李積永 于新凱 左群 李莎莎 鄭盼盼
上海體育學(xué)院運(yùn)動(dòng)科學(xué)學(xué)院(上海200438)
骨骼肌是人體內(nèi)最大的組織, 不同的運(yùn)動(dòng)方式會(huì)促使骨骼肌發(fā)生相應(yīng)的適應(yīng)性變化。 近些年來不斷有研究表明miRNAs可能參與調(diào)節(jié)骨骼肌對運(yùn)動(dòng)介導(dǎo)的適應(yīng)性變化過程。 本文就骨骼肌中miRNAs與運(yùn)動(dòng)相關(guān)研究成果進(jìn)行綜述。
miRNAs是一類大約22 nt能夠在后轉(zhuǎn)錄過程調(diào)節(jié)其靶基因表達(dá)的保守的非編碼RNAs分子。 1993年,Lee等發(fā)現(xiàn)了第一個(gè)非編碼的小RNA分子lin-4[1]。7年之后,Reinhart等在C. 線蟲體內(nèi)發(fā)現(xiàn)了另一個(gè)能調(diào)節(jié)其發(fā)育過程的內(nèi)源性非編碼的單鏈RNA分子let-7, 并將其命名為microRNA[2]。此后,miRNAs成為生命科學(xué)領(lǐng)域的基礎(chǔ)研究熱點(diǎn)。 后來大量的研究又在果蠅、昆蟲、人體內(nèi)陸續(xù)發(fā)現(xiàn)了許多miRNAs。 據(jù)比較近的一次miRBase(2013年6月,第20版,www.mirbase.org)顯示,最少已發(fā)現(xiàn)并證實(shí)了206個(gè)物種中的30424個(gè)成熟的miRNAs,其中人體和小鼠體內(nèi)分別有2652個(gè)和1235個(gè)miRNAs。
與其他的基因相似,miRNAs同樣來源于編碼和轉(zhuǎn)錄的基因組,miRNAs首先在核內(nèi)被由5' 加帽,3'加尾結(jié)構(gòu)的RNA聚合酶Ⅱ剪接成300~1000 nt的原始轉(zhuǎn)錄物(pri-miRNA), 隨后由RNase Ш 內(nèi)切酶Drosha剪接成70~100nt的前體(pre-miRNA),由核轉(zhuǎn)運(yùn)受體exportin 5將pre-miRNA轉(zhuǎn)移到細(xì)胞質(zhì)中, 被另一個(gè)RNase Ш 內(nèi)切酶Dicer剪切成大約22 nt的雙鏈miRNA分子, 成熟miRNAs的一條鏈轉(zhuǎn)移到包含Dicer的RNA-誘導(dǎo)的沉默復(fù)合物(RISC)中,而另外一條鏈被靶向降解。 成熟的miRNAs使RISC通過miRNA的種子序列與靶mRNA的3'UTR配對結(jié)合,最終導(dǎo)致靶向轉(zhuǎn)錄物的翻譯抑制[3]。
不斷有研究發(fā)現(xiàn),miRNA的表達(dá)具有組織特異性。Sempere 等[4]發(fā)現(xiàn)有30種miRNAs在一些特定的組織中是高水平的表達(dá)甚至是呈現(xiàn)特異性的, 并且首次提到橫紋肌特異性表達(dá)的miR-1、-133a、-206, 并將它們命名為myomiRs(橫紋肌特異性miRNAs),后來又將miR-208a、-208b、-499以及miR-486都劃分到myomiRs家族中。大多數(shù)的myomiRs家族成員都能在骨骼肌和心肌中表達(dá),除了miR-208a在心肌中呈特異性表達(dá),miR-206在骨骼肌中特異性表達(dá)[5]。有意思的是,miR-206的表達(dá)還與肌肉纖維類型有很大的關(guān)系, 以慢收縮型纖維為主的比目魚肌miR-206的表達(dá)要明顯高于快縮型為主的腓腸肌和趾長伸肌[16,18]。
