顧海倫,劉亞莉,王維,丁立峰,劉莉
(1.中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院 骨外科,遼寧 沈陽 110004; 2.遼寧醫(yī)藥職業(yè)學(xué)院衛(wèi)生檢驗教研室,遼寧 沈陽 110010; 3.中國醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學(xué)教研室,遼寧 沈陽 110122)
·論 著·
瘦素對IL-1β誘導(dǎo)大鼠骨性關(guān)節(jié)炎軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá)的影響
顧海倫1,劉亞莉2,王維1,丁立峰1,劉莉3
(1.中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院 骨外科,遼寧 沈陽 110004; 2.遼寧醫(yī)藥職業(yè)學(xué)院衛(wèi)生檢驗教研室,遼寧 沈陽 110010; 3.中國醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學(xué)教研室,遼寧 沈陽 110122)
目的:探討瘦素對IL-1β誘導(dǎo)大鼠骨性關(guān)節(jié)炎軟骨細(xì)胞基質(zhì)金屬蛋白酶-13 (MMP-13)mRNA表達(dá)的影響及其機制。方法:體外培養(yǎng)大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞,取第3代細(xì)胞采用免疫細(xì)胞化學(xué)方法及甲苯胺藍(lán)染色法鑒定 Ⅱ 型膠原及蛋白多糖表達(dá);MTT法檢測不同質(zhì)量濃度瘦素環(huán)境下正常及IL-1β誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞的增殖活力;實時定量PCR法檢測不同質(zhì)量濃度瘦素處理后IL-1β誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA的表達(dá),ELISA法檢測培養(yǎng)基上清腫瘤壞死因子α(TNFα)的水平;通過小RNA干擾(siRNA)抑制瘦素長型受體(OB-Rb)表達(dá),觀察瘦素對MMP-13 mRNA表達(dá)的影響。結(jié)果:所有細(xì)胞均能分泌 Ⅱ 型膠原及蛋白多糖。MTT結(jié)果顯示,低質(zhì)量濃度瘦素對細(xì)胞增殖無明顯影響,瘦素質(zhì)量濃度大于等于10 ng·ml-1后可顯著促進(jìn)細(xì)胞增殖;而10 ng·ml-1的 IL-1β可顯著抑制細(xì)胞增殖,同時給予100 ng·ml-1及1 μg·ml-1瘦素則可進(jìn)一步抑制細(xì)胞增殖,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。實時定量PCR結(jié)果顯示,IL-1β可增加軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá)及TNFα分泌,而加入瘦素(100 ng·ml-1)后可進(jìn)一步刺激MMP-13 mRNA的表達(dá)及TNFα的分泌,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。轉(zhuǎn)染OB-Rb siRNA的軟骨細(xì)胞OB-Rb mRNA的表達(dá)顯著下降(P<0.05),MMP-13 mRNA的表達(dá)則不受影響;IL-1β處理對轉(zhuǎn)染組OB-Rb的 mRNA表達(dá)無明顯影響,但可顯著誘導(dǎo)MMP-13 mRNA的表達(dá)增加(P<0.05),進(jìn)一步加入瘦素后,OB-Rb mRNA的表達(dá)有所增加,但表達(dá)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于siRNA未處理組,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),MMP-13 mRNA的表達(dá)則未見增加。結(jié)論:一定濃度的瘦素可通過與OB-Rb結(jié)合促進(jìn)IL-1β誘導(dǎo)大鼠骨性關(guān)節(jié)炎軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá),具有降解軟骨作用。
瘦素; 骨性關(guān)節(jié)炎; 軟骨細(xì)胞; 基質(zhì)金屬蛋白酶-13; 瘦素長型受體; 大鼠
