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番茄中類胡蘿卜素及其順式異構(gòu)體的HPLC分析

2016-05-12 09:02陳華翰李春美
分析測(cè)試學(xué)報(bào) 2016年4期
關(guān)鍵詞:高效液相色譜法番茄

張 穎,陳華翰,李春美,2*

(1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,湖北 武漢 430070;2.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)

教育部環(huán)境食品學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430070)

番茄中類胡蘿卜素及其順式異構(gòu)體的HPLC分析

張穎1,陳華翰1,李春美1,2*

(1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,湖北武漢430070;2.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)

教育部環(huán)境食品學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北武漢430070)

摘要:建立了一種能同時(shí)快速分離、定性番茄中3種類胡蘿卜素及其異構(gòu)體的高效液相色譜(HPLC)方法。采用正己烷-乙醇(3∶4)對(duì)樣品進(jìn)行提取,甲基叔丁基醚+0.05%三乙胺-乙腈+0.05%三乙胺為流動(dòng)相梯度洗脫,以Carotenoid C30柱(250 mm×4.6 mm i.d.,5 μm)進(jìn)行分離,檢測(cè)波長(zhǎng)為475 nm。結(jié)果表明,在優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件下,番茄中有11種類胡蘿卜素得到了良好分離,包括3種全反式異構(gòu)體和8種順式異構(gòu)體。葉黃素、β-胡蘿卜素、番茄紅素分別在0.1~5.0,0.1~20,0.1~100 μg/mL濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均在0.99以上,檢出限(LOD)分別為0.13,0.12,0.56 μg/g,定量下限(LOQ)分別為0.43,0.41,1.88 μg/g;日內(nèi)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為1.2%~5.3%,日間RSD為1.9%~7.5%,回收率分別為(88.9±6.1)%~(91.7±3.6)%,(92.3±4.3)%~(94.1±6.3)%,(102.6±4.2)%~(107.1±3.4)%。該方法具有分析時(shí)間短、靈敏度高、分離完全等優(yōu)點(diǎn),適用于番茄中類胡蘿卜素及其順式異構(gòu)體的分析測(cè)定。

關(guān)鍵詞:高效液相色譜法;類胡蘿卜素;順式異構(gòu)體;番茄

番茄由于富含類胡蘿卜素、抗壞血酸、酚類物質(zhì)等多種抗氧化成分而深受世人喜愛。番茄及其制品對(duì)身體健康有諸多益處,尤其是對(duì)癌癥、心血管疾病、動(dòng)脈粥樣硬化等疾病具有明顯的抑制作用[1-3]。在番茄含有的所有抗氧化物質(zhì)中,類胡蘿卜素最受關(guān)注。類胡蘿卜素不僅是維生素A合成的前體物質(zhì),還是番茄抗氧化能力的主要貢獻(xiàn)物質(zhì)。番茄中的類胡蘿卜素主要以番茄紅素、β-胡蘿卜素、葉黃素的形式存在,三者在番茄中的含量依次減少。番茄紅素分子中有11個(gè)共軛雙鍵,1個(gè)番茄紅素分子可清除數(shù)千個(gè)單線態(tài)氧,在類胡蘿卜素中抗氧化性最高[4]。

由于類胡蘿卜素對(duì)光、氧氣和溫度非常敏感,易發(fā)生異構(gòu)化,加之在植物中的存在形式具有多樣性,給其純化分析帶來很大困難,因此,發(fā)展更精確、快速的分析技術(shù)具有重要意義。食品中類胡蘿卜素的常用分析方法有高效液相色譜法[5-6]、分光光度法[7]、薄層色譜法[8]等。分光光度法僅適用于測(cè)定單一類胡蘿卜素的量或估算混合物中總類胡蘿卜素含量,不能對(duì)混合物中各類胡蘿卜素分別定性定量;薄層色譜法可對(duì)混合物中的類胡蘿卜素進(jìn)行分離,但定量很不準(zhǔn)確,且分析時(shí)間長(zhǎng),重復(fù)性差;相比而言,高效液相色譜法具有分離效果好、選擇性高、檢測(cè)靈敏度高、分離速度快等[9-10]非常明顯的優(yōu)點(diǎn)。高靈敏度的HPLC可以測(cè)出樣品中極少量的雜質(zhì)、痕量類胡蘿卜素和幾何異構(gòu)體[11]。高效液相色譜法通常配合使用C18柱,但C18柱對(duì)類胡蘿卜素順式異構(gòu)體的分離效果較差。有文獻(xiàn)報(bào)道指出用C30柱代替C18柱對(duì)類胡蘿卜素順反異構(gòu)體具有更好的分離效果[12]。但現(xiàn)有的方法存在基線漂移、洗脫不完全、耗費(fèi)時(shí)間和試劑[4,6,13]等諸多缺陷。因此,建立一種能使番茄中類胡蘿卜素及其順反異構(gòu)體快速完全分離、定量準(zhǔn)確的方法十分必要。

