杜 蕊 楊慈清 李玲玲 段明慧 盧 習(xí) 陳樹林 趙善廷
(西北農(nóng)林科技大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,楊陵712100)
禽類視頂蓋(Optic tectum)具有明顯分層結(jié)構(gòu),在其層的形成過程中,RGCs對(duì)神經(jīng)元的遷移起著重要作用[1]。禽類神經(jīng)元(Neuron)的遷移方式主要有2種,分別為放射狀遷移(Radial migration)和切向遷移(Tangential migration)[2]。其中神經(jīng)元的放射狀遷移主要有2種方式,依賴于放射狀膠質(zhì)細(xì)胞的遷移[3](Glia-guided locomotion)和不依賴膠質(zhì)細(xì)胞的胞體位移式遷移[4](Glia-independent somal translocation)。放射狀膠質(zhì)細(xì)胞是一種短暫存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)(Central nervous system,CNS)發(fā)育過程中的細(xì)胞,為第一種遷移的神經(jīng)元提供“腳手架”。BLBP、RC2和Nestin是研究脊椎動(dòng)物中樞神經(jīng)系統(tǒng)RGCs的三種常用的標(biāo)志物。BLBP最先從小鼠的腦中分離獲得,是脂肪酸結(jié)合蛋白家族(Fatty acid binding protein,F(xiàn)ABP)的成員,是一種分子量小、高度保守的細(xì)胞質(zhì)蛋白,它特異表達(dá)于發(fā)育中的脊椎動(dòng)物的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中尤其是在發(fā)育中的CNS的RGCs及成熟小腦中貝格曼膠質(zhì)細(xì)胞(Bergmann glial cell)[5,6]。RC2 可以識(shí)別位于腦室壁可轉(zhuǎn)化為星形膠質(zhì)細(xì)胞的不同水平的RGCs,還可以識(shí)別脊髓中的假單極神經(jīng)元,小腦中貝格曼膠質(zhì)細(xì)胞的前體細(xì)胞,以及位于神經(jīng)上皮中具有放射狀雙極細(xì)胞形態(tài)的一類神經(jīng)元等[7]。Nestin屬于第4類中間絲蛋白(Intermediate filament protein,IFP),被認(rèn)為是一種神經(jīng)干細(xì)胞(Neural stem cell,NSC)的標(biāo)記物,并且在進(jìn)化上高度保守[8]。GFAP最早在多發(fā)性硬化癥(Multiple sclerosis,MS)病人的膠質(zhì)瘢痕中分離出來[9,10]。目前,GFAP 被認(rèn)為是星形膠質(zhì)細(xì)胞(Astrocyte)的特異性標(biāo)志物。在發(fā)育中禽類視頂蓋結(jié)構(gòu)的研究經(jīng)常被用來標(biāo)記膠質(zhì)細(xì)胞,本試驗(yàn)通過對(duì)4種標(biāo)記物在視頂蓋發(fā)育過程中標(biāo)記的細(xì)胞進(jìn)行比較,說明這4種膠質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)記物所標(biāo)記的細(xì)胞存在一定差異,該結(jié)果可為禽類視頂蓋發(fā)育過程膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記的研究提供理論基礎(chǔ)。星形膠質(zhì)細(xì)胞與中樞神經(jīng)系統(tǒng)的免疫反應(yīng)關(guān)系密切,研究其前體細(xì)胞即放射狀膠質(zhì)細(xì)胞對(duì)于研究免疫反應(yīng)的機(jī)理具有重要理論意義。
