shù)中利用10 cm寬的止血帶包縛于患者右側(cè)下肢近心端,袖帶充氣并加壓至600 mmHg左右維持5 min,之后完全放氣維持5 min,重復(fù)3次。對照組放置止血帶但不進行充氣。術(shù)后均給予常規(guī)監(jiān)護 。
1.3標(biāo)本的采集分別在體外循環(huán)開始前及主動脈阻斷鉗開放后5 min內(nèi)剪取右心耳組織作為檢測標(biāo)本。 標(biāo)本采集后立刻用冰生理鹽水進行快速漂洗,紗布去血后,直接存入液氮中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.4指標(biāo)檢測①實時定量聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)(RT-PCR)檢測和驗證miR-1,miR-21,miR-24和miR-195的表達情況:其中雙向引物序列:Bcl-2為正義:3′GACCTGTAGAGCCGCTTCA5′,反義:3′CCACTTGACCCCCTCCTAA5′;BAX:正義:3′TGAGCCTTTTTCTGGAGAGCC5′,反義:3′GTTTGACCACGAGTTCCGAC5′;PDCD4 :正義:3′AAGAGTTTACGGGAAAGTAGG′,反義:3′TCATAGGAATCGTAACCTCCCC′;Caspase3為正義:3′CAGAGTTACGGTGTCAGGTCAAG5′,反義:3′CCAAGTAGGTGAGCCGAAACAC5′;GAPDH:正義:3′TAGTGCGGTGTCAAAGGG5′,反義:3′AGTTGTCGCTGTGGGTGAG5′。②TUNEL法檢測心肌組織心肌細(xì)胞凋亡情況:采用TUNEL法對冰凍心肌組織標(biāo)本進行凋亡細(xì)胞檢測,主要實驗試劑配制及實驗操作按照試劑盒進行,主要步驟為組織切片處理→DNA缺口末端標(biāo)記→組織化學(xué)測定→對比染色→封片和顯微鏡檢。鏡檢TUNEL染色陽性細(xì)胞中有棕黃色顆粒者,即凋亡細(xì)胞 。顯微鏡下每張切片隨機選擇5個400倍視野,計算心肌細(xì)胞總數(shù)和陽性心肌細(xì)胞數(shù),計算凋亡指數(shù),其中凋亡指數(shù)=發(fā)生凋亡的細(xì)胞核數(shù)/細(xì)胞核總數(shù)×100%。
1.5統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS20.0統(tǒng)計軟件進行t檢驗,秩和檢驗。
2結(jié)果
2.1心肌miRNA表達實時熒光定量PCR驗證遠(yuǎn)隔缺血時處理組中miR-1和miR-195的表達較對照組降低明顯(P<0.05),miR-24和miR-21的表達情況與對照組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表1。
2.2凋亡相關(guān)基因的檢測結(jié)果比較在翻譯水平,遠(yuǎn)隔缺血時處理組Bcl-2 mRNA表達比對照組顯著上調(diào)(P<0.05 ),而BAX,PDCD4的mRNA的表達則無明顯改變。見表2。
表1 各組miRNA實時定量PCR測定結(jié)果比較
與對照組比較:1)P<0.05;下表同
表2 兩組心肌Bcl-2 mRNA、BAX mRNA、
2.3心肌組織凋亡情況的TUNEL檢測結(jié)果比較心肌缺血前遠(yuǎn)隔缺血時處理組和對照組心肌凋亡細(xì)胞數(shù)目較少,且兩組差異無統(tǒng)計學(xué)意義〔(4.3±0.3)% vs (4.1±0.2)%,P>0.05〕。心肌再灌注后兩組心肌凋亡細(xì)胞均較缺血前顯著增加,且遠(yuǎn)隔缺血時處理組心肌凋亡較對照組減輕明顯〔(8.1±2.0)% vs (16.9±2.6)%,P<0.05〕。
3討論
術(shù)后多器官的損傷一直是影響心臟外科患者術(shù)后效果及遠(yuǎn)期生存預(yù)后的重要因素。如何減輕體外循環(huán)心內(nèi)直視手術(shù)對器官的損傷一直是該領(lǐng)域較為熱門的研究話題。心臟瓣膜疾病是后天性心臟病發(fā)病中較為常見的一種,其中風(fēng)濕性心臟病作為導(dǎo)致心臟瓣膜病變的主要病因,能引起患者心肺肝腎等器官功能不同程度受損〔8~11〕。遠(yuǎn)隔肢體缺血時處理能夠減緩心臟瓣膜置換手術(shù)心肌cTnI的釋放〔12〕。 miRNA的主要作用是與mRNA 3′端非翻譯區(qū)完全或不完全性互補結(jié)合,利用對靶mRNA的抑制或降解,降低相應(yīng)蛋白表達水平〔13~15〕。 