韓 杰邊連全劉顯軍張 飛楊侃侃
(1.沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院,沈陽(yáng) 110866;2.洛陽(yáng)師范學(xué)院生命科學(xué)系,洛陽(yáng) 471022;3.沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)科研種豬場(chǎng),沈陽(yáng) 110866)
仔豬的免疫保護(hù)主要來(lái)自2個(gè)方面,一是從母乳中獲得的被動(dòng)免疫保護(hù),二是自然狀態(tài)下仔豬自身免疫系統(tǒng)發(fā)育形成的主動(dòng)免疫保護(hù)。3~4周齡的仔豬由于自身免疫系統(tǒng)尚未發(fā)育完善,體液免疫產(chǎn)生的抗體水平和細(xì)胞免疫功能還很低,此時(shí)若實(shí)施斷奶,仔豬易發(fā)生免疫應(yīng)激,出現(xiàn)生長(zhǎng)停滯、飼料效率降低、腹瀉等現(xiàn)象[1-3]。此外,免疫應(yīng)激還是導(dǎo)致“仔豬早期斷奶綜合征”的重要因素之一。因此,采取一定的營(yíng)養(yǎng)措施增強(qiáng)斷奶仔豬的免疫功能,對(duì)緩解斷奶應(yīng)激所致的生長(zhǎng)抑制具有重要意義。
刺五加多糖(Acanthopanax senticosus polysaccharide,ASPS)是從刺五加根中分離出的水溶性多糖,具有良好的抗腫瘤、調(diào)節(jié)免疫、微生態(tài)調(diào)節(jié)、抗感染等功效[4-7]。近年來(lái),ASPS在藥理研究和臨床應(yīng)用上備受關(guān)注,但在畜禽生產(chǎn)中的研究和應(yīng)用卻鮮見報(bào)道。本試驗(yàn)以早期斷奶仔豬為試驗(yàn)動(dòng)物,旨在研究ASPS對(duì)斷奶仔豬生長(zhǎng)及免疫指標(biāo)的影響,并探討其在仔豬飼糧中的最佳添加水平,為ASPS作為免疫調(diào)控劑在仔豬飼糧中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。
選取(28±3)日齡、平均體重為(7.13±0.67)kg的“長(zhǎng)白×約克夏”二元雜交斷奶仔豬,采用半開放豬舍,地面飼養(yǎng),自然通風(fēng),自由采食和飲水,免疫和驅(qū)蟲程序按豬場(chǎng)常規(guī)同步進(jìn)行?;A(chǔ)飼糧是參照NRC(1998)仔豬營(yíng)養(yǎng)需要配制的粉狀配合飼料,基礎(chǔ)飼糧組成及營(yíng)養(yǎng)水平見表1。
表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營(yíng)養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet(air-dry basis) %
將96頭斷奶仔豬隨機(jī)分為6組,每組4個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)4頭豬,試驗(yàn)期21 d。對(duì)照組飼喂不添加抗生素的基礎(chǔ)飼糧,試驗(yàn)組飼喂在基礎(chǔ)飼糧中分別添加 150、300、500、800 和 1 000 mg/kg ASPS的試驗(yàn)飼糧。
ASPS:以刺五加根為原料,采用熱水浸提乙醇分級(jí)沉淀工藝提取,苯酚-硫酸法測(cè)得多糖純度為 82.5%。
主要儀器:LRHS-150B型恒溫恒濕培養(yǎng)箱(北京萊凱博儀器設(shè)備有限公司)、BioTek-Synergy2多功能酶標(biāo)儀(美國(guó)伯騰儀器有限公司)、Uritest-3000型全自動(dòng)血細(xì)胞分析儀(優(yōu)利特集團(tuán)有限公司)、過(guò)濾除菌裝置和濾膜、96孔聚丙乙烯酶聯(lián)反應(yīng)板96孔細(xì)胞培養(yǎng)板(平底)。
主要試劑:稀釋液[0.05 mol/L pH 9.6 碳酸鹽緩沖液、0.01 mol/L pH 7.2 磷酸鹽緩沖液(PBS)]、洗滌液(PBS中加 0.05%吐溫 -20)、封閉液(PBS中加10%胎牛血清)、鄰苯二胺(OPD,美國(guó)Sigma公司)、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記兔抗豬免疫球蛋白G(HRP-兔抗豬IgG)、臺(tái)盼藍(lán)(美國(guó)Sigma公司)、四甲基偶氮唑鹽(MTT)、刀豆球蛋白A(ConA,美國(guó)Sigma公司)、RPMI-1640完全培養(yǎng)液(美國(guó)HyClone公司)、淋巴細(xì)胞分離液。