1.1 材料和儀器 新鮮種雞蛋(當(dāng)?shù)胤N雞場(chǎng));一抗Mouse anti RC2 IgM(Millipore);Rabbit anti BLBP(Millipore);Rabbit anti GFAP(Millipore);Mouse anti Nestin(Millipore);二抗 Donkey anti Rabbit-488(Millipore);Goat anti Mouse-568 IgM(Millipore);Goat anti Mouse-568(Millipore);Observer-Z1結(jié)構(gòu)照明顯微鏡(德國 Zessi公司);VT1000S振蕩切片機(jī)(德國Leica公司);ECM 830電轉(zhuǎn)儀(美國BTX公司);HWS-150型恒溫恒濕培養(yǎng)箱(上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司);B18型科裕微電腦全自動(dòng)孵化箱(德州市科裕孵化設(shè)備有限公司)。
1.2 方法
1.2.1 雞胚胎培養(yǎng) 從種雞場(chǎng)購買新鮮受精雞蛋當(dāng)天帶回實(shí)驗(yàn)室,用37℃溫水洗凈,酒精棉球擦干凈并晾干,大頭向上放入孵化器中,溫度37.8℃,濕度60%,轉(zhuǎn)蛋間隔2小時(shí)。在發(fā)育到E8、E10、E12、E14、E16、E18分別取材,每個(gè)時(shí)期取3個(gè)胚胎。
1.2.2 活體原位電轉(zhuǎn) 胚胎發(fā)育至E4.5-E5將2 μg/μl的pCAG-GFP質(zhì)粒0.5 μl在體視顯微鏡下用玻璃微電極注射到視頂蓋的腦室腔內(nèi),質(zhì)粒工作液中質(zhì)粒與0.1%的Fast Green(Sigma)溶液以10∶1的比例混合均勻,針狀電極放在已注射質(zhì)粒的視頂部位兩側(cè),陽性電極在擬轉(zhuǎn)基因一側(cè),確保電極與組織之間有一定空隙,使用BTX電轉(zhuǎn)儀進(jìn)行電轉(zhuǎn),電轉(zhuǎn)電壓25 V,脈沖時(shí)間50 ms,脈沖間隔950 ms,電脈沖6次,電擊后用醫(yī)用膠布密封開口,整個(gè)過程在無菌操作工作臺(tái)內(nèi)完成,放回恒溫恒濕培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。到胚胎發(fā)育的E8、E10和E12進(jìn)行取材。
1.2.3 固定和切片 將取下的雞胚胎斷頭,將頭放入4%多聚甲醛(PFA)于室溫下在搖床搖晃固定3天,期間每天換一次4%PFA。將固定好的胚胎頭部在體視顯微鏡下將整個(gè)腦取出,切下視頂蓋部分用4℃預(yù)冷的0.1 mol/L pH7.4磷酸鹽緩沖液(Phosphate buffer,PB)洗滌2~3次,用吸水紙將多余溶液吸干。用4%瓊脂糖包埋,修整組織塊,用強(qiáng)力膠將組織塊粘在振蕩切片機(jī)的載物臺(tái)上,冠狀切片,切片厚度為80 μm。
1.2.4 免疫熒光技術(shù)染色 將6個(gè)不同時(shí)期(E8、E10、E12、E14、E16、E18)的切片置于 24 孔培養(yǎng)板中,每孔放入3~4個(gè)切片,作為一個(gè)樣本,采用漂浮染色法染色。用4℃預(yù)冷的0.1 mol/L PB漂洗3次,5 min/次,吸出孔內(nèi)PB液體,分別加入1∶1 000稀釋的 Mouse anti RC2 IgM、Rabbit anti BLBP、Mouse anti Nestin和 Rabbit anti GFAP一抗,每孔 300 μl,4℃冰箱內(nèi)振蕩過夜,用0.1 mol/L PB漂洗3次,30分鐘/次,分別加入1∶300稀釋的 Donkey anti Rabbit-488、Goat anti Mouse-568 和 Goat anti Mouse-568 IgM,每孔300 μl,4℃冰箱內(nèi)振蕩過夜,用0.1 mol/L PB漂洗3次,30 min/次,將染好的切片用抗熒光淬滅的封片劑封片。
1.2.5 觀察和拍照 結(jié)構(gòu)照明顯微鏡觀察拍照,用Photoshop CS5軟件處理圖片。分析不同發(fā)育時(shí)期BLBP、RC2、Nestin和GFAP的RC的表達(dá)情況及RC的形態(tài)學(xué)特點(diǎn)。
圖1 雞胚胎視頂蓋不同發(fā)育時(shí)期4種膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物的表達(dá)Fig.1 Expression of 4 glial cell markers in chicken embryonic optic tectum at different developmental stages from E8 to E18
