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蔗糖磷酸合成酶(SPS)基因克隆與表達(dá)研究進(jìn)展

2014-12-31 19:15路海博孫元元湯海港張?zhí)N薇
熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年11期
關(guān)鍵詞:表達(dá)蔗糖克隆

路海博 孫元元 湯海港 張?zhí)N薇

摘 要 蔗糖是植物中重要的代謝產(chǎn)物,它直接或間接參與多種生理生化反應(yīng),研究其含量的變化規(guī)律對提高植物生物學(xué)產(chǎn)量和增強(qiáng)植物抗逆性具有重要的指導(dǎo)意義。蔗糖磷酸合成酶(SPS)是蔗糖代謝的關(guān)鍵酶之一,它催化蔗糖代謝中的限速反應(yīng),SPS基因在分子水平編碼調(diào)控SPS。研究SPS基因克隆與表達(dá)規(guī)律是從分子水平揭示蔗糖代謝的基礎(chǔ)。本文綜述了近年來SPS基因克隆和表達(dá)研究進(jìn)展,并展望了SPS基因的研究前景和應(yīng)用前景。

關(guān)鍵詞 蔗糖 ;蔗糖磷酸合成酶基因 ;克隆 ;表達(dá)

分類號 Q943.2

蔗糖是高等植物光合作用的主要產(chǎn)物[1],是碳運(yùn)輸?shù)闹饕问?,也是“庫”代謝的主要基質(zhì),蔗糖轉(zhuǎn)移效率[2]直接決定植物生長快慢;蔗糖參與植物滲透調(diào)節(jié),環(huán)境脅迫下植物會(huì)大量合成蔗糖,提高細(xì)胞液濃度,阻止細(xì)胞質(zhì)過度失水;蔗糖通過反饋?zhàn)饔谜{(diào)節(jié)一些酶的活性,也可作為信號因子誘導(dǎo)或阻礙某些基因的表達(dá)。與蔗糖代謝相關(guān)的酶[3-4]有蔗糖磷酸合成酶(sucrose phosphate synthetase, SPS)、蔗糖合成酶(sucrose synthetase, SuSy)和轉(zhuǎn)化酶(invertase, INV)。在這3種蔗糖代謝酶中,SPS是最重要的限速酶,它直接調(diào)控植物中蔗糖和淀粉的合成與分配,是催化蔗糖合成的主要酶[5]。

植物體內(nèi)蔗糖的積累與SPS活性正相關(guān)。已有研究表明,蔗糖是甜高粱[6]莖稈中糖分積累的主要形式,約占總含糖量的85%。甜高粱莖稈蔗糖含量與葉SPS蛋白質(zhì)的表達(dá)相關(guān)系數(shù)為0.895,與莖稈SPS蛋白質(zhì)的表達(dá)相關(guān)系數(shù)為0.781。比較高梁和甜高粱,隨著高粱的生長發(fā)育,SPS-A在莖稈中的表達(dá)不斷增強(qiáng),與蔗糖積累增加趨勢一致。在生長后期,甜高粱莖稈中SPS-A表達(dá)量明顯高于普通高粱,這可能就是甜高粱蔗糖豐富積累的關(guān)鍵,表明高粱莖稈蔗糖積累[7]與SPS-A在莖稈中的表達(dá)相關(guān)。

SPS蛋白水平研究相對成熟,結(jié)構(gòu)、性質(zhì)、活性調(diào)控[8-9]都已有報(bào)道。SPS廣泛存在于植物光合組織和非光合組織中,是一種低豐度、可溶性、不穩(wěn)定蛋白,酶活最適pH值約為7.0,由分子量117~138 kD的亞基構(gòu)成為二聚體或四聚體。SPS在植物體內(nèi)催化UDPG和F-6-P(6-磷酸果糖)反應(yīng)生成G-6-P(6-磷酸葡萄糖)和UDP,G-6-P又在蔗糖-6-磷酸合成酶(SPP)作用下迅速降解為蔗糖和磷酸根離子,使得SPS催化的蔗糖合成反應(yīng)實(shí)際上是不可逆的[10]。6-磷酸葡糖共價(jià)調(diào)控SPS活性,無機(jī)磷抑制SPS活性。另外,光照和滲透壓變化因?yàn)楦淖冄趸姿峄稽c(diǎn)上的絲氨酸殘基也會(huì)影響SPS的活性[11]。