試驗(yàn)于開始和結(jié)束時(shí),清晨稱量空腹仔豬的個(gè)體重,記錄始重(initial body weight,IBW)和末重(final body weight,F(xiàn)BW),計(jì)算每頭仔豬的平均日增重(average daily gain,ADG);準(zhǔn)確記錄各重復(fù)中仔豬的投料量和余料量,計(jì)算每頭仔豬的平均日采食量(average daily feed intake,ADFI);根據(jù)ADG和ADFI計(jì)算料重比(feed/gain,F(xiàn)/G);每日觀察仔豬的腹瀉情況,記錄每天的腹瀉頭次,計(jì)算腹瀉率(diarrhea rate,DR)。
試驗(yàn)第14天,每個(gè)重復(fù)隨機(jī)取1頭仔豬,肌肉注射1 mg/kg體重雞卵清白蛋白(ovalbumin,OVA,美國(guó)Sigma公司,純度>90%)。試驗(yàn)第21天,取每個(gè)重復(fù)中第14天注射過(guò)OVA的仔豬,用真空采血管前腔靜脈采集血液2份,1份用不帶有肝素的普通真空采血管采血5 mL,3 500 r/min離心5 min,分離血清,-20℃冰箱凍存,用于測(cè)定血清特異OVA抗體和皮質(zhì)醇水平;1份用肝素抗凝管采血5 mL,于4℃冰箱保存,用于外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率(lymphocyte proliferation,LP)的測(cè)定。
1.5.1 生長(zhǎng)性能
1.5.2 腹瀉率
1.5.3 外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率
外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率測(cè)定采用四甲基偶氮唑鹽(MTT)微量酶反應(yīng)比色法(簡(jiǎn)稱MTT法),在10 mL離心管中加入4 mL淋巴細(xì)胞分離液,然后沿管壁緩慢加入3 mL肝素抗凝血,2 500 r/min離心20 min,取中間白細(xì)胞層約1 mL,加入3~5倍體積的RPMI-1640完全培養(yǎng)液洗滌3次,每次2 000 r/min離心10 min,棄上清。然后將細(xì)胞懸浮于RPMI-1640完全培養(yǎng)液中,用臺(tái)盼藍(lán)染色,計(jì)數(shù)活細(xì)胞(>95%),調(diào)整細(xì)胞濃度為2×106個(gè)/mL。
向細(xì)胞懸液中加入ConA(終濃度為5 μg/mL),另設(shè)一對(duì)照組加入等體積的 RPMI-1640完全培養(yǎng)液,然后加入到96孔培養(yǎng)板中,每孔100 μL,每個(gè)樣品設(shè) 3 個(gè)重復(fù),置 5%CO2、37℃培養(yǎng)72 h。在培養(yǎng)結(jié)束前4小時(shí),于培養(yǎng)板每孔內(nèi)加入10 μL MTT(初始濃度為5 mg/mL)繼續(xù)培養(yǎng)4 h。培養(yǎng)結(jié)束后,每孔再加入100 μL 10%十二烷基硫酸鈉(SDS)-0.04 mol/L HCl溶液,30 min后用酶標(biāo)儀于570 nm波長(zhǎng)下測(cè)定各孔光吸收值(OD值)。
淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率用刺激指數(shù)(SI)表示,SI=ConA刺激孔OD570nm/對(duì)照孔OD570nm。
1.5.4 血清特異性O(shè)VA抗體水平
采用酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)法測(cè)定血清特異性O(shè)VA抗體水平。首先用稀釋液與OVA按照50∶1混合制成包被液,加入酶聯(lián)反應(yīng)板各孔,每孔200 μL,37℃包被2 h。棄去孔內(nèi)液體后,用洗滌液注滿各孔,洗滌3次,每次3 min,然后棄去洗滌液;每孔加入100 μL封閉液封閉1 h,洗滌后得包被平板。將100 μL用稀釋液稀釋40倍的待檢血清加入包被板各孔,每個(gè)樣本3個(gè)重復(fù),37℃反應(yīng)1 h。再用洗滌液注滿各孔,洗滌3次后,每孔加入100 μL HRP-兔抗豬IgG,37℃反應(yīng)30 min。再用洗滌液注滿各孔,洗滌3次后,每孔加入新配制的底物(40 mg OPD溶于100 mL pH 5的磷酸-檸檬酸緩沖液中,臨用前加入0.15 mL 30%H2O2150 μL,37 ℃反應(yīng) 30 min。最后,每孔加入50 μL 2 mol/L H2SO4,終止反應(yīng)。最后用酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm處的OD值。
1.5.5 血清皮質(zhì)醇水平