圖2 雞胚胎視頂蓋不同發(fā)育時(shí)期膠質(zhì)細(xì)胞的形態(tài)學(xué)特點(diǎn)Fig.2 Morphological characteristics of the glial cells in chicken embryonic optic tectum at different developmental stages
2.1 雞胚胎視頂蓋不同發(fā)育時(shí)期4種膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物的表達(dá)分布 從E8-E18,4種標(biāo)記物均可標(biāo)記RGCs,但表達(dá)強(qiáng)度有差異。BLBP從E8開始逐漸增強(qiáng)(圖1A),E12-E16達(dá)到高峰(圖1C-E),E18開始下降(圖1F)。在E8-E18,BLBP標(biāo)記的RGCs,胞體主要位于室管膜層(Ventricular zone,VZ)。而在E14-E18,除胞體位于VZ的RGCs外還出現(xiàn)了一些胞體離開VZ,隨機(jī)分布于視頂蓋的各層的細(xì)胞(白色箭形所示)(圖1D-F)。這樣的RGCs在E14開始出現(xiàn)(圖1D),E16達(dá)到高峰(圖1E)后開始降低,到E18,位于視頂蓋各層的BLBP表達(dá)水平明顯降低(圖1F)。從 E8-E16,RC2均可標(biāo)記 RGCs(圖1GL),但表達(dá)強(qiáng)度有差異。RC2從E8開始表達(dá)(圖1G),E10-E12持續(xù)增強(qiáng)(圖1H-I),從E14開始表達(dá)逐漸減弱(圖1J),E16-E18對(duì)RGCs染色不明顯(圖1K-L)。在E8時(shí),RC2除特異性染出放射狀排列的RGCs(白色箭形頭所示)外,還可染出頂蓋延髓束(Tectobulbar efferents,TE)的纖維(白色箭形所示)(圖1G)。在E10和E12可以清晰看到放射狀排列的RGCs的頂突起(Apical process)(白色箭形頭所示),此時(shí)RC2的表達(dá)強(qiáng)度最強(qiáng)(圖1H-I)。E14開始RC2的表達(dá)明顯減弱,但仍可以觀察到放射狀排列的RGCs的頂突起(白色箭形頭所示)(圖1J),而到了E16,RGCs中RC2的表達(dá)持續(xù)降低,在表面灰質(zhì)纖維層(Stratum griseum et fibrosum superficiale,SGFS)還能觀察到RGCs(圖1K),在E18,RC2表達(dá)不明顯(圖1L)。與RC2類似,從E8-E16,Nestin均可標(biāo)記 RGCs(圖1M-Q),但表達(dá)強(qiáng)度仍有差異。Nestin從E8開始表達(dá)(圖1M),E10-E12表達(dá)持續(xù)增強(qiáng)(圖1N-O),從 E14開始減弱(圖1P),在 E16時(shí)Nestin表達(dá)繼續(xù)降低(圖1Q),到 E18時(shí) Nestin表達(dá)已不明顯(圖1R)。與RC2不同,從E10-E14,在中央灰質(zhì)層(Stratum griseum central,SGC)可明顯觀察到Nestin陽性的神經(jīng)元(白色箭形所示),并且從E10開始表達(dá)(圖1N),E12-E14表達(dá)最強(qiáng)(圖1O-P),E16表達(dá)開始減弱(圖1Q),E18時(shí),SGC層的神經(jīng)元表達(dá)Nestin已經(jīng)不明顯(圖1R)。從E8-E16,GFAP均可標(biāo)記 RGCs,但 GFAP表達(dá)較弱,且E8-E14表達(dá)強(qiáng)度無明顯變化(圖1S-V),在E16和E18表達(dá)增強(qiáng)。在 E18,GFAP標(biāo)記明顯增強(qiáng)(圖1X),在視神經(jīng)層(Stratum opticum,SO)、中央白質(zhì)層(Stratum album central,SAC)和室周灰質(zhì)層(Stratum griseum periventriculare,SGP)尤為明顯(白色箭形頭所示),在SO層已經(jīng)可以觀察到GFAP標(biāo)記陽性的星形膠質(zhì)細(xì)胞的形態(tài)。與Nestin類似,在E10-E16的SGC層(圖1T-W)也可觀察到GFAP陽性的神經(jīng)元(白色箭形所示)。