本文通過對(duì)HPLC流動(dòng)相、洗脫程序等條件的篩選優(yōu)化,建立了一種能快速同時(shí)分離番茄中3種類胡蘿卜素及其異構(gòu)體的HPLC方法。

1實(shí)驗(yàn)部分

1.1試劑與儀器

全反式葉黃素、全反式β-胡蘿卜素和全反式番茄紅素(純度>90%,95%和98%)購(gòu)自上海源葉生物技術(shù)公司;甲醇、乙腈、三乙胺(TEA)和甲基叔丁基醚(MTBE)均為色譜純,購(gòu)自賽默飛世爾科技(中國(guó))有限公司;正己烷、丙酮、乙醇、乙酸乙酯和二氯甲烷等其余試劑均為分析純。

Carotenoid C30色譜柱(250 mm×4.6 mm i.d.,粒度5 μm) ;Waters e2695型高效液相色譜儀;Waters 2998型PDA檢測(cè)器;DLSB-5PO型低溫冷卻循環(huán)泵;SBS-100型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器;HJ-3型磁力攪拌器;HJS 880型打漿機(jī)。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1類胡蘿卜素的提取新鮮番茄打漿,取10 g 番茄勻漿于容器中,加入100 mL提取溶劑,用鋁箔避光。磁力攪拌30 min,加入15 mL雙蒸水以加速不同極性溶劑分層。取上層有機(jī)相溶液旋干,殘?jiān)?0 mL二氯甲烷-正己烷(1∶9)復(fù)溶。過0.2 μm有機(jī)濾膜,進(jìn)行液相色譜分析。

1.2.2類胡蘿卜素的HPLC分析流動(dòng)相:A為MTBE+0.05% TEA,B為乙腈+0.05% TEA。梯度洗脫條件:0~8 min,0%~55%A;8~25 min,55%A;25~30 min,55%~0%A。流速為1 mL/min,進(jìn)樣量為20 μL,檢測(cè)波長(zhǎng)為475 nm。

樣品中類胡蘿卜素全反式異構(gòu)體的定性主要通過與相應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)品的保留時(shí)間和UV吸收光譜進(jìn)行對(duì)比來鑒別。順式異構(gòu)體主要基于文獻(xiàn)報(bào)道中各類順式異構(gòu)體的特征吸收光譜和Q值(Q值=A順式峰/A最大吸收峰)進(jìn)行定性[5,14]。

1.2.3標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液配制與標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制將全反式β-胡蘿卜素、葉黃素和全反式番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)品分別配成濃度為20,20,100 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液,前兩者用二氯甲烷-正己烷(1∶9)溶解,后者用二氯甲烷溶解。再分別用正己烷將全反式葉黃素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液稀釋至0.1,0.3,0.5,1.0,3.0,5.0 μg/mL,全反式β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液稀釋至0.1,0.5,2.0,5.0,10,20 μg/mL,由于番茄中番茄紅素全反式異構(gòu)體和順式異構(gòu)體在含量上有很大差別[4],因此將全反式番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液稀釋成兩種濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)工作液,分別為0.1,0.2,0.4,0.8,1.6,3.2 μg/mL和10,20,40,60,80,100 μg/mL。

1.2.4統(tǒng)計(jì)學(xué)分析實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,用IBM SPSS Statistics 19軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,顯著性采用單因素方差分析。P<0.05表示具有顯著性差異。

