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黃枝油杉ISSR-PCR反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化

2016-01-17 09:19謝偉玲柴勝豐蔣運生唐健民
種子 2016年6期
關(guān)鍵詞:條帶產(chǎn)物引物

謝偉玲, 柴勝豐, 蔣運生, 唐健民, 鄒 蓉, 韋 霄

(1.廣西喀斯特植物保育與恢復(fù)生態(tài)學(xué)重點實驗室,廣西壯族自治區(qū)中國科學(xué)院廣西植物研究所, 桂林541006;2.廣西師范大學(xué)生命科學(xué)院, 桂林541004)

黃枝油杉(Keteleeria calcarea Cheng et L.K.Fu)系松科(Pinaceae)油杉屬(Keteleeria)常綠喬木[1],是我國特有的珍稀瀕危樹種、國家三級保護植物[2],主要分布于我國貴州南部、廣西北部和湖南江永縣等地。因其樹形美觀、耐干旱,可用于庭院和石山綠化;樹干通直、木材堅硬,可用于造船、建筑和家具等[3],具有較高的研究價值和實用性。

ISSR是基于PCR技術(shù)、以簡單重復(fù)序列為引物的一種分子標記技術(shù),1994年由Zietkiewicz等[4]提出,具有多態(tài)性水平高、產(chǎn)物特異性強、DNA用量少以及穩(wěn)定性好等優(yōu)點。已廣泛應(yīng)用于構(gòu)建遺傳圖譜、植物品種鑒定、遺傳多樣性和親緣關(guān)系以及基因定位等方面的研究[5-7]。

雖然ISSR分子標記技術(shù)原理簡單,但不同的物種適合的反應(yīng)條件不同。因此,在對黃枝油杉進行ISSR分析之前,首先要優(yōu)化ISSR-PCR反應(yīng)條件和程序。本試驗先運用正交設(shè)計進行初步篩選,再用單因素設(shè)計逐一優(yōu)化對ISSR-PCR擴增效果有影響的Mg2+、Taq DNA 聚合酶、dNTP、引物、模板 DNA、循環(huán)次數(shù)及退火溫度。建立了黃枝油杉的最佳反應(yīng)體系和程序,為進一步研究黃枝油杉種群的遺傳多樣性奠定了基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材 料

2014年9月至12月,分別在桂林臨桂縣沉橋村(L)、桂林恭城縣三江鄉(xiāng)(G)、賀州富川縣櫟尾村(F)、柳州融水縣都木(R)、河池南丹縣里湖鄉(xiāng)(N)、貴州平塘縣者密鎮(zhèn)(P)、貴州獨山縣堯棒鄉(xiāng)(D)共7個黃枝油杉分布地采集生長良好的、健康的黃枝油杉葉片,硅膠干燥保存。樣品經(jīng)廣西植物研究所蔣運生研究員鑒定。

1.2 試劑與儀器

ISSR-PCR 引物(引物855序列為:ACA CAC ACA CAC ACA CYT,Y=C,T)、Mg2+、dNTP、Taq DNA聚合酶、10×PCR buffer、DNA Marker S(生工生物工程(上海)股份有限公司);PCR儀(美國BIORAD伯樂公司,Model:PTC-200);NanoDrop 2000c超微量分光光度計(賽默飛世爾科技);CDYY-6C型電泳儀(北京市六一儀器廠);UVP凝膠成像系統(tǒng);離心機(珠海黑馬醫(yī)學(xué)儀器有限公司);DYCP-34型電泳槽(北京市六一儀器廠)。

1.3 方 法

1.3.1 黃枝油杉總DNA的提取

采用CTAB法提取黃枝油杉的總DNA,但在水浴前用-20℃預(yù)冷的丙酮洗2次[8]。用濃度為0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢驗DNA的質(zhì)量和完整性,DNA的純度和濃度用NanoDrop 2000c超微量分光光度計檢測,存儲在-20℃冰箱備用。

