黃東鳳,黃介飛,黃曉平,魏 群,李 峰,張 弘
南通大學(xué)附屬醫(yī)院消化內(nèi)科,江蘇 南通 226001
肝細(xì)胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是常見(jiàn)的惡性程度較高的腫瘤之一,位居全球惡性腫瘤發(fā)病率的第5位,死因居第3位[1]。肝癌是由病毒、化學(xué)致癌物等多病因作用,其發(fā)生、發(fā)展與多種生長(zhǎng)因子等密切相關(guān)。肝硬化(liver cirrhosis,LC),尤其是乙型肝炎后肝硬化是肝癌發(fā)生的一個(gè)重要危險(xiǎn)因素[2]。肝硬化和肝癌的發(fā)生、發(fā)展涉及眾多基因改變和分子事件。我們?cè)没蛐酒Y選出肝硬化和肝癌相關(guān)基因[3-5],其中TRA1在基因水平呈上調(diào)表達(dá),為了進(jìn)一步了解和驗(yàn)證TRA1基因在肝硬化和肝癌的發(fā)生、發(fā)展的作用,我們采用RT-PCR法對(duì)其在肝癌組織、癌旁肝硬化組織和正常對(duì)照組織的表達(dá)進(jìn)行了檢測(cè)。
1.1 一般資料 收集2006年3月-2006年11月在南通大學(xué)附屬醫(yī)院經(jīng)手術(shù)切除組織或活檢組織標(biāo)本共34例。取得肝癌的肝組織20例(其中高分化肝癌6例、中分化肝癌11例、低分化肝癌3例),遠(yuǎn)癌的肝硬化組織11例(定義:距腫瘤邊緣≥4 cm的肝組織),非肝癌的肝硬化患者活檢組織8例,肝血管瘤4例,肝內(nèi)膽管結(jié)石2例,男21例,女13例。切下的組織立即置液氮速凍后,于-80℃保存?zhèn)溆?。所有病例均根?jù)病理學(xué)進(jìn)行分類。
1.2 RT-PCR檢測(cè)方法
1.2.1 引物設(shè)計(jì)與合成:我們根據(jù)基因芯片技術(shù)篩選肝硬化及肝癌相關(guān)基因差異性表達(dá)的芯片結(jié)果,在肝硬化和肝細(xì)胞癌共同表達(dá)差異基因中,挑選上調(diào)基因中TRA1作為驗(yàn)證基因。從GenBank查取基因序列,TRA1及 β-actin基因編號(hào)分別為 NM_003299、5016088,以Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)TRA1及β-actin的引物各一對(duì),再經(jīng)GenBank BLAST進(jìn)行同源性檢測(cè),其序列如下:
TRA15'-TGACCCAAGAGGAAACACTA-3',5'-CTGCTCCATACATAAATAGG-3';β-actin 5'-AAGTACTCCGTGTGGATCGG-3',5'-ATGCTATCACCTCCCCTGTG-3'。擴(kuò)增片段大小分別為149 bp、485 bp。
1.3 肝組織中總RNA樣品的提取及分析(TRIZOL法) 從-80℃冰箱中取出肝細(xì)胞癌組織和正常肝組織,解凍后每例組織稱取50~100 mg置入勻漿器,加入1 ml TRIZOL,充分勻漿后倒入1.5 ml離心管,以下步驟按操作說(shuō)明書操作。提取后加入適量DEPC水溶解,-20℃冰箱保存?zhèn)溆谩NA樣本經(jīng)這樣定量及電泳分析后,得到合格的可用于檢測(cè)的RNA。
1.4 cDNA的合成 (1)在冰浴中按順序加入以下試劑后,輕輕混勻 3 ~5 s,再短暫離心:總 RNA 1 μl,Oligo(DT)18 primer 1 μl,0.1%DEPC 水加至 12 μl。(2)置于擴(kuò)增儀上70℃加熱5 min,立即將離心管插入冰浴中3 min。(3)在冰浴中,按順序加入以下試劑后再輕輕混勻,短暫離心:
5 × RT Buffer 4 μl
Ribolock Ribonudease inhibitor 1 μl
10 mM dNTPmix 2 μl
Revert Aid M-Mulu Reversre Transcriptase 1 μl
總體積 20 μl
42℃水浴60 min;置于擴(kuò)增儀上70℃加熱10 min,終止反應(yīng)。所得產(chǎn)物可用于PCR擴(kuò)增。(4)RTPCR擴(kuò)增:在0.5 ml離心管中按順序加入10×PCR Buffer、MgCl2各 5 μl,dNTP(10 μ/μl)、cDNA、Taq 酶(1 μ/μl)、上游引物、下游引物各1 μl,0.1%DEPC 水35 μl,置于PCR擴(kuò)增儀上擴(kuò)增。反應(yīng)條件為預(yù)變性92℃ 2 min,變性92℃ 30 s,退火55℃ 30 s,延伸72℃ 30 s,循環(huán)30次,最后72℃延伸5 min,得到最終產(chǎn)物。