林夢(mèng)媛綜述,夏德林審校
(瀘州醫(yī)學(xué)院附屬口腔醫(yī)院頜面外科,四川瀘州646000)
脫細(xì)胞真皮基質(zhì)血管化研究進(jìn)展
林夢(mèng)媛綜述,夏德林審校
(瀘州醫(yī)學(xué)院附屬口腔醫(yī)院頜面外科,四川瀘州646000)
組織創(chuàng)傷及缺損常常導(dǎo)致器官功能障礙和外形破壞,精確的修復(fù)重建在未來(lái)仍將是一個(gè)重大的醫(yī)療問(wèn)題。20世紀(jì)90年代,脫細(xì)胞真皮基質(zhì)(acellular dermal matrix,ADM)首次成功用于皮膚缺損的修復(fù),隨后被迅速推廣于臨床[1,2]。但是ADM僅是一種皮膚替代品,與真正的活體皮膚在結(jié)構(gòu)和功能上有非常大的差異。ADM移植后可減少瘢痕形成與色素沉著,改善受皮區(qū)創(chuàng)面愈合后的柔韌性和彈性。但與自體皮膚移植相比,真皮替代物的血管化進(jìn)程仍明顯偏慢,大大限制了ADM的臨床應(yīng)用。在治療較大面積的皮膚缺損和深度損傷時(shí),血供問(wèn)題常常導(dǎo)致治療失敗[3]。因此,早期、快速血管化是ADM在整復(fù)外科領(lǐng)域中實(shí)現(xiàn)更好發(fā)展的保障。本文就ADM的血管化研究現(xiàn)狀做一綜述。
ADM是指用化學(xué)或物理方法去除皮膚的表皮成分(角質(zhì)細(xì)胞,汗腺,皮脂腺)和真皮成分(成纖維細(xì)胞,血管內(nèi)皮細(xì)胞,平滑肌細(xì)胞)后,保留真皮內(nèi)的細(xì)胞外基質(zhì),維持完整的膠原形態(tài)和基底膜的一種真皮替代物。因此其基本成分主要包括細(xì)胞外基質(zhì)、彈性蛋白、膠原成分(Ⅰ型膠原、Ⅲ型膠原、Ⅳ型膠原、Ⅶ型膠原)和極少量的細(xì)胞相關(guān)抗原(包括HLAABC、HLA-DR、Vimentin、Desmin、Talin等)[4]。
目前,ADM的制備方法主要有三類(lèi):①生物學(xué)酶(胰蛋白酶,中性蛋白酶和核酸酶等)消化法;②物理學(xué)的反復(fù)凍融法(利用組織內(nèi)源性酶);③化學(xué)去污劑法(SDS,EDTA,Triton-100等)或高滲鹽法[5]。大量研究認(rèn)為ADM植入活體后,成纖維細(xì)胞的黏附生長(zhǎng)與殘存的基底膜結(jié)構(gòu)有密切關(guān)系,所以在ADM制作過(guò)程中,盡可能完整地保留基底膜。ADM的基底膜復(fù)合物可以形成基底膜與真皮兩個(gè)面,基底膜面可誘導(dǎo)上皮細(xì)胞的移行和定植,有利于ADM的上皮化,真皮面有利于快速血管化。同時(shí),ADM中疏松有序的膠原結(jié)構(gòu)能誘導(dǎo)宿主細(xì)胞的良性遷移,最終完成受損組織的重構(gòu)。體外實(shí)驗(yàn)也發(fā)現(xiàn),有序的膠原結(jié)構(gòu)能促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞黏附,從而促進(jìn)血管生長(zhǎng)。
ADM血管化速率主要取決于移植早期能否及時(shí)獲得血漿、組織滲液的營(yíng)養(yǎng)供應(yīng),使周?chē)膬?nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、淋巴細(xì)胞等其它細(xì)胞因子能及時(shí)長(zhǎng)入。由于ADM去除了皮脂腺、毛發(fā)、血管、汗腺成分,具有密集的孔隙,因此植入宿主體內(nèi)后,血管內(nèi)皮能較快滲透進(jìn)去,從而實(shí)現(xiàn)血管化,為周?chē)泽w皮或自體細(xì)胞生長(zhǎng)提供充足的營(yíng)養(yǎng),這是ADM相比其它同類(lèi)材料最大的優(yōu)勢(shì)。Kristin等[6]通過(guò)在幾內(nèi)亞豬腹部人為制造腹部切口疝,然后分別用人脫細(xì)胞真皮基質(zhì)(Human acellular dermal matrix,HADM)和豬脫細(xì)胞真皮基質(zhì)(porcine acellular dermal matrix,PADM)修復(fù)切口疝,結(jié)果發(fā)現(xiàn)HADM比PADM更容易與活體組織融合生長(zhǎng),其主要原因是在移植后,前者的血管化及細(xì)胞滲透速度更快。目前ADM的血管化研究主要分為以下幾方面。