2.2 雞胚胎視頂蓋不同發(fā)育時(shí)期膠質(zhì)細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀察 由于免疫熒光方法標(biāo)記的RGCs并不十分清晰,所以E4.5時(shí),神經(jīng)元增殖高峰的時(shí)期采用活體原位電轉(zhuǎn)的方法將GFP轉(zhuǎn)入視頂蓋中,GFP標(biāo)記的細(xì)胞包括神經(jīng)元、RGCs和前體細(xì)胞(Precursor cells)等。在E8、E10和E12三個(gè)時(shí)期分別取材(圖2A-C)。RGCs的胞體位于VZ(白色星號(hào)所示),有極性,呈apical-basal雙極突起形態(tài),每一個(gè)RGC都有基足(Basal foot)(白色箭形頭所示)錨定在VZ底部,從胞體的另一端(白色箭形所示)向軟腦膜(Pia)延伸且不分枝的頂突起。胞體位于VZ的位置并不是完全一致,這可能與其處在不同的細(xì)胞分裂周期有關(guān)。BLBP標(biāo)記的RGCs在E12和E14這兩個(gè)時(shí)間點(diǎn),在胞體的位置上出現(xiàn)了明顯的變化,故將E14時(shí)期的切片放到高倍鏡下觀察。在E14時(shí),分布于視頂蓋各層的大多數(shù)RGCs仍保持雙極神經(jīng)元的特征,但明顯可以觀察到在視頂蓋各層出現(xiàn)了BLBP陽性,但胞體脫離VZ的細(xì)胞,這些細(xì)胞具有遷移中神經(jīng)元的特征,即有一條長(zhǎng)而不分枝的頂突起(Leading process)(白色箭形所示)和卵圓形胞體(Soma)(白色星號(hào)所示)(圖2D)。在E18時(shí),GFAP可標(biāo)記SO層,SAC和SGP層的膠質(zhì)細(xì)胞(圖2EF)。SGP層和SAC層的GFAP陽性細(xì)胞并沒有明顯的星形膠質(zhì)細(xì)胞的特點(diǎn),胞體位于SAC層或SGP層(白色星號(hào)所示)但頂突起明顯變短(白色箭形所示)(圖2E),免疫熒光染色明顯增強(qiáng),提示其可能向星形膠質(zhì)細(xì)胞方向轉(zhuǎn)化。在SO層,GFAP陽性細(xì)胞表現(xiàn)出明顯的星形膠質(zhì)細(xì)胞的特點(diǎn),即胞體(白色星號(hào)所示)呈圓形或卵圓形,從胞體發(fā)出許多長(zhǎng)而分枝的突起(白色箭形所示,圖2F)。
神經(jīng)系統(tǒng)由神經(jīng)元(Neuron)和膠質(zhì)細(xì)胞(Glial cell)組成。膠質(zhì)細(xì)胞對(duì)神經(jīng)元的存活、增殖和分化提供營(yíng)養(yǎng)信號(hào)[11,12]。在脊椎動(dòng)物發(fā)育過程中的膠質(zhì)細(xì)胞類型主要為RGCs,而在脊椎動(dòng)物神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育成熟后,膠質(zhì)細(xì)胞主要包括星形膠質(zhì)細(xì)胞,少突膠質(zhì)細(xì)胞(Oligodendrocyte)和小膠質(zhì)細(xì)胞(Microglia)。在這三種膠質(zhì)細(xì)胞中,星形膠質(zhì)細(xì)胞分布最廣,數(shù)量最多,并認(rèn)為由RGCs發(fā)育而來。
BLBP的表達(dá)具有腦特異性和調(diào)控發(fā)育的特點(diǎn),由于其存在于細(xì)胞胞質(zhì)和胞核中,認(rèn)為它與成體神經(jīng)發(fā)生和細(xì)胞有絲分裂調(diào)控有關(guān)[5]。在禽類視頂蓋中,E3-E8是神經(jīng)元增殖的主要時(shí)期,E8-E12是神經(jīng)元進(jìn)行遷移的主要時(shí)期,在E12時(shí)視頂蓋可以分為明顯的6層結(jié)構(gòu),但是SGFS中的10個(gè)亞層還沒有完全形成,E14-E18是SGFS中10個(gè)亞層形成的主要時(shí)期,E18時(shí),視頂蓋層的結(jié)構(gòu)完全形成。