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空間微重力環(huán)境及其地基模擬微重力條件對干細(xì)胞影響的研究

2013-01-22 09:29張翠李亮王金福
關(guān)鍵詞:牙周膜成骨骨髓

張翠 李亮 王金福

空間醫(yī)學(xué)研究發(fā)現(xiàn),空間飛行可導(dǎo)致心血管功能障礙、骨密度丟失、肌肉萎縮、免疫功能下降、內(nèi)分泌功能紊亂、空間運(yùn)動(dòng)疾病等多種生理及病理變化。生物個(gè)體的表現(xiàn)是通過細(xì)胞水平表現(xiàn)出來的。因此,空間環(huán)境對離體細(xì)胞的影響越來越受到重視。干細(xì)胞作為一類具有增殖和分化潛能的特殊細(xì)胞,研究和應(yīng)用廣泛,在空間生物醫(yī)學(xué)中的研究也逐漸受到關(guān)注。

對人體有影響的空間環(huán)境主要是微重力和輻射,而微重力作為人們在太空活動(dòng)中不可避免的一個(gè)重要的環(huán)境因素,其對細(xì)胞形態(tài)、增殖、分化和信號傳導(dǎo)方面有廣泛的影響。本文就今年來空間微重力環(huán)境以及地基模擬微重力條件對各種干細(xì)胞影響的研究進(jìn)展進(jìn)行綜述。

一、微重力對間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cell,MSC)的影響

MSC是干細(xì)胞家族的重要成員,來源于發(fā)育早期的中胚層和外胚層。在體內(nèi)或體外特定誘導(dǎo)條件下,MSC可分化為脂肪、骨、軟骨、神經(jīng)、肝、內(nèi)皮、心臟等多種組織細(xì)胞。

1.微重力影響MSC的形態(tài)和增殖:地面模擬微重力實(shí)驗(yàn)表明,相較于正常培養(yǎng)條件下的成纖維細(xì)胞狀態(tài),在微重力環(huán)境中的MSC形態(tài)更加扁平,細(xì)胞匯合密度更低[1];Gershovich等[2]研究發(fā)現(xiàn),在模擬微重力下,骨髓MSC的肌動(dòng)蛋白骨架被破壞,黏著斑蛋白的分布發(fā)生了改變,整合素-α2的表達(dá)增加。他們還發(fā)現(xiàn)表達(dá)VCAM-1的細(xì)胞數(shù)量明顯增加,并且細(xì)胞中ICAM-1的表達(dá)發(fā)生變化,提示微重力會(huì)導(dǎo)致人MSC的微絲發(fā)生可逆性變化,并引起細(xì)胞黏附性改變。Zhang等[3]利用臥式回旋生物反應(yīng)器模擬微重力培養(yǎng)犬MSC,并通過掃描電鏡進(jìn)行檢測,發(fā)現(xiàn)反應(yīng)器中培養(yǎng)的細(xì)胞生長速度、數(shù)量及形態(tài)比靜止?fàn)顟B(tài)培養(yǎng)的細(xì)胞要好。Yuge等[4]通過三維回旋器微重力培養(yǎng)人MSC也得出相似的結(jié)論。但是,Dai等[5]利用回旋器模擬微重力研究大鼠骨髓MSC,結(jié)果顯示鼠骨髓MSC增殖受到抑制,細(xì)胞周期阻斷在G0/G1期。KUBIK空間飛行任務(wù)ISS 12S中進(jìn)行的骨髓MSC空間試驗(yàn)結(jié)果顯示,在太空飛行中的細(xì)胞增殖受到抑制,細(xì)胞周期基因的表達(dá)下降[6]。分析上述兩種結(jié)果出現(xiàn)的原因有可能是進(jìn)行試驗(yàn)的方法不同導(dǎo)致細(xì)胞處于不同的生長條件下,從而對MSC的增殖產(chǎn)生不同的影響。

