宋 雙,黃銀芝,董雷鳴,黃有軍,曾燕如,吳智敏
(1.浙江農(nóng)林大學 亞熱帶森林培育國家重點實驗室培育基地,浙江 臨安 311300;2.浙江省龍泉市林業(yè)局,浙江 龍泉 323700)
簡單重復序列(simple sequence repeat,SSR)是一類一般由1~6個堿基組成的基元重復串聯(lián)而成的脫氧核糖核酸(DNA)序列[1],基元重復次數(shù)一般為10~50,同一類微衛(wèi)星DNA可分布在基因組的不同位置上;基因組中SSR多態(tài)性較豐富,呈共顯性遺傳,所以可提供的信息量較高,結(jié)果穩(wěn)定可靠[2]。SSR標記分為兩大類,即基因組SSR(genomic SSR)和表達序列標簽SSR(expression sequence tag-SSR,ESTSSR)?;蚪MSSR是基于基因組序列開發(fā)的,采用構(gòu)建基因組文庫的方法,開發(fā)耗時費力,而且因為探針的緣故,種類有一定的局限性;EST-SSR是指存在于基因表達序列內(nèi)的SSR,不包括存在于內(nèi)含子及非表達調(diào)控區(qū)之中的SSR[3-4],它基于cDNA文庫的構(gòu)建及cDNA測序。Scott等[5]從5000條葡萄屬Vitis EST中開發(fā)了124個SSR。EST-SSR標記不僅具有基因組SSR標記多態(tài)性高、共顯性、重復性好的特點,而且開發(fā)成本相對低廉,在種屬間具有良好的通用性[6]。另外,由于部分EST-SSR標記來自于基因的編碼區(qū),所以更容易獲得基因表達的信息,可為功能基因的直接鑒定提供重要依據(jù)[7]。目前,該分子標記已被廣泛應用于品種指紋鑒定[8-9]、遺傳連鎖圖譜構(gòu)建[10-11]、遺傳多樣性分析[12-13]和分子標記輔助育種[2,14-15], 在諸如小麥 Triticum aestivum[16-17], 大豆 Glycine max[18-19], 葡萄 Vitis vinifera[5], 胡椒 Lindera sp.[20], 白菜 Brassica campestris[21], 水稻 Oryza sativa[22], 獼猴桃 Actinidia chinensis[23]等植物中已成功開發(fā)了EST-SSR標記,但尚無山核桃Carya cathayensis EST-SSR標記的報道。山核桃是浙江省重要的經(jīng)濟樹種。近年來隨著研究的深入,已陸續(xù)在山核桃中建立了擴增片段長度多態(tài)性(amplified fragment length polymorphism,AFLP)[24], 隨機擴增多態(tài) DNA (random amplified polymorphic DNA, RAPD)[25], 微衛(wèi)星間隔片段多態(tài)性(inter-simple sequence repeat, ISSR)[26], 序列相關擴增多態(tài)性 SRAP(sequence-related amplified polymorphism,SRAP)[27]標記分析體系,并將它們應用于山核桃遺傳研究。研究發(fā)現(xiàn):將這些標記應用于天然群體山核桃樣品的分析,多態(tài)性總是不豐富[26-29]。這一方面與山核桃本身的遺傳特性有關,另一方面與分子標記本身的局限性有關。上述分子標記均為顯性標記,不能區(qū)分顯性純合位點與顯性雜合位點,盡管SRAP相對而言可顯示部分共顯性[30-31]。因此,有必要開發(fā)諸如SSR的山核桃共顯性標記,以深化山核桃的遺傳研究。
1.1.1 EST-SSR引物設計的數(shù)據(jù)源 黃銀芝等[32]以山核桃果實油脂形成、轉(zhuǎn)化、積累關鍵時期的果實為材料,構(gòu)建了一個滴度為5.0×109空斑形成單位(pfu)·mL-1的山核桃脂肪代謝相關cDNA文庫,并對部分cDNA片段進行了克隆測序。以序列分析中發(fā)現(xiàn)的含有SSR堿基重復特點的序列作為EST-SSR引物設計的數(shù)據(jù)源。