BLBP的RGCs染色結(jié)果與視頂蓋神經(jīng)元的層的形成以及神經(jīng)元的遷移過程具有一致性。在E8-E12時(shí),RGCs的胞體主要位于VZ,其突起朝向軟腦膜延伸,終足(Endfoot)終止于軟腦膜。雖然E8-E12是視頂蓋增厚的主要時(shí)期,但胞體并沒有離開VZ,仍行使RGCs的主要功能,即作為“腳手架”使新生神經(jīng)元沿著其突起進(jìn)行遷移。從 E14開始,部分BLBP陽性細(xì)胞的胞體離開VZ,隨機(jī)分布于視頂蓋的各層,提示其可能沿RGCs進(jìn)行遷移。而這些陽性細(xì)胞可能已經(jīng)開始進(jìn)行分化,但仍表達(dá)BLBP,故可以被BLBP抗體識(shí)別。這些胞體離開VZ的BLBP陽性細(xì)胞在E14開始出現(xiàn),E16達(dá)到高峰,在E18時(shí)又迅速減少。在E14-E18時(shí),大部分神經(jīng)元已經(jīng)遷移結(jié)束,只有形成SGFS層的神經(jīng)元還將繼續(xù)增殖和遷移,所以部分RGCs可能完成其“腳手架”功能,其胞體開始離開VZ,突起變短,開始進(jìn)行遷移和分化。E18時(shí),視頂蓋層的結(jié)構(gòu)已經(jīng)完全形成,RGCs明顯減少,且胞體離開VZ層的BLBP陽性細(xì)胞的數(shù)量也迅速下降,可能這些細(xì)胞已經(jīng)分化為其他細(xì)胞。發(fā)育中的RGCs具有神經(jīng)干細(xì)胞性質(zhì),可以作為前體細(xì)胞增殖分化出神經(jīng)元,RGCs和星形膠質(zhì)細(xì)胞[13]。
E8-E12時(shí)是神經(jīng)元進(jìn)行遷移的主要時(shí)期,RC2陽性的RGCs與BLBP陽性的RGCs形態(tài)相同,都是胞體位于VZ,在其胞體上發(fā)出一條朝向軟腦膜的不分枝的突起,終足終止于軟腦膜。而從E14開始,RGCs中RC2的表達(dá)明顯減弱,到E18,RC2標(biāo)記的RGCs已經(jīng)不明顯,提示這可能與大部分神經(jīng)元遷移基本結(jié)束,RGCs開始分化有關(guān)。E14-E18時(shí),RC2標(biāo)記的RGCs并沒有出現(xiàn)BLBP陽性胞體離開VZ,突起變短的一類細(xì)胞,提示RC2與BLBP標(biāo)記的RGCs可能不是同一亞型或RC2標(biāo)記RGCs的特異性更強(qiáng)。
Nestin屬于第4類中間絲蛋白(Intermediate filament protein,IFP),被認(rèn)為是一種神經(jīng)干細(xì)胞(Neural stem cell,NSC)的標(biāo)記物,并且在進(jìn)化上高度保守[8]。Nestin表達(dá)與 RC2相似,E8-E12表達(dá)較強(qiáng),主要標(biāo)記RGCs,自E14開始標(biāo)記RGCs開始減弱,到E18時(shí),表達(dá)已不明顯。但不同的是Nestin可標(biāo)記SGC層的神經(jīng)元,說明該類神經(jīng)元即神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(Ganglion cell)胞體中可能含有較強(qiáng)的IFP。有研究表明Nestin主要存在于胚胎發(fā)育早期的一些細(xì)胞中如放射狀膠質(zhì)細(xì)胞、VZ層細(xì)胞、神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞前體細(xì)胞和神經(jīng)上皮細(xì)胞,但并不是所有的神經(jīng)干細(xì)胞(Neural stem cell,NSC)都表達(dá) Nestin,特別是一些開始分化的NSC[8]。這也與本試驗(yàn)結(jié)果一致,即自E14開始RGCs的表達(dá)減弱,且Nestin可以標(biāo)記一些SGC層的神經(jīng)元。