2結(jié)果與討論

2.1番茄中類胡蘿卜素的提取

番茄中的類胡蘿卜素主要以番茄紅素、β-胡蘿卜素、葉黃素的形式存在,由于它們具有不同的極性、溶解性,因此,對(duì)番茄紅素有較高提取效率的溶劑可能不適用于對(duì)β-胡蘿卜素和葉黃素的提取。另外,不同空間結(jié)構(gòu)的類胡蘿卜素在同一溶劑系統(tǒng)中的溶解性也不同,如順式葉黃素溶于乙醇中,但全反式葉黃素則不溶解;順式番茄紅素異構(gòu)體的極性比全反式番茄紅素異構(gòu)體強(qiáng)[6,13,15]。因此,本實(shí)驗(yàn)參照文獻(xiàn)[4,12-13,16-17],對(duì)比了正己烷-丙酮-乙醇(2∶1∶1)、正己烷-乙醇(3∶4)、正己烷-丙酮(3∶2) 、正己烷-丙酮-甲醇(1∶1∶1)、乙酸乙酯5種溶劑系統(tǒng)對(duì)番茄中類胡蘿卜素的提取效率。以類胡蘿卜素的提取量為指標(biāo)來衡量各個(gè)溶劑系統(tǒng)的提取效率。

圖1 不同溶劑對(duì)番茄中葉黃素、β-胡蘿卜素、番茄紅素的提取效率Fig.1 Extraction efficiencies of different solvent systems on lutein,β-carotene and lycopene from tomatoesdifferent letters in a group indicated the difference was statistically significant(P<0.05);same letters in a group indicated non-significance of difference(P>0.05)

如圖1所示,正己烷-乙醇(3∶4)對(duì)番茄紅素和β-胡蘿卜素的提取效率最高,其次是正己烷-丙酮-甲醇(1∶1∶1)和正己烷-丙酮-乙醇(2∶1∶1)。正己烷-丙酮(3∶2)和乙酸乙酯則表現(xiàn)出比較相近的低提取率。然而,正己烷-丙酮(3∶2)對(duì)葉黃素的提取效率最高,其次是乙酸乙酯,其他3種溶劑的提取率相對(duì)較低。由于葉黃素等含氧類胡蘿卜素的極性強(qiáng)于番茄紅素和β-胡蘿卜素等不含氧類胡蘿卜素,因此正己烷-丙酮(3∶2)和乙酸乙酯這類極性較強(qiáng)的溶劑系統(tǒng)對(duì)葉黃素表現(xiàn)出較高的提取效率。由于番茄中番茄紅素和β-胡蘿卜素的含量遠(yuǎn)高于葉黃素,因此選擇正己烷-乙醇(3∶4)作為最優(yōu)溶劑系統(tǒng)。

2.2液相洗脫條件

由于C30色譜柱的固定相具有更強(qiáng)的疏水性,因此對(duì)番茄紅素等類胡蘿卜素的空間異構(gòu)體截留能力更強(qiáng),所以在反相液相色譜分析中常用的極性洗脫液會(huì)導(dǎo)致洗脫時(shí)間延長(zhǎng)。通過在流動(dòng)相中加入二氯甲烷等非極性溶劑,可以縮短保留時(shí)間。Lee等[18]應(yīng)用正丁醇-乙腈-二氯甲烷(30∶70∶10)洗脫系統(tǒng)將全反式番茄紅素的保留時(shí)間從250 min縮短至33 min。甲基叔丁基醚(MTBE)是一種比二氯甲烷具有更強(qiáng)疏水性的洗脫液,Huang等[13]使用MTBE-甲醇洗脫液系統(tǒng)使得番茄紅素、β-胡蘿卜素和葉黃素得到了良好的分離,但有些番茄紅素異構(gòu)體未被完全分離。