2.1 ADM的物理特性對(duì)血管化的影響
ADM孔隙的大小、密度不規(guī)則。掃描電鏡下呈現(xiàn)出凹凸不平的非連續(xù)腔隙結(jié)構(gòu),此結(jié)構(gòu)是其移植早期獲得血漿、組織滲液以及其他營(yíng)養(yǎng)因子的基礎(chǔ)。由于ADM是加工處理而成的真皮替代產(chǎn)品,其孔徑的大小與活體真皮存在差異[7]。因此,其孔徑和間距分別為多大時(shí)才最有利于血管化和組織修復(fù),目前尚無(wú)統(tǒng)一結(jié)論。Burke等在膠原—氨基葡聚糖(glycosaminoglycan,GAG)膜上種植表皮細(xì)胞發(fā)現(xiàn),真皮支架表面孔徑小于培養(yǎng)細(xì)胞直徑(15~20 μm),更有利于細(xì)胞生長(zhǎng)、分化。但之后的研究結(jié)論與此相反,Pruitt等[8]認(rèn)為只有ADM孔徑大于80 μm以后,周?chē)M織的內(nèi)皮細(xì)胞、淋巴細(xì)胞以及生長(zhǎng)因子才能順利滲透進(jìn)入ADM,從而實(shí)現(xiàn)血管化。但有一點(diǎn)是被公認(rèn)的:ADM越薄,組織液越容易滲透進(jìn)去,從而促進(jìn)血管化,反之則阻礙ADM血管化。目前商品化的ADM厚度多為0.2 mm,多數(shù)認(rèn)為在移植時(shí)自體皮片加ADM的總厚度不超過(guò)0.7 mm更有利于移植成活。
2.2 促血管生長(zhǎng)因子對(duì)ADM血管化的影響
血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子(Vascular endothelial growth factor,VEGF)是一種非常強(qiáng)效的內(nèi)皮細(xì)胞有絲分裂促進(jìn)劑,具有極強(qiáng)的促進(jìn)血管增生的能力,可刺激內(nèi)皮細(xì)胞在體外形成血管樣結(jié)構(gòu)。VEGF有多種同型異構(gòu)體,其中主要有VEGF 121、VEGF 165、VEGF 145、VEGF189、VEGF206等。各種VEGF異構(gòu)體都具有促進(jìn)血管再生的能力,其中VEGF165促進(jìn)血管再生的能力最強(qiáng),在組織工程組織血管化過(guò)程中被廣泛應(yīng)用。
李菲菲等[9]將胎兒ADM包埋在SD大鼠背部皮下,實(shí)驗(yàn)組在包埋區(qū)皮下滴加血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF),空白組只做ADM包埋,在術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)分別取材,通過(guò)免疫組織化學(xué)方法,發(fā)現(xiàn)在術(shù)后6周,實(shí)驗(yàn)組血管密度明顯高于空白組,預(yù)示了VEGF能在宿主體內(nèi)促進(jìn)ADM的血管化,具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。賀立新等[10]通過(guò)體外實(shí)驗(yàn),將VEGF165基因轉(zhuǎn)染到鼠成纖維細(xì)胞后,再把此成纖維細(xì)胞接種于異種ADM表面,然后用10%的小牛血清體外培養(yǎng)1周,形成成纖維細(xì)胞—ADM的真皮替代物。在SD大鼠背部切取3 cm×4 cm的全厚皮片,將成纖維細(xì)胞一異種脫細(xì)胞真皮埋植在皮片缺損區(qū),然后將皮片覆蓋在成纖維細(xì)胞異種脫細(xì)胞真皮表面,術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)觀察術(shù)區(qū)愈合情況。結(jié)果發(fā)現(xiàn):與對(duì)照組相比,成纖維細(xì)胞—ADM提高了皮片成活率,術(shù)后第4周可見(jiàn)實(shí)驗(yàn)組異種脫細(xì)胞真皮結(jié)構(gòu)中毛細(xì)血管數(shù)量明顯多于對(duì)照組。