抗阻運(yùn)動(dòng)會(huì)導(dǎo)致許多信號通路 (PI3K-Akt-mTOR和PI3K-AKT-GSK-3β途徑)的激活,進(jìn)而促進(jìn)蛋白合成的增加[6]。骨骼肌對抗阻運(yùn)動(dòng)的適應(yīng)性變化最明顯的結(jié)果就是肌肉肥大。 肌肉肥大的最主要表現(xiàn)形式是收縮蛋白的增加導(dǎo)致肌纖維的增粗, 從而使肌肉產(chǎn)生更大的收縮力量[7]。
2.1.1 急性抗阻運(yùn)動(dòng)
Drummond等[8]發(fā)現(xiàn)一次急性的抗阻運(yùn)動(dòng)結(jié)合氨基酸注射會(huì)使年輕受試者股外側(cè)肌中miR-1的表達(dá)下調(diào)。其中的原因可能是miR-1可以直接地靶向抑制IGF-I/Akt信號通路中的不同因子, 運(yùn)動(dòng)后miR-1表達(dá)的下調(diào)可能導(dǎo)致IGF-I/Akt信號增加, 從而增加蛋白的合成。Rivas等[9]通過對年輕組和老年組的受試者進(jìn)行一次急性抗阻運(yùn)動(dòng),發(fā)現(xiàn)年輕組受試者中有21 個(gè)miRNAs表達(dá)發(fā)生了改變,而老年組的表達(dá)未發(fā)生變化;通過基因信息學(xué)技術(shù)發(fā)現(xiàn)miR-126可能直接影響肌肉生長調(diào)節(jié)因子的表達(dá);隨后通過細(xì)胞實(shí)驗(yàn)深入研究機(jī)制,結(jié)果表明miR-126能通過激活I(lǐng)GF-1信號從而增加年輕組受試者肌肉蛋白的合成, 而老年組受試者在急性抗阻運(yùn)動(dòng)后,由于維持miR-126的表達(dá),擾亂了IGF-1信號的激活,進(jìn)而導(dǎo)致了瘦體重的下降。 此外,除了對骨骼肌中miRNAs表達(dá)的研究之外,近年有學(xué)者[10]對12名男性受試者進(jìn)行5組、 每組間隔1 min休息、10次70%最大力量的急性抗阻運(yùn)動(dòng),隨后對循環(huán)血液中miRNAs的表達(dá)譜進(jìn)行檢測, 結(jié)果發(fā)現(xiàn)運(yùn)動(dòng)后miR-149表達(dá)上調(diào),miR-221和miR-146a表達(dá)下降, 提示循環(huán)中miRNAs的表達(dá)變化有可能通過血液間接作用于骨骼肌參與機(jī)體對急性抗阻運(yùn)動(dòng)的適應(yīng)性變化。
2.1.2 長期抗阻訓(xùn)練
Davidsen等[11]對56名青年男性實(shí)施長達(dá)12周的抗阻訓(xùn)練,使用雙能X線骨密度儀進(jìn)行檢測,根據(jù)肌肉質(zhì)量增加程度的不同, 將他們分為高反應(yīng)者與低反應(yīng)者兩組 (上下各取15%); 通過肌肉活檢對21個(gè)成熟的miRNAs進(jìn)行了檢測, 發(fā)現(xiàn)抗阻運(yùn)動(dòng)對其中的17 個(gè)miRNAs的表達(dá)未見顯著影響,但是miR-378、miR-29a、miR-26a和miR-451的表達(dá)在低反應(yīng)者與高反應(yīng)者中不同,miR-378、miR-29a、miR-26a在低反應(yīng)者中下調(diào)而在高反應(yīng)者中未見變化,然而miR-451僅在低反應(yīng)者肌肉內(nèi)上調(diào), 這表明在抗阻運(yùn)動(dòng)對不同程度反應(yīng)者是通過不同的miRNAs表達(dá)水平來適應(yīng)運(yùn)動(dòng)引起的刺激。他們還發(fā)現(xiàn)miR-378的表達(dá)變化與瘦體重的變化可能存在相關(guān)性(R2= 0.51),這一結(jié)果使他們推測要增加瘦體重就必須要維持miR-378的水平。 