取10 μl PCR產(chǎn)物及上樣緩沖液(0.25 g溴酚藍(lán)、30%甘油水溶液100 ml)1 μl,混勻后短暫離心,小心加入1 μl。5%瓊脂糖凝膠中,以120 V電壓電泳約30 min后,于320 nm紫外透射儀下觀察電泳結(jié)果。用捷達(dá)801分析軟件對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析,以各樣本目的基因平均A值/β-actin平均A值表示目的基因的相對(duì)表達(dá)強(qiáng)度。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用Stata 7.0統(tǒng)計(jì)軟件包進(jìn)行處理分析,率的比較采用 Fisher’s確切概率法,TRA1 mRNA表達(dá)的相對(duì)定量采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
我們利用RT-PCR檢測(cè)芯片結(jié)果中部分基因mRNA的表達(dá)情況,將TRA1及內(nèi)參β-actin的RT-PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳后,其條帶與100 bp DNA Ladder相比較,引物有較好的特異性,其分子量大小與預(yù)先設(shè)計(jì)相一致(見(jiàn)圖1)。TRA1基因在肝癌與對(duì)照組間表達(dá)陽(yáng)性率分別為95.00%、50.00%,經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);肝硬化與對(duì)照組間表達(dá)陽(yáng)性率分別為84.21%、50.00%,經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均>0.05,見(jiàn)表1)。但經(jīng)半定量分析,在肝癌及肝硬化與對(duì)照組間,擴(kuò)增產(chǎn)物表現(xiàn)出表達(dá)量的不同,分別為 1.67 ±0.96、1.49 ±0.53、0.57±0.27,肝癌及肝硬化與對(duì)照組間表達(dá)有一定的漸變趨勢(shì),TRA1基因的mRNA表達(dá)光密度水平在肝癌及肝硬化與對(duì)照組間的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05),肝癌與肝硬化間的差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見(jiàn)表2、圖2)。
表1 TRA1 mRNA在相應(yīng)組織中表達(dá)陽(yáng)性率Tab1 Positive rate of TRA1 mRNA in the corresponding tissues
表2 TRA1 mRNA在相應(yīng)組織表達(dá)的光密度值半定量分析Tab2 Semi-quantitative analysis of TRA1 mRNA optical density value in the corresponding expression
圖1 基因表達(dá)mRNA產(chǎn)物電泳圖Fig1 Electrophoresis of mRNA gene expression product
圖2 TRA1 mRNA在各組中表達(dá)Fig2 Expression of TRA1 mRNA in each group
熱休克蛋白(HSPs)又稱應(yīng)激蛋白(SP),是一類在生物進(jìn)化過(guò)程中極為保守的蛋白質(zhì),在應(yīng)激狀態(tài)下可被誘導(dǎo)表達(dá),因此具有提高細(xì)胞應(yīng)激的耐受性及維護(hù)細(xì)胞自穩(wěn)等重要生物功能[6]。HSPs家族是一類極為保守的蛋白質(zhì),當(dāng)機(jī)體受到有害因素(如炎癥、紫外線、應(yīng)急、腫瘤發(fā)生等)刺激時(shí),細(xì)胞內(nèi) HSPs合成增加,它能保護(hù)機(jī)體(或細(xì)胞)不受或少受傷害[7]。TRA1(gp96)是HSP90家族的成員,它通過(guò)轉(zhuǎn)錄、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、細(xì)胞周期調(diào)控等多種途徑參與細(xì)胞生長(zhǎng)繁殖[8-9]。腫瘤的發(fā)生發(fā)展是一個(gè)多種因素的多種步驟發(fā)展而來(lái),涉及到多種基因突變的積累,也是一個(gè)量變到質(zhì)變的過(guò)程。