SPS基因在基因水平直接編碼調(diào)控SPS,SPS基因的分子生物學(xué)研究近年來取得了一系列進(jìn)展??寺∨c表達(dá)分析一直是分子生物學(xué)的重要組分,本文對SPS基因的克隆與表達(dá)分析展開綜述,為對該基因的進(jìn)一步研究提供參考。

1 SPS基因克隆研究進(jìn)展

1.1 SPS基因克隆方法

植物基因克隆方法相對成熟,主要有功能克隆,PCR擴(kuò)增,轉(zhuǎn)座子或T-DNA標(biāo)簽,定位克隆,差別雜交和減法雜交,mRNA差異顯示和人工合成克隆[12]等多種方法。目前,獲得SPS基因克隆最常用的、報(bào)道最多的方法是PCR擴(kuò)增克隆法[13]。通過參考已知基因序列,從GenBank中下載保守序列,設(shè)計(jì)特異引物或簡并引物,以RNA反轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板,在DNA聚合酶的作用下獲得特定DNA片段。這是一種快速簡便基因克隆方法。

Guangming Sun[14]等使用PCR擴(kuò)增法從菠蘿中克隆了一個(gè)1 132 bp的SPS基因片段AC-SPS1。AC-SPS1基因?qū)儆贏家族,編碼377個(gè)氨基酸殘基,含有兩個(gè)絲氨酸特征殘基。除了設(shè)計(jì)特異性引物,還可以利用保守氨基酸序列設(shè)計(jì)簡并引物。通過設(shè)計(jì)簡并引物,獲得了菠蘿[15]中1 131 bp的不同家族SPS基因片段,其編碼的氨基酸序列與水稻、翠竹、高粱、小麥的SPS氨基酸序列同源性分別達(dá)到了85%、84%、82%和81%。

1.2 SPS基因克隆進(jìn)展

SPS基因序列具有多樣性。Castleden[16]等人對已知的SPS基因序列進(jìn)行分析,界定了植物SPS基因的4個(gè)大家族(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ或者A、B、C、D)。依據(jù)這一標(biāo)準(zhǔn),單子葉和雙子葉植物中廣泛存在Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ 3個(gè)基因家族,而Ⅳ家族(包括Ⅳ1和Ⅳ2)基因家族到目前為止只在禾本科植物中發(fā)現(xiàn)。在模式植物擬南芥中有4個(gè)SPS基因。其中2個(gè)基因位于5號染色體上,屬于家族A。1個(gè)基因位于1號染色體上,屬于家族B。1個(gè)基因位于4號染色體上,屬于家族C。現(xiàn)在發(fā)現(xiàn)的D家族SPS基因比較特殊,它編碼的SPS蛋白N末端和C末端的氨基酸殘基數(shù)要比A、B、C家族少80~90個(gè)。

不同SPS基因家族在不同的器官組織中相對含量是不盡相同的,它們所發(fā)揮的功能也存在差異。通過RNA干擾抑制煙草葉片SPS-A基因和SPS-C基因的表達(dá),發(fā)現(xiàn)在缺乏SPS-C的情況下,淀粉不能被有效動(dòng)員降解而合成蔗糖,說明SPS-C與淀粉降解后蔗糖的合成密切相關(guān),SPS-A存在于所有組織,抑制SPS-A沒有觀察到明顯的表型變化[17]。所以克隆不同植物不同家族的SPS基因具有重要意義。

SPS基因首先在玉米中得以克隆[18],之后在菠菜、甜菜、柑桔、蠶豆、水稻、甘蔗等多種作物中相繼克隆出來[19-21]。截止目前,在NCBI中檢索SPS基因,可以獲得83條核酸序列。其中可可樹SPS核酸序列GenBank中收錄最多,有7條。GenBank收錄SPS基因序列物種分布情況如圖1所示。