Gagan等[12]在離體實(shí)驗(yàn)中也證實(shí)了這一假設(shè),他們發(fā)現(xiàn)miR-378能夠通過靶向調(diào)節(jié)MyoR (生肌轉(zhuǎn)錄因子MyoD的負(fù)調(diào)節(jié)子)來促進(jìn)成肌細(xì)胞的分化, 而成肌分化過程可以通過向肌纖維增加細(xì)胞核的數(shù)量來影響肌肉肥大[13]。 研究表明,在運(yùn)動(dòng)過程中,miR-378能夠通過調(diào)節(jié)PGC-1β來控制線粒體代謝和生物能系統(tǒng)[14], 缺乏miR-378會(huì)導(dǎo)致MyoR和PGC-1β的上調(diào)。 Rhim等[15]通過離體實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),抑制成肌細(xì)胞miR-133a的活性, 然后通過組織工程技術(shù)獲得人造骨骼肌,其肌肉的力量峰值增加了20%,并且與對照組相比, 缺乏miR-133a的人造肌肉內(nèi)肌管的直徑也要比對照組大。
2.1.3 其他形式抗阻適應(yīng)
John等[16]通過協(xié)同肌切除實(shí)驗(yàn),與對照組相比,7天后跖肌的濕重增加了50%, 成功創(chuàng)建了跖肌的肥大模型;他們發(fā)現(xiàn)與對照組相比,肥大的小鼠跖肌中miR-1和miR-133a的表達(dá)下調(diào)了約50%,miR-206的表達(dá)稍有上調(diào); 他們同時(shí)發(fā)現(xiàn)pri-miR-1和pri-miR-133a的表達(dá)卻有2倍的上調(diào),pri-miR-206的表達(dá)則上調(diào)了18.3倍;接著他們從miRNAs的生成途徑檢測關(guān)鍵的內(nèi)切酶,發(fā)現(xiàn)Drosha和Exportin-5的表達(dá)升高了50%, 而Dicer的表達(dá)未見變化;從核酸內(nèi)切酶表達(dá)的變化,不能解釋primiRNAs與成熟的miRNAs表達(dá)變化的差異。
綜上所述, 急性抗阻運(yùn)動(dòng)通過下調(diào)miR-1和miR-126的表達(dá)來增加IGF-I/Akt信號, 引起蛋白合成增加;長期抗阻訓(xùn)練中低反應(yīng)者通過下調(diào)miR-378的表達(dá)、上調(diào)PGC-1β,從而調(diào)節(jié)線粒體的生成;而高反應(yīng)者可能是通過維持miR-378的表達(dá), 抑制MyOR的表達(dá)來增加MyOD的表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)生肌分化過程。
骨骼肌對耐力運(yùn)動(dòng)產(chǎn)生的適應(yīng)性變化不如抗阻運(yùn)動(dòng)那么明顯,主要的表現(xiàn)形式是線粒體數(shù)量增加、肌型轉(zhuǎn)變以及毛細(xì)血管密度增加;耐力運(yùn)動(dòng)后有關(guān)miRNAs表達(dá)變化的研究表明,miRNAs主要參與了機(jī)體的代謝適應(yīng)過程。
Van Rooij 等[17]研究發(fā)現(xiàn),α-和β-肌球蛋白重鏈(MHC)是骨骼肌內(nèi)的主要運(yùn)動(dòng)蛋白,它們分別能編碼miR-208a和miR-208b;另外,Myh7b基因,與β-MHC基因同源, 在心肌和慢縮型骨骼肌中表達(dá), 并能夠編碼miR-499;miR-499和miR-208b過表達(dá)會(huì)增加肌肉中I型肌纖維的數(shù)量,miR-499過表達(dá)的小鼠在下坡跑實(shí)驗(yàn)中表現(xiàn)出了更強(qiáng)的肌肉耐力; 該研究同時(shí)也警示我們miR-499有可能成為耐力型項(xiàng)目運(yùn)動(dòng)員用來提高運(yùn)動(dòng)成績的潛在基因興奮劑。雖然miR-206在慢縮型肌纖維為主的比目魚肌中表達(dá)遠(yuǎn)高于以快縮型肌纖維為主的腓腸肌內(nèi)的表達(dá)[18],但是Liu等[19]采用miR-206敲除的小鼠模型進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果顯示,與野生型小鼠相比,該模型小鼠在下坡跑訓(xùn)練中并沒有出現(xiàn)運(yùn)動(dòng)能力的差別。