miRNA參與細(xì)胞凋亡、分化、能量代謝等多種細(xì)胞生理與病理過程,并與人類常見疾病如心肌梗死、心肌重構(gòu)、心力衰竭、心律失常、心肌肥厚等都有一定的聯(lián)系〔16,17〕。部分miRNA還能夠參與心肌缺血再灌注損傷的發(fā)生和保護過程。miRNAs還可能參與體外循環(huán)心臟手術(shù)術(shù)后機體的全身炎癥反應(yīng)等過程,通過調(diào)控某些蛋白質(zhì)翻譯和表達,來影響機體多個重要信號傳導(dǎo)通路〔18~20〕。細(xì)胞凋亡途徑包括外源性途徑和內(nèi)源性途徑。Bcl-1,Bax,caspase9、Caspase3等為miRNA調(diào)節(jié)內(nèi)源性途徑介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡的主要相關(guān)蛋白〔21,22〕。通過測定miR-133a、miR-133b、miR-208a的表達能夠了解術(shù)后早期的心肌損害及恢復(fù)情況〔23〕。本研究提示遠(yuǎn)隔缺血時處理干預(yù)可以下調(diào)缺血再灌注心肌組織的miR-1和miR-195的表達。miR-1是高度表達于橫紋肌及成人心臟中的一種蛋白,miR-1在缺血再灌注損傷時表達有所增加,相對于健康成人,急性心肌梗死者的血漿miR-1水平升高顯著〔24〕;miR-195不僅可以調(diào)控細(xì)胞周期,并能夠加速細(xì)胞凋亡的進程〔25〕,有研究顯示,miR-195通過降低心肌細(xì)胞sirt1基因的表達來加速細(xì)胞的凋亡〔26〕??梢妋iR-1及miR-195在心肌損傷級細(xì)胞凋亡中扮演重要作用。本研究提示遠(yuǎn)隔缺血時處理可能通過miR-1和miR-195的下調(diào)途徑使心肌細(xì)胞凋亡減輕。但確切的機制需要更加深入的研究。
Bcl-2基因是目前研究的最深入、最廣泛的凋亡調(diào)控基因之一。其表達和調(diào)控是影響細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵,參與細(xì)胞凋亡的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑 。 Bcl-2利用自身的BH3結(jié)構(gòu)域與Bcl-2家族的促凋亡蛋白結(jié)合,進而來維持促凋亡成員在細(xì)胞內(nèi)的定位分布,屏蔽細(xì)胞不進入凋亡程序,以此來發(fā)揮抗凋亡功效〔27〕。 Bax作為Bcl-2基因家族的一個亞型,是極重要的促細(xì)胞凋亡基因的一種,與Bcl-2發(fā)揮著相反的作用,能夠加速細(xì)胞的凋亡;下調(diào)miR-1可以減輕H2O2誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡,其機制可能是利用調(diào)控抗凋亡基因Bcl-2轉(zhuǎn)錄后的表達來發(fā)揮其自身的作用。PDCD4是最早在動物體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的一種與細(xì)胞凋亡相關(guān)的基因,能夠利用自身功能區(qū)與真核細(xì)胞的翻譯起始因子eIF4A結(jié)合,阻止核糖體復(fù)合物及蛋白質(zhì)的合成,加速細(xì)胞凋亡〔28〕。有學(xué)者指出,miR-21是通過作用于其靶基因PDCD4來發(fā)揮抗凋亡作用,進而發(fā)揮對抗缺血再灌注損傷的作用〔29〕。
綜上,遠(yuǎn)隔缺血時處理可以調(diào)控體外循環(huán)心臟瓣膜置換術(shù)患者心肌MicroRNAs的表達,使miRNA-1和miRNAs-195表達下調(diào),增加抗凋亡蛋白Bcl-2表達和減少促凋亡蛋白BAX表達,心肌細(xì)胞凋亡減少。 推測遠(yuǎn)隔缺血時處理的心肌保護作用可能通過調(diào)控心肌miRNAs及其相應(yīng)的靶基因和蛋白質(zhì)表達而發(fā)揮作用。
4參考文獻
1Payne RE,Aldwinckle J,Storrow J,etal.RIPC remains a promising technique for protection of the myocardium during open cardiac surgery:a meta-analysis and systematic review 〔J〕.Heart Surg Forum,2015;18(2):E74-80.