類(lèi)似實(shí)驗(yàn),通過(guò)手術(shù),在豚鼠背部造成2 cm×2 cm的全層皮膚缺損區(qū)域,然后植入ADM,表面覆蓋自體斷層皮片并縫合,在ADM深面注射囊化VEGF165—NIH3T3細(xì)胞,術(shù)后兩周,通過(guò)免疫組化方法發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組微血管密度明顯高于對(duì)照組,實(shí)驗(yàn)組皮片成活率明顯提高[11]。這些結(jié)果都說(shuō)明了VEGF在促進(jìn)ADM血管化方面有顯著效果。
堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)屬于FGF家族(23個(gè)已知成員),是一種肝素結(jié)合生長(zhǎng)因子。能夠促進(jìn)包括間葉細(xì)胞和血管內(nèi)皮細(xì)胞在內(nèi)的一系列細(xì)胞的增殖,刺激成纖維細(xì)胞和毛細(xì)血管內(nèi)皮管腔的形成,在體內(nèi)具有潛在的促血管生成活性。Tepper等[12]在體內(nèi)和體外實(shí)驗(yàn)中利用電磁場(chǎng)的作用促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞分泌出bFGF,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示bFGF能促進(jìn)血管生長(zhǎng)和形成。此外,bFGF在傷口愈合和組織修復(fù)中發(fā)揮著重要。但是目前還未見(jiàn)bFGF運(yùn)用在ADM的相關(guān)研究。
2.3 血管化種子細(xì)胞對(duì)ADM血管化的影響
內(nèi)皮祖細(xì)胞(endothelial progenitor cell,EPC)和血管內(nèi)皮細(xì)胞是最終分化為血管的主要細(xì)胞[13,14]。研究認(rèn)為,能分化為血管的EPC表面標(biāo)記物主要有CD31,CD34,Tie-2。在正常情況下EPC保持低增殖活性,在組織損傷后,EPC能分化形成血管等新的組織結(jié)構(gòu)。進(jìn)入循環(huán)系統(tǒng)中的內(nèi)皮祖細(xì)胞(circulating endothelial progenitor,CEP)具有較高的增殖潛能,研究證實(shí),在四肢缺血、心肌缺血,視網(wǎng)膜缺血以及胰腺缺血后,體內(nèi)應(yīng)用CEP能有效促進(jìn)損傷區(qū)血管生長(zhǎng)[15-17]。因此,ECP和CEP在組織工程血管化方面的應(yīng)用具有潛在價(jià)值,但目前沒(méi)有將二者用于ADM的相關(guān)報(bào)道。
早在1998年,Black等[18]將人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞和真皮成纖維細(xì)胞培養(yǎng)在膠原粘多糖(collagen-glycosaminoglycan)高分子聚合物支架上,成功誘導(dǎo)支架內(nèi)皮化。隨后,Supp等[3]通過(guò)基因改造,讓角質(zhì)細(xì)胞高表達(dá)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)后,將其種植在皮膚替代物表面,然后將皮膚替代物移植在裸鼠皮下,結(jié)果顯示其促進(jìn)了皮膚替代物血管化。為了解決異體細(xì)胞引起的排斥反應(yīng),Sahota等[19]從需要皮膚修復(fù)手術(shù)的患者體表取下少量皮膚組織,運(yùn)用膠原酶消化法分離出微血管內(nèi)皮細(xì)胞(human dermal microvascular endothelial cells,HuDMECs)、角化細(xì)胞、成纖維細(xì)胞后,在體外環(huán)境中讓三者同時(shí)生長(zhǎng)黏附在人ADM材料上,形成ADM復(fù)合物,然后將ADM復(fù)合物進(jìn)行自體移植。