高麗紅,張玉梅,劉艷霞,宋洪杰*
(1.第二軍醫(yī)大學長海醫(yī)院藥學部,上海 200433;2.第三軍醫(yī)大學生物波研究所藥學室,重慶 400038)
姜黃和片姜黃是臨床常用中藥材,兩者同屬姜科姜黃屬,源于不同種植物。前者為姜科植物姜黃CurcumalongaL.的干燥根莖,后者為姜科植物溫郁金CurcumawenyujinY. H. Chen et C. Ling的干燥根莖。目前兩者在臨床上常?;ハ嗵娲褂?,有的醫(yī)師甚至誤認為它們是同一植物。盡管兩者藥性相似,均有破血行氣、通經(jīng)止痛的功能,但其基源、產(chǎn)地、性味歸經(jīng)、加工方法、鑒別方法和化學成分均不同[1]。隨著中藥臨床應用的有效性和安全性日益受到重視,將姜黃和片姜黃替代使用的科學性和合理性有待評估。姜科植物富含揮發(fā)油,有限的研究資料顯示,這兩種藥材揮發(fā)油的主要成分有差異。藥理學研究表明,姜黃揮發(fā)油有抗真菌和抗腫瘤作用[2,3],片姜黃揮發(fā)油的藥理作用則幾乎未見報道。本研究對姜黃和片姜黃揮發(fā)油的成分進行了分析,并對其體外抗腫瘤作用進行比較,旨在為其進一步開發(fā)和臨床合理應用提供參考。
1.1 儀器和試劑 6890N-MS5973N GC-MS聯(lián)用儀(美國安捷倫公司);ELX800全自動酶標分析儀(美國Bio-Tek公司);二氧化碳培養(yǎng)箱(美國 Forma公司);細胞培養(yǎng)板(美國Falcon公司);四甲基偶氮唑鹽(MTT,Amersco公司);小牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司);RPMI 1640培養(yǎng)液(Gibcol BRL公司);無水乙醇(分析純,江蘇省常州市楊園化工有限公司);二甲亞砜(DMSO,分析純,上海凌峰化學試劑有限公司)。
1.2 細胞和藥材 A-549人肺癌細胞株和SGC-7901人胃癌細胞株(分別由第二軍醫(yī)大學長征醫(yī)院呼吸內科和第二軍醫(yī)大學長海醫(yī)院消化內科實驗室饋贈,第二軍醫(yī)大學長海醫(yī)院藥學部藥物分檢室保存);姜黃和片姜黃(購于上海藥材有限公司,姜黃產(chǎn)地:四川,批號061018;片姜黃產(chǎn)地:福建,批號DH2006102704),由第二軍醫(yī)大學藥學院生藥學教研室郭美麗教授鑒定。
1.3 揮發(fā)油的提取 分別取姜黃和片姜黃粗粉約200 g,稱定重量,置燒瓶中,加2000 ml水,按《中華人民共和國藥典》2010年版一部附錄ⅩD揮發(fā)油測定甲法進行總揮發(fā)油提取,提取所得揮發(fā)油經(jīng)無水硫酸鈉脫水干燥后置4 ℃冰箱保存。結果測得姜黃和片姜黃兩種飲片揮發(fā)油的得率分別為1.5%和1.2%。
1.4 GC-MS分析 采用6890N-MS5973N GC-MS聯(lián)用儀,色譜柱:HP-5型毛細管色譜柱(30 m×250 μm,0.25 μm);載氣為氦氣,流速1.0 ml/min;程序升溫:起始溫度40 ℃,保持1 min,然后以4 ℃/min升至250 ℃;進樣口溫度250 ℃,分流比50∶1,檢測器溫度280 ℃。電離方式為電子電離(electron ionization,EI),電子能量70 eV,掃描質量范圍50~550amu。姜黃和片姜黃揮發(fā)油各取2 μl,分別用10 ml無水乙醇稀釋后進樣分析。
1.5 細胞培養(yǎng) A-549人肺癌細胞株和SGC-7901人胃癌細胞株分別培養(yǎng)在含10%小牛血清、青霉素和鏈霉素各100 U/ml的RPMI 1640培養(yǎng)液中,37 ℃,5% CO2條件下培養(yǎng)。
1.6 MTT法檢測揮發(fā)油對癌細胞的細胞毒作用 取對數(shù)生長期A-549細胞株和SGC-7901細胞株,分別稀釋至細胞濃度為2×104/ml和5×104/ml,接種于96孔細胞培養(yǎng)板中,每孔100 μl,培養(yǎng)24 h。待細胞貼壁良好,棄去培養(yǎng)液。實驗組分別加入新配制的含50、100、200、400和800 μg/ml揮發(fā)油的培養(yǎng)液,每個濃度設5個復孔,以0.1% DMSO溶液作為對照。細胞在37 ℃,5% CO2條件下培養(yǎng)48 h,棄去含揮發(fā)油的培養(yǎng)液,每孔加入MTT溶液(終濃度為5 g/L),37 ℃繼續(xù)孵育4 h后終止培養(yǎng)。棄去孔內液體,每孔加入DMSO 150 μl,振蕩混勻10 min后,用酶標儀在參考波長490 nm和檢測波長570 nm檢測各孔吸光度值。揮發(fā)油對癌細胞的細胞毒作用以IC50表示。
