陳今朝,王劍鋒*,王慧超,譚永忠
(1.長(zhǎng)江師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,重慶 408100;2東華理工大學(xué)生物系,江西 撫州 344000)
熱穩(wěn)定酸性β-葡萄糖苷酶的分離純化及其酶學(xué)性質(zhì)
陳今朝1,王劍鋒2,*,王慧超1,譚永忠1
(1.長(zhǎng)江師范學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,重慶 408100;2東華理工大學(xué)生物系,江西 撫州 344000)
耐酸性黑曲霉菌株Aspergillus niger L.的菌絲體破碎液依次經(jīng)過(guò)乙醇沉淀、離子交換層析和凝膠過(guò)濾等步驟處理,獲得電泳純的β-葡萄糖苷酶,SDS-PAGE顯示其分子質(zhì)量為125.7kD。β-葡萄糖苷酶水解對(duì)硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷的最適pH值為3.0~4.0,最適溫度為70℃,表觀米氏常數(shù)(Km)值為2.35mmol/L,表觀kcat/Km值為2.99×104L/(mol·s);水解京尼平苷、水楊苷的表觀kcat/Km值分別是1.26×104、1.37×104L/(mol·s);水解活性受Mn2+的顯著激活和Fe2+、Zn2+、Cu2+等離子的微弱抑制。該酶活性在pH2.0~8.3保持穩(wěn)定;酶在65℃時(shí)保溫60min,殘余酶活達(dá)到了85%,是一種熱穩(wěn)定酸性β-葡萄糖苷酶。
胞內(nèi)酶;乙醇沉淀;對(duì)硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷;京尼平苷;β-葡萄糖苷酶
β-葡萄糖苷酶(β-glucosidase,BGL,EC 3.2.1.21)是纖維素完全酶解糖化的限速酶種[1];具有水解和糖基轉(zhuǎn)移活性,底物專(zhuān)一性較差,對(duì)多種糖苷類(lèi)物質(zhì)均有較強(qiáng)的催化活性[2]。因而,BGL在纖維素生物煉制和藥食資源開(kāi)發(fā)利用等領(lǐng)域具有廣泛的應(yīng)用價(jià)值,如用于低聚龍膽糖的生產(chǎn)[3]、紅景天苷等糖苷類(lèi)活性物質(zhì)的酶法合成[4-5]和轉(zhuǎn)化天然產(chǎn)物中的糖苷類(lèi)物質(zhì)[6],從而改善和提高果蔬茶的風(fēng)味及中草藥的藥理活性。黑曲霉是常見(jiàn)的BGL產(chǎn)酶菌種,也是食藥生產(chǎn)領(lǐng)域公認(rèn)的安全菌株。本實(shí)驗(yàn)室從霉?fàn)€的梔子果上分離到一株能水解京尼平苷的黑曲霉菌株Aspergillus niger L.,該菌株具有較強(qiáng)的耐酸性,在培養(yǎng)基初始pH1.5時(shí),仍能正常產(chǎn)酶;該菌株可以產(chǎn)生兩種胞外酸性BGL,它們的最適反應(yīng)pH值均為2.5,其他酶學(xué)性質(zhì)也顯著區(qū)別于他種菌株來(lái)源的BGL[7]。本實(shí)驗(yàn)對(duì)Aspergillus niger L. 菌絲進(jìn)行了破碎抽提,從中制備了一種電泳純的BGL,并對(duì)其酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了實(shí)驗(yàn)分析,為進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用Aspergillus niger L.源BGL提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 材料、試劑與儀器
黑曲霉Aspergillus niger L.為實(shí)驗(yàn)室分離自霉變梔子果。
DEAE-Sepharose FF、Sephadex G-100 美國(guó)Pharmacia公司;蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn) 上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司;考馬斯亮藍(lán)R-250、聚乙二醇20000(PEG-20000)、對(duì)硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷(pNPG)、3,5-二硝基水楊酸(DNS) 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;其余化學(xué)試劑均為分析純。