基因克隆是分子生物學(xué)的重要組成,是物種中存在特定基因的重要證據(jù),是基因功能研究的基礎(chǔ)。不同植物中SPS基因數(shù)目不同。甘蔗屬于禾本科的單子葉植物,所以甘蔗基因組中至少有5個(gè)分別屬于5個(gè)不同家族的SPS基因。目前在甘蔗[22-23]中,已鑒定了3個(gè)SPS基因(GenBank登錄號分別為:AB001337、EU269038和AB001338),其中2個(gè)已獲得全長氨基酸序列(EU269038和AB001338),分別屬于A家族D家族。何文錦等2007年從甘蔗葉片中克隆了SOSPS2,cDNA長 3 013 bp,其中第59-2 953位是該基因的開放閱讀框,編碼964個(gè)氨基酸。葉冰瑩[24]等2011年通過反轉(zhuǎn)錄PCR技術(shù)分離克隆了SPS基因cDNA片段,序列分析表明,該cDNA片段包含1個(gè)3 183 bp的開放閱讀框,可編碼1 060個(gè)氨基酸。已克隆的甘蔗SPSⅢ基因有2個(gè)等位變異類型SPSⅢ-1和SPSⅢ-2,同源性達(dá)99%。親緣關(guān)系較近的,高粱屬的甜高粱——同為莖稈含糖量較高的物種,已克隆出全長DNA序列SPS3-1[25]。

在原核生物藍(lán)藻中存在光合作用,光合產(chǎn)物以蔗糖的形式轉(zhuǎn)運(yùn)。John E. Lunn[26]等在藍(lán)藻中克隆到一個(gè)SPS基因,包含2 163 bp的ORF序列,將該基因編碼的氨基酸序列和高等植物的SPS氨基酸序列進(jìn)行比對,表現(xiàn)出了35%~39%的同源性。表1列出了幾種重要植物中獲得的SPS基因序列信息以及它們和不同物種同源性比對結(jié)果。

2 SPS基因表達(dá)研究進(jìn)展

2.1 SPS基因表達(dá)研究方法

植物的生長、發(fā)育是基因差異表達(dá)的結(jié)果,研究基因表達(dá)有實(shí)時(shí)熒光定量PCR、半熒光定量PCR、印記雜交、原位雜交等方法。關(guān)于SPS基因表達(dá)研究的文獻(xiàn)報(bào)道中,使用最多的是實(shí)時(shí)熒光定量PCR和印記雜交技術(shù)。

2.1.1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR

在PCR 反應(yīng)體系中加入熒光染料或熒光探針,利用熒光信號積累實(shí)時(shí)監(jiān)測整個(gè)PCR 反應(yīng)進(jìn)程,最后通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對未知模板進(jìn)行定量分析的方法為實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)[33]。該方法具有簡便、快速、高效等特點(diǎn),在基因表達(dá)研究中廣泛應(yīng)用。

在水稻[34]中,Naohiro Aokia等實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究了5個(gè)SPS同源基因的表達(dá)特性。SPS1基因在源組織中大量表達(dá),而SPS2、SPS6和SPS8基因在源、庫組織中等量表達(dá)。5個(gè)同源基因SPS1、SPS2、SPS6、SPS8和SPS11的差異表達(dá)決定了水稻在萌發(fā)期、苗期、抽穗期的發(fā)育特征。C P L Grof使用相同方法測定了5種SPS基因家族在甘蔗[35]中的表達(dá)規(guī)律,SPS基因B、C家族在未成熟葉和成熟葉中均大量表達(dá),D1、D2家族在莖、葉等量表達(dá),A家族在葉中表達(dá)水平較低。陳由強(qiáng)等研究了甘蔗中SPSⅡ基因在糖分積累不同時(shí)期表達(dá)量的變化規(guī)律。在糖分積累初期,SPSⅡ基因在莖中大量表達(dá);在糖分積累中期,SPSⅡ基因在葉中大量表達(dá)。枸杞是茄科多年生灌木,蔗糖含量對其品質(zhì)起重要作用。王麗娟等[36]用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究了枸杞中SPS基因的表達(dá)規(guī)律,在枸杞花和果實(shí)中SPS基因表達(dá)量高,而在根和葉中表達(dá)量低。文心蘭在開花過程中SPS基因會(huì)大量表達(dá),甜瓜根中SPS基因表達(dá)量低,枸杞花、根中SPS基因表達(dá)研究結(jié)果和文心蘭、甜瓜相關(guān)研究結(jié)果一致。采用熒光定量PCR技術(shù)分析巴西橡膠樹[37]中SPS基因的表達(dá)模式,膠乳中表達(dá)量最高,樹皮、葉、花、種子、根中表達(dá)均較低。

2.1.2 印記雜交技術(shù)