骨性關(guān)節(jié)炎(osteoarthritis,OA)是一種以關(guān)節(jié)軟骨退行性變和繼發(fā)性骨質(zhì)增生為主要特征的慢性關(guān)節(jié)疾病,表現(xiàn)為關(guān)節(jié)的進(jìn)行性疼痛、僵硬、功能障礙,嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量。目前研究發(fā)現(xiàn),在OA患者的關(guān)節(jié)滑液中可檢測到瘦素(leptin),且嚴(yán)重OA患者關(guān)節(jié)滑液中的瘦素水平更高[1-3]。許多學(xué)者[4-5]在對OA損害軟骨和正常軟骨的檢測中發(fā)現(xiàn),其瘦素及其受體的mRNA和蛋白表達(dá)水平與軟骨損害程度相關(guān),損害越重,表達(dá)越高。以上研究均表明,瘦素在OA的病理過程中發(fā)揮重要的作用,但關(guān)于瘦素對OA的確切作用機制目前還不十分清楚。因此,本研究擬通過體外培養(yǎng)大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞,并加入白介素1β(interleukin 1 beta,IL-1β)模擬OA時軟骨細(xì)胞的環(huán)境,檢測不同質(zhì)量濃度瘦素對軟骨細(xì)胞活性、基質(zhì)金屬蛋白酶-13(matrix metalloproteinase 13,MMP-13)mRNA表達(dá)及腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor alpha,TNFα)分泌的影響;并通過小干擾RNA(small interference RNA,siRNA)抑制瘦素長型受體(long form leptin receptor,OB-Rb)表達(dá)來探討瘦素對IL-1β誘導(dǎo)OA軟骨細(xì)胞的效應(yīng)及作用機制,為闡明OA的發(fā)病機制提供實驗依據(jù)。
1.1 大鼠關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞的分離及培養(yǎng)
雄性Wistar大鼠(SPF級)5只,體質(zhì)量180~200 g,由中國醫(yī)科大學(xué)實驗動物部提供。乙醚麻醉后,全部頸椎脫臼處死,體積分?jǐn)?shù)75%乙醇浸泡,無菌環(huán)境中取雙側(cè)膝關(guān)節(jié),削取軟骨片,剪碎至約1 mm×1 mm×1 mm,PBS清洗,800 r·min-1離心5 min后加入0.25%的胰酶,37℃消化1 h,800 r·min-1離心5 min,棄上清,加入含 5% FBS的0.04%Ⅱ型膠原酶,37℃水浴消化過夜;200 目篩網(wǎng)過濾,800 轉(zhuǎn)離心5 min,棄上清,PBS清洗,加入含 10%FBS的 DMEM-F12培養(yǎng)基,制成單細(xì)胞懸液,按(1~2)×105ml-1密度接種于25 cm2培養(yǎng)瓶中,37℃、體積分?jǐn)?shù)5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),72 h更換培養(yǎng)液。所有檢測均在細(xì)胞第3代進(jìn)行。
1.2 軟骨細(xì)胞表型鑒定
細(xì)胞爬片達(dá)50%~60%,PBS洗2次,加入4%多聚甲醛,室溫固定20 min后分別進(jìn)行細(xì)胞Ⅱ型膠原和蛋白多糖表達(dá)的檢測。
1.2.1Ⅱ型膠原表達(dá) 3% H2O2孵育10 min,山羊血清室溫孵育15 min,一抗(1∶100稀釋)4℃過夜,生物素標(biāo)記二抗室溫孵育15 min,辣根酶標(biāo)記鏈酶卵白素工作液室溫孵育15 min。DAB顯色,蘇木素復(fù)染。梯度酒精脫水,中性樹膠封片,鏡下觀察。
1.2.2蛋白多糖 1%甲苯胺藍(lán)染色30 min,梯度酒精脫水,中性樹膠封片,鏡下觀察。
1.3 MTT法檢測瘦素對軟骨細(xì)胞增殖活力的影響
軟骨細(xì)胞接種于96孔板,每孔100 μl(104個細(xì)胞)。細(xì)胞分組:調(diào)零組、對照組、瘦素處理組(瘦素質(zhì)量濃度10 pg·ml-1、100 pg·ml-1、1 ng·ml-1、10 ng·ml-1、100 ng·ml-1、1 μg·ml-1)、IL-1β組(10 ng·ml-1)、IL-1β+瘦素處理組(瘦素質(zhì)量濃度10 pg·ml-1、100 pg·ml-1、1 ng·ml-1、10 ng·ml-1、100 ng·ml-1、1 μg·ml-1),每組設(shè)3個復(fù)孔。37℃、體積分?jǐn)?shù)5% CO2條件下孵育24 h,各孔吸棄培養(yǎng)基,加入180 μl含0.5%FBS DMEM-F12培養(yǎng)基,再加入20 μl MTT溶液 (5 mg·ml-1)繼續(xù)孵育4 h。棄上清,每孔加入150 μl DMSO,低速振蕩10 min,酶聯(lián)免疫檢測儀490 nm波長處測定各孔吸光度(A)值。