2.微重力影響MSC的分化:重力是影響MSC分化的一項(xiàng)重要因素:超重狀態(tài)誘導(dǎo)MSC向力學(xué)敏感性細(xì)胞如成骨細(xì)胞和心肌細(xì)胞分化,而失重狀態(tài)則促使MSC向脂肪細(xì)胞等力學(xué)不敏感性細(xì)胞分化[7]。地面模擬微重力實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)在微重力環(huán)境下,MSC不能表達(dá)成骨向分化的標(biāo)志分子,如堿性磷酸酶、Ⅰ型膠原和骨連接蛋白,并且調(diào)節(jié)成骨分化的Runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子-2(Runx2)的表達(dá)受到抑制;但對脂肪分化具有重要促進(jìn)作用的過氧化物酶體增值激活受體-2(PPARγ2)、降脂蛋白、瘦蛋白和葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白4的表達(dá)則顯著增加。這表明微重力抑制MSC的成骨分化,促進(jìn)其成脂分化。通過進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),在微重力環(huán)境中MSC的ERK磷酸化降低,P38磷酸化增加,而這些信號分子與Runx2和PPARγ2的活性調(diào)節(jié)有關(guān)[8]。Meyers等[9]研究發(fā)現(xiàn)在模擬微重力下,整聯(lián)蛋白/MAPK通路活性的降低對人MSC的成骨分化有顯著的影響。該研究團(tuán)隊(duì)還發(fā)現(xiàn),微重力抑制微絲支架的形成及RhoA的活性來抑制人MSC的成骨分化和促成脂細(xì)胞的分化[10]。MSC的分化潛能還與端粒酶的活性有關(guān)[11]。Zheng等[12]進(jìn)一步采用能促進(jìn)Runx2表達(dá)的BMP、促進(jìn)ERK磷酸化的FGF2以及和抑制P38/MAPK的SB203580抑制劑等3種因子,通過調(diào)控人MSC中Runx2和PPARγ2的表達(dá)以及ERK和P38MAPK磷酸化來調(diào)節(jié)微重力下人MSC的成骨分化,表明微重力通過不同的信號抑制人骨髓MSC的成骨分化,促進(jìn)其成脂分化。王會(huì)長等[13]通過與靜態(tài)培養(yǎng)相比較發(fā)現(xiàn),微重力條件下動(dòng)態(tài)三維培養(yǎng)的人骨髓MSC中II型膠原和蛋白聚糖顯著增加,提示微重力促進(jìn)人骨髓MSC的軟骨分化。Yu等[14]研究發(fā)現(xiàn),微重力通過P38MAPK信號誘導(dǎo)ADSC的軟骨分化。Chen等[15]等在模擬微重力及神經(jīng)細(xì)胞分化培養(yǎng)基中培養(yǎng)人MSC,發(fā)現(xiàn)與正常培養(yǎng)比較,微重力中鼠間充質(zhì)細(xì)胞的MAP-2、TH和CHAT的表達(dá)增加,并且隨著時(shí)間的增長,鼠MSC分泌更多的NGF、BDNF和CNTF。上述結(jié)果表明微重力促使間充質(zhì)向神經(jīng)細(xì)胞分化??臻g飛行試驗(yàn)的結(jié)果表明骨髓MSC中表達(dá)改變的基因大部分都與神經(jīng)發(fā)育,神經(jīng)形態(tài),神經(jīng)沖動(dòng)和突觸的傳遞有關(guān)[6]。Luo等[16]還研究發(fā)現(xiàn),微重力刺激MSC向髓核細(xì)胞樣表型的分化。TGF-β1在微重力下促進(jìn)刺激MSC向髓核細(xì)胞樣表型的分化[17]。在特定的誘導(dǎo)條件下,模擬微重力還能促進(jìn)MSC向內(nèi)皮細(xì)胞[18]和心肌細(xì)胞[19]分化。

二、微重力對造血干細(xì)胞(hematopoietic stem cell,HSC)的影響

HSC是骨髓中的干細(xì)胞,具有自我更新并分化為各種血細(xì)胞前體細(xì)胞的能力,最終可生成各種血細(xì)胞,包括紅細(xì)胞、白細(xì)胞和血小板等。