1.1.2 供試山核桃 5月,山核桃幼葉充分展開后,在山核桃產(chǎn)區(qū)采集40個單株的葉片,各單株在同一地點彼此間至少相距100 m。采樣地點主要分布在山核桃主產(chǎn)區(qū)浙江省臨安市的島石、馬嘯、頰口、昌化、龍崗、橫路、順溪、湍口等地,所有單株均為野生成年大樹。
1.2.1 EST-SSR引物的設計 對含有SSR堿基重復特點的cDNA序列,利用Primer Premier 5(http://www.premierbiosoft.com/crm/jsp/com/pbi/crm/clientside/ProductList.jsp)進行引物設計。參照軟件說明書設置引物設計參數(shù):產(chǎn)物長度為100~300 bp;引物長度為18~25 bp;退火溫度為45~65℃,且上下游引物的退火溫度相差不大于5℃;引物堿基(GC)為40%~60%;盡量避免引物二級結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)。
1.2.2 DNA的提取 借鑒郭金劍[29]建立的適用于山核桃葉片DNA的提取方法,即改良十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)法提取基因組DNA。DNA經(jīng)吸光度值D(λ)測定及電泳檢測,質(zhì)量達到要求的稀釋到100 mg·L-1用于 SSR 分析。
1.2.3 SSR反應體系的優(yōu)化 本研究在郭金劍[29]建立的適用于山核桃的SSR反應體系的基礎上,根據(jù)實驗中出現(xiàn)的現(xiàn)象,對DNA模板用量及聚合酶鏈式反應(PCR)循環(huán)數(shù)進行優(yōu)化,得到山核桃SSR最佳反應體系。
1.2.4 擴增產(chǎn)物檢測及SSR引物篩選 EST-SSR引物由上海生工生物工程技術有限公司合成。先取3個樣品的DNA對引物進行粗篩,即用優(yōu)化的SSR反應與擴增體系擴增DNA后,通過10.0 g·L-1的瓊脂糖凝膠電泳分離,檢測引物是否有擴增產(chǎn)物。對有擴增產(chǎn)物的引物對,再用來自天然群體的40個山核桃單株樣品進行擴增,擴增產(chǎn)物采用100.0 g·L-1非變性聚丙烯酰胺凝膠,在1×三羥基氨基甲烷-硼酸(TBE)電泳緩沖液中150 V恒壓電泳1.5~2.0 h;電泳結(jié)束后,凝膠用蒸餾水清洗1 min;隨后2.0 g·L-1的硝酸銀和體積分數(shù)為10%乙醇溶液固定銀染10 min;再用蒸餾水漂洗2次,2 min·次-1,后在20.0 g·L-1氫氧化鈉和體積分數(shù)為0.4%甲醛混合溶液中顯色,最后清水漂洗凝膠,并在BIO-RAD GS800成像系統(tǒng)中拍照保存。
1.2.5 數(shù)據(jù)分析 由于SSR為共顯性標記,可以區(qū)分顯性純合子和顯性雜合子,因此電泳結(jié)果按照共顯性標記的讀帶方法:若條帶間距離在20 bp以內(nèi),則視為1個雜合位點,2條帶分別讀為A,B帶;若20 bp以內(nèi)只有1個條帶,則視為純合位點,讀為AA或BB。
1.2.6 山核桃SSR標記與其它標記分析結(jié)果的比較 本課題組已建立了山核桃AFLP,RAPD,ISSR,SRAP標記分析體系。本研究將SSR開發(fā)的初步實驗結(jié)果與其余4種標記體系分析的結(jié)果進行了比較。
從1010個測序的cDNA克隆中得到了188條非冗余序列,發(fā)現(xiàn)43個cDNA序列具有SSR堿基重復特點。利用Primer Premier 5進行引物設計,其中基于9個cDNA序列設計的引物達不到設置的引物參數(shù)要求。因此,最后共設計SSR引物34對(表1)。