1.4 細(xì)胞處理
軟骨細(xì)胞接種于6孔板中至80%~90%融合后,換用0.5% FBS的培養(yǎng)基,10 ng·ml-1IL-1β預(yù)先孵育1 h后進(jìn)行瘦素處理,分為對照組、IL-1β組和IL-1β+瘦素處理組(瘦素質(zhì)量濃度100 pg·ml-1、100 ng·ml-1),每組設(shè)3個復(fù)孔,24 h后收集細(xì)胞及培養(yǎng)基上清,-80℃保存待測。
1.5 OB-Rb siRNA處理軟骨細(xì)胞
OB-Rb siRNA及對照siRNA均購于美國Santa Cruz公司,轉(zhuǎn)染操作按照說明書進(jìn)行,1.0 μg OB-Rb siRNA或者對照siRNA轉(zhuǎn)染1×106個細(xì)胞。轉(zhuǎn)染后,細(xì)胞再繼續(xù)培養(yǎng)48 h,然后加入10 ng·ml-1IL-1β孵育1 h,之后加入100 ng·ml-1瘦素,24 h后收集細(xì)胞。
1.6 MMP-13與OB-Rb mRNA表達(dá)檢測
采用real-time PCR測定mRNA表達(dá):TRIzol提取總RNA,逆轉(zhuǎn)錄后PCR擴增。β-actin作為內(nèi)參,數(shù)據(jù)分析采用2-ΔΔCt法。引物序列:β-actin(101 bp) F 5′-CACACTGTGCCCATCTACGA-3′,R 5′-CTCAGTGAGGAT
CTTCATGAGGTAGT-3′; MMP-13(146 bp)F 5′-CCCCT
TCCCTATGGTGAT-3′,R 5′-AAGCCAAAGAAAGACTGC-3′;OB-Rb(173 bp)F 5′-GCACCATTTCCGCTTCAATA-3′,R 5′-CTCTTGCTCCTCACCTGGAC-3′。
1.7 培養(yǎng)基上清TNFα水平
采用ELISA法檢測,按照說明書操作。
1.8 統(tǒng)計學(xué)處理
采用SPSS 17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,實驗所得數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。組間兩兩比較采用單因素方差分析LSD法,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 大鼠軟骨細(xì)胞的分離與培養(yǎng)
大鼠原代軟骨細(xì)胞培養(yǎng)24 h后開始貼壁,培養(yǎng)1周左右細(xì)胞增殖加速,2周左右細(xì)胞可長成單層。傳代后細(xì)胞增殖速度明顯加快,細(xì)胞形態(tài)呈三角形、多角形、梭形。
2.2 軟骨細(xì)胞鑒定
Ⅱ型膠原免疫細(xì)胞化學(xué)染色結(jié)果顯示,所有細(xì)胞胞漿均呈棕黃色,蘇木素復(fù)染后細(xì)胞核呈藍(lán)色,證明所培養(yǎng)細(xì)胞均能分泌Ⅱ型膠原,見圖1。甲苯胺藍(lán)染色后可見細(xì)胞呈藍(lán)紫色,見圖2。
圖1 Ⅱ型膠原免疫細(xì)胞化學(xué)染色(×100)Fig 1 Type Ⅱ collagen staining by immunocytochemistry (×100)
圖2 蛋白多糖甲苯胺藍(lán)染色(×100)
Fig 2 Proteoglycans staining by Toluidine blue (×100)
2.3 MTT結(jié)果
相對低質(zhì)量濃度瘦素對細(xì)胞增殖無明顯影響,當(dāng)瘦素質(zhì)量濃度大于10 ng·ml-1后可顯著促進(jìn)細(xì)胞增殖;10 ng·ml-1的 IL-1β可顯著抑制細(xì)胞增殖,同時給予瘦素質(zhì)量濃度在100 ng·ml-1及1 μg·ml-1則可進(jìn)一步抑制細(xì)胞增殖。見圖3。
與對照組比較,aP<0.05,bP<0.01;與IL-1β比較,cP<0.05,dP<0.01。IL-1β質(zhì)量濃度為10 ng·ml-1
圖3 瘦素及IL-1β對大鼠第3代軟骨細(xì)胞增殖活力的影響
Fig 3 Effect of leptin and IL-1β on the viability of rat chondrocytes in generation 3