1.7 統(tǒng)計學處理 采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件中的Probit模塊,根據(jù)吸光度值計算IC50[4]。
2.1 揮發(fā)油的化學組成 姜黃和片姜黃揮發(fā)油GC-MS分析所得總離子流色譜圖見圖1。采用峰面積歸一化法計算各組分相對含量,經(jīng)Wiley275質譜庫檢索,結合文獻和人工解析進行化合物鑒定。姜黃和片姜黃揮發(fā)油中已鑒別的化學成分見表1和表2。姜黃揮發(fā)油共檢測出24個化合物,其中20個化合物已被鑒別。按質量百分比計,單萜類成分占1.53%,倍半萜類成分占60.64%,其中β-姜黃酮(34.79%)、芳姜黃烯(7.24%)、β-倍半水芹烯(4.85%)、吉瑪酮(4.51%)和姜烯(2.68%)為主要成分。片姜黃揮發(fā)油共檢測出41個化合物,其中27個化合物已被鑒別,按質量百分比計,單萜類成分占17.22%,倍半萜類成分占34.65%,其中莪術二酮(15.13%)、1,8-桉樹腦(7.62%)、吉瑪酮(5.60%)、異莪術醇(4.23%)、莪術醇(4.10%)和樟腦(3.55%)為主要成分。
圖1 姜黃和片姜黃揮發(fā)油的GC-MS分析總離子流圖譜
表1 姜黃揮發(fā)油的化學成分分析結果
表2 片姜黃揮發(fā)油的化學成分分析結果
2.2 揮發(fā)油的體外抗腫瘤作用 不同濃度的揮發(fā)油作用于A-549和SGC-7901細胞株48 h后,兩種細胞株的生長均受到一定程度的抑制,細胞存活率隨揮發(fā)油濃度的升高而降低,結果見圖2。姜黃和片姜黃揮發(fā)油抑制A-549人肺癌細胞株的IC50分別為227.8和202.1 μg/ml,抑制SGC-7901人胃癌細胞株的IC50則分別為129.7 和230.0 μg/ml。
本研究采用GC-MS法對姜黃和片姜黃揮發(fā)油成分進行了比較分析,結果顯示兩種揮發(fā)油成分在含量和組成上存在顯著差異。姜黃和片姜黃揮發(fā)油中單萜類成分分別占1.53%和17.22%,表明前者低沸點成分比后者少。片姜黃揮發(fā)油中保留時間短的成分比姜黃多,從而也驗證了兩者的炮制工藝的差異,姜黃是取根莖蒸、煮加工后入藥,而片姜黃是根莖鮮品直接切片后入藥。由此可見,藥材飲片成分是藥材炮制工藝的決定因素之一。再者,本研究測得的兩種藥材飲片揮發(fā)油成分和相對含量與已有的文獻報道結果也存在顯著差異[5-7],分析原因可能主要與藥材的產(chǎn)地、加工和飲片存放時間等有關。姜黃和片姜黃的揮發(fā)油得率分別為1.5%和1.2%,前者的揮發(fā)油得率遠低于《中華人民共和國藥典》2010年版一部規(guī)定的姜黃飲片中揮發(fā)油含量不得<5.0%的要求,在文獻[7]中也有類似報道。文獻[7]采用水蒸汽蒸餾法提取31批姜黃揮發(fā)油,提取率為1.63%~4.52%。而對于片姜黃,《中華人民共和國藥典》2010年版一部只規(guī)定了藥材的揮發(fā)油含量不得<1.0%。從已鑒別的揮發(fā)油成分中可見,姜黃和片姜黃揮發(fā)油成分的差異決定了其藥效物質基礎不同,因此臨床上將兩種藥材替代使用缺乏科學性。但從中醫(yī)辨證論治本質來講,它們的替代使用是否合適尚有待研究和探討。
本研究比較了姜黃和片姜黃揮發(fā)油對A-549人肺癌細胞株和SGC-7901人胃癌細胞株的體外抗腫瘤作用,結果顯示,兩種揮發(fā)油對腫瘤細胞增殖均有一定的抑制作用,并且呈劑量依賴性,但抑制作用較弱。姜黃和片姜黃是臨床常用的中藥材,其揮發(fā)油的抗腫瘤作用尚需采用其他細胞株和體內研究進一步證實。
【參考文獻】
[1] 馬 宇,楊培龍,張 亮.姜黃與片姜黃異同考[J].四川中醫(yī),2007,25(10):33-35.