UV-1600紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 北京瑞利分析儀器公司;QT-2H自動(dòng)液相色譜分離層析儀(配有N2000色譜數(shù)據(jù)工作站) 上海琪特分析儀器有限公司;DYCZ-3 型電泳槽、DYY-4C 型電泳儀 北京六一儀器廠;GL-21MC立式冷凍離心機(jī) 湘儀離心機(jī)儀器有限公司;JYD-900超聲波細(xì)胞破碎機(jī) 上海之信儀器有限公司。
1.2 BGL的制備與分離
1.2.1 BGL的制備
Aspergillus niger L.孢子接種在豆渣培養(yǎng)基中28℃、180r/min培養(yǎng)5d;發(fā)酵醪液經(jīng)絲網(wǎng)過(guò)濾收集菌絲體,菌絲體用蒸餾水洗滌多次并壓干水分,然后將菌絲體分散在適量pH8.0、100mmol/L Tris-HCl緩沖液中進(jìn)行超聲破碎,超聲功率800W、時(shí)間20min、破碎3s、暫停3s,后將菌絲破碎液于12000r/min離心15min,上清液即為粗酶液。
1.2.2 BGL的分離
取一定體積冷藏粗酶液,加入1.25倍體積-20℃乙醇混勻,冷凍離心得沉淀;沉淀以少量pH7.5、20mmol/L NaH2PO4-Na2HPO4緩沖液溶解,上柱DEAE-Sepharose FF、洗柱至基線平直,用同樣緩沖液配制的0~0.4mol/L NaCl溶液400mL線性梯度洗脫,洗脫流速90mL/h,每5.0mL收集一管,檢測(cè)與280nm波長(zhǎng)處光吸收峰相對(duì)應(yīng)各管的酶活力和純度。收集各管酶液于透析袋中并用PEG-20000包埋濃縮;濃縮酶液進(jìn)行凝膠過(guò)濾Sephadex G-100,pH7.5、20mmol/L NaH2PO4-Na2HPO4緩沖液洗脫,流速10mL/h,每3.0mL收集一管,檢測(cè)蛋白峰各管酶活力。
1.3 指標(biāo)的測(cè)定
1.3.1 蛋白質(zhì)濃度的測(cè)定
依據(jù)Bradford法[8]測(cè)定蛋白質(zhì)濃度。
1.3.2 SDS-PAGE[9]
SDS-PAGE條件:濃縮膠4%、分離膠10%,染色劑:考馬斯亮藍(lán)R-250。
1.3.3 BGL活性的測(cè)定[7]
采用pNPG法和DNS法分別測(cè)定BGL的活性。
1.3.4 酶的最適反應(yīng)溫度及熱穩(wěn)定性的測(cè)定
在不同溫度下pNPG法測(cè)定酶活力,以酶活力最高時(shí)的反應(yīng)溫度為最適反應(yīng)溫度;酶液在不同溫度下分別水浴保溫20、40、60min后測(cè)定酶活力,以未保溫酶液的酶活力為100%,比較不同溫度條件下的相對(duì)酶活力。
1.3.5 酶的最適反應(yīng)pH值及pH值穩(wěn)定性的測(cè)定
在不同pH值的緩沖液中按照pNPG法測(cè)定酶活力,以酶活最高時(shí)的反應(yīng)pH值為最適反應(yīng)pH值;將酶液用不同pH值的緩沖液同等倍數(shù)稀釋?zhuān)?5℃水浴保溫12h,測(cè)定相對(duì)酶活力。
1.3.6 無(wú)機(jī)離子對(duì)酶活力的影響
在含待考察離子10mmol/L的酶促反應(yīng)體系中以pNPG為底物測(cè)定酶活力,以去離子水透析的酶液的酶活力為100%。
1.3.7 酶促動(dòng)力學(xué)參數(shù)測(cè)定
在65℃、pH4.0、100mmol/L 醋酸-醋酸鈉緩沖液中酶液與不同濃度底物反應(yīng),用Linewear-Burk作圖法求出酶水解底物的米氏常數(shù)(Km)、最大反應(yīng)速率(Vmax),測(cè)定酶蛋白量計(jì)算酶的底物轉(zhuǎn)換數(shù)(kcat)。
1.4 數(shù)據(jù)分析
采用統(tǒng)計(jì)軟件DPS v3.01專(zhuān)業(yè)版,SSR檢驗(yàn)顯著性水平α=0.05。
2.1 Aspergillus niger L.胞內(nèi)β-葡萄糖苷酶的分離與純化
圖1 β-葡萄糖苷酶的SDS-PAGE圖譜Fig.1 SDS-PAGE of BGL from Aspergillus niger L.