2.2.1 急性耐力運(yùn)動(dòng)
有研究發(fā)現(xiàn), 一次90 分鐘的急性耐力訓(xùn)練使C57BL/6 J小鼠股直肌中miR-1、miR-181、miR-107表達(dá)上調(diào), 而miR-23表達(dá)下調(diào),miR-23的下調(diào)與其可能的靶基因PGC-1α的mRNA和蛋白的表達(dá)升高有關(guān) (分別升高了3倍和45%),并發(fā)現(xiàn)miR-23和PGC-1α蛋白表達(dá)量之間呈較高的相關(guān)性(R2=0.62)[20]。 最新的研究表明[21],miR-23對PGC-1α及機(jī)體耐力的調(diào)節(jié)具有肌型的選擇性,Wada等將miR-23基因過表達(dá)的小鼠與野生型小鼠相比,慢縮型肌纖維為主的比目魚肌PGC-1α表達(dá)下調(diào), 而快縮型纖維為主的跖肌PGC-1α表達(dá)并未改變,但是作者并未通過離體實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證PGC-1α是否就是miR-23參與代謝調(diào)節(jié)的一個(gè)直接的靶基因。 Yamamoto等[22]采用一次急性游泳耐力訓(xùn)練模型,發(fā)現(xiàn)運(yùn)動(dòng)后小鼠腓腸肌中miR-494的表達(dá)下降,他們繼續(xù)探索并驗(yàn)證了miR-494 的兩個(gè)直接參與線粒體生成的靶基因mtTFA和Foxj3。另有研究報(bào)道,大鼠游泳運(yùn)動(dòng)后比目魚肌中miR-16的表達(dá)下降[23],而血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)及其兩個(gè)受體的蛋白水平表達(dá)升高, 并且近期研究已證實(shí)VEGF是miR-16下游直接的靶基因[24];作為對耐力訓(xùn)練的適應(yīng)性變化,骨骼肌中VEGF途徑的這種變化可能與血管的生成有很大的關(guān)系。
2.2.2 長期耐力訓(xùn)練
Aoi等[25]發(fā)現(xiàn),小鼠進(jìn)行4周的跑臺耐力訓(xùn)練后,另一個(gè)可能調(diào)節(jié)PGC-1α的miR-696的表達(dá)下調(diào),而PGC-1α蛋白的表達(dá)同樣升高,但是PGC-1α的mRNA水平?jīng)]有變化, 這提示miR-696可能是通過抑制PGC-1α的翻譯來參與骨骼肌對耐力運(yùn)動(dòng)的適應(yīng)過程。PGC-1α在參與骨骼肌對耐力訓(xùn)練的適應(yīng)性過程中作用極為重要,它能夠參與線粒體的生成以及調(diào)控能量的消耗, 主要包括糖異生、糖酵解和脂肪酸的氧化[26]。 這些結(jié)果表明, 與急性耐力運(yùn)動(dòng)相比, 長期耐力運(yùn)動(dòng)時(shí)骨骼肌中miRNAs對PGC-1α的調(diào)節(jié)機(jī)制也略有差異。張嘉偉等[27]對大鼠分別進(jìn)行4、6周的跑臺有氧訓(xùn)練后發(fā)現(xiàn),有氧訓(xùn)練可以上調(diào)大鼠腓腸肌組織中miR-133a、 肌細(xì)胞增強(qiáng)因子-2(MEF-2) mRNA的表達(dá)。