2.4 瘦素對IL-1β誘導(dǎo)大鼠OA軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá)及分泌TNFα的影響
加入IL-1β后,軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá)及TNFα分泌顯著增加,而加入瘦素(100 ng·ml-1)后可進(jìn)一步刺激MMP-13 mRNA的表達(dá)及TNFα的分泌。見圖4。
2.5 瘦素對OB-Rb siRNA處理的軟骨細(xì)胞OB-Rb及MMP-13 mRNA表達(dá)的影響
轉(zhuǎn)染OB-Rb siRNA的軟骨細(xì)胞OB-Rb mRNA的表達(dá)顯著下降,抑制率達(dá)50%,與對照組的差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);IL-1β處理對其OB-Rb的 mRNA表達(dá)無明顯影響,而進(jìn)一步加入瘦素后,OB-Rb mRNA的表達(dá)雖有所增加,但表達(dá)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于siRNA未處理組(P<0.05)。轉(zhuǎn)染OB-Rb siRNA的軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA的表達(dá)不受影響,而加入IL-1β后可顯著增加MMP-13 mRNA的表達(dá),進(jìn)一步加入瘦素后MMP-13 mRNA的表達(dá)則不再增加。見圖5。
OA是中老年人常見的一種慢性疾病,是造成肌肉關(guān)節(jié)疼痛及失能的最常見原因,但其發(fā)病機制還不完全清楚。瘦素是一種主要由白色脂肪組織分泌的細(xì)胞因子,在調(diào)節(jié)能量代謝方面發(fā)揮重要作用。近年越來越多的研究顯示,瘦素在OA的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用。研究顯示,瘦素及其受體在軟骨細(xì)胞中表達(dá)[4,6],并且瘦素可影響許多OA相關(guān)因子的表達(dá)和分泌等[4,7-8]。因此,探討瘦素在OA的發(fā)生發(fā)展中的作用機制對于闡明OA發(fā)病機制及防治OA具有重要意義。
與對照組比較,aP<0.01;與IL-1β比較,bP<0.05,cP<0.01
圖4 瘦素對IL-1β誘導(dǎo)大鼠OA軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA(A)表達(dá)及TNFα(B)分泌的影響
Fig 4 Effect of leptin on the expression of MMP-13 mRNA(A) and TNFα levels (B) in IL-1β-induced rat OA chondrocytes
本研究首先檢測了不同質(zhì)量濃度瘦素對軟骨細(xì)胞增殖活性的影響。關(guān)于瘦素對細(xì)胞活力的作用研究有不同的結(jié)果。有研究顯示,瘦素可促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖[9],但也有報道發(fā)現(xiàn),瘦素對軟骨細(xì)胞的增殖具有抑制作用[4]。本研究結(jié)果顯示,對于正常大鼠軟骨細(xì)
與IL-1β比較,aP<0.01;與對照組比較,bP<0.01;與IL-1β+100ng·ml-1比較,cP<0.01,eP<0.05;與siRNA比較,dP<0.01
圖5 瘦素對OB-Rb siRNA處理的軟骨細(xì)胞OB-Rb(A)及MMP-13 mRNA(B)表達(dá)的影響
Fig 5 Effect of leptin on the expression of OB-Rb mRNA(A) and MMP-13 mRNA(B) in OB-Rb siRNA treated rat OA chondrocytes