Ma Yu,Yang PeiLong,Zhang Liang.The differences and similarities betweenCurcumalongaL. and Wenyujin Rhizoma Concisum[J].J Sichuan Tradit Chin Med,2007,25(10):33-35.In Chinese.
[2] 杜青云,王國勝,張銘窮.中藥姜黃揮發(fā)油體外抗真菌實驗研究[J].中華皮膚性病學雜志,1997,11(4):212,230.
Du QingYun,Wang GuoSheng,Zhang MingQiong.Experimental study on the antifungal effects of essential oil fromCurcumalongaL.[J].Chin J Derm Venereol,1997,11(4):212,230.In Chinese.
[3] 王海晶,楊和平.姜黃揮發(fā)油對人肺腺癌A549細胞作用的形態(tài)學研究[J].第三軍醫(yī)大學學報,2005,27(3):220-222.
Wang HaiJing,Yang HePing.Effects of turmeric volatile oil on the morphology of human lung adenocarcinoma A549 cells[J].Acta Acad Med Mil Tertiae,2005,27(3):220-222.In Chinese with English abstract.
[4] 趙 斌,葛金芳,朱娟娟,等.小議在MTT法測細胞增殖抑制率中IC50的計算方法[J].安徽醫(yī)藥,2007,11(9):834-836.
Zhao Bin,Ge JinFang,Zhu JuanJuan,etal.Discussion on calculation methods of inhibition rate IC50of cell proliferation by MTT method[J].Anhui Med Pharm J,2007,11(9):834-836.In Chinese.
[5] Qin N Y,Yang F Q,Wang Y T,etal. Quantitative determination of eight components in rhizome (Jianghuang) and tuberous root (Yujin) ofCurcumalongausing pressurized liquid extraction and gas chromatography-mass spectrometry[J].J Pharm Biomed Anal,2007,43(2):486-492.
[6] 張桂芝,張 立,孟慶華.姜黃飲片揮發(fā)油的GC-MS特征成分及指紋圖譜研究[J].中成藥,2010,32(7):1092-1095.
Zhang GuiZhi,Zhang Li,Meng QingHua.GC-MS characteristic components and fingerprint of essential oils of processedRhizomacurcumaelongae[J].Chin Tradit Pat Med,2010,32(7):1092-1095. In Chinese with English abstract.
[7] 蔣建蘭,丁洪濤,蘇 鑫,等.基于組效關系的姜黃揮發(fā)油抗腫瘤活性成分辯識研究[J].分析化學,2012,40(10):1488-1493.
Jiang JianLan,Ding HongTao,Su Xin,etal.Identification of anti-tumor ingredients in curcuma volatile oil based on composition-activity relationship[J].Anal Chem,2012,40(10):1488-1493.In Chinese with English abstract.