采用皮質(zhì)醇ELISA試劑盒(北京鼎國(guó)昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司)測(cè)定血清皮質(zhì)醇水平。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)經(jīng)Excel 2003初步整理,然后利用SPSS 11.5統(tǒng)計(jì)軟件中的一般線性模型(GLM)進(jìn)行方差分析,對(duì)不同ASPS梯度的飼糧處理效應(yīng)進(jìn)行線性和二次曲線回歸分析,采用Duncan氏法進(jìn)行多重比較檢驗(yàn),P<0.05時(shí)確定為差異顯著。并參照文獻(xiàn)[8-9]的分析方法,通過(guò) SPSS 11.5系統(tǒng)的二次曲線回歸分析以及broken-1ine分析,求獲得最大生長(zhǎng)速度的添加水平。
由表2可知,各組仔豬的IBW差異均不顯著(P>0.05);500 mg/kg ASPS組和 800 mg/kg ASPS組仔豬的FBW均極顯著高于對(duì)照組(P<0.01),1 000 mg/kg ASPS 組顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。飼糧中添加ASPS對(duì)仔豬的ADFI和F/G影響不顯著(P>0.05),但能顯著提高仔豬的ADG(P<0.05),隨ASPS添加水平增加,F(xiàn)BW 和ADG均呈二次曲線變化(P<0.01),F(xiàn)/G呈線性改善(P<0.05)。通過(guò)對(duì) ADG的broken-1ine分析和二次曲線回歸分析可知,獲得最大生長(zhǎng)速度的添加水平分別為869和728 mg/kg,可見,在本試驗(yàn)條件下,ASPS在斷奶仔豬飼糧中的添加量以800 mg/kg為宜。
由表3可知,飼糧中添加ASPS能顯著降低仔豬的腹瀉率(P<0.05)。與對(duì)照組相比,飼糧中添加300(P <0.05)、500(P <0.01)和 800 mg/kg ASPS(P<0.01)降低了仔豬的腹瀉率。通過(guò)對(duì)不同ASPS梯度的飼糧處理效應(yīng)進(jìn)行線性和二次曲線回歸分析可知,隨ASPS添加水平的增加,腹瀉率呈二次曲線變化(P<0.01)。
表2 ASPS對(duì)斷奶仔豬生長(zhǎng)性能的影響Table 2 Effects of ASPS supplementation on growth performance of weaner piglets
表3 ASPS對(duì)斷奶仔豬腹瀉率的影響Table 3 Effects of ASPS supplementation on diarrhea ratio of weaner piglets
由表4可知,飼糧中添加不同水平ASPS能顯著提高仔豬外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率(P<0.05)。與對(duì)照組相比,500 mg/kg ASPS組(P<0.05)、800 mg/kg ASPS 組(P <0.01)、1 000 mg/kg ASPS組(P<0.05)仔豬外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率顯著或極顯著升高。隨ASPS添加水平的增加,外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率呈線性變化(P<0.01)。飼糧中添加不同水平的ASPS對(duì)仔豬血清特異性O(shè)VA抗體水平影響均不顯著(P>0.05)。添加ASPS能顯著降低仔豬血清皮質(zhì)醇水平(P<0.05),其中,飼糧中添加500、800和1 000 mg/kg ASPS顯著降低了仔豬血清皮質(zhì)醇水平(P<0.05),隨ASPS添加水平的增加,血清皮質(zhì)醇水平呈線性變化(P <0.01)。
目前,將ASPS應(yīng)用于斷奶仔豬生產(chǎn)中的研究還未見報(bào)道,但有將刺五加水提物應(yīng)用于仔豬生產(chǎn)中的相關(guān)報(bào)道。例如,劉合軍等[10]在飼糧中添加0.1%刺五加水提物顯著提高了早期斷奶仔豬的ADFI和ADG,并顯著防治了早期斷奶仔豬腹瀉。燕富永[11]研究表明,0.1%刺五加水提物顯著提高了仔豬ADG,極顯著降低了飼料轉(zhuǎn)化效率(FCR)。本試驗(yàn)結(jié)果表明,適宜水平的ASPS能顯著提高斷奶仔豬ADG和降低仔豬腹瀉率,這與前述的研究結(jié)果基本一致。但本試驗(yàn)中ASPS對(duì)ADFI及F/G無(wú)顯著影響,這與前述在仔豬飼糧中添加刺五加水提物的效果不一致,究其原因,一方面可能因?yàn)榇涛寮铀嵛锱c刺五加多糖的成分差異(刺五加水提物是刺五加中多種成分的混合物,除含有ASPS外,還含有刺五加苷、黃酮、微量元素和氨基酸等)所致;另一方面,可能因?yàn)锳SPS味辛、微苦,而豬的味覺和嗅覺非常靈敏,這可能是導(dǎo)致ASPS對(duì)仔豬ADFI無(wú)顯著影響的原因。對(duì)試驗(yàn)1~21 d ADG的broken-1ine分析和二次回歸分析,獲得最大生長(zhǎng)速度的最佳添加水平分別為869和728 mg/kg,可見,結(jié)合本試驗(yàn)ASPS的添加水平,APS在斷奶仔豬飼糧中的添加量以800 mg/kg為宜。