Nielsen等[28]發(fā)現(xiàn)60分鐘的自行車耐力訓(xùn)練可以使無訓(xùn)練經(jīng)歷的受試者體內(nèi)股外側(cè)肌miR-1和miR-133的表達(dá)增加, 然而進(jìn)行12周的訓(xùn)練以后,miR-1、miR-133a、miR-133b和miR-206的表達(dá)較訓(xùn)練前水平低,作者隨后通過對參與耐力適應(yīng)的MAPK和TGF-β途徑的成分進(jìn)行檢測,但是并沒有發(fā)現(xiàn)miRNAs與可能的靶蛋白Cdc42和ERK 1/2的表達(dá)存在明顯的相關(guān)。 Keller等[29]研究發(fā)現(xiàn)6周的自行車運(yùn)動(dòng)會(huì)降低miR-1、miR-133、miR-101 和miR-455 的 表 達(dá)。 這 些 研 究 結(jié) 果 表 明miRNAs的表達(dá)隨運(yùn)動(dòng)持續(xù)周期的變化而變化, 但是,要搞清楚miRNAs在肌肉耐力運(yùn)動(dòng)適應(yīng)性過程中的確切機(jī)制, 還需要使用過表達(dá)和基因敲除的轉(zhuǎn)基因模型動(dòng)物,并結(jié)合離體靶基因鑒定的實(shí)驗(yàn)。這方面的研究可能由于實(shí)驗(yàn)條件所限,研究相對較少。
與肌肉肥大相比,運(yùn)動(dòng)不足、太空飛行、失神經(jīng)支配或先天基因缺陷等因素都會(huì)導(dǎo)致骨骼肌發(fā)生萎縮,進(jìn)而造成肌肉力量和功能下降。研究發(fā)現(xiàn),由運(yùn)動(dòng)不足導(dǎo)致的肌萎縮過程中miRNAs表達(dá)變化在動(dòng)物和人體實(shí)驗(yàn)中存在差異, 并且由運(yùn)動(dòng)不足及其他因素所致的肌萎縮過程中骨骼肌中miRNAs變化的調(diào)控機(jī)制也有所不同。
2.3.1 動(dòng)物實(shí)驗(yàn)
McCarthy等[30]發(fā)現(xiàn)7天的后肢懸吊會(huì)降低miR-107、miR-221和miR-499的表達(dá),并且,當(dāng)懸垂28天時(shí),miR-499和miR-208b分別下調(diào)40%和60%, 而Sox6的表達(dá)升高了2.2倍。 Quiat等[31]發(fā)現(xiàn)miR-499能通過調(diào)節(jié)Sox6的表達(dá)來調(diào)節(jié)肌萎縮過程中肌型的轉(zhuǎn)變, 缺乏Sox6的小鼠骨骼肌中會(huì)表達(dá)更多的慢肌纖維,線粒體活性增強(qiáng),導(dǎo)致肌肉耐力增加。 Wang等[32]通過對斑馬魚胚胎研究發(fā)現(xiàn),在慢縮型肌纖維中Sox6的表達(dá)受到抑制,并進(jìn)一步證實(shí)了Sox6的翻譯抑制是由miR-499調(diào)節(jié)的,而慢縮型肌纖維特異性的表達(dá)又受到Prdm1a的控制, 從而形成了一個(gè)引起與維持慢縮型肌纖維系統(tǒng)的一個(gè)完整的調(diào)節(jié)回路。
2.3.2 人體實(shí)驗(yàn)
Ringhom等[33]對12名男性健康受試者進(jìn)行7天的臥床休息,并于休息前和休息后對股外側(cè)肌進(jìn)行活檢,發(fā)現(xiàn)臥床引起萎縮的股外側(cè)肌中線粒體DNA/核DNA 含量的比值下降了15%,miR-1和miR-133a的表達(dá)同樣下降10%,此結(jié)果提示7天的臥床不動(dòng)可能是通過下調(diào)肌肉特異性miRNAs的表達(dá)降低了骨骼肌的代謝能力。