腫瘤細(xì)胞自身與機(jī)體不相協(xié)調(diào)的增生和惡性特征在一定程度上與gp96的表達(dá)密切相關(guān),gp96在腫瘤免疫中充當(dāng)了多重角色[10],一方面作為“分子伴侶”參與腫瘤細(xì)胞的功能代謝,保護(hù)腫瘤細(xì)胞免受損害[11];另一方面由于腫瘤細(xì)胞與機(jī)體正常細(xì)胞生長(zhǎng)、代謝、分化的異質(zhì)性,使gp96成為與其相結(jié)合的腫瘤抗原多肽的靶載體,在參與腫瘤抗原的免疫反應(yīng)中充當(dāng)了舉足輕重的角色[12]。它的高表達(dá)有助于某些腫瘤的形成[13]。gp96在生殖及胚胎細(xì)胞中表達(dá)較強(qiáng),而在衰老細(xì)胞中表達(dá)較弱,提示增殖活躍的細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)合成增強(qiáng),需要較多gp96參與蛋白質(zhì)活性功能的形成。而腫瘤是增殖旺盛的異型細(xì)胞,可能需要較多gp96來(lái)維持其不斷增殖[14]。隨著腫瘤病變的演進(jìn)和惡性程度的提高,腫瘤細(xì)胞增殖指數(shù)不斷增高,凋亡細(xì)胞比例逐漸下降,細(xì)胞積聚速度明顯加快,使腫瘤生長(zhǎng)加快,并表現(xiàn)出惡性行為[15]。
學(xué)者M(jìn)eng等[16]首次從HBV感染的患者肝癌組織中分離純化出與熱休克蛋白gp96結(jié)合的HBV特異肽。國(guó)內(nèi)外研究表明正常情況下gp96多存在于細(xì)胞的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中并且表達(dá)量非常低。在慢性乙型肝炎肝組織中g(shù)p96的檢出率比正常肝組織顯著升高,提示gp96的陽(yáng)性細(xì)胞率與炎癥程度有關(guān)。Fu等[17]認(rèn)為,gp96的高表達(dá)可促進(jìn)腫瘤的發(fā)生。在乳腺癌、腎癌、黑色素瘤、肺癌、食管癌、胃癌、肝癌和結(jié)腸癌等組織中都發(fā)現(xiàn)gp96有不同程度的高表達(dá)。Singh-Jasuja等[18]認(rèn)為gp96的表達(dá)能增強(qiáng)機(jī)體對(duì)腫瘤的免疫反應(yīng)。gp96自體腫瘤疫苗對(duì)結(jié)腸癌的治療作用已經(jīng)進(jìn)入了臨床Ⅰ/Ⅱ期評(píng)價(jià)[19]。
肝硬化與肝癌的發(fā)生密切相關(guān),每年約有2% ~6%的肝硬化患者進(jìn)展為肝癌,肝硬化及肝癌發(fā)生發(fā)展過(guò)程中需要gp96作為分子伴侶來(lái)調(diào)節(jié)、穩(wěn)定這一過(guò)程。Radosevic-Stasic等[20]研究顯示在肝部分切除小鼠,gp96水平隨肝細(xì)胞再生而升高。在肝癌的發(fā)生、發(fā)展過(guò)程中,由于腫瘤組織生長(zhǎng)快,局部缺血、缺氧及酸中毒,這些應(yīng)激條件誘使腫瘤組織產(chǎn)生熱休克蛋白,從而保護(hù)腫瘤細(xì)胞戰(zhàn)勝機(jī)體內(nèi)各種不利的生理環(huán)境。同時(shí),作為一種抗凋亡蛋白。本研究中,gp96的陽(yáng)性表達(dá)率和表達(dá)強(qiáng)度在對(duì)照組、肝硬化組和肝癌組逐漸增高,推測(cè)其可能參與了肝硬化的發(fā)生、發(fā)展及向肝癌的惡性轉(zhuǎn)化過(guò)程,肝癌中g(shù)p96的過(guò)度表達(dá)除了有促進(jìn)肝癌的增殖的作用外,還促進(jìn)肝炎后肝細(xì)胞再生形成肝硬化結(jié)節(jié),并致使其惡性化,同時(shí)對(duì)肝癌細(xì)胞有保護(hù)作用,另外gp96過(guò)度表達(dá)可通過(guò)下調(diào)細(xì)胞凋亡相關(guān)的基因、蛋白和蛋白酶活性而增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞的抗凋亡能力,使細(xì)胞的生長(zhǎng)抑制效應(yīng)和死亡效應(yīng)減弱,進(jìn)一步加重肝硬化及向肝癌轉(zhuǎn)變,與肝癌的發(fā)生、發(fā)展、惡性程度、轉(zhuǎn)移、分化和預(yù)后有密切關(guān)系,因而在肝硬化和肝癌的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用。gp96在肝硬化向肝癌發(fā)生發(fā)展中如何發(fā)揮作用,有待進(jìn)一步研究。本研究為進(jìn)一步探究肝硬化、肝癌的分子機(jī)制提供了線索,TRA1可能是診斷肝硬化及肝癌的潛在生物標(biāo)記、治療的潛在靶點(diǎn)。
[1]Parkin DM,Bray F,F(xiàn)erlay J,et al.Global cancer statistics,2002[J].CA Cancer J Clin,2005,55(2):74-108.