在基因操作中,把DNA或RNA、蛋白質(zhì)等在薄膜濾器上經(jīng)浸潤、固定后,于薄膜濾器上進(jìn)行雜交,生成雜種分子的過程稱為印記雜交[38]。分析RNA的Northern blot、分析DNA的Southern blot、分析蛋白的Western blot技術(shù)在實(shí)時(shí)熒光定量PCR普及之前都廣泛用于基因表達(dá)分析。

Chengchao Zheng 利用Northern blot技術(shù)分析了CmSPS1基因在甜瓜中的表達(dá)情況:在葉、莖、成熟果實(shí)中都有CmSPS1基因表達(dá),但是在根和花中沒有檢測到mRNA。對菠菜[39]根、葉柄葉片進(jìn)行Western blot和 Northern blot 分析,發(fā)現(xiàn)SPS基因主要在葉中表達(dá),在葉片快速生長的初期大量積累。Southern blot分析柑橘[40]CitSPS1基因,發(fā)現(xiàn)它一個(gè)低拷貝基因。暗處理玉米[41]12 h后,Northern blot 分析表明SPS基因的轉(zhuǎn)錄水平顯著下降。

2.2 SPS基因表達(dá)的空間特異性和時(shí)間特異性

空間特異性也稱組織特異性或細(xì)胞特異性,在植物生長發(fā)育過程中,SPS基因表達(dá)按照不同組織空間順序出現(xiàn),并且在不同組織中呈現(xiàn)不同的規(guī)律。時(shí)間特異性是指在植物不同功能需求的生長發(fā)育各個(gè)階段,SPS基因表達(dá)按特定的時(shí)間順序發(fā)生,基因表達(dá)量也隨時(shí)間順序發(fā)生變化?;虮磉_(dá)空間特異性和時(shí)間特異性均是不可逆的。

2.2.1 SPS基因表達(dá)的空間特異性

提取復(fù)活草根、葉組織的RNA,和特異性基因探針雜交,發(fā)現(xiàn)CpSPS2只在葉中表達(dá),而CpSPS1在根、葉中都有表達(dá),且CpSPS1轉(zhuǎn)錄豐度明顯高于CpSPS2。在溫州蜜桔所有器官中都有CitSPS1基因的轉(zhuǎn)錄,但是在幼葉、花和未成熟的果實(shí)中轉(zhuǎn)錄水平很低,在老葉和成熟果實(shí)中轉(zhuǎn)錄水平很高。甘蔗中基因表達(dá)分析表明,不同部位SPS基因表達(dá)量有差異,莖組織中SPSⅡ表達(dá)量占SPS基因轉(zhuǎn)錄總量的40%。甜菜[42]中,BvSPS1基因是一個(gè)低拷貝基因,主根中BvSPS1基因的轉(zhuǎn)錄水平高于葉中。SoSPS1基因在甘蔗[43]葉中大量表達(dá),SoSPS2基因不僅在葉中還在根中表達(dá),且轉(zhuǎn)錄水平相近。水稻[44]SPS1基因只在葉中表達(dá),而不在根中表達(dá)。Champa Sengupta-Gopalan等研究了苜蓿[45]葉片和根中3個(gè)SPS基因的表達(dá)規(guī)律,一個(gè)屬于A家族(MsSPSA),2個(gè)屬于B家族(MsSPSB和MsSPSB3),MsSPSA基因在節(jié)間表達(dá)增強(qiáng),MsSPSB基因和MsSPSB3基因在葉中表達(dá)增強(qiáng)。

從以上報(bào)道中可以發(fā)現(xiàn),大部分植物根中SPS基因表達(dá)水平較低,這可能是因?yàn)楦胁话l(fā)生光合反應(yīng),沒有光合產(chǎn)物在根中合成蔗糖造成的;而在含糖量高的植物器官中,SPS基因表達(dá)水平較高,如巴西橡膠樹膠乳、溫州蜜橘果實(shí)、甘蔗莖桿中等等。