胞,相對低質(zhì)量濃度的瘦素?zé)o明顯促增殖作用,當(dāng)劑量達(dá)10 ng·ml-1時可顯著增加細(xì)胞活力,說明相對高質(zhì)量濃度的瘦素可促進(jìn)正常軟骨細(xì)胞的增殖。為模擬OA時軟骨細(xì)胞的體內(nèi)環(huán)境,我們向培養(yǎng)基中加入IL-1β。IL-1β為多肽類物質(zhì),在OA的病理過程中發(fā)揮主要作用[10]。目前IL-1β作為體外研究中OA的誘導(dǎo)劑已被廣泛地使用[11-12]。本研究采用10 ng·ml-1IL-1β,發(fā)現(xiàn)該質(zhì)量濃度的IL-1β可顯著抑制細(xì)胞增殖。另外,當(dāng)IL-1β與低質(zhì)量濃度瘦素共孵育時對細(xì)胞的抑制作用與未加瘦素時沒有差異,但與高質(zhì)量濃度瘦素共孵育時,則可進(jìn)一步地抑制細(xì)胞增殖,提示正常與OA時的軟骨細(xì)胞對瘦素的反應(yīng)存在差別。諸多研究結(jié)果存在差異的原因可能是細(xì)胞的來源不同以及對細(xì)胞的處理方法不同。根據(jù)本研究MTT的結(jié)果,我們在之后的實驗中選擇了對OA軟骨細(xì)胞增殖無作用的瘦素質(zhì)量濃度(100pg·ml-1)和有作用的瘦素質(zhì)量濃度(100ng·ml-1)作為代表來處理細(xì)胞,探討瘦素對IL-1β誘導(dǎo)的大鼠OA軟骨細(xì)胞的作用機制。
軟骨細(xì)胞是軟骨中唯一的細(xì)胞成分,它合成和分泌的Ⅱ型膠原及蛋白多糖構(gòu)成細(xì)胞外基質(zhì),在維持軟骨功能方面具有重要作用。MMP-13是基質(zhì)金屬蛋白酶家族中的一員,主要降解Ⅱ型膠原[13],在OA軟骨破壞過程中的作用尤為重要。TNFα是一種多功能的炎癥細(xì)胞因子,對關(guān)節(jié)軟骨具有一定的破壞作用。有研究顯示,膝關(guān)節(jié)術(shù)后關(guān)節(jié)液中的TNFα水平與康復(fù)治療效果呈負(fù)相關(guān)[14]。瘦素可增加軟骨細(xì)胞MMP-1,MMP-3、 MMP-9 及 MMP-13的分泌,采用RNA干擾下調(diào)瘦素的表達(dá)可抑制人OA關(guān)節(jié)軟骨MMP-13的表達(dá)[15-17]。但也有報道顯示,瘦素可增加軟骨細(xì)胞增殖及蛋白多糖和膠原的合成[18],提示瘦素可能也具有合成效應(yīng),或者瘦素的分解效應(yīng)啟動了代償性的合成反應(yīng),尤其在OA的早期[19]。本研究中加入IL-1β后軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá)及TNFα分泌顯著增加,而加入瘦素100 pg·ml-1時,MMP-13 mRNA的表達(dá)及TNFα分泌不受影響,但瘦素質(zhì)量濃度在100 ng·ml-1則可進(jìn)一步刺激MMP-13 mRNA的表達(dá)及TNFα的分泌,表明OA時MMP-13在軟骨細(xì)胞中高表達(dá),而低濃度瘦素對OA軟骨細(xì)胞無作用,原因可能是OA時軟骨細(xì)胞所處的環(huán)境中瘦素質(zhì)量濃度已經(jīng)很高,再加入低質(zhì)量濃度的瘦素對其影響甚小。相反,高質(zhì)量濃度的瘦素可以誘導(dǎo)OA軟骨細(xì)胞MMP-13的表達(dá),提示100 ng·ml-1的瘦素對IL-1β誘導(dǎo)的大鼠軟骨細(xì)胞具有促進(jìn)基質(zhì)降解作用。研究發(fā)現(xiàn),瘦素發(fā)揮細(xì)胞作用主要是通過與長型或短型瘦素受體結(jié)合[4,20],激活STAT、MAPK、NF-κB[15,21]等一系列信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路而進(jìn)行的。在本研究中我們通過RNA干擾方法抑制OB-Rb mRNA的表達(dá),再檢測瘦素對IL-1β誘導(dǎo)MMP-13表達(dá)的影響,探討在OA軟骨細(xì)胞中瘦素是否可通過與OB-Rb結(jié)合發(fā)揮對MMP-13的調(diào)控作用。結(jié)果顯示,OB-Rb被抑制后,IL-1β仍可誘導(dǎo)MMP-13 mRNA表達(dá)的增加,但再加入瘦素后MMP-13 mRNA 表達(dá)并未進(jìn)一步的增加,說明在軟骨細(xì)胞中MMP-13的增加至少部分通過瘦素與OB-Rb結(jié)合,進(jìn)而激活瘦素相關(guān)信號通路來實現(xiàn)的,但其中涉及的具體信號通路以及是否瘦素還可與其他瘦素受體結(jié)合發(fā)揮作用還須進(jìn)一步研究。
綜上所述,MMP-13在OA的發(fā)生發(fā)展中的作用非常重要,而瘦素對軟骨細(xì)胞的的效應(yīng)及對MMP-13的影響是多方面的,軟骨細(xì)胞的來源、種屬、瘦素的質(zhì)量濃度以及OA的嚴(yán)重程度均可產(chǎn)生不同的作用。因此,深入探討瘦素對MMP-13的影響及機制對闡明OA的發(fā)病機制及防治OA具有重要的意義。
[1] DUMOND H,PRESLE N,TERLAIN B,et al.Evidence for a key role of leptin in osteoarthritis [J].Arthritis Rheum,2003,48(11):3118-3129.