1.3.2 ISSR-PCR反應(yīng)體系正交試驗

用正交試驗設(shè)計(L16(45))來初步確定各因素之間擴增效果較好的水平組合,研究的5個因素分別為Mg2+、Taq DNA 聚合酶、dNTP、引物、模板 DNA,每個因素設(shè)定4個梯度的濃度,具體見表1、表2。除表中的5個因素及其不同的濃度外,每個體系還含有2.5 μL 10×PCR buffer,其余的用滅菌的ddH2O補夠25 μL,每個處理設(shè)置3次重復(fù),選用引物855(序列為ACA CAC ACA CAC ACA CYT,Y=C,T)。

預(yù)擴增程序為94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,50℃退火45s,72℃延伸90s,以上3個步驟循環(huán)40次;最后72℃延伸7min。PCR擴增產(chǎn)物用濃度為1.5%的瓊脂糖凝膠電泳1~1.5h,溴化乙錠(0.5μg/mL)染色20min,用UVP凝膠成像系統(tǒng)拍照保存。

表1 ISSR-PCR反應(yīng)體系正交試驗的各因素與水平

表2 ISSR-PCR正交試驗L16(45)

1.3.3 ISSR-PCR反應(yīng)體系單因素試驗

根據(jù)正交試驗的結(jié)果初步選出擴增條帶最清晰的組合進行單因素試驗,以該組合為基礎(chǔ),改變其中一個因素的濃度(改變的濃度采用相應(yīng)因素設(shè)定的6個梯度濃度),而其他因素及其濃度不變,每一個因素確定最佳濃度后,以該最佳濃度進行下一步研究,直到所有因素的最佳濃度被確定。每個因素設(shè)定6個梯度濃度,Mg2+濃 度 為 3.0,2.5,2.0,1.5,1.0,0.5mmol/L;Taq DNA 聚合酶濃度為2.5,2.0,1.5,1.0,0.5,0.25U/25μL;dNTP 為 0.30,0.25,0.20,0.15,0.10,0.05 mmol/L;引物為1.4,1.2,1.0,0.8,0.6,0.4μmol/L;模板DNA為90,70,50,30,10,5ng。每個處理至少重復(fù)2次。

1.3.4 優(yōu)化ISSR-PCR反應(yīng)程序

通過正交試驗和單因素試驗確定反應(yīng)體系后,優(yōu)化退火溫度及循環(huán)次數(shù)。退火溫度的設(shè)定范圍為引物的理論退火溫度的正負5℃,如(51±5)℃,PCR儀便會自動形成12個溫度:56.0,55.7,55.0,54.0,52.8,51.6,50.4,49.2,48.0,47.0,46.3,46.0 ℃;循 環(huán) 次 數(shù) 設(shè)為50、45、40、35、30、25次。以上每個處理至少重復(fù)2次。

1.3.5 驗證反應(yīng)體系和程序

從黃枝油杉的每個居群中隨機選取2個個體的DNA樣品,用已確定的反應(yīng)體系及程序進行擴增,檢驗擴增效果的好壞及其穩(wěn)定性。

2 結(jié)果與分析

2.1 ISSR-PCR正交試驗結(jié)果

ISSR-PCR正交試驗結(jié)果見圖1。如圖1所示,組合1、2、5、6、13、16擴增條帶少,且強度弱;組合3、4、7擴增出來的條帶強度弱,而且背景模糊;雖然組合8、9、10、12、14、15的條帶較多,但強度弱,而且背景模糊,彌散難辨;組合11擴增出來的條帶多且效果好,背景清晰,條帶清晰可辨。故選用組合11進行下一步研究。即25μL的反應(yīng)體系中含有 Mg2+1.0mmol/L、Taq DNA 聚合酶1.0U/25μL、dNTP 0.2mmol/L、引物1.0μmol/L、模板DNA 70ng。