1.微重力影響HSC的增殖和遷移:微重力通過改變骨髓CD34+細(xì)胞的骨架及細(xì)胞周期來改變其遷移能力。在模擬微重力環(huán)境中,骨髓CD34+細(xì)胞的SDF-1α定向遷移顯著減少,F(xiàn)-actin的表達(dá)降低,細(xì)胞周期動(dòng)力學(xué)發(fā)生改變,細(xì)胞周期的S期延長,細(xì)胞周期素A的表達(dá)降低,說明微重力顯著抑制骨髓中CD34+細(xì)胞的遷移能力,抑制細(xì)胞周期的進(jìn)行。Plett等[20]認(rèn)為這也許就是宇宙飛行過程中血液系統(tǒng)異常的原因。CD34+細(xì)胞培養(yǎng)在正常重力下4~6 d增殖3倍,在微重力環(huán)境下的細(xì)胞則不增殖。一個(gè)可能的解釋是在微重力下的細(xì)胞退出G0/G1期比正常對照的要晚[21]。龍星星等[22]研究了人紅白血病細(xì)胞—K562細(xì)胞在RCCS系統(tǒng)中的生長狀況,發(fā)現(xiàn)模擬微重力環(huán)境抑制K562細(xì)胞的增殖,使細(xì)胞周期阻滯于G0/G1期,認(rèn)為這可能是由于在模擬微重力作用下ERK1/2的磷酸化水平下降所導(dǎo)致。研究發(fā)現(xiàn)乘坐Cosmos-2044生物實(shí)驗(yàn)衛(wèi)星14 d宇宙飛行后的大鼠骨髓中紅細(xì)胞、粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞及造血細(xì)胞祖細(xì)胞的數(shù)量與地面對照組相比明顯減少[23]。在航天飛行任務(wù)STS-63及STS-6922中[24],與地面對照組相比,總細(xì)胞的擴(kuò)增數(shù)減少57﹪~84﹪(41.0~65.5倍/10.1~17.6倍);骨髓祖細(xì)胞數(shù)量分別擴(kuò)增2.6~17.5倍與0.9~7.0倍;紅細(xì)胞祖細(xì)胞的擴(kuò)增倍數(shù)也降低83﹪以上。失重還使得大鼠骨髓中部分HSC及單核-巨噬細(xì)胞和紅細(xì)胞的前體細(xì)胞減少[25]。后續(xù)的研究中發(fā)現(xiàn),骨髓CD34+細(xì)胞在旋轉(zhuǎn)壁式生物反應(yīng)器(rotating wall vessel bioreactor,RWVB)環(huán)境中培養(yǎng)4~6 d時(shí),其增殖受到抑制[26]。這些結(jié)果顯示微重力會(huì)直接抑制造血原始細(xì)胞的增殖分化,尤其對紅系原始細(xì)胞的抑制作用更明顯。

2.微重力對HSC分化的影響:Plett等[21]研究發(fā)現(xiàn),在模擬微重力下培養(yǎng)14~18 d的骨髓CD34+細(xì)胞向骨髓細(xì)胞分化而不行紅細(xì)胞分化,表明微重力影響骨髓CD34+細(xì)胞的分化模式。對太空飛行的大鼠進(jìn)行血液學(xué)檢測發(fā)現(xiàn),大鼠的細(xì)胞比容、紅細(xì)胞數(shù)量及血紅蛋白檢測顯著降低,中性粒細(xì)胞及白細(xì)胞有少許增加,骨髓和脾細(xì)胞分化以及促血紅細(xì)胞生成素沒有明顯的改變[27]。收集太空飛行大鼠的骨髓祖細(xì)胞并進(jìn)行恢復(fù)培養(yǎng)后發(fā)現(xiàn),飛行過的大鼠總白細(xì)胞數(shù)量減少,淋巴球以及單核細(xì)胞的絕對數(shù)量也減少,并且相較于地面對照組,實(shí)驗(yàn)組中擁有更少的CD4、CD8、CD2、CD3以及B細(xì)胞,但脾臟淋巴細(xì)胞沒有明顯的差異[28]。龍星星等[22]研究還發(fā)現(xiàn)模擬微重力抑制hemin誘導(dǎo)的K562細(xì)胞分化,紅細(xì)胞生成減少,從而證實(shí)在微重力環(huán)境下“航天貧血癥”的發(fā)生。他們還發(fā)現(xiàn)微重力未抑制GATA-1的表達(dá),認(rèn)為K562分化受到微重力的抑制與GATA-1無關(guān)。