GFAP也是一種 IFP,屬于第3類 IFP[8]。在本試驗(yàn)的結(jié)果中,在E8-E18的RGCs中均可檢測(cè)到GFAP表達(dá),且 E8-E14,RGCs中GFAP表達(dá)強(qiáng)度很弱,但在E16和E18明顯觀察出GFAP的表達(dá)開始增強(qiáng),在E18時(shí)的SO層中已經(jīng)可以觀察到星形膠質(zhì)細(xì)胞,在SAC層和SGP層的細(xì)胞突起變短,提示其向星形膠質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)化。GFAP被認(rèn)為是一種星形膠質(zhì)細(xì)胞常見的標(biāo)記物。GFAP在小鼠發(fā)育中的大腦皮質(zhì)中不能標(biāo)記RGCs,但可特異性標(biāo)記星形膠質(zhì)細(xì)胞。但有研究發(fā)現(xiàn)在其他脊椎動(dòng)物如靈長(zhǎng)類動(dòng)物的腦皮質(zhì)RGCS中也檢測(cè)到 GFAP的表達(dá)[14]。與Nestin相似,在E10-E16的SGC層神經(jīng)節(jié)細(xì)胞也被GFAP標(biāo)記,提示其可能含有IFP。
在E8-E12,隨著大量神經(jīng)元增殖的結(jié)束,VZ層厚度逐漸減小,RGCs的胞體位于VZ,但胞體的位置在VZ層具有apical-basal移動(dòng)性[15]。有研究表明,RGCs分裂方式為對(duì)稱分裂,有細(xì)胞分裂相,細(xì)胞位于不同的分裂時(shí)期(細(xì)胞有絲分裂周期:G1-S-G2-M),胞體在VZ的位置不同,在M期,胞體移動(dòng)到靠近腦室處;在G1期,胞體開始向軟腦膜移動(dòng)在S期到達(dá)離腦室最遠(yuǎn)處;在G2期,胞體又向腦室方向移動(dòng),在這一過程中,突起始終與 apical-basal聯(lián)結(jié)[15]。自E14開始,RGCs可能開始向其他類型細(xì)胞轉(zhuǎn)化。試驗(yàn)結(jié)果顯示趨勢(shì)是,胞體離開VZ,頂突起明顯變短,有的已經(jīng)具有星形膠質(zhì)細(xì)胞的形態(tài)特點(diǎn)(如E18時(shí) SO層)。
膠質(zhì)細(xì)胞對(duì)神經(jīng)元功能的行使起著十分重要的作用,這些作用主要包括對(duì)神經(jīng)元的支持、修復(fù)、免疫應(yīng)答、營(yíng)養(yǎng)和代謝、遷移、發(fā)育和保護(hù)等,故膠質(zhì)細(xì)胞對(duì)于腦的正常發(fā)育、神經(jīng)元調(diào)控和中樞神經(jīng)系統(tǒng)再生的影響十分重要。目前,學(xué)術(shù)界廣泛認(rèn)為在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞發(fā)揮著重要的免疫調(diào)節(jié)作用[16]。小膠質(zhì)細(xì)胞作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)的巨噬細(xì)胞,當(dāng)由于病原體、抗原和毒素等的侵入而導(dǎo)致大腦損傷時(shí),小膠質(zhì)細(xì)胞會(huì)迅速激活并釋放大量的促炎癥因子,激活免疫系統(tǒng)并吞噬外來病原體和受損細(xì)胞[17,18]。小膠質(zhì)細(xì)胞除可作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)的巨噬細(xì)胞外,在炎癥反應(yīng)中也起著重要的作用。小膠質(zhì)細(xì)胞在細(xì)胞內(nèi)毒素LPS刺激下首先激活,周圍的星形膠質(zhì)細(xì)胞接受了小膠質(zhì)細(xì)胞的免疫信號(hào)后被激活,二者配合促進(jìn)神經(jīng)元的損傷和退化[19]。放射狀膠質(zhì)細(xì)胞被認(rèn)為是一種膠質(zhì)細(xì)胞前體,對(duì)于研究星形膠質(zhì)細(xì)胞及小膠質(zhì)細(xì)胞的發(fā)生和揭示中樞神經(jīng)系統(tǒng)免疫反應(yīng)的原理具有重要意義。
1 Schmid R S,Yokota Y,Anton E S.Generation and characterization of brain lipid-binding protein promoter-based transgenic mouse models for the study of radial glia[J].Glia,2006;53(4):345-351.