[2]Luo RH,Zhao ZX,Zhou XY,et al.Risk factors for primary liver carcinoma in Chinese population [J].World J Gastroenterol,2005,11(28):4431-4434.
[3]Zhang H,Huang JF,Huang XP,et al.Genechip used for screening differentially expressed genes in hepatocellular carcinoma[J].World Chinese Journal of Digestology,2007,15(22):2387-2393.張弘,黃介飛,黃曉平,等.應(yīng)用基因芯片技術(shù)篩選肝細(xì)胞癌相關(guān)基因[J].世界華人消化雜志,2007,15(22):2387-2393.
[4]Huang DF,Huang JF,Zhang H,et al.Screening hepatocirrhosis-related genes by GeneChip [J].World Chinese Journal of Digestology,2007,15(32):3377-3384.黃東鳳,黃介飛,張弘,等.應(yīng)用基因芯片技術(shù)篩選肝硬化相關(guān)基因[J].世界華人消化雜志,2007,15(32):3377-3384.
[5]Zhang H,Huang JF,Huang XP,et al.Screening the human hepatocellular carcinoma associated gene by gene chip[J].Chin J Gastroenterol Hepatol,2007,16(4):326-329.張弘,黃介飛,黃曉平,等.基因芯片在肝細(xì)胞癌相關(guān)基因篩選中的初步研究[J].胃腸病學(xué)和肝病學(xué)雜志,2007,16(4):326-329.
[6]Asguith KL,Harman AJ,McLaughlin EA,et al.Localization and significance of molecular chaperones,heat shock protein 1,and tumor rejection antigen gp96 in the male reproductive tract and during capacitation and acrosome reaction [J].Biol Reprod,2005,72(2):328-337.
[7]Wang XY,F(xiàn)acciponte JG,Subjeck JR.Molecular chaperones and cancer immunotherapy [J].Handb Exp Pharmacol,2006,(172):305-329.
[8]Majmudar CY,Labut AE,Mapp AK.Tra1 as a screening target for transcriptional activation domain discovery[J].Bioorg Med Chem Lett,2009,19(14):3733-3735.
[9]Yuan M.Immunotherapy heat shock protein complexes for tumor station[J].Foreign Medical Sciences(Cancer Section),2003,30(1):20-23.袁玫.熱休克蛋白臺(tái)復(fù)合物用于腫瘤的免疫治療[J].國(guó)外醫(yī)學(xué)(腫瘤學(xué)分冊(cè)),2003,30(1):20-23.
[10]Gething MJ,Sambrook J.Protein folding in the cell[J].Nature,1992,335(6355):33-45.
[11]Srivastava PK.Identification of chaperones as essential components of the tumor rejection moieties of cancers[J].Cancer Immun,2012,12:5.
[12]Xu Y,Wang S,Zhang X,et al.Immune activity of heat shock protein gp96 and its application in active immunotherapy for tumor and infectious diseases[J].Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao,2012,28(3):261-266.
[13]Wang XY,F(xiàn)acciponte JG,Subjeck JR.Molecular chaperones and cancer immunotherapy[J].Handb Exp Pharmacol,2006,(172):305-329.
[14]Randazzo M,Terness P,Opelz G,et al.Active-specific immunotherapy of human cancers with the heat shock protein Gp96-revisited[J].Int J Cancer,2012,130(10):2219-2231.
[15]Parmiani G,De Filippo A,Pilla L,et al.Heat shock proteins gp96 as immunogens in cancer patients[J].Int J Hyperthermia,2006,22(3):223-227.
[16]Meng SD,Gao T,Gao GF,et al.HBV-specific peptide associated with heat-shock protein gp96 [J].Lancet,2001,357(9255):528-529.
[17]Fu Y,Lee AS.Glucose regulated proteins in cancer progression,drug resistance and immunotherapy[J].Cancer Biol Ther,2006,5(7):741-744.
[18]Singh-Jasuja H,Scherer HU,Hilf N,et al.The heat shock protein gp96 induces maturation of dendritic cells and down-regulation of its receptor[J].Eur J Immunol,2000,30(8):2211-2215.
[19]Mazzaferro V,Coppa J,Carrabba MG,et al.Vaccination with autologous tumor-derived heat-shock protein gp96 after liver resection for metastatic colorectal cancer[J].Clin Cancer Res,2003,9(9):3235-3245.
[20]Radosevic-Stasic B,Jakovac H,Grebic D,et al.Heat shock protein Gp96 as potential regulator of morphostasis after partial hepatectomy in mice[J].Curr Aging Sci,2012,5(3):254-262.