微重力在人臍靜脈血干細(xì)胞向血管內(nèi)皮誘導(dǎo)以及細(xì)胞增殖方面也有重要的作用[29]。從廢棄的人臍靜脈血樣本中分離CD34+單核細(xì)胞,將它在微重力下培養(yǎng)14 d。在培養(yǎng)過程中添加血管內(nèi)皮生長因子的前提下,微重力條件下出現(xiàn)了明顯的3D組織樣集落細(xì)胞增殖。在第4天,培養(yǎng)在微重力下的CD34+細(xì)胞生成了血管樣結(jié)構(gòu),并表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)志。

三、重力對牙周膜干細(xì)胞(periodontal ligament stem cell,PDLSC)的影響

PDLSC是牙周組織再生最直接、最可靠的種子細(xì)胞,也是牙周缺損細(xì)胞治療和基因治療重要的細(xì)胞學(xué)基礎(chǔ)。在牙周病治療、種植體周圍軟硬組織缺損修復(fù)、正畸牙移動(dòng)過程中的修復(fù)與重建中均發(fā)揮重要作用。

1.微重力影響牙周膜干細(xì)胞的形態(tài)和增殖

模擬微重力能促進(jìn)牙周膜干細(xì)胞的增殖和生存能力,改變其形態(tài),并造成微絲結(jié)構(gòu)的解體[30]。這種微絲結(jié)構(gòu)的改變呈時(shí)間依賴性并使細(xì)胞遷移能力下降[31]。微重力環(huán)境下的牙周膜干細(xì)胞呈半球形,少數(shù)鋪展為不規(guī)則扁平或長梭型,生長速度明顯增加[32]。利用微重力環(huán)境,可以獲得大量的體外牙周膜干細(xì)胞,為構(gòu)建工程化的牙周組織奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

2.微重力影響牙周膜干細(xì)胞的分化機(jī)制

在成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,微重力增加牙周干細(xì)胞的礦化沉積,并且礦化相關(guān)基因的表達(dá)上調(diào)[30]。Li等[33]研究發(fā)現(xiàn),Smad2、3和4的表達(dá)在微重力環(huán)境中以一種時(shí)間依賴性的方式顯著增加,p-Smad在30 min的時(shí)候高度表達(dá),第2個(gè)小時(shí)表達(dá)水平達(dá)到峰值(91.32﹪),而SIS3(一種Smad3 磷酸化的特異性抑制劑)的添加導(dǎo)致Col2、ALP、OCN和p-Smad的表達(dá)下降。這表明,在微重力環(huán)境下,Smad信號促進(jìn)牙周干細(xì)胞的成骨分化。李石等[34]研究也得出了相似的結(jié)論。另外,他們還發(fā)現(xiàn),TGF-β1通過Smad信號通路促進(jìn)牙周膜干細(xì)胞的成骨/成牙骨質(zhì)向分化。該研究團(tuán)隊(duì)的進(jìn)一步研究表明,IGF-1在模擬微重力環(huán)境下對牙周膜干細(xì)胞表現(xiàn)出促增殖、促成骨向分化的作用,他們認(rèn)為IGF-1可能通過調(diào)節(jié)干細(xì)胞表達(dá)OPG/RANKL參與破骨細(xì)胞的生成和活化過程[35]。

四、微重力對胚胎干細(xì)胞(embryonic stem cell,ESC )的影響

ESC簡稱ES或EK細(xì)胞是早期胚胎(原腸胚期之前)或原始性腺中分離出來的一類干細(xì)胞,具有體外培養(yǎng)無限增殖、自我更新和多向分化的特性。無論在體外還是體內(nèi)環(huán)境,ES細(xì)胞都能被誘導(dǎo)分化為機(jī)體幾乎所有的細(xì)胞類型。