通過(guò)觀察發(fā)現(xiàn):在體外培養(yǎng)2周左右,HuDMECs滲透入ADM的量最合適,即適合移植入活體,術(shù)后隨訪發(fā)現(xiàn)移植的ADM復(fù)合物生長(zhǎng)良好,修復(fù)效果滿意。將人內(nèi)皮細(xì)胞單獨(dú)培養(yǎng)在二維培養(yǎng)基中,容易喪失其分化潛能,為了觀察內(nèi)皮細(xì)胞早期管狀出芽情況,Wenger等[20]將人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞混合培養(yǎng)于膠原支架上,使其生長(zhǎng)形成類(lèi)球體,最終誘導(dǎo)出新生血管,使膠原支架血管化。2003年王軍琳等[21]通過(guò)在ADM材料上培養(yǎng)人血管內(nèi)皮細(xì)胞加速了ADM血管化。汪道新等[22]通過(guò)實(shí)驗(yàn),在豬的背側(cè)剃毛后,切除皮膚全層,手術(shù)造成大小為5 cm×5 cm的圓形皮膚缺損區(qū)域,然后植入ADM,在ADM下方注射人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞懸液1 mL,約含細(xì)胞2×106個(gè),其上覆蓋自體皮膚后封閉傷口,術(shù)后7 d發(fā)現(xiàn)術(shù)區(qū)血管化數(shù)目明顯多于對(duì)照組。楊家驥等[23]用人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞復(fù)合豬ADM構(gòu)建出富含血管化結(jié)構(gòu)的真皮替代物,然后移植在裸鼠皮下,移植后3周,HE結(jié)果顯示,對(duì)照組無(wú)血管形成,而實(shí)驗(yàn)組有大量血管樣結(jié)構(gòu)形成。臍靜脈血管內(nèi)皮細(xì)胞和成纖維細(xì)胞共培養(yǎng)在ADM材料上,制成ADM復(fù)合物,然后移植在裸鼠背部皮膚下,作者用自制的極低頻電磁刺激儀分別在體外、體內(nèi)實(shí)驗(yàn)兩個(gè)階段刺激ADM復(fù)合物上面的細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)極低頻電磁場(chǎng)不僅促進(jìn)成纖維細(xì)胞和血管內(nèi)皮細(xì)胞共培養(yǎng)體系形成血管結(jié)構(gòu),并且促進(jìn)與宿主血管相吻合。因此,在體外構(gòu)建出由ADM復(fù)合人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞含血管樣結(jié)構(gòu)的組織工程真皮,能在移植進(jìn)入動(dòng)物體內(nèi)后提高修復(fù)區(qū)組織的血管形成速度,進(jìn)而提高移植成功率,極低頻電磁場(chǎng)能有效促進(jìn)這一過(guò)程[24]。雖然這類(lèi)方法目前取得了一定進(jìn)展,但是血管內(nèi)皮細(xì)胞在支架材料上存活較低、易凋亡,因此,仍然需要進(jìn)一步探索更為有效的ADM血管化方法。
脫細(xì)胞真皮基質(zhì)在臨床應(yīng)用中,其內(nèi)部結(jié)構(gòu)血管化是ADM移植是否成活的關(guān)鍵。因此,充分理解ADM在體內(nèi)、體外血管化的具體機(jī)制,有利于進(jìn)一步探索新的促進(jìn)ADM血管化的策略,提高它在活體移植的成功率。雖然ADM已經(jīng)廣泛應(yīng)用于臨床,但它畢竟是一種缺乏活體細(xì)胞的真皮替代產(chǎn)品,要實(shí)現(xiàn)與活體組織的完美融合,甚至實(shí)現(xiàn)活體皮膚的功能,仍然有很多問(wèn)題需要解決。首先應(yīng)該進(jìn)一步探索材料的孔徑大小及孔徑密度,以使血管化達(dá)到最佳。同時(shí)優(yōu)化ADM的制作方法、開(kāi)發(fā)新的打孔技術(shù),使材料的物理特性和生物學(xué)特性更符合血管化要求。第二方面,進(jìn)一步探索ADM血管化的分子機(jī)制,尋找新的蛋白或基因調(diào)控靶點(diǎn),從而建立新的促血管化方法。除此之外,3D生物打印技術(shù)是目前新興的學(xué)科,根據(jù)已有報(bào)道,它已經(jīng)成功應(yīng)用于修復(fù)外科領(lǐng)域,特別是骨骼、皮膚修復(fù)方面[25-27]。應(yīng)用這個(gè)手段,結(jié)合細(xì)胞生物技術(shù)、高分子材料技術(shù),將來(lái)可能會(huì)在組織修復(fù),包括ADM血管化方面有所突破[28]。本文通過(guò)歸納目前實(shí)現(xiàn)ADM血管化的主要方法和相應(yīng)進(jìn)展,旨在為ADM血管化相關(guān)研究提供線索和思路。