[2] KU J H,LEE C K,JOO B S,et al.Correlation of synovial fluid leptin concentrations with the severity of osteoarthritis[J].Clin Rheumatol,2009,28(12):1431-1435.
[3] STANNUS O,JONES G,CICUTTINI F,et al.Circulating levels of IL-6 and TNF-alpha are associated with knee radiographic osteoarthritis and knee cartilage loss in older adults[J].Osteoarthritis Cartilage,2010,18(11):1441-1447.
[4] SIMOPOULOU T,MALIZOS K N,ILIOPOULOS D,et al.Differential expression of leptin and leptin’s receptor isoform (Ob-Rb) mRNA between advanced and minimally affected osteoarthritic cartilage;effect on cartilage metabolism[J].Osteoarthritis Cartilage,2007,15(8):872-883.
[5] PRESLE N,POTTIE P,DUMOND H,et al.Differential distribution of adipokines between serum and synovial fluid in patients with osteoarthritis.Contribution of joint tissues to their articular production [J].Osteoarthritis Cartilage,2006,14(7):690-695.
[6] KUME K,SATOMURA K,NISHISHO S,et al.Potential role of leptin in endochondral ossification [J].J Histochem Cytochem,2002,50(2):159-169.
[7] VUOLTEENAHO K,KOSKINEN A,KUKKONEN M,et al.Leptin enhances synthesis of proinflammatory mediators in human osteoarthritic cartilage-mediator role of NO in leptin-induced PGE2,IL-6,and IL-8 production[J].Mediators Inflamm,2009,2009:345838.
[8] CONDE J,SCOTECE M,LOPEZ V,et al.Adiponectin and leptin induce VCAM-1 expression in human and murine chondrocytes[J].PLoS One,2012,7(12):e52533.
[9] ZHAO C Q,LIU D,LI H,et al.Expression of leptin and its functional receptor on disc cells:contribution to cell proliferation[J].Spine (Phila Pa 1976),2008,33(23):E858-E864.
[10] KAPOOR M,MARTEL-PELLETIER J,LAJEUNESSE D,et al.Role of proinflammatory cytokines in the pathophysiology of osteoarthritis[J].Nat Rev Rheumatol,2011,7(1):33-42.
[11] SHAKIBAEI M,JOHN T,SEIFARTH C,et al.Resveratrol inhibits IL-1β-induced stimulation of caspase-3 and cleavage of PARP in human articular chondrocytesinvitro[J].An N Y Acad Sci,2007,1095(1):554-563.
[12] 王哲彥,王文雅,張柳,等.阿侖膦酸鈉對IL-1β體外誘導(dǎo)培養(yǎng)的大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞影響的實驗研究[J].中國修復(fù)重建與外科雜志,2011,25(1):50-55.
[13] BURRAGE P S,MIX K S,BRINCKERHOFF C E.Matrix metalloproteinases:role in arthritis[J].Front Biosci,2006,11:529-543.
[14] 周全.膝關(guān)節(jié)周圍骨折術(shù)后關(guān)節(jié)腔液中炎性細(xì)胞因子水平對膝關(guān)節(jié)康復(fù)的影響[J].現(xiàn)代醫(yī)學(xué),2015,43(3):326-330.
[15] HUI W,LITHERLAND G J,ELIAS M S,et al.Leptin produced by joint white adipose tissue induces cartilage degradation via upregulation and activation of matrix metalloproteinases[J].Ann Rheum Dis,2012,71(3):455-462.
[16] ILIOPOULOS D,MALIZOS K N,TSEZOU A.Epigenetic regulation of leptin affects MMP-13 expression in osteoarthritic chondrocytes:possible molecular target for osteoarthritis therapeutic intervention[J].Ann Rheum Dis,2007,66(12):1616-1621.
[17] KOSKINEN A,VUOLTEENAHO K,NIEMINEN R,et al.Leptin enhances MMP-1,MMP-3 and MMP-13 production in human osteoarthritic cartilage and correlates with MMP-1 and MMP-3 in synovial fluid from OA patients[J].Clin Exp Rheumatol,2011,29(1):57-64.