2 Domesick V B,Morest D K.Migration and Differentiation of ganglion cells in the optic tectum of the chick embryo[J].Neuroscience,1977;2:459-475.
3 Nadarajah B,Brunstrom J E,Grutzendler J et al.Two modes of radial migrationin early development of the cerebral cortex[J].Nat Neurosci,2001;4:143-150.
4 Morest D K.A study of neurogenesis in the forebrain of opossum pouch young.Z Anat Entwicklungsgesch,1970;130:265-305.
5 Feng L,Hatten M E,Heintz Net.Brain lipid-binding protein(BLBP):A novel Signaling System in the Developing Mammalian CNS[J].Neuron,1994;12:895-908.
6 Kuhar S G,F(xiàn)eng L,Vidan S et al.Changing patterns of gene expression define four stages of cerebellar granule neuron differentiation[J].Development,1993;117:97-104.
7 Misson J P,Edward M A,Yamamoto M et al.Identification of radial glial cells within the developing murine central nervous system:studies based upon a new immunohistochemical marker[J].DEV Brain Res,1988;44:95-108.
8 Gilyarov A V.Nestin in central nervous system cells[J].Neurosci Behav Physiol,2008;38(2):165-169.
9 Eng L F,Gerstl B,Vanderhaeghen J J.A study of proteins in old multiple sclerosis plaques[J].Trans Am Soc Neurochem,1970;1:42.
10 Eng L F,Vanderhaeghen J J,Bignami A et al.An acidic protein isolated from fibrous astrocytes[J].Brain Res,1971;28:351-354.
11 Gomes F C A,Maia C G,Menezes J R L De et al.Cerebellar astrocytes treated by thyroid hormone modulate neuronal proliferation[J].Glia,1999;25:247-255.
12 Maxwell G D,Reid K,Elefanty A et al.Glial cell line-derived neurotrophic factor promotes the development of adrenergic neurons in mouse neural crest cultures[J].Proc Natl Acad Sci USA,1996;93(23):13274-13279.
13 Gray G E,Sanes J R.Lineage of radial glia in the chicken optic tectum[J].Development,1992;114:271-283.
14 Levitt P,Rakic P.Immunoperoxidase localization of glial fibrillary acidic protein in radial glial cells and astrocytes of the developing rhesus monkey brain[J].J Comp Neurol,1980;193(3):815-840.
15 Gotz M,Huttner W B.The cell biology of neurogenesis[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2005;6(10):777-788.
16 Lucin K M,Wyss-Coray T.Immune activation in brain aging and neurodegeneration:too much or too little?[J]Neuron,2009;64(1):110-122.
17 Gehrmann J,Matsumoto Y,Kreutzberg G W.Microglia:Intrinsic immuneffector cell of the brain[J].Brain Res Brain Res Rev,1995;20(3):269-287.
18 Kettenmann H,Hanisch U K,Noda M et al.Physiology of microglia[J].Physiol Rev,2011;91(2):461-553.
19 Saijo K,Winner B,Carson C T et al.A Nurr1/CoREST pathway in microglia and astrocytes protects dopaminergic neurons from inflammation-induced death[J].Cell,2009;137(1):47-59.