表4 ASPS對(duì)斷奶仔豬外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率、血清特異性O(shè)VA抗體和皮質(zhì)醇水平的影響Table 4 Effects of ASPS supplementation on peripheral blood lymphocyte proliferation,serum specific ovalbumin antibody and cortisol levels of weaner piglets
在ASPS影響細(xì)胞免疫方面,如謝蜀生等[12]研究表明,在小鼠體內(nèi)注射ASPS對(duì)小鼠全脾細(xì)胞以及去T細(xì)胞后的脾細(xì)胞都有強(qiáng)的促有絲分裂作用;孟繁磊等[13]研究表明,刺五加葉均一多糖組分對(duì)體外培養(yǎng)的小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖具有顯著的促進(jìn)作用。淋巴細(xì)胞增殖(轉(zhuǎn)化率)是評(píng)價(jià)細(xì)胞免疫功能的一個(gè)重要指標(biāo)[14]。本試驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),ASPS可以顯著提高斷奶仔豬外周血淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率,這與前述的以往研究結(jié)果一致,提示ASPS有增強(qiáng)機(jī)體的細(xì)胞免疫功能的作用,對(duì)免疫系統(tǒng)發(fā)育還不完善的早期斷奶仔豬來(lái)說(shuō),細(xì)胞免疫功能的改善可以在一定程度上增強(qiáng)機(jī)體對(duì)微生物入侵和疾病的抵抗能力。
在ASPS影響體液免疫研究方面,Han等[15]從刺五加組織培養(yǎng)的果實(shí)中分離獲得一種均一化多糖可增加小鼠分泌免疫球蛋白M(IgM)的B細(xì)胞數(shù)量,提示ASPS對(duì)小鼠體液免疫功能具有一定影響。本試驗(yàn)通過(guò)給仔豬注射OVA抗體使仔豬致敏以評(píng)價(jià)體液免疫水平,結(jié)果表明ASPS對(duì)仔豬血清特異性O(shè)VA抗體水平影響不顯著,提示ASPS對(duì)仔豬體液免疫功能影響不顯著,這與前述的研究結(jié)果不一致,分析這種結(jié)果的差異可能是研究動(dòng)物小鼠和仔豬的種屬差異所致。
皮質(zhì)醇是由下丘腦-垂體-腎上腺軸分泌的負(fù)反饋調(diào)節(jié)免疫反應(yīng)的重要成分,其水平高低可作為衡量應(yīng)激程度的一個(gè)重要指標(biāo)[16]。Founderburke等[17]研究了心理、溫度、營(yíng)養(yǎng)3種應(yīng)激因素對(duì)28日齡斷奶仔豬生理和生長(zhǎng)的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)環(huán)境溫度應(yīng)激組仔豬(環(huán)境溫度從斷奶前29℃降至斷奶后13℃)比自然吮乳組仔豬增重顯著加快,斷奶心理應(yīng)激組和環(huán)境溫度應(yīng)激組血液生長(zhǎng)激素和胰島素水平顯著升高,而營(yíng)養(yǎng)應(yīng)激組仔豬出現(xiàn)失重,血清胰島素水平顯著降低,血清皮質(zhì)醇水平顯著升高。本試驗(yàn)中ASPS使仔豬血清皮質(zhì)醇水平顯著降低,表明ASPS有緩解應(yīng)激的作用,這也可能是ASPS促進(jìn)斷奶仔豬生長(zhǎng)的原因之一。
①飼糧中添加ASPS可以顯著提高斷奶仔豬的ADG,改善血液免疫指標(biāo),降低仔豬的應(yīng)激反應(yīng)和腹瀉的發(fā)生。
②在本試驗(yàn)條件下,ASPS在仔豬飼糧中的添加量以800 mg/kg效果最好。
[1]BARNETT K L,KORNEGAY E T,RISLEY C R,et al.Characterization of creep feed consumption and its subsequent effects on immune response,scouring index and performance of weanling pigs[J].Journal of Animal Science,1989,67(10):2698 -2708.