本實(shí)驗(yàn)選用MTBE作為流動(dòng)相A,不同比例的甲醇-乙腈(100∶0,50∶50,25∶75,0∶100)作為流動(dòng)相B,來篩選對(duì)類胡蘿卜素順式異構(gòu)體分離效果最好的洗脫系統(tǒng)。結(jié)果顯示,不同比例的甲醇-乙腈對(duì)類胡蘿卜素異構(gòu)體的分離效果有顯著差異。100%甲醇為流動(dòng)相時(shí),12~25 min峰的分離效果很差;乙腈比例為50%時(shí),洗脫時(shí)間有所縮短,但分離效果并未明顯改善;提高乙腈的比例至75%和100%時(shí),分離效果明顯提高,且洗脫時(shí)間從32 min縮短至20 min。盡管甲醇-乙腈(25∶75)和乙腈(100%)的分離效果類似,但前者存在輕微的基線漂移,可能會(huì)導(dǎo)致定量準(zhǔn)確性下降。因此,流動(dòng)相B選用乙腈(100%)。另外,由于TEA能加強(qiáng)類胡蘿卜素的響應(yīng)值,減少其在色譜柱中的降解[12],因此,流動(dòng)相A和B中均加入0.05%的TEA。

綜上所述,用于同時(shí)分離和測(cè)定類胡蘿卜素順反異構(gòu)體的HPLC分析條件如“1.2.2”所示。

2.3HPLC方法學(xué)驗(yàn)證

將“1.2.3”中配制的不同濃度梯度的全反式葉黃素標(biāo)準(zhǔn)溶液、全反式β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)溶液和全反式番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行HPLC分析,以濃度(X,μg/mL)為橫坐標(biāo),峰面積(Y)為縱坐標(biāo),得到回歸方程如表1所示。結(jié)果表明,葉黃素、β-胡蘿卜素、番茄紅素的濃度分別在0.1~5.0,0.1~20,0.1~100 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,三者的檢出限(LOD,S/N=3,n=11)分別為0.13,0.12,0.56 μg/g,定量下限(LOQ,S/N=10,n=11)分別為0.43,0.41,1.88 μg/g。類胡蘿卜素的反式與順式異構(gòu)體消光系數(shù)幾乎相同[4],因此全反式異構(gòu)體的標(biāo)準(zhǔn)曲線也適用于順式異構(gòu)體。

表1 HPLC方法對(duì)番茄中類胡蘿卜素的線性關(guān)系、檢出限、定量下限及精密度

a.low concentration of all-trans-lycopene(0.1-3.2 μg/mL,6-point);b.high concentration of all-trans-lycopene(10-100 μg/mL,6-point)

分別對(duì)3 μg/mL葉黃素,10 μg/mLβ-胡蘿卜素,1.5 μg/mL和50 μg/mL番茄紅素進(jìn)行日內(nèi)(Intra-)與日間(Inter-)精密度測(cè)定。日內(nèi)精密度采用同一濃度的樣品在一天內(nèi)連續(xù)進(jìn)樣6次,以6次峰面積的值計(jì)算相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD);日間精密度采用同一濃度的樣品每天進(jìn)樣6次,連續(xù)3 d,以18次峰面積的值計(jì)算RSD。 3種類胡蘿卜素的日內(nèi)RSD分別為5.3%,4.2%,1.2%,3.7%,日間RSD分別為7.5%,6.5%,1.9%,5.2%,說明本方法有較高的精密度。

分別將不同劑量的番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)品(0.400,0.800 mg)、β-胡蘿卜素標(biāo)準(zhǔn)品(0.032,0.064 mg)、葉黃素標(biāo)準(zhǔn)品(0.004,0.008 mg)加入番茄樣品中,所有樣品均采用相同的提取方法,之后用HPLC進(jìn)行加標(biāo)回收率檢驗(yàn)。如表2所示,番茄紅素的回收率為(102.6±4.2)%~(107.1±3.4)%,β-胡蘿卜素為(92.3±4.3)%~(94.1±6.3)%,葉黃素為(88.9±6.1)%~(91.7±3.6)%,表明該方法具有較高的準(zhǔn)確度。

表2 HPLC方法對(duì)番茄紅素、β-胡蘿卜素、葉黃素的加標(biāo)回收率

2.4番茄中類胡蘿卜素異構(gòu)體的分析

番茄中類胡蘿卜素及其異構(gòu)體的液相色譜圖如圖2所示,共檢測(cè)出11種類胡蘿卜素,色譜數(shù)據(jù)見表3。所有色譜峰的k值(容量因子)均在10以內(nèi),表明流動(dòng)相的溶劑強(qiáng)度在合適范圍內(nèi)[6]。所有色譜峰的α值(分離因子)大于1,說明流動(dòng)相對(duì)樣品中目標(biāo)物質(zhì)具有良好的選擇性[5]。