微重力影響胚胎干細(xì)胞的數(shù)量。Wang等[36]發(fā)現(xiàn),在微重力環(huán)境中胚胎干細(xì)胞的總數(shù)量相較于正常培養(yǎng)明顯減少,但實(shí)驗(yàn)組與對照組之間的細(xì)胞周期并沒有明顯的差異,這表明微重力造成胚胎干細(xì)胞的主要原因并不是損害其增殖而是破壞其貼壁性。同時(shí),他們還發(fā)現(xiàn)單純的微重力對細(xì)胞DNA的損害并不嚴(yán)重,但是微重力會(huì)影響輻射造成的DNA損傷的修復(fù)。因此,微重力從細(xì)胞貼壁性下降,凋亡率增加和阻止受損DNA的修復(fù)等方面來影響胚胎干細(xì)胞。

微重力對胚胎干細(xì)胞的分化具有顯著的影響。研究發(fā)現(xiàn),回旋器中培養(yǎng)的胚胎干細(xì)胞可以分化成具有成熟肝細(xì)胞典型特征的肝細(xì)胞樣細(xì)胞,這些細(xì)胞植入小鼠體內(nèi)可進(jìn)一步的增殖和分化[37]。劉衛(wèi)生等[38]研究了模擬微重力下小鼠胚胎干細(xì)胞擬胚體的形成和分化,結(jié)果表明胚胎干細(xì)胞在模擬微重力條件下可大量快速形成擬胚體,并伴隨有內(nèi)皮樣細(xì)胞、成纖維樣細(xì)胞、肝細(xì)胞樣細(xì)胞、血管樣細(xì)胞及可自發(fā)搏動(dòng)的心肌樣細(xì)胞等不同類型組織細(xì)胞的分化。

五、微重力對肝臟干細(xì)胞(liver stem cell)的影響

姚新宇等[39]發(fā)現(xiàn)在模擬微重力三維微載體培養(yǎng)中,肝干細(xì)胞呈三維立體結(jié)構(gòu)生長,微重力有利于細(xì)胞快速增殖并維持細(xì)胞的活性和表型。同時(shí)。WB-F344肝干細(xì)胞的模擬微重力培養(yǎng)也發(fā)現(xiàn),WB-F344細(xì)胞增殖較靜止?fàn)顟B(tài)有明顯的增加[40]。但是,Talbot等[41]在STS-126飛行試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),太空環(huán)境中PICM-19豬肝細(xì)胞的生長和分化未有明顯的影響,飛行中PICM-19細(xì)胞密達(dá)到79﹪,幾乎沒有凋亡和壞死。曲鑫建等[40]通過研究模擬微重力對WB-F334肝干細(xì)胞表征分子表達(dá)的影響,發(fā)現(xiàn)在模擬微重力下肝干細(xì)胞特異性基因甲胎蛋白(AFP)的表達(dá)強(qiáng)度及AFP陽性細(xì)胞的數(shù)量均顯著高于靜止培養(yǎng)組,而白蛋白(ACB)mRNA的表達(dá)強(qiáng)度和ACB陽性細(xì)胞均低于對照組,說明模擬微重力能較好的維持肝干細(xì)胞的特性。

六、微重力對其他干細(xì)胞的影響

Chiang等[42]發(fā)現(xiàn)微重力能促進(jìn)人神經(jīng)干細(xì)胞的增殖。研究發(fā)現(xiàn)微重力環(huán)境誘導(dǎo)β-腎上腺受體,上調(diào)cAMP形成和激活PKA和CREB(cAMP效應(yīng)元件結(jié)合蛋白)通路。在微重力環(huán)境中細(xì)胞內(nèi)的線粒體中受CREB調(diào)節(jié)的基因,包括PGC1α(PPAR共激活劑1α)、NRF1/2和線粒體轉(zhuǎn)錄因子A的表達(dá)量顯著增加,并且ATP和線粒體的量也是增加的。因此,Chiang等[42]認(rèn)為微重力誘導(dǎo)人神經(jīng)干細(xì)胞的增殖是通過增加線粒體的功能。