2.2.2 SPS基因表達(dá)的時(shí)間特異性

菠蘿成熟過程中SPS酶活不斷增強(qiáng),在SPS催化下,蔗糖含量不斷增加,單糖含量不斷下降。在果實(shí)發(fā)育早期,SPS基因的表達(dá)量很低,授粉后20 d表達(dá)量開始增加,并在授粉后70 d達(dá)到頂峰,轉(zhuǎn)錄水平變化趨勢和酶活力變化趨勢相同。SPS酶活和蔗糖含量在授粉后80 d達(dá)到最大,比SPS基因轉(zhuǎn)錄峰值晚10 d左右。這些實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,SPS基因的轉(zhuǎn)錄水平和SPS酶活確實(shí)存在一定相關(guān)性。甜瓜授粉25 d后檢測到CmSPS1基因表達(dá),果實(shí)成熟時(shí)基因表達(dá)量達(dá)到峰值。甜瓜授粉30 d后SPS酶活開始增加,蔗糖積累開始增加。SPS基因表達(dá)和甜瓜SPS酶活力變化也存在一定相關(guān)性。在溫州蜜桔果實(shí)中3個(gè)SPS基因CitSPS1,CitSPS2和CitSPS3獨(dú)立表達(dá)調(diào)控。CitSPS1基因在果實(shí)發(fā)育全程都會(huì)表達(dá),果實(shí)成熟階段(開花后223 d)表達(dá)量達(dá)到峰值,開花后178 d CitSPS2基因開始表達(dá),CitSPS3基因在果實(shí)發(fā)育過程中都不表達(dá)。這些報(bào)道表明,在植物蔗糖含量大量增加的生長發(fā)育階段,SPS基因大量表達(dá),且基因表達(dá)量峰值出現(xiàn)的時(shí)間早于蔗糖含量峰值出現(xiàn)的時(shí)間。這可能是因?yàn)镾PS基因需要一定時(shí)間轉(zhuǎn)錄mRNA并翻譯成SPS才能發(fā)揮作用并影響植物的生理、生化過程。

2.3 非生物因素對SPS基因表達(dá)的影響

在特定環(huán)境下,非生物因素會(huì)對植物生長造成影響。SPS不僅是植物蔗糖代謝中的關(guān)鍵酶,還在植物生長發(fā)育過程中發(fā)揮著多方面生物學(xué)功能,如參與植物的抗逆生理。已有研究發(fā)現(xiàn)SPS在抗寒、抗旱等生理過程中起重要作用[46]。在非生物因素處理下SPS基因的表達(dá)也會(huì)發(fā)生變化,且這種變化是可逆的(表2)。

Dorothea Bartels干旱處理復(fù)活草葉片,發(fā)現(xiàn)新鮮葉片脫水初期SPS基因的轉(zhuǎn)錄水平會(huì)增加,隨著干燥程度增加,SPS基因會(huì)降低到一個(gè)極低的轉(zhuǎn)錄水平,SPS基因轉(zhuǎn)錄水平會(huì)在葉片復(fù)水后24 h內(nèi)逐漸恢復(fù)。Dibyendu N. Sengupta研究了3個(gè)香蕉[47]品種Cavendish,Kanthali和 Monthan成熟過程中乙烯處理對SPS基因表達(dá)的影響。不同品種對乙烯的敏感程度不同。乙烯處理Cavendish后,SPS基因的轉(zhuǎn)錄水平大量上調(diào),Kanthali乙烯處理后,SPS基因轉(zhuǎn)錄水平溫和上調(diào),而Monthan品種整個(gè)成熟過程中SPS基因轉(zhuǎn)錄都維持在一個(gè)較低的水平,且乙烯處理也沒有刺激SPS基因轉(zhuǎn)錄水平的上調(diào)。2008年Dibyendu N. Sengupta又報(bào)道了香蕉[48]在生長素、傷害、低溫處理下SPS基因轉(zhuǎn)錄水平的變化。生長素和低溫處理輕微增加了SPS基因的轉(zhuǎn)錄水平,而傷害處理降低了其轉(zhuǎn)錄水平。

非生物因素對SPS基因表達(dá)的影響主要表現(xiàn)在2個(gè)方面:當(dāng)非生物因素變化使植物蔗糖合成增加時(shí),SPS基因表達(dá)會(huì)上調(diào)。如增強(qiáng)植物光合作用或者提高培養(yǎng)基葡萄糖含量,在干旱、低溫等脅迫處理下蔗糖合成也會(huì)增加,蔗糖會(huì)作為信號轉(zhuǎn)導(dǎo)因子傳遞脅迫信號并誘導(dǎo)植物發(fā)生特定生理生化過程來適應(yīng)環(huán)境變化;另一方面,當(dāng)脅迫壓力持續(xù)過大影響到植物正常代謝活動(dòng)時(shí),SPS基因表達(dá)就會(huì)迅速降低。