[2]HEDEMANN M S,JENSEN B.Variations in enzyme activity in stomach and pancreatic tissue and digesta in piglets around weaning[J].Archives of Animal Nutrition,2004,58(1):47 -59.
[3]MCGLONE J,POND W G.Pig production:biological principles and applications[M].New York:Delmar Learning Inc.,2003:23.
[4]袁學(xué)千,王淑梅,高權(quán)國(guó).刺五加多糖增強(qiáng)小鼠免疫功能實(shí)驗(yàn)研究[J].中醫(yī)藥學(xué)報(bào),2006,32(4):48 -49.
[5]PARK E J,NAN J X,ZHAO Y Z,et al.Water-soluble polysaccharide from Eleutherococcus senticosus stems attenuates fulminant hepatic failure induced by D-galactosamine and lipopolysaccharide in mice[J].Basic Clinical Pharmacology Toxicology,2004,94(6):298 -304.
[6]LEE S,SHIN D S,OH K B,et al.Antibacterial compounds from the leaves of Acanthopanax senticosus[J].Archives Pharmacal Research,2003,26(1):40-42.
[7]YOON T J,YOO Y C,LEE S W.Anti-metastatic activity of Acanthopanax senticosus extract and its possible immunological mechanism of action[J].Journal of Ethnopharmacology,2004,93(2/3):247 -253.
[8]MCPHERSON R L,WU F J,KIM G S W.Growth and compositional changes of fetal tissues in pigs[J].Jounal of Animal Science,2004,82(9):2534 -2540.
[9]JI F,WU G J,BLANTON R,et al.Changes in weight and composition various tissues of pregnant gilts and their nutritional implications[J].Journal of Animal Science,2005,83(2):366 -375.
[10]劉合軍,孔祥峰,尹富貴,等.刺五加提取物對(duì)早期斷奶仔豬生長(zhǎng)性能和血清生化參數(shù)的影響[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2006(18):993-998.
[11]燕富永.日糧添加刺五加提取物減緩仔豬斷奶應(yīng)激和促生長(zhǎng)機(jī)理研究[D].碩士學(xué)位論文.武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2008:35 -50.
[12]謝蜀生,呂秀鳳,秦鳳華,等.刺五加多糖免疫調(diào)節(jié)機(jī)理初探[J].中華微生物學(xué)和免疫學(xué)雜志,1989,9(3):153 -155.
[13]孟繁磊,陳瑞戰(zhàn),魏春雁,等.刺五加葉多糖的分離純化及免疫活性研究[J].特產(chǎn)研究,2011(1):12-15.
[14]LIU Y L,LI D F,GONG L M,et al.Effets of fish oi1 supplementation on the performance and the immunological,adrenal,and somatotropic responses of weaned pigs after an Escherichia coli lipopolysaccharide challenge[J].Journal of Animal Science,2003,81(11):2758-2765.
[15]HAN S B,YOON Y D,AHN H J,et al.Toll-like receptor-mediated activation of B cells and macrophages by polysaccharide isolated from cell culture of Acanthopanax senticosus[J].International lmmunopharmacology,2003,3(9):1301 -1312.
[16]BERTINI R M,BAINCHI M,GHEZZI P.Adrenalectomy sensitizes mice to the lethal effects of interleukin 1 and tumor necrosis factor[J].Journal of Experimental Medicine,1988,167(5):1708 -1712.
[17]FOUNDERBURKE DW,SEERLEYRW.The effects of postweaning stressors on pig weight change,blood,liver and digestive tract characteristics[J].Journal of Animal Science,1990,68(1):155 -162.