菌絲體經(jīng)超聲破碎抽提獲得BGL75.2U/g(以菌絲干質(zhì)量計(jì))。粗酶液分別用PEG-6000(20mg/100mL)、(NH4)2SO490%飽和度沉淀濃縮,酶活回收率分別為14%和81%,顯示胞內(nèi)BGL與胞外BGL在溶解性上存在顯著差異。粗酶液依次經(jīng)過(guò)乙醇沉淀、D EA E-Seph arose FF、Sephadex G-100柱層析(表1),獲得了電泳純的BGL,SDS-PAGE圖譜(圖1)顯示BGL的分子質(zhì)量為125.7kD。
表1 β-葡萄糖苷酶的分離純化Table 1 Purification of BGL from Aspergillus niger L.
2.2 Aspergillus niger L.胞內(nèi)BGL的酶學(xué)性質(zhì)
2.2.1 pH值對(duì)BGL活性及穩(wěn)定性的影響
圖2 pH值對(duì)β-葡萄糖苷酶活性及穩(wěn)定性的影響Fig.2 Effect of pH on BGL activity
由圖2可知,在pH值2.0~6.5的范圍內(nèi),BGL對(duì)pNPG均有明顯的水解活性,其中pH值為3.0~4.0時(shí),酶的水解活性最高;此外,酶的水解活性隨pH值變化而下降,pH值由3.0下降至2.0時(shí),酶活下降了66%,而pH值由4.0上升至5.0時(shí),酶活下降了30%,說(shuō)明在較低的pH值范圍內(nèi),酶活力對(duì)酸度的變化更明顯。25℃保溫12h后,BGL殘余酶活力在pH2.0~8.3的范圍內(nèi)穩(wěn)定,說(shuō)明胞內(nèi)BGL具有很好的pH值穩(wěn)定性。
2.2.2 溫度對(duì)BGL活性及穩(wěn)定性的影響
圖3 溫度對(duì)β-葡萄糖苷酶活性的影響Fig.3 Effect of temperature on BGL activity
圖4 β-葡萄糖苷酶的熱穩(wěn)定性Fig.4 Combined effects of temperature and incubation time on BGL stability
表2 金屬離子對(duì)β-葡萄糖苷酶活性的影響Table 2 Effects of inorganic ions on BGL activity as tested using pNPG as substrate
由圖3可知,BGL在30~80℃均有水解活性,最適作用溫度為70℃,但反應(yīng)溫度高于70℃時(shí),相對(duì)酶活力急劇下降,80℃時(shí)的反應(yīng)活性與30℃時(shí)的活性相當(dāng)。由圖4可知,在65℃保溫60min,相對(duì)酶活力為85%,而在70℃保溫60min,相對(duì)酶活力僅為14%,因此,胞內(nèi)BGL有較好的熱穩(wěn)定性。
2.2.3 金屬離子對(duì)BGL活性的影響
由表2可知,BGL水解pNPG的活性受不同金屬離子(10mmol/L)的影響。Mn2+、Fe3+、Ba2+、Mg2+、Na+、Hg+等離子激活BGL水解活性,其中以Mn2+的作用最為顯著;Cu2+、Zn2+、Fe2+等抑制酶活性,F(xiàn)e2+的抑制作用較明顯;K+和Ca2+對(duì)酶活性則無(wú)明顯影響。
2.2.4 BGL的底物特異性及催化效率
在pH4.0、65℃的反應(yīng)條件下,依據(jù)Linewear-Burk作圖法分別以pNPG、京尼平苷、水楊苷為底物測(cè)定BGL的Km、kcat(表3)。依專(zhuān)一性常數(shù)kcat/Km可知,胞內(nèi)BGL水解pNPG的催化效率是京尼平苷、水楊苷的兩倍多,而水解后兩者的催化效率相當(dāng),因此,pNPG是胞內(nèi)BGL的最適底物;同時(shí)也說(shuō)明BGL對(duì)β-葡萄糖苷的苷元物質(zhì)具有選擇性。
表3 β-葡萄糖苷酶的動(dòng)力學(xué)參數(shù)Table 3 Km and kcat values of BGL for three specific substrates