3 展望

3.1 SPS基因在蔗糖代謝中的研究前景

盡管許多研究都表明SPS基因確實(shí)參與了植物蔗糖代謝,但是蔗糖代謝過程極其復(fù)雜,中間涉及多種基因的相互作用。在桃中,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)6種非同源基因[49]參與了蔗糖代謝,在這些基因中,SPS基因研究最深入,未來將會(huì)更精確的定位其在植物蔗糖代謝通路中發(fā)揮的作用。SPS基因被認(rèn)為是最有發(fā)展前景的蔗糖代謝相關(guān)基因之一。

蔗糖含量、蔗糖代謝酶活性、蔗糖代謝基因轉(zhuǎn)錄水平三者之間的動(dòng)態(tài)變化規(guī)律一直是研究熱點(diǎn)?,F(xiàn)在很多植物中都有了報(bào)道,但還缺乏系統(tǒng)認(rèn)識,仍然需要在更多的植物中開展相關(guān)研究。SPS是重要的蔗糖代謝酶,過去SPS研究多集中在蛋白水平,未來將會(huì)更深入研究SPS基因,探索SPS基因的表達(dá)規(guī)律并通過轉(zhuǎn)基因技術(shù)對其進(jìn)行功能驗(yàn)證。

3.2 SPS基因的應(yīng)用前景

全球能源危機(jī)也日趨嚴(yán)重,清潔可再生的生物質(zhì)能源應(yīng)用前景廣闊,但是一直受到原料轉(zhuǎn)化率低的限制。提高生物質(zhì)能源原料中蔗糖含量無疑是提高原料轉(zhuǎn)化率有效且可行的辦法之一。SPS基因是植物蔗糖代謝中的一個(gè)重要基因[50],可能是提高植物中蔗糖含量的關(guān)鍵基因。對SPS基因進(jìn)行更深入研究并通過轉(zhuǎn)基因技術(shù)提高生物質(zhì)能源原料中蔗糖含量可以突破原料轉(zhuǎn)化率低這一限制生物質(zhì)能源利用的瓶頸,SPS基因應(yīng)用前景非常廣闊。

參考文獻(xiàn)

[1] 劉 洋,林希昊,姚艷麗,等. 高等植物蔗糖代謝研究進(jìn)展[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào),2012,28(6):145-152.

[2] 戚繼艷,陽江華,唐朝榮. 植物蔗糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的基因與功能[J]. 植物學(xué)通報(bào),2007,24(4):532-543.

[3] 楊景華,張明方. 植物蔗糖代謝關(guān)鍵酶的研究進(jìn)展[J]. 細(xì)胞生物學(xué)雜志,2002(06):359-364.

[4] 胡瑞芳,姜 慧,李玥瑩. 蔗糖代謝相關(guān)酶的研究進(jìn)展[J]. 北方園藝,2012(01):167-170.

[5] 黃東亮,李雙喜,廖 青,等. 植物蔗糖磷酸合成酶研究進(jìn)展[J]. 中國生物工程雜志,2012(06):109-119.

[6] Gnansounou E, Dauriat A, Wyman C E. Refining sweet sorghum to ethanol and sugar:economic trade-offs in the context of North China[J]. Bioresource Technology, 2005, 96(9): 985-1 002.

[7] 楊 明,劉麗娟,李莉云,等. 甜高粱蔗糖積累與莖稈中SPS表達(dá)的相關(guān)性研究[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,42(1):85-92.

[8] 劉彩霞,蔣學(xué)皎,陳進(jìn)紅. 作物蔗糖磷酸合成酶(SPS)活性調(diào)控的研究進(jìn)展[J]. 科技通報(bào),2008(03):355-360.

[9] 鄧英毅,鄭 虛. 作物葉中蔗糖磷酸合成酶的生物學(xué)功能與調(diào)控的研究進(jìn)展[J]. 廣西科學(xué)院學(xué)報(bào),2009(01):65-71.

[10] Huber S C,Huber J L. Role and regulation of sucrose-phosphate synthase in higher plants[J]. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology,1996,47:431-444.

[11] 周 平,葉冰瑩,陳由強(qiáng),等. 蔗糖磷酸合成酶研究的新進(jìn)展[J]. 生物技術(shù)通訊,2006(06):1 001-1 003.

[12] 鄧洪新,余懋群. 植物基因克隆的策略和方法[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2001(03):78-82.