模擬微重力系統(tǒng)也可促進(jìn)表皮干細(xì)胞的增殖和分化。Lei等[43]利用回旋生物反應(yīng)器來模擬微重力條件,研究微重力環(huán)境下人表皮干細(xì)胞(hEpSC)的增殖和分化。從兒童包皮中分離的hEpSC在回旋生物反應(yīng)器中培養(yǎng)15 d。結(jié)果表明,在模擬微重力條件下人表皮干細(xì)胞表現(xiàn)出更強(qiáng)的增殖和生存能力。同時(shí),免疫染色分析顯示Ki67+細(xì)胞所占的比例在模擬微重力下高于靜態(tài)培養(yǎng)。培養(yǎng)至第10天時(shí),微重力下表皮干細(xì)胞表達(dá)的外皮蛋白較正常條件下的減少。組織學(xué)分析表明在微重力環(huán)境中表皮干細(xì)胞是聚集的,并且形成了三維的表皮結(jié)構(gòu)。這項(xiàng)研究為多層表皮結(jié)構(gòu)的構(gòu)建提供了新的思路。

七、結(jié)語

本文總結(jié)了以往空間及地基模擬環(huán)境中微重力對干細(xì)胞影響的研究進(jìn)展。盡管這種研究已在多種干細(xì)胞中展開,但是大部分的研究仍停留在細(xì)胞形態(tài)和數(shù)量等表型變化上,空間環(huán)境對干細(xì)胞影響的具體機(jī)制尚未清楚,有待更深入的研究。此外,空間生命科學(xué)的研究大部分都是通過地面模擬實(shí)驗(yàn)來進(jìn)行的,與空間環(huán)境的復(fù)雜性和真實(shí)性的差異導(dǎo)致人們無法得到正確的,有說服力的結(jié)論。因此,為了使空間生命科學(xué)的研究更加順利和準(zhǔn)確,無論是地面還是飛行實(shí)驗(yàn),都必須有相應(yīng)的硬件設(shè)備,需要基于地面先進(jìn)培養(yǎng)技術(shù)和空間飛行環(huán)境的考慮,發(fā)展高度智能化的專用空間儀器、設(shè)備和合理的實(shí)驗(yàn)方法和技術(shù)。

1 Merzlikina NV, Buravkova LB, Romanov YA, et al.The primary effects of clinorotation on cultured human mesenchymal stem cells[J]. J Gravit Physiol, 2004,11(2):193-194.

2 Gershovich JG, Buravkova LB. Morphofunctional status and osteogenic differentiation potential of human mesenchymal stromal precursor cells during in vitro modeling of microgravity effects[J]. Bull Exp Biol Med,2007,144(4): 608-613.

3 Zhang Y, Chen H, Huang H, et al. Mechanical environment of rotating bioreactor and its effect on cell growth[J]. Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi, 2006, 23(2): 400-404.

4 Yuge L, Kajiume T, Tahara H, et al. Microgravity potentiates stem cell proliferation while sustaining the capability of differentiation[J]. Stem Cells Dev, 2006,15(6): 921-929.

5 Dai ZQ, Wang R, Ling SK, et al. Simulated microgravity inhibits the proliferation and osteogenesis of rat bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Cell Prolif, 2007,40(5): 671-684.

6 Monticone M, Liu Y, Pujic N, et al. Activation of nervous system development genes in bone marrow derived mesenchymal stem cells following spaceflight exposure[J].J Cell Biochem, 2010, 111(2): 442-452

7 Huang Y, Dai ZQ, Ling SK, et al. Gravity, a regulation factor in the differentiation of rat bone marrow mesenchymal stem cells[J]. J Biomed Sci, 2009,16: 87.

8 Zayzafoon M, Gathings WE, McDonald JM, et al. Modeled microgravity inhibits osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells and increases adipogenesis[J].Endocrinology, 2004, 145(5): 2421-2432.

9 Meyers VE, Zayzafoon M, Gonda SR, et al. Modeled microgravity disrupts collagen I/integrin signaling during osteoblastic differentiation of human mesenchymal stem cells[J]. J Cell Biochem, 2004, 93(4): 697-707.