微生物源BGL的分子質(zhì)量、酶學(xué)性質(zhì)因菌種、菌株不同而有較大差異,其適用范圍也隨之不同。BGL的分子質(zhì)量一般介于40~250kD,多數(shù)在70~138kD;最適反應(yīng)pH值為3.5~7.0,以pH4.0~6.0常見(jiàn);pH值穩(wěn)定范圍多在pH4.0~8.0;最適反應(yīng)溫度常為55℃,部分為65~70℃;熱穩(wěn)定范圍常小于60℃[1,10-22]。Aspergillus niger L.株胞內(nèi)BGL的分子質(zhì)量為125.7kD,最適反應(yīng)溫度、pH值分別為70℃、3.0~4.0,pH值穩(wěn)定范圍為pH2.0~8.3,65℃保溫60min,相對(duì)酶活力保留85%,除分子質(zhì)量與Aspergillus niger NL-1胞內(nèi)BGL(122.7kD)[14]接近外,最適反應(yīng)溫度、pH值、pH值穩(wěn)定范圍和熱穩(wěn)定溫度均明顯不同于后者(60℃、5.0、3.0~6.0、60℃),也區(qū)別于實(shí)驗(yàn)菌株產(chǎn)生的胞外BGL(55℃、2.5、2.0~7.0,55~60℃)[7];因此,該酶是一種耐酸耐熱的BGL,它的分子質(zhì)量和最適反應(yīng)pH值與Penicillium pinophilum[11]Penicillium purpurogenum[16]等來(lái)源的BGL相近,最適反應(yīng)溫度與Penicillium decumbens[1]、 Penicillium citrinum[19]、Periconia sp.[20]、Fomitopsis palustris[22]等來(lái)源的BGL相同,熱穩(wěn)定性?xún)?yōu)于Termitomyces clypeatus來(lái)源的BGL(60℃保溫1h,殘余酶活80%)[13],而不及Periconia sp.來(lái)源的BGL(70℃保溫1.5h,殘余酶活60%)[20]。
BGL的水解專(zhuān)一性較差,能作用于所有的葡萄糖β-二聚物;作用于β-1,4、β-1,1、β-1,2、β-1,3和β-1,6連鍵;裂解C-O糖苷鍵、C-S鍵、C-N鍵和C-F鍵等;有些能水解β-葡萄糖苷、β-半乳糖苷,甚至木糖苷[2]。實(shí)驗(yàn)菌株胞內(nèi)BGL對(duì)鄰硝基苯-β-D-吡喃半乳糖苷、對(duì)硝基苯-α-D-吡喃半乳糖苷無(wú)水解活性,區(qū)別于其胞外BGL,說(shuō)明該酶底物專(zhuān)一性高于胞外BGL,對(duì)底物的糖苷鍵構(gòu)型和糖基種類(lèi)均具有選擇性。底物專(zhuān)一性常數(shù)kcat/Km顯示,該BGL對(duì)pNPG、水楊苷和京尼平苷等β-D-吡喃葡萄糖苷均有催化活性,pNPG是其天然底物,水解京尼平苷和水楊苷的催化效率相當(dāng)且遠(yuǎn)低于pNPG,表明胞內(nèi)BGL的催化效率受底物分子中苷元結(jié)構(gòu)的影響,而胞外兩種BGL的天然底物是京尼平苷,其對(duì)京尼平苷的催化效率(kcat/Km分別為4.28×104L/(mol·s)和1.04×105L/(mol·s))[7]也遠(yuǎn)高于胞內(nèi)BGL;并且胞內(nèi)BGL對(duì)pNPG的催化效率高于未培養(yǎng)源BGL1T[12]和源于Penicillium citrinum的嗜酸熱BGL[19]。胞內(nèi)BGL的催化活性也受金屬離子的明顯影響,受Mn2+的顯著激活,受Fe2+、Zn2+、Cu2+等的抑制,但受抑制強(qiáng)度顯著弱于胞外BGL1。
Aspergillus niger L. 菌株胞內(nèi)BGL具有耐酸耐熱、專(zhuān)一性較強(qiáng)、催化活性高且受金屬離子影響小等特點(diǎn),其酶學(xué)性質(zhì)顯著優(yōu)于他種來(lái)源的β-葡萄糖苷酶,適用于橙汁脫苦、中草藥活性成分轉(zhuǎn)化、纖維素酶解糖化等酸性高溫的工業(yè)應(yīng)用環(huán)境。
[1]CHEN Mei, QIN Yuqi, LIU Ziyong, et al. Isolation and characterization of a β-glucosidase from Penicillium decumbens and improving hydrolysis of corncob residue by using it as cellulase supplementation[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2010, 46(6): 444-449.