1.陳暢行,宋曉陵,達(dá)靜姝,等.兩種脫細(xì)胞真皮基質(zhì)材料在兔顱骨缺損引導(dǎo)骨再生術(shù)中的成骨效果評(píng)估[J].牙體牙髓牙周病學(xué)雜志,2014,24(5):274-277.
2.Shridharani SM,Tufaro AP.A systematic review of acelluar dermal matrices in head and neck reconstruction[J]. Plastic and reconstructive surgery,2012,130(5S-2):35S-43S.
3.Supp DM,Supp AP,Bell SM,et al.Enhanced Vascularization of Cultured Skin Substitutes Genetically Modified to Overexpress Vascular Endothelial Growth Factor1[J]. Journal of investigative dermatology,2000,114(1):5-13.
4.Walter RJ,Matsuda T.Dispase/triton treated acellular dermal matrix as a dermal substitute in rats[J].Curent Surg, 1997,54(4):371-374.
5.Grinnell F,Toda KI,Lamke-Seymour C.Reconstitution of human epidermis in vitro is accompanied by transient activation of basal keratinocyte spreading[J].Experimental cell research,1987,172(2):439-449.
6.Campbell KT,Burns NK,Rios CN,et al.Human versus non-cross-linked porcine acellular dermal matrix used for ventral hernia repair:comparison of in vivo fibrovascular remodeling and mechanical repair strength[J].Plastic and reconstructive surgery,2011,127(6):2321-2332.
7.李文波,胡順鵬,趙洪石,等.脫細(xì)胞真皮基質(zhì)微結(jié)構(gòu)的堿法調(diào)控及其細(xì)胞相容性[J].化工學(xué)報(bào),2011,62(2):545-550.
8.Pruitt BA,Levine NS.Characteristics and uses of biologic dressings and skin substitutes[J].Archives of surgery,1984, 119(3):312-322.
9.李菲菲,米立國(guó).VEGF165對(duì)脫細(xì)胞真皮基質(zhì)血管化影響的研究[J].大連醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2009,31(1):18-22.
10.賀立新,馬彩虹,曹玉玨,等.經(jīng)VEGFl65轉(zhuǎn)染的成纖維細(xì)胞一脫細(xì)胞異種真皮替代物的構(gòu)建及其對(duì)創(chuàng)面愈合作用的實(shí)驗(yàn)研究[J].感染、炎癥、修復(fù),2011,12(3):162-164.