10 Meyers VE, Zayzafoon M, Douglas JT, et al. RhoA and cytoskeletal disruption mediate reduced osteoblastogenesis and enhanced adipogenesis of human mesenchymal stem cells in modeled microgravity[J]. J Bone Miner Res, 2005,20(10): 1858-1866.

11 Sun L, Gan B, Fan Y, et al. Simulated microgravity alters multipotential differentiation of rat mesenchymal stem cells in association with reduced telomerase activity[J]. Acta Astronautica, 2008, 63(7-10): 968-973.

12 Zheng Q, Huang GP, Yang JF, et al. Could the effect of modeled microgravity on osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells be reversed by regulation of signaling pathways? [J]. Biological Chemistry, 2007,388(7): 755-763.

13 王會(huì)才, 張震宇, 辛偉光. 微重力條件下動(dòng)態(tài)三維誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化為軟骨細(xì)胞:與靜態(tài)培養(yǎng)的比較[J]. 中國組織工程研究與臨床康復(fù), 2007, 11(10):1812-1814.

14 Yu B, Yu D, Cao L, et al. Simulated microgravity using a rotary cell culture system promotes chondrogenesis of human adipose-derived mesenchymal stem cells via the p38 MAPK pathway[J]. Biochem Biophys Res Commun,2011, 414(2): 412-418.

15 Chen J, Liu R, Yang Y, et al. The simulated microgravity enhances the differentiation of mesenchymal stem cells into neurons[J]. Neurosci Lett, 2011, 505(2): 171-175.

16 Luo W, Xiong W, Qiu M, et al. Differentiation of mesenchymal stem cells towards a nucleus pulposus-like phenotype utilizing simulated microgravity In vitro[J].J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci, 2011, 31(2):199-203.

17 韓成龍, 姜超. 模擬微重力下轉(zhuǎn)化生長因子β1誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向髓核樣細(xì)胞分化[J]. 中國脊柱脊髓雜志, 2011, 21(5): 358-364.

18 Zhang X, Nan Y, Wang H, et al. Model microgravity enhances endothelium differentiation of mesenchymal stem cells[J]. Naturwissenschaften, 2013, 100(2): 125-133.

19 黃燕, 楊芬, 戴忠銓, 等.重力因素對骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞心肌樣細(xì)胞分化的影響. 2005. 天津: 中國生物工程學(xué)會(huì)第四次會(huì)員代表大會(huì)暨學(xué)術(shù)討論會(huì)論文摘要集.

20 Plett PA, Abonour R, Frankovitz SM, et al. Impact of modeled microgravity on migration, differentiation, and cell cycle control of primitive human hematopoietic progenitor cells[J]. Exp Hematol, 2004, 32(8): 773-781.

21 Plett P A, Frankovitz SM, Abonour R, et al. Proliferation of human hematopoietic bone marrow cells in simulated microgravity[J]. In Vitro Cell Dev Biol Anim, 2001, 37(2):73-78.

22 龍星星, 鐘田雨, 平寶紅, 等. 模擬微重力對K562細(xì)胞增殖的影響[J].微循環(huán)學(xué)雜志, 2011, 21(1): 21-23.

23 Vacek A, Michurina TV, Serova LV, et al. Decrease in the number of progenitors of erythrocytes (BFUe, CFUe),granulocytes and macrophages (GM-CFC) in bone marrow of rats after a 14-day flight onboard the Cosmos-2044 Biosatellite[J]. Folia Biol (Praha), 1991,37(1): 35-41.

24 Davis TA, Wiesmann W, Kidwell W, et al. Effect of spaceflight on human stem cell hematopoiesis: suppression of erythropoiesis and myelopoiesis[J]. J Leukoc Biol, 1996,60(1): 69-76.

25 Domaratakaya EI, Michurina TV, Burverova EI, et al.Studies on clonogenic hemopoietic cells of vertebrate in space: problems and perspectives[J]. Adv Space Res, 2002,30(4): 771-776.