人體實(shí)驗(yàn)與動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果的差異提示, 在運(yùn)動(dòng)不足所致的肌萎縮過程中,miRNAs表達(dá)變化的差異可能是由于不同物種之間發(fā)生肌肉萎縮時(shí)本身就存在不同的調(diào)節(jié)機(jī)制。
2.3.3 其他因素所致的肌萎縮
與運(yùn)動(dòng)不足導(dǎo)致的肌萎縮形式不同,Allen等[34]通過微陣列分析與RT-PCR鑒定后發(fā)現(xiàn),與正常重力控制組相比,12天的太空飛行會(huì)引起小鼠腓腸肌中miR-206的表達(dá)下降, 有272個(gè)mRNA的表達(dá)出現(xiàn)了比較顯著性的變化,并且他們證實(shí)這些基因mRNA表達(dá)的變化都與肌肉生長和纖維類型有關(guān)。Jeng等[35]發(fā)現(xiàn)大鼠去神經(jīng)支配1個(gè)月以后, 跟假手術(shù)組相比, 比目魚肌中miR-1和miR-133a的表達(dá)量下降約70%; 去神經(jīng)支配4個(gè)月后,再完成了神經(jīng)支配的恢復(fù), 發(fā)現(xiàn)miR-133a和miR-1的表達(dá)要比對照組高2倍,miR-206的表達(dá)在神經(jīng)支配恢復(fù)后1個(gè)月顯著性升高了3倍, 并且持續(xù)了至少4個(gè)月,而4個(gè)月恢復(fù)神經(jīng)支配的肌肉中Mef2的轉(zhuǎn)錄物的表達(dá)水平明顯下調(diào),這提示miR-206可能在外周神經(jīng)損傷修復(fù)的過程中參與肌萎縮的調(diào)節(jié)過程。 杜氏肌營養(yǎng)不良癥是由先天性基因缺陷所致的進(jìn)行性肌萎縮疾病。 Liu等[19]對進(jìn)行性肌營養(yǎng)不良的mdx小鼠進(jìn)行研究后發(fā)現(xiàn),4周齡的mdx小鼠腓腸肌、跖肌、脛骨前肌和趾長伸肌中miR-206的表達(dá)水平較野生型小鼠相比表達(dá)呈顯著性上調(diào)。關(guān)于肌營養(yǎng)不良癥病人的研究發(fā)現(xiàn)miR-206的表達(dá)與正常對照組相比呈過表達(dá)水平[36],這表明miR-206參與了杜氏肌營養(yǎng)不良癥的病理發(fā)展過程。因此,與運(yùn)動(dòng)不足所致的肌萎縮過程相比, 由上述各影響因素所致的肌萎縮中miRNAs的不同表達(dá)變化也提示可能存在不同的調(diào)控機(jī)制。
綜上所述, 不同的運(yùn)動(dòng)方式會(huì)導(dǎo)致骨骼肌發(fā)生不同的適應(yīng)性變化。 運(yùn)動(dòng)對骨骼肌中miRNAs調(diào)控作用的相關(guān)研究表明,抗阻運(yùn)動(dòng)、肌肉廢用性變化中miRNAs參與肌肉適應(yīng)性調(diào)節(jié)的可能機(jī)制的相關(guān)研究相對比較成熟,但miRNAs在耐力運(yùn)動(dòng)過程中的確切作用機(jī)制尚待進(jìn)一步探討。 在進(jìn)行miRNAs參與肌肉運(yùn)動(dòng)適應(yīng)性調(diào)節(jié)的基礎(chǔ)研究的同時(shí), 未來臨床上可能會(huì)考慮利用miRNAs進(jìn)行基因干預(yù)或基因療法來預(yù)防和治療肌肉萎縮。 此外,在競技體育領(lǐng)域,一些miRNAs也有可能存在成為潛在的基因興奮劑的風(fēng)險(xiǎn)。
[1] Lee RC, Feinbaum RL, Ambros V.The Celegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14[J].Cell, 1993, 75(5):843-54.