[2]孟憲文, 宋小紅, 陳歷俊, 等. β-葡萄糖苷酶的研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)乳業(yè), 2009(10): 42-44.
[3]劉玲玲, 朱松, 朱婷, 等. 重組β-葡萄糖苷酶生產(chǎn)龍膽低聚糖的工藝條件優(yōu)化[J]. 微生物學(xué)報(bào), 2009, 49(5): 597-602.
[4]劉璘, 梅樂(lè)和, 柳行, 等. 酶催化制備 p-羥基苯乙基-β-D-葡萄糖苷過(guò)程強(qiáng)化[J]. 高?;瘜W(xué)工程學(xué)報(bào), 2009, 23(1): 87-91.
[5]王夢(mèng)亮, 李萬(wàn)麗. 固定化β-葡萄糖苷酶催化合成紅景天甙的研究[J].生物技術(shù), 2009, 19(1): 68-70.
[6]金鳳燮, 莊子瑜, 魚(yú)紅閃, 等. 特異的中草藥配糖體苷酶微生物及其發(fā)酵與酶學(xué)特性[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 2009, 25(12): 1863-1870.
[7]王劍鋒, 陳今朝, 梁華正, 等. 黑曲霉水解京尼平苷β-葡萄糖苷酶的分離純化及其酶學(xué)性質(zhì)[J]. 菌物學(xué)報(bào), 2010, 29(5): 683-690.
[8]李建武, 袁明秀. 生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)原理和方法[M]. 北京: 北京大學(xué)出版社, 2000: 89-130.
[9]郭堯君. 蛋自質(zhì)電泳實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 2001: 161-191.
[10]GAO Juan, ZHAO Xuesong, LIU Haibo, et al. A highly selective ginsenoside Rb1-hydrolyzing β-D-glucosidase from Cladosporium fulvum[J]. Process Biochemistry, 2010, 45(6): 897-903.
[11]JOO A R, JEYA M, LEE K M, et al. Production and characterization of β-1,4-glucosidase from a strain of Penicillium pinophilum[J]. Process Biochemistry, 2010, 45(6): 851-858.
[12]JIANG Chengjian, HAO Zhenyu, JIN Ke, et al. Identification of a metagenome-derived β-glucosidase from bioreactor contents[J]. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 2009, 63(1/2): 11-16.
[13]PAL S, BANIK S P, GHORAI S, et al. Purification and characterization of a thermostable intra-cellular β-glucosidase with transglycosylation properties from filamentous fungus Termitomyces clypeatus[J]. BioresourceTechnology, 2009, 101(7): 2412-2420.
[14]趙林果, 夏文靜, 游麗金, 等. 黑曲霉胞內(nèi)β-葡萄糖苷酶分離提純及其性質(zhì)的研究[J]. 現(xiàn)代化工, 2008, 28(10): 38-42.