26 Plett PA, Frankovitz SM, Abonour R, et al. Proliferation of human hematopoietic bone marrow cells in simulated microgravity[J]. In Vitro Cell Dev Biol Anim, 2001, 37(2):73-78.

27 Lange RD, Andrews RB, Gibson LA, et al. Hematological measurements in rats flown on Spacelab shuttle, SL-3[J].Am J Physiol, 1987, 252(2 Pt 2): R216-221.

28 Chiki AT, Gibson LA, Jago TL, et al. Effects of spaceflight on rat peripheral blood leukocytes and bone marrow progenitor cells[J]. J Leukoc Biol, 1996, 60(1): 37-43.

29 Chiu B, Wan JZ, Abley D, et al. Induction of vascular endothelial phenotype and cellular proliferation from human cord blood stem cells cultured in simulated microgravity[J]. Acta Astronaut, 2005, 56(9-12): 918-922.

30 Li S, Ma Z, Qian H, et al. NASA-approved rotary bioreactor enhances proliferation and osteogenesis of human periodontal ligament stem cells[J]. Stem Cells Dev,2009, 18(9): 1273-1282.

31 董海波, 李艷萍, 牛玉梅, 等. 模擬微重力對人牙髓干細(xì)胞微絲及細(xì)胞遷移能力的影響[J]. 口腔醫(yī)學(xué)研究,2012, 28(7): 673-678.

32 馬兆峰, 李石, 牛忠英. 模擬微重力培養(yǎng)環(huán)境下牙周膜干細(xì)胞生長狀態(tài)的研究[J].廣東牙病防治, 2011, 19(9):451-454.

33 Li Y, Li S, Niu ZY, et al. The effect of Smads signal pathway on the osteogenesis of human periodontal ligament stem cells in simulated microgravity[J]. Shanghai Kou Qiang. Yi Xue, 2012, 21(3): 246-250.

34 李彥, 李石, 牛忠英, 等. 微重力環(huán)境下Smads信號通路對人牙周膜干細(xì)胞成骨向分化的影響[J].上海口腔醫(yī)學(xué), 2012, 21(3): 246-250.

35 李石. 模擬微重力環(huán)境對人牙周膜干細(xì)胞增殖分化的影響及其機(jī)制的研究[M].西安:第四軍醫(yī)大學(xué), 2009.

36 Wang Y, An L, Jiang YD, et al. Effects of simulated microgravity on embryonic stem cells[J]. PLoS One, 2011,6(12): e29214.

37 Wang Y, Zhang Y, Zhang SC, et al. Rotating microgravitybioreactor cultivation enhances the hepatic differentiation of mouse embryonic stem cells on biodegradable polymer scaffolds[J]. Tissue Eng Part A, 2012, 18(21-22):2376-2385.

38 劉衛(wèi)生, 英杰, 劉濤, 等. 模擬微重力條件下小鼠擬胚體形成及分化的初步觀察[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào), 2008,30(17): 1594-1597.

39 姚新宇, 曹陽, 杜興冉, 等. 模擬微重力下三維培養(yǎng)對人肝干細(xì)胞增殖和分化的影響[J]. 南京醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2011,31(8): 1115-1122.

40 曲鑫建, 豐美福, 孫世鐸. 模擬微重力條件下對WB-F344肝干細(xì)胞表征分子表達(dá)的影響[J]. 中國生物工程雜志, 2007, 27(10): 17-21.

41 Talbot NC, Caperna TJ, Blomberg LA, et al. The effects of space flight and microgravity on the growth and differentiation of PICM-19 pig liver stem cells. In Vitro Cell Dev Biol Anim[J]. 2010,46(6): 502-515.

42 Chiang MC, Lin H, Cheng YC, et al. Beta-adrenoceptor pathway enhances mitochondrial function in human neural stem cells via rotary cell culture system[J]. J Neurosci Methods, 2012, 207(2): 130-136.

43 Lei XH, Ning LN, Cao YJ, et al. NASA-approved rotary bioreactor enhances proliferation of human epidermal stem cells and supports formation of 3D epidermis-like structure[J]. PLoS One, 2011, 6(11): e26603.

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