2Hepponstall M,Ignjatovic V,Binos S,etal.Remote ischemic preconditioning (RIPC) modifies the plasma proteome in children undergoing repair of tetralogy of fallot:a randomized controlled trial 〔J〕.PLoS One,2015;10(3):e0122778.
3Mavrici D,Marakalala MJ,Holton JM,etal.Mycobacterium tuberculosis FtsX extracellular domain activates the peptidoglycan hydrolase,RipC 〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,2014;111(22):8037-42.
4Ivey KN,Srivastava D.microRNAs as developmental regulators〔J〕.Cold Spring Harb Perspect Biol,2015;7(7):a008144.
5El-Abd NE,F(xiàn)awzy NA,El-Sheikh SM,etal.Circulating miRNA-122,miRNA-199a and miRNA-16 as biomarkers for early detection of hepatocellular carcinoma in egyptian patients with chronic hepatitis C virus infection 〔J〕.Mol Diagn Ther,2015;19(4):213-20.
6Zhi C,Huang Y,Qi W,etal.Expression of microRNAs differed in the omental adipose tissue of obese rats 〔J〕.Int J Clin Exp Med,2015;8(4):6601-6.
7Baglio SR,Rooijers K,Koppers-Lalic D,etal.Human bone marrow-and adipose-mesenchymal stem cells secrete exosomes enriched in distinctive miRNA and tRNA species 〔J〕.Stem Cell Res Ther,2015;6(1):127.
8Expert Group on Biomarkers.Biomarkers in cardiology-part 2:in coronary heart disease,valve disease and special situations 〔J〕.Arq Bras Cardiol,2015;104(5):337-46.
9Coylewright M,Cabalka AK,Malouf JA,etal.Percutaneous mitral valve replacement using a transvenous,transseptal approach:transvenous mitral valve replacement 〔J〕.JACC Cardiovasc Interv,2015;8(6):850-7.
10Cambray-Gutiérrez JC,F(xiàn)ernández-Muoz MJ,Del Rivero-Hernández LG,etal.Structural and functional heart diseases in adult patients with common variable immunodeficiency 〔J〕.Rev Alerg Mex,2015;62(2):91-7.
11Hagège AA,Carpentier A,Levine RA.Dynamic changes of the mitral valve annulus:new look at mitral valve diseases 〔J〕.Circ Cardiovasc Imaging,2015;8(5):e003539.
12Duan X,Ji B,Wang X,etal.Expression of microRNA-1 and microRNA-21 in different protocols of ischemic conditioning in an isolated rat heart model 〔J〕.Cardiology,2012;122(1):36-43.
13Ye RS,Li M,Qi QE,etal.Comparative anterior pituitary miRNA and mRNA expression profiles of bama minipigs and landrace pigs reveal potential molecular network involved in animal postnatal growth 〔J〕.PLoS One,2015;10(7):e0131987.
14Tian C,Ouyang X,Lv Q,etal.Cross-talks between microRNAs and mRNAs in pancreatic tissues of streptozotocin-induced type 1 diabetic mice 〔J〕.Biomed Rep,2015;3(3):333-42.