[15]NAZ S, IKRAM N, RAJOKA M, et al. Enhanced production and characterization of a β-glucosidase from Bacillus halodurans expressed in Escherichia coli[J]. Biochemistry, 2010, 75(4): 513-518.
[16]JEYA M, JOO A R, LEE K M, et al. Characterization of β-glucosidase from a strain of Penicillium purpurogenum KJS506[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2010, 86(5): 1473-1484.
[17]NASCIMENTO C V, SOUZA F H, MASUI D C, et al. Purification and biochemical properties of a glucose-stimulated β-D-glucosidase produced by Humicola grisea var. thermoidea grown on sugarcane bagasse [J]. Journal of Microbiology, 2010, 48(1): 53-62.
[18]SOUZA F H M, NASCIMENTO C V, ROSA J C, et al. Purification and biochemical characterization of a mycelial glucose- and xylose-stimulated β-glucosidase from the thermophilic fungus Humicola insolens [J]. Process Biochemistry, 2010, 45(2): 272-278.
[19]NG I S, LI Chenwei, CHAN Shuangpi, et al. High-level production of a thermoacidophilic β-glucosidase from Penicillium citrinum YS40-5 by solid-state fermentation with rice bran[J]. Bioresource Technology, 2010, 101(4): 1310-1317.
[20]HARNPICHARNCHAI P, CHAMPREDA V, SORNLAKE W, et al. A thermotolerant β-glucosidase isolated from an endophytic fungi, Periconia sp., with a possible use for biomass conversion to sugars[J]. Protein Expression and Purification, 2009, 67(2): 61-69.
[21]KOROTKOVA O, SEMENOVA M, MOROZOVA V, et al. Isolation and properties of fungal β-glucosidases[J]. Biochemistry, 2009, 74(5): 569-577.
[22]YOON J J, KIM K Y, CHA C J. Purification and characterization of thermostable β-glucosidase from the brown-rot basidiomycete Fomitopsis palustris grown on microcrystalline cellulose[J]. Journal of Microbiology, 2008, 46(1): 51-55.
Purification and Characterization of Thermostable Acidic β-Glucosidase from Aspergillus niger L.
CHEN Jin-zhao1,WANG Jian-feng2,*,WANG Hui-chao1,TAN Yong-zhong1
(1. Life Science and Technology Institute, Yangtze Normal University, Chongqing 408100, China ;2. Department of Biology, East China Institute of Technology, Fuzhou 344000, China)
In this study, an acidic β-glucosidase (BGL) was purified from acid-tolerant Aspergillus niger L. mycelia by ethanol precipitation, DEAE-Sepharose column chromatography and Sephadex G-100 column chromatography. SDS-PAGE showed that the molecular weight of the enzyme was 125.7 kD. Further characterization revealed that it had maximal hydrolytic activity on p-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside (pNPG) at pH 3.0 — 4.0 and 70 ℃ with a Kmof 2.35 mmol/L and a kcat/Kmof 2.99 × 104mol/L·s. The kcat/Km values for hydrolyzing geniposide and salicin were 1.26 × 104L/(mol·s) and 1.37 × 104L/(mol·s), respectively. The hydrolytic activity was activated obviously by Mn2+but inhibited faintly by Fe2+, Zn2+and Cu2+. The BGL was highly stable at pH 2.0 — 8.5, and 85% of its original activity could be maintained after 60 min of heat treatment at 65 ℃. Thus, the enzyme was highly stable to heat.
intracellular enzyme;ethanol precipitation;p-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside;genipin;βglucosidase
Q939.97
A
1002-6630(2012)11-0205-05
2011-06-03
重慶市科技攻關(guān)計(jì)劃項(xiàng)目(CSTC,2011AC1004)
陳今朝(1964—),男,副教授,碩士,研究方向?yàn)槲⑸锕こ?。E-mail:chenjinzhao@126.com
*通信作者:王劍鋒(1968—),男,講師,碩士,研究方向?yàn)槲⑸锕こ?。E-mail:wangjianfeng68@126.com