[13] 任徑幽. 植物基因克隆技術(shù)的研究進(jìn)展[J]. 科技創(chuàng)新與應(yīng)用,2013(27):20.

[14] Zhang X M, Du L Q, Xie J H, et al. Cloning and expression of pineapple sucrose-phosphate synthase gene during fruit development[J]. African Journal of Biotechnology, 2010, 9(49): 8 296-8 303.

[15] Zhang X M, Wang W, Du L Q, et al. Expression Patterns,Activities and Carbohydrate-Metabolizing Regulation of Sucrose Phosphate Synthase, Sucrose Synthase and Neutral Invertase in Pineapple Fruit during Development and Ripening[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2012, 13(8): 9 460-9 477.

[16] Castleden C K, Aoki N, Gillespie V J, et al. Evolution and function of the sucrose-phosphate synthase gene families in wheat and other grasses[J]. Plant Physiology, 2004, 135(3): 1 753-1 764.

[17] Chen S, Hajirezaei M, Bornke F. Differential expression of sucrose-phosphate synthase isoenzymes in tobacco reflects their functional specialization during dark-governed starch mobilization in source leaves[J]. Plant Physiology, 2005, 139(3): 1 163-1 174.

[18] Worrell A C, Bruneau J M, Summerfelt K, et al. Expression of a maize sucrose phosphate synthase in tomato alters leaf carbohydrate partitioning[J]. Plant Cell,1991,3(10):1 121-1 130.

[19] 黃東亮,方鋒學(xué),黎 濤,等. 甘蔗蔗糖磷酸合成酶基因(SofSPSA)的克隆及正反義植物表達(dá)載體的構(gòu)建[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2011(04):624-633.

[20] 周 平. 甘蔗蔗糖磷酸合成酶基因及其5'側(cè)翼序列的克隆與鑒定[D]. 福建師范大學(xué),2008.

[21] 何文錦,黃金存,周 平,等. 甘蔗葉片蔗糖磷酸合成酶基因cDNA克隆及序列分析[J]. 亞熱帶農(nóng)業(yè)研究,2007(04):294-296.

[22] 黃東亮,秦翠鮮,陳忠良,等. 甘蔗B家族蔗糖磷酸合成酶基因SofSPSB的克隆及原核表達(dá)[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013(04):545-551.

[23] 楊翠芳,黃誠梅,潘有強(qiáng),等. 甘蔗蔗糖磷酸合成酶SPSⅢ基因表達(dá)的初步研究[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2012(06):723-726.

[24] 葉冰瑩,邱 思,周 平,等. 甘蔗蔗糖磷酸合成酶SPSⅡ cDNA片段克隆與表達(dá)分析[J]. 應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2011(05):673-677.

[25] 劉 洋,頓寶慶,張保明,等. 甜高粱蔗糖磷酸合成酶基因(SPS3-1)的克隆與序列分析[J]. 分子植物育種,2011(03):357-363.

[26] Lunn J E, Price G D, Furbank R T. Cloning and expression of a prokaryotic sucrose-phosphate synthase gene from the cyanobacterium Synechocystis sp PCC 6803[J]. Plant Molecular Biology, 1999, 40(2): 297-305.

[27] Yu X Y, Wang X F, Fan J D, et al. Cloning and characterization of a sucrose phosphate synthase-encoding gene from Muskmelon[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science,2007, 132(4): 557-562.

[28] Li C R, Zhang X B, Hew C S. Cloning of a sucrose-phosphate synthase gene highly expressed in flowers from the tropical epiphytic orchid Oncidium Goldiana[J]. Jouranal of Experimental Botany, 2003, 54(390): 2 189-2 191.

[29] Langenkamper G, Mchale R, Gardner R C, et al. Sucrose-phosphate synthase steady-state mRNA increases in ripening kiwifruit[J]. Plant Molecular Biology, 1998, 36(6):857-869.

[30] Ingram J, Chandler J W, Gallagher L, et al. Analysis of cDNA clones encoding sucrose-phosphate synthase in relation to sugar interconversions associated with dehydration in the resurrection plant Craterostigma plantagineum Hochst[J]. Plant Physiology, 1997, 115(1):113-121.

[31] Heim U, Weber H, Wobus U. Cloning and characterization of full-length cDNA encoding sucrose phosphate synthase from faba bean[J]. Gene, 1996, 178(1-2): 201-203.