[2] Reinhart BJ, Slack FJ, Basson M, et al.The 21-nucleotide let-7 RNA regulates developmental timing in Caenorhabditis elegans[J].Nature, 2000, 403(6772):901-906.
[3] Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism,and function[J]. Cell, 2004, 116(2):281-97.
[4] Sempere LF, Freemantle S, Pitha-Rowe I, et al. Expression profiling of mammalian microRNAs uncovers a subset of brain-expressed microRNAs with possible roles in murine and human neuronal differentiation [J].Genome Biol, 2004, 5(3):R13-21.
[5] McCarthy JJ. MicroRNA-206: the skeletal muscle-specific myomiR[J]. Biochim Biophys Acta, 2008, 1779(11):682-91.
[6] Dreyer HC, Fujita S, Glynn EL, et al. Resistance exercise increases leg muscle protein synthesis and mTOR signalling independent of sex[J].Acta Physiol (Oxf), 2010,199(1):71-81.
[7] Harridge SD. Plasticity of human skeletal muscle: gene expression to in vivo function[J].Exp Physiol, 2007, 92(5):783-97.
[8] Drummond MJ, McCarthy JJ, Fry CS, et al. Aging differentially affects human skeletal muscle microRNA expression at rest and after an anabolic stimulus of resistance exercise and essential amino acids [J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2008,295(6):E1333-40.
[9] Rivas DA, Lessard SJ, Rice NP,et al. Diminished skeletal muscle microRNA expression with aging is associated with attenuated muscle plasticity and inhibition of IGF-1 signaling[J]. FASEB J,2014,[Epub ahead of print]
[10] Sawada S, Kon M, Wada S,et al. Profiling of circulating microRNAs after a bout of acute resistance exercise in humans[J]. PLOS One,2013,8(7):e70823.
[11] Davidsen PK, Gallagher IJ, Hartman JW, et al. High responders to resistance exercise training demonstrate differential regulation of skeletal muscle microRNA expression[J]. J Appl Physiol, 2011, 110(2):309-17.
[12] Gagan J, Dey BK, Layer R,et al.MicroRNA-378 targets the myogenic repressor MyoR during myoblast differentiation[J].J Biol Chem, 2011, 286(22):19431-8.
[13] Petrella JK, Kim JS, Mayhew DL, et al.Potent myofiber hypertrophy during resistance training in humans is associated with satellite cell-mediated myonuclear addition: a cluster analysis[J].J Appl Physiol, 2008, 104(6):1736-42.
[14] Carrer M, Liu N, Grueter CE, et al. Control of mitochondrial metabolism and systemic energy homeostasis by microRNAs 378 and 378* [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2012,109(38):15330-5.
[15] Rhim C, Cheng CS, Kraus WE, et al.Effect of microRNA modulation on bioartificial muscle function[J].Tissue Eng Part A, 2010, 16(12):3589-97.
[16] McCarthy JJ, Esser KA. MicroRNA-1 and microRNA-133a expression are decreased during skeletal muscle hypertrophy[J].J Appl Physiol, 2007, 102(1):306-13.
[17] van Rooij E, Quiat D, Johnson BA, et al.A family of microRNAs encoded by myosin genes governs myosin expression and muscle performance[J].Dev Cell, 2009, 17(5):662-73.
[18] Williams AH,Valdez G,Moresi V, et al.MicroRNA-206 delays ALS progression and promotes regeneration of neuromuscular synapses in mice[J].Science, 2009, 326(5959):1549-54.
[19] Liu N, Williams AH, Maxeiner JM, et al.MicroRNA-206 promotes skeletal muscle regeneration and delays progression of Duchenne muscular dystrophy in mice [J].J Clin Invest, 2012,122(6):2054-65.