圖2 番茄中類胡蘿卜素的液相色譜圖Fig.2 HPLC chromatogram of carotenoids of tomatoesthe peak number denoted is the same as that in Table 3

PeakNo.CompoundRetentiontime(min)Kαλ(nm)in-lineaλ(nm)reportedQ-ratiofoundQ-ratioreported1All-trans-lutein(全反式葉黃素)9.591.311.31(1,2)g420,443,475444,470213,15-cis-β-Carotene(13,15-順式-β-胡蘿卜素)11.321.721.31(1,2)342,436,465437,4580.140.16b313-cis-β-Carotene(13-順式-β-胡蘿卜素)11.471.761.02(2,3)337,454,4474770.300.32b,c4All-trans-β-carotene(全反式β-胡蘿卜素)11.961.881.06(3,4)453,479453,47759-cis-β-Carotene(9-順式-β-胡蘿卜素)12.391.981.05(4,5)346,447,475344,444,4700.090.10b,d613-cis-Lycopene(13-順式-番茄紅素)13.252.191.10(5,6)359,472360,437,463,4940.550.55e715-cis-Lycopene(15-順式-番茄紅素)13.712.301.05(6,7)359,441,466,496360,437,466,4940.600.61d,f85,5'-cis-Lycopene(5,5'-順式-番茄紅素)14.332.451.06(7,8)337,444,470362,444,470,5020.060.06e95-cis-Lycopene(5-順式-番茄紅素)15.482.731.11(8,9)360,445,472,504362,444,470,5020.060.06e109-cis-Lycopene(9-順式-番茄紅素)16.212.901.06(9,10)359,442,467,499360,438,464,4940.130.12e11All-trans-lycopene(全反式番茄紅素)20.133.851.32(10,11)361,447,472,504362,444,470,5020.060.06e

a.a gradient mobile phase of methyl tert-butyl ether containing 0.05% of TEA and acetonitrile containing 0.05% of TEA;b.a mobile phase of methanol-methylene chloride(99∶1);c.a gradient mobile phase of methanol-isopropanol(99∶1) and methylene chloride;d.a gradient mobile phase of 1-butanol-acetonitrile(30∶70) and methylene chloride;e.a mobile phase ofn-hexane-n-ethyl diisopropylamine(99.85∶0.15);f.a gradient mobile phase of methanol∶water methyl tert-butyl ether∶water(83∶15∶2) and methanol∶methyl tert-butyl ether∶water(8∶90∶2);g.numbers in parentheses represented values between two peaks

通過與各自標(biāo)準(zhǔn)品的UV吸收光譜和保留時(shí)間進(jìn)行對(duì)比,其中峰1,4,11被分別鑒定為全反式葉黃素、全反式β-胡蘿卜素和全反式番茄紅素。順式異構(gòu)體的判定遵循以下原則[4-5,14]:番茄紅素的單順式異構(gòu)體與其全反式結(jié)構(gòu)相比會(huì)發(fā)生約4 nm的藍(lán)移效應(yīng),雙鍵順式異構(gòu)體比單鍵順式異構(gòu)體的藍(lán)移效應(yīng)更強(qiáng);居于鏈中間位置的順式異構(gòu)體,如13或15-順式-β-胡蘿卜素在340 nm左右會(huì)有強(qiáng)吸收峰;通過Q值鑒定異構(gòu)體,不同的異構(gòu)體具有特定的Q值。峰2與全反式-β-胡蘿卜素相比,發(fā)生了一個(gè)18 nm的強(qiáng)烈藍(lán)移,其Q值計(jì)算為0.14,與Chen等[14]鑒定的13,15-順式-β-胡蘿卜素Q值一致,因此初步判定峰2為13,15-順式-β-胡蘿卜素。峰3,5分別鑒定為13-順式-β-胡蘿卜素和9-順式-β-胡蘿卜素,因?yàn)橹魑辗宓乃{(lán)移和Q值(0.30,0.09)與前人鑒定的這兩種順式異構(gòu)體的Q值(0.32,0.10)一致[4-5,14]。同樣,峰6,7,8,10與全反式番茄紅素標(biāo)準(zhǔn)品相比,其主吸收峰均發(fā)生了一定程度的藍(lán)移(2,6,2,5 nm),Q值(0.55,0.6,0.06,0.13)也符合文獻(xiàn)報(bào)道的13-順式-番茄紅素、15-順式-番茄紅素、5,5′-順式-番茄紅素和9-順式-番茄紅素的Q值(0.55,0.61,0.06,0.12)[4],因此被分別判定為以上物質(zhì)。峰9的吸收光譜和全反式番茄紅素相似,因此其Q值與全反式番茄紅素Q值均為0.06左右,但從峰9較低的含量及其液相保留時(shí)間推測(cè)該峰并不是全反式番茄紅素,參照Lee等[6]與Chen等[14]對(duì)該峰的判定,初步判定該峰為5-順式-番茄紅素。