15Xia Z,Liu F,Zhang J,etal.Decreased expression of MiRNA-204-5p contributes to glioma progression and promotes glioma cell growth,migration and invasion 〔J〕.PLoS One,2015;10(7):e0132399.
16Wang C,Hu DZ,Liu JZ.Identification of critical TF-miRNA-mRNA regulation loops for colorectal cancer metastasis 〔J〕.Genet Mol Res,2015;14(2):5485-95.
17Hagrass HA,Sharaf S,Pasha HF,etal.Circulating microRNAs-a new horizon in molecular diagnosis of breast cancer 〔J〕.Genes Cancer,2015;6(5-6):281-7.
18Yun SJ,Jeong P,Kang HW,etal.Urinary MiRNAs of prostate cancer:virus-encoded hsv1-miRH18 and hsv2-miR-H9-5p could be valuable diagnostic markers 〔J〕.Int Neurourol J,2015;19(2):74-84.
19Qi P,Wang L,Zhou B,etal.Associations of miRNA polymorphisms and expression levels with breast cancer risk in the Chinese population 〔J〕.Genet Mol Res,2015;14(2):6289-96.
20Zhu LH,Miao XT,Wang NY.Integrated miRNA-mRNA analysis of Epstein-Barr virus-positive nasopharyngeal carcinoma 〔J〕.Genet Mol Res,2015;14(2):6028-36.
21Albrecht M,Zitta K,Bein B,etal.Remote ischemic preconditioning regulates HIF-1α levels,apoptosis and inflammation in heart tissue of cardiosurgical patients:a pilot experimental study 〔J〕.Basic Res Cardiol,2013;108(1):314.
22Kocman EA,Ozatik O,Sahin A,etal.Effects of ischemic preconditioning protocols on skeletal muscle ischemia-reperfusion injury 〔J〕.J Surg Res,2015;193(2):942-52.
23Han X,Yang F,Cao H,etal.Malat1 regulates serum response factor through miR-133 as a competing endogenous RNA in myogenesis 〔J〕.FASEB J,2015;29(7):3054-64.
24Wu X,Li S,Xu X,etal.The potential value of miR-1 and miR-374b as biomarkers for colorectal cancer 〔J〕.Int J Clin Exp Pathol,2015;8(3):2840-51.
25Xiao H,Zeng J,Li H,etal.MiR-1 downregulation correlates with poor survival in clear cell renal cell carcinoma where it interferes with cell cycle regulation and metastasis 〔J〕.Oncotarget,2015;6(15):13201-15.
26Cai H,Zhao H,Tang J,etal.Serum miR-195 is a diagnostic and prognostic marker for osteosarcoma 〔J〕.J Surg Res,2015;194(2):505-10.
27Pang RY,Guan MP,Zheng ZJ,etal.Effects of metformin on apoptosis induced by advanced glycation end-products and expressions of caspase-3,Bax and Bcl-2 in human dermal fibroblasts in vitro 〔J〕.J Southern Med Univ,2015;35(6):898-902.
28Chen Z,Yuan YC,Wang Y,etal.Down-regulation of programmed cell death 4 (PDCD4) is associated with aromatase inhibitor resistance and a poor prognosis in estrogen receptor-positive breast cancer 〔J〕.Breast Cancer Res Treat,2015;152(1):29-39.
29Tong Z,Jiang B,Wu Y,etal.MiR-21 protected cardiomyocytes against doxorubicin-induced apoptosis by targeting BTG2 〔J〕.Int J Mol Sci,2015;16(7):14511-25.
〔2015-02-19修回〕
(編輯苑云杰)
基金項目:海南省應(yīng)用技術(shù)研發(fā)與示范推廣專項項目(No.ZDXM2015074)
〔中圖分類號〕R654.2
〔文獻標(biāo)識碼〕A
〔文章編號〕1005-9202(2016)09-2105-04;
doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2016.09.024
第一作者:邢杰(1965-),男,副主任醫(yī)師,主要從事心臟病研究。