[20] Safdar A, Abadi A, Akhtar M, et al. miRNA in the regulation of skeletal muscle adaptation to acute endurance exercise in C57Bl/6 J male mice[J].PLOS One, 4(5):e56101-8.
[21] Wada S1, Kato Y, Sawada S. MicroRNA-23a has minimal effect on endurance exercise -induced adaptation of mouse skeletal muscle[J]. Pflugers Arch, 2014, [Epub ahead of print]
[22] Yamamoto H, Morino K, Nishio Y, et al.MicroRNA-494 regulates mitochondrial biogenesis in skeletal muscle through mitochondrial transcription factor A and forkhead box j3[J].Am J Physiol Endocrinol Metab, 2012, 303(12):E1419-27.
[23] Fernandes T, Magalhes FC, Roque FR, et al.Exercise training prevents the microvascular rarefaction in hypertension balancing angiogenic and apoptotic factors: role of microRNA-16、-21、-126[J].Hypertension, 2012, 59(2):513-20.
[24] Sun CY, She XM, Qin Y, et al.miR-15a and miR-16 affect the angiogenesis of multiple myeloma by targeting VEGF[J].Carcinogenesis, 2013, 34(2):426-35.
[25] Aoi W, Naito Y, Mizushima K, et al.The microRNA miR-696 regulates PGC-1alpha in mouse skeletal muscle in response to physical activity[J].Am J Physiol Endocrinol Metab, 298(4):E799-806.
[26] Patti ME, Butte AJ, Crunkhorn S, et al.Coordinated reduction of genes of oxidative metabolism in humans with insulin resistance and diabetes: potential role of PGC1 and NRF1[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 2003, 100(14):8466-71.
[27] 張嘉偉, 任文君. 有氧訓(xùn)練大鼠腓腸肌組織微小RNA-133a和肌細(xì)胞增強(qiáng)因子2的表達(dá)[J]. 中國組織工程研究, 2012,16(20),3730-3734.
[28] Nielsen S, Scheele C, Yfanti C, et al.Muscle specific microRNAs are regulated by endurance exercise in human skeletal muscle[J].J Physiol, 2010, 588(Pt 20):4029-37.
[29] Keller P, Vollaard NB, Gustafsson T, et al.A transcriptional map of the impact of endurance exercise training on skeletal muscle phenotype[J].J Appl Physiol , 2011, 110(1):46-59.
[30] McCarthy JJ, Esser KA, Peterson CA, et al.Evidence of MyomiR network regulation of beta-myosin heavy chain gene expression during skeletal muscle atrophy [J]. Physiol Genomics, 2009, 39(3):219-26.
[31] Quiat D, Voelker KA, Pei J, et al.Concerted regulation of myofiber-specific gene expression and muscle performance by the transcriptional repressor Sox6 [J].Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108(25): 10196-201.
[32] Wang X, Ono Y, Tan SC, et al.Prdm1a and miR-499 act sequentially to restrict Sox6 activity to thefast-twitch muscle lineage in the zebrafish embryo [J].Development, 2011, 138(20):4399-404.
[33] Ringholm S, Biens RS, Kiilerich K, et al. Bed rest reduces metabolic protein content and abolishes exercise -induced mRNA responses in human skeletal muscle [J].Am J Physiol Endocrinol Metab, 2011, 301(4):E649-58.
[34] Allen DL, Bandstra ER, Harrison BC, et al.Effects of spaceflight on murine skeletal muscle gene expression [J].J Appl Physiol, 2009, 106(2):582-95.
[35] Jeng SF, Rau CS, Liliang PC, et al.Profiling muscle-specific microRNA expression after peripheral denervation and reinnervation in a rat model [J].J Neurotrauma, 2009, 26(12):2345-53.
[36] Gambardella S1, Rinaldi F, Lepore SM,et al. Overexpression of microRNA-206 in the skeletal muscle from myotonic dystrophy type 1 patients [J] Transl Med, 2010, 48 (8).1479-5876-8-48.