3結(jié)論

本文建立了一種可同時(shí)快速分析番茄中多種類胡蘿卜素及其異構(gòu)體的HPLC方法,以正己烷-乙醇(3∶4)作為最佳提取溶劑,甲基叔丁基醚+0.05%三乙胺為流動(dòng)相A,乙腈+0.05%三乙胺為流動(dòng)相B,C30柱進(jìn)行分離。該方法具有較高的靈敏度和準(zhǔn)確性,可將洗脫時(shí)間縮短至30 min,能夠較好分離番茄中的11種類胡蘿卜素(3種全反式異構(gòu)體和8種順式異構(gòu)體),從而為更加深入研究番茄中的類胡蘿卜素及其異構(gòu)體提供了一種可靠的基礎(chǔ)方法。

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Analysis of Carotenoids and Their Isomers in Tomatoes by HPLC Method

ZHANG Ying1,CHEN Hua-han1,LI Chun-mei1,2*

(1.College of Food Science and Technology,Huazhong Agricultural University,Wuhan430070,China;2.Key Laboratory of Environment Correlative Food Science,Huazhong Agricultural University,Ministry of Education,Wuhan430070,China)

Abstract:An analytical method was developed for the determination of carotenoids and their isomers in tomatoes by an improved high performance liquid chromatography(HPLC) method.Hexane-ethanol(3∶4) was chosen as the best solvent system for extracting carotenoids from tomatoes by stirring 30 min using a magnetic stirring apparatus.11 kinds of carotenoids including all-trans-forms of lycopene,β-carotene,lutein and 8 kinds of cis-isomers were completely separated in 30 min on a Carotenoid C30column(250 mm×4.6 mm i.d.,5 μm particle) using methyl tert-butyl ether(MTBE) containing 0.05% triethylamine(TEA) as mobile phase A and acetonitrile containing 0.05% TEA as mobile phase B by gradient elution.The flow rate was set at 1.0 mL/min,and the detection wavelength was 475 nm.For lutein,β-carotene and lycopene,the calibration curves were linear in the ranges of 0.1-5.0,0.1-20 and 0.1-100 μg/mL,respectively,with correlation coefficients more than 0.99.The limits of detection(LOD) were 0.13,0.12,0.56 μg/g,respectively,the limits of quantitation(LOQ) were 0.43,0.41,1.88 μg/g,respectively.The intra-day relative standard deviation(RSD) were in the range of 1.2%-5.3%,and the inter-day RSDs were 1.9%-7.5%.The recoveries were in the range of (88.9±6.1)%-(91.7±3.6)%,(92.3±4.3)%-(94.1±6.3)% and (102.6±4.2)%-(107.1±3.4)%,respectively.This HPLC method could be used to separate 11 types of carotenoids in tomatoes completely with a short time and high sensitivity.Key words:high performance liquid chromatography(HPLC);carotenoids;cis-isomers;tomato

收稿日期:2015-09-02;修回日期:2015-10-12

基金項(xiàng)目:中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)資金資助(2013PY094)

*通訊作者:李春美,博士,教授,研究方向:天然產(chǎn)物化學(xué),Tel:027-87282111,E-mail:lichmyl@mail.hzau.edu.cn

doi:10.3969/j.issn.1004-4957.2016.04.013

中圖分類號(hào):O657.72;O629.4

文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A

文章編號(hào):1004-4957(2016)04-0448-06

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