圖1 ISSR-PCR正交試驗結(jié)果

2.2 Mg2+濃度與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

Taq DNA聚合酶在PCR反應(yīng)中的作用可直接受Mg2+濃度的影響,而且非常敏感[9]。如圖2所示,組合1~3(Mg2+0.5~1.5mmol/L)幾乎沒有擴增產(chǎn)物;隨著Mg2+濃度升高,條帶數(shù)量和清晰度先是增加,后下降;當Mg2+的濃度為2.0mmol/L時擴增出來的條帶最多,也最清晰,擴增效果最好,故選擇2.0mmol/L的Mg2+濃度進行下一步研究。

圖2 不同Mg2+濃度的ISSR-PCR擴增結(jié)果

2.3 dNTP濃度與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

底物dNTP濃度過高,會導(dǎo)致聚合酶錯誤摻入,濃度過低,產(chǎn)物合成率低[10]。如圖3所示,每個處理都可以擴增出條帶,但dNTP濃度過高或過低的擴增條帶數(shù)量少而且強度弱,隨著dNTP濃度的逐漸升高,條帶的清晰程度與數(shù)量呈現(xiàn)先升后降的趨勢。濃度為0.10mmol/L時效果最好,故選擇0.10mmol/L為dNTP的最佳濃度。

圖3 不同dNTP濃度的ISSR-PCR擴增結(jié)果

2.4 Taq DNA聚合酶用量與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

Taq DNA聚合酶用量過多,容易擴增出非特異性產(chǎn)物,而且成本高;但用量過少又會導(dǎo)致產(chǎn)物合成效率降低[10]。如圖4所示,25μL體系中,Taq DNA 聚合酶用量為0.25~1.0U時,幾乎沒有擴增產(chǎn)物;Taq DNA聚合酶用量大于2.0U時,擴增條帶少,背景模糊;故選擇1.5UTaq DNA聚合酶為最佳用量。

2.5 引物濃度與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

引物濃度過低,擴增產(chǎn)物少;而濃度過高時,不僅成本較高,而且容易形成引物二聚體[11]。如圖5所示,每個處理均有擴增產(chǎn)物,引物濃度逐漸增加,擴增條帶的數(shù)目先逐漸增加后減少。引物濃度為0.4,0.6,0.8,1.4μmol/L時,擴增條帶少;當引物的濃度為1.0,1.2μmol/L時,雖然擴增出來的條帶數(shù)目相同,但前者的條帶和背景都較后者的清晰。故而選擇1.0 μmol/L的引物濃度繼續(xù)下一步研究。

圖4 不同Taq DNA聚合酶用量的ISSR-PCR擴增結(jié)果

圖5 不同引物濃度的ISSR-PCR擴增結(jié)果

圖6 不同模板DNA濃度的ISSR-PCR擴增結(jié)果

2.6 模板DNA濃度與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

過低含量的模板DNA,沒有擴增產(chǎn)物或擴增產(chǎn)物不穩(wěn)定;模板含量過高,非特異性產(chǎn)物合成率增加[12]。如圖6所示,除10ng/25μL沒有擴增產(chǎn)物外,其余處理均有擴增產(chǎn)物。處理1、處理5、處理6(5,70,90ng/25μL)擴增條帶較少,強度較弱;處理3、處理4(30,50 ng/25μL)擴增效果相當,選擇30ng/25μL為模板DNA最佳濃度。

2.7 循環(huán)次數(shù)與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

如圖7所示,PCR擴增反應(yīng)循環(huán)25次時,沒有擴增產(chǎn)物或擴增產(chǎn)物的量很少,導(dǎo)致檢測不出來;當循環(huán)次數(shù)為30、35、40、45時,擴增產(chǎn)物的量較少,而且擴增條帶少,強度弱;當循環(huán)次數(shù)為50次時,擴增產(chǎn)物的量足夠,擴增條帶數(shù)目較多,故選擇50次為最佳循環(huán)次數(shù)。