11.韓焱福,宋建星.微囊化VEGF基因修飾細(xì)胞移植促進(jìn)脫細(xì)胞真皮血管化的研究[D].第二軍醫(yī)大學(xué),2008,1-83.
12.Tepper OM,Callaghan MJ,Chang EI,et al.Electromagnetic fields increase in vitro and in vivo angiogenesis through endothelial release of FGF-2[J].The FASEB journal,2004,18(11):1231-1233.
13.Fadini GP,Losordo D,Dimmeler S.Critical reevaluation of endothelial progenitor cell phenotypes for therapeutic and diagnostic use[J].Circulation research,2012,110(4): 624-637.
14.Yoder MC.Human endothelial progenitor cells.Cold Spring Harbor perspectives in medicine[J].2012,2(7):1-14.
15.Sahota PS,Burn JL,Heaton M,et al.Differential effects of progenitor cell populations on left ventricular remodeling and myocardial neovascularization after myocardial infarction[J].Journal of the American College of Cardiology, 2010,55(20):2232-2243.
16.Wenger A,Stahl A,Weber H,et al.Molecular analysis of endothelial progenitor cell(EPC)subtypes reveals two dis tinct cell populations with different identities[J].BMC medical genomics,2010,3(1):18-22.
17.Jung HS1,Kim MJ,Hong SH,et al.The potential of endothelial colony-forming cells to improve early graft loss after intraportal islet transplantation[J].Cell transplantation, 2014,23(3):273-283.
18.Black AF,Berthod F,L'heureux N,et al.In vitro reconstruction of a human capillary-like network in a tissueengineered skin equivalent[J].The FASEB journal,1998, 12(13):1331-1340.
19.Sahota PS1,Burn JL,Heaton M,et al.Development of a reconstructed human skin model for angiogenesis[J]. Wound repair and regeneration,2003,11(4):275-284.
20.Wenger A,Stahl A,Weber H,et al.Modulation of in vitro angiogenesis in a three-dimensional spheroidal coculture model for bone tissue engineering[J].Tissue engineering,2004,10(9-10):1536-1547.
21.王軍琳,劉源,金巖,等.構(gòu)建組織工程皮膚種子細(xì)胞的人血管內(nèi)皮細(xì)胞的培養(yǎng)[J].中國(guó)臨床康復(fù),2003,17 (8):1243-1244.
22.汪道新,張靈,范錕锫,等.人臍靜脈血管內(nèi)皮細(xì)胞移植對(duì)脫細(xì)胞豬真皮早期血管化的影響[J].臨床和實(shí)驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志,2007,6(4):11-12.
23.楊家驥,金巖.人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞構(gòu)建血管化組織工程真皮的研究[D].第四軍醫(yī)大學(xué),2008,1-80.
24.張曉軍,金巖.微環(huán)境影響血管內(nèi)皮細(xì)胞形成新生血管的研究[D].第四軍醫(yī)大學(xué),2009,1-106.
25石靜,鐘玉敏.組織工程中3D生物打印技術(shù)的應(yīng)用[J].中國(guó)組織工程研究,2014,18(2):271-276.
26.曹振華,銀和平,李樹(shù)文,等.股骨頸骨折空心釘內(nèi)固定數(shù)字化模板的建立[J].中國(guó)組織工程研究,2014,18(31): 5017-5023.
27.杜娟,劉雪來(lái).3D生物打印技術(shù)在皮膚創(chuàng)面修復(fù)中的研究進(jìn)展[J].中華創(chuàng)傷雜志,2014,30(10):1063-1066.
28.范德增.全球3D生物打印技術(shù)概況[J].新材料產(chǎn)業(yè),2013, (8):21-24.
(2014-10-10收稿)
R783.9
A
10.3969/j.issn.1000-2669.2015.02.030
林夢(mèng)媛(1987-),女,住院醫(yī)師,碩士研究生,E-mail:497313477@qq.com