[32] Komatsu A, Takanokura Y, Omura M, et al. Cloning and molecular analysis of cDNAs encoding three sucrose phosphate synthase isoforms from a citrus fruit (Citrus unshiu Marc)[J]. Molecular & General Genetics, 1996, 252(3): 346-351.

[33] 陳 旭,齊鳳坤,康立功,等. 實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究進(jìn)展及其應(yīng)用[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010(08):148-155.

[34] Okamura M, Aoki N, Hirose T, et al. Tissue specificity and diurnal change in gene expression of the sucrose phosphate synthase gene family in rice[J]. Plant Science, 2011, 181(2): 159-166.

[35] Grof C, So C, Perroux J M, et al. The five families of sucrose-phosphate synthase genes in Saccharum spp. are differentially expressed in leaves and stem[J]. Functional Plant Biology, 2006, 33(6): 605-610.

[36] 王麗娟,丁向真,王彥才,等. 枸杞蔗糖磷酸合成酶基因的克隆及組織表達(dá)分析[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2013,33(8):1 516-1 520.

[37] 肖小虎,方永軍,曹 冰,等. 巴西橡膠樹蔗糖磷酸合成酶基因的克隆和表達(dá)分析[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),2013(06):1 065-1 070.

[38] 黃鳳珍. 分子雜交技術(shù)的應(yīng)用簡述[J]. 中學(xué)生物學(xué),2009(09):11-12.

[39] Klein R R,Craftsbrandner S J, Salvucci M E. Cloning and developmental expression of the sucrose-phosphate-synthase gene from spinach[J]. Planta, 1993, 190(4): 498-510.

[40] Komatsu A, Takanokura Y, Moriguchi T, et al. Differential expression of three sucrose-phosphate synthase isoforms during sucrose accumulation in citrus fruits (Citrus unshiu Marc.)[J]. Plant Science, 1999, 140(2): 169-178.

[41] Cheng W H, Im K H, Chourey P S. Sucrose phosphate synthase expression at the cell and tissue level is coordinated with sucrose sink-to-source transitions in maize leaf[J]. Plant Physiology, 1996, 111(4):1 021-1 029.

[42] Hesse H, Sonnewald U, Willmitzer L. Cloning and expression analysis of sucrose-phosphate synthase from sugar-beet(Beta-vulgaris L)[J]. Molecular & General Genetics, 1995, 247(4):515-520.

[43] Sugiharto B, Sakakibara H, Sumadi, et al. Differential expression of two genes for sucrose-phosphate synthase in sugarcane:Molecular cloning of the cDNAs and comparative analysis of gene expression[J]. Plant and Cell Physiology, 1997, 38(8):961-965.

[44] Valdezalarcon J J, Ferrando M, Salerno G, et al. Characterization of a rice sucrose-phosphate synthase-encoding gene[J]. Gene, 1996, 170(2):217-222.

[45] Aleman L, Ortega J L, Martinez-Grimes M, et al. Nodule-enhanced expression of a sucrose phosphate synthase gene member (MsSPSA) has a role in carbon and nitrogen metabolism in the nodules of alfalfa (Medicago sativa L.)[J]. Planta, 2010, 231(2):233-244.

[46] 劉凌霄,沈法富,盧合全,等. 蔗糖代謝中蔗糖磷酸合成酶(SPS)的研究進(jìn)展[J]. 分子植物育種,2005(02):275-281.

[47] Donascimento J,Cordenunsi B R, Lajolo F M, et al. Banana sucrose-phosphate synthase gene expression during fruit ripening[J]. Planta, 1997, 203(3): 283-288.

[48] Choudhury S R, Roy S, Das R, et al. Differential transcriptional regulation of banana sucrose phosphate synthase gene in response to ethylene, auxin, wounding, low temperature and different photoperiods during fruit ripening and functional analysis of banana SPS gene promoter[J]. Planta, 2008, 229(1): 207-223.

[49] Zhang C, Shen Z, Zhang Y, et al. Cloning and expression of genes related to the sucrose-metabolizing enzymes and carbohydrate changes in peach[J]. Acta Physiologlae Plantarum, 2013, 35(2):589-602.

[50] 劉洪博,陸 鑫,毛 鈞,等. 甘蔗蔗糖磷酸合成酶研究進(jìn)展[J]. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2013(S1):31-36.

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