2.8 引物的退火溫度與ISSR-PCR擴增效果的關(guān)系

如圖8所示,過低或過高的引物退火溫度擴增出來的條帶數(shù)量都較少,而且條帶強度弱,背景模糊;退火溫度為50.4℃時,擴增條帶最多,主帶明顯,副帶清晰。故選擇50.4℃為該引物的最適退火溫度。同樣地,通過溫度梯度篩選的方法確定其他引物的最佳退火溫度。

圖8 引物的不同退火溫度的ISSR-PCR擴增結(jié)果

2.9 ISSR-PCR反應(yīng)體系的驗證

圖7 不同循環(huán)次數(shù)的ISSR-PCR擴增結(jié)果

從黃枝油杉7個居群分別隨機選取2個個體的DNA樣品對優(yōu)化獲得的最佳反應(yīng)體系及擴增程序進行檢驗,結(jié)果見圖9。由圖9可見:除貴州平塘縣者密鎮(zhèn)居群(P)沒有擴增出條帶,其余各居群均有擴增產(chǎn)物。沒有擴增產(chǎn)物的部分樣品,可能的原因是加入反應(yīng)體系的DNA很少或者沒有,導(dǎo)致擴增產(chǎn)物很少,檢測不出來,或者沒有擴增產(chǎn)物。有擴增產(chǎn)物的樣品,擴增效果較好,條帶數(shù)目、清晰度均較佳,可見建立的反應(yīng)體系和擴增程序不僅穩(wěn)定,還具有較高的檢測能力。

圖9 不同居群的黃枝油杉樣品擴增效果

3 討 論

雖然ISSR分子標記具有多態(tài)性水平高、產(chǎn)物特異性強、穩(wěn)定性好、DNA用量少等優(yōu)點,但是ISSR擴增易受Taq DNA聚合酶、Mg2+、引物、退火溫度等因素的影響,不同的物種,各組分所需的濃度也不同。因此,在對一個物種進行遺傳多樣性分析前有必要對反應(yīng)體系和程序進行優(yōu)化,以保證擴增出來的條帶清晰、重復(fù)性好。前人大多數(shù)是采用單一的單因素設(shè)計法或正交設(shè)計法來優(yōu)化ISSR-PCR反應(yīng)體系。精細地研究各因素的影響是單因素設(shè)計的優(yōu)點,但不能分析各因素之間的相互作用;快速地分析各因素之間的相互作用是正交設(shè)計法的一大優(yōu)點,但其處理水平有限,而且結(jié)果不夠精細[13-15],而且工作量大。本研究將這2種方法結(jié)合起來使用,恰能互補,既可以精細地研究各因素的影響,還考慮到了各因素之間的相互作用,使結(jié)果更精確、更可靠,從而快速準確地建立了黃枝油杉ISSR-PCR反應(yīng)體系,即25μL體系中含2.0mmol/L的 Mg2+、1.5UTaq DNA 聚合酶、0.10mmol/L 的dNTP、1.0μmol/L的引物、30ng的模板 DNA 以及2.5μL 10×PCR buffer,其余的用滅菌的ddH2O補夠25μL。

此外,ISSR-PCR擴增效果還受擴增程序中的循環(huán)次數(shù)和引物的退火溫度的影響。在一定范圍內(nèi),循環(huán)次數(shù)增加,產(chǎn)物合成率也隨之增加[10]。但循環(huán)次數(shù)過多,非特異性產(chǎn)物合成率也會隨之增加[16]。退火溫度過低或過高,擴增條帶少、強度弱、背景模糊,退火溫度過高還會擴增出非特異性條帶。為了提高擴增的特異性,在擴增效果結(jié)果差不多的幾個退火溫度中,應(yīng)選擇較高的退火溫度作為最佳退火溫度[17]。故本研究選擇50次為最佳循環(huán)次數(shù),最終確定的擴增程序為:94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,48~56℃(不同的引物,其退火溫度不同,根據(jù)具體引物而定)退火45s,72℃延伸90s,以上3個步驟循環(huán)50次;最后72℃延伸7min;4℃保存擴增產(chǎn)物。

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