[18] FIGENSCHAU Y,KNUTSEN G,SHAHAZEYDI S,et al.Human articular chondrocytes express functional leptin receptors[J].Biochem Biophys Res Commun,2001,287(1):190-197.
[19] VUOLTEENAHO K,KOSKINEN A,MOILANEN E.Leptin-a link between obesity and osteoarthritis.Applications for prevention and treatment[J].Basic Clin Pharmaco Toxico,2014,114(1):103-108.
[20] YANG W H,LIU S C,TSAI C H,et al.Leptin induces IL-6 expression through OBRl receptor signaling pathway in human synovial fibroblasts[J].PLoS One,2013,8(9):e75551.
[21] YAYKASLI K O,HATIPOGLU O F,YAYKASLI E,et al.Leptin induces ADAMTS-4,ADAMTS-5,and ADAMTS-9 genes expression by mitogen-activated protein kinases and NF-B signaling pathways in human chondrocytes[J].Cell Biol Int,2015,39(1):104-112.
Effect of leptin on the expression of MMP-13 mRNA in IL-1β-induced rat osteoarthritis articular chondrocytes
GU Hai-lun1,LIU Ya-li2,WANG Wei1,DING Li-feng1,LIU Li3
(1.DepartmentofOrthopaedics,ShengjingHospital,ChinaMedicalUniversity,Shenyang110004,China;2.DepartmentofHealthInspection,LiaoningMedicineVocationalCollege,Shenyang110010,China;3.DepartmentofNutritionandFoodHygiene,SchoolofPublicHealth,ChinaMedicalUniversity,Shenyang110122,China)
Objective: To determine the effect and mechanism of leptin on the expression of matrix metalloproteinase 13 (MMP-13) mRNA in IL-1β-induced rat osteoarthritis articular chondrocytes.Methods:Rat articular chondrocytes in generation 3 were identified by immunocytochemistry and toluidine blue staining. Chondrocytes were incubated with leptin in the absence/presence of IL-1β. Cell viability was evaluated using the MTT assay. The expression of MMP-13 mRNA in chondrocytes and TNFα levels in culture supernatants were measured by real-time RT-PCR and ELISA,respectively. In addition,long-form leptin receptor (OB-Rb) siRNA was used to block OB-Rb expression and the effect of leptin on MMP-13 expression was detected.Results:All cultured chondrocytes expressed type 2 collagen and proteoglycan. MTT assay showed that leptin at low concentration had no effect on cell viability,but leptin at high concentration (≥10 ng·ml-1) could significantly promote cell proliferation. Viability of cells exposed to IL-1β (10 ng·ml-1) was significantly impaired,and it was further inhibited in the presence of leptin at 100 ng·ml-1and 1 μg·ml-1(P<0.05). The expression of MMP-13 mRNA and levels of TNF-α were significantly upregulated in the presence of IL-1β,and leptin (100 ng·ml-1) cotreatment could further stimulate MMP-13 mRNA expression and TNF-α level (P<0.05). The expression of OB-Rb mRNA was significantly inhibited,but MMP-13 expression was not affected in those chondrocytes transfected by OB-Rb siRNA. IL-1β treatment could significantly increase MMP-13 expression,but not OB-Rb mRNA in the OB-Rb knock-down cells (P<0.05). The expression of OB-Rb mRNA in IL-1β-treated OB-Rb siRNA cells was dramatically lower than that of untransfected cells (P<0.05) after further addition of leptin,while MMP-13 expression was not affected.Conclusion:Leptin could stimulate MMP-13 expression via OB-Rb in IL-1β-induced rat osteoarthritis articular chondrocytes,which demonstrated that leptin might play an important role in cartilage degradation.
leptin; osteoarthritis; chondrocyte; matrix metalloproteinase 13; long-form leptin receptor; rats
2015-03-20
2015-08-20
國家自然科學(xué)基金資助項目(81372971);遼寧省自然科學(xué)基金資助項目(201202267)
顧海倫(1972-),男,遼寧沈陽人,副教授,醫(yī)學(xué)博士。E-mail:guhailun_@163.com
顧海倫,劉亞莉,王維,等. 瘦素對IL-1β誘導(dǎo)大鼠骨性關(guān)節(jié)炎軟骨細(xì)胞MMP-13 mRNA表達(dá)的影響[J].東南大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2015,34(6):870-875.
R-332; R684.3
A
1671-6264(2015)06-0870-06
10.3969/j.issn.1671-6264. 2015. 06.003