表1 開發(fā)的山核桃SSR引物序列及在供試樣品中檢測到的總位點數(shù)Table1 Sequences of the SSR primers developed and the total loci detected in Carya cathayensis
表1 (續(xù))
從供試樣品中提取的基因組DNA D(λ)260/D(λ)280都為1.8~2.0,且DNA電泳條帶明亮、清晰,純度較高,可用于后續(xù)SSR分子標記的分析。
經(jīng)過試驗過程不斷優(yōu)化,最終PCR產(chǎn)物電泳的擴增條帶清晰,無拖尾、條帶很粗,確定10.0 μL的PCR反應體系為:10×緩沖液 (buffer)1.0 μL,氯化鎂 (MgCl2)1.0 μL,三磷酸堿基脫氧核苷酸 (dNTP)0.3 μL, SSR 正反向引物(濃度為 10μmol·L-1)各 0.5 μL, Taq DNA 聚合酶 0.1 μL(上海申能博彩生物科技有限公司), 模板 DNA(100 mg·L-1) 0.5 μL, 加無菌雙蒸水(ddH2O)至終體積 10.0 μL; PCR 擴增條件為:94℃預變性5 min;隨后30個循環(huán),每個循環(huán)94℃變性30 s,退火30 s,72℃延伸60 s;最后72℃延伸3 min,其中退火溫度各引物對有所不同(表1)。與郭金劍[29]建立的山核桃SSR體系相比較,本實驗反應體系中的緩沖液用量減少了0.5 μL,Taq DNA聚合酶用量減少了0.1 μL,DNA用量減少了200 ng;郭金劍在其實驗中使用了30.0 g·L-1的瓊脂糖凝膠,而在本實驗中采用的是分辨率更佳的非變性聚丙酰胺凝膠電泳(PAGE)。因此,反應體系中一些組分的用量有所減少,而電泳結(jié)果更加清晰。
基于各SSR引物對在3個DNA樣品中的擴增結(jié)果,在瓊脂糖凝膠中對引物對進行了初步的篩選。34對引物中有4對引物無擴增產(chǎn)物(圖1)。對有擴增產(chǎn)物的引物對,用40個樣品進行PCR擴增,擴增產(chǎn)物采用非變性PAGE電泳,結(jié)果30對引物有擴增產(chǎn)物(圖2),但其中3對引物的擴增產(chǎn)物在500 bp以上。按照引物設計的參數(shù),預期的擴增產(chǎn)物為100~300 bp。因此,這3對引物的擴增屬非特異性擴增。最終確認可用的SSR引物為27對(表1)。
圖1 山核桃SSR引物初步篩選電泳圖(部分)Figure1 Preliminary screening of SSR primers in Carya cathayensis (partial)
圖2 山核桃SSR標記分析電泳圖(部分;引物對:SSR34)Figure2 Electrophorogram of SSR markers in Carya cathayensis (partial; primer pair: SSR34)
此外,在可用的27對引物的擴增產(chǎn)物中,按照重復基元的種類劃分,可將引物分為3種重復基元的引物,其中二核苷酸重復基元出現(xiàn)的頻率最高,為66.7%;其次分別為三核苷酸和四核苷酸重復,它們分別占30%和3.3%。二堿基重復基元中出現(xiàn)頻率較多的重復基元是(A/T)n和(T/C)n,它們各占二核苷酸重復基元引物的35%和45%(表2)。
表2 山核桃EST-SSR引物擴增產(chǎn)物的重復基元特性Table2 Repeat contigs of SSR primer-amplified products in Carya cathayensis
27對SSR引物對40個山核桃樣品進行分析,共擴增得到46個位點,平均每對引物產(chǎn)生1.7個位點,其中雜合位點28個,占總位點數(shù)的60.9%;純合位點18個,占位點數(shù)的39.1%。27對引物中有18對在供試樣品中擴增出22個多態(tài)性位點,占總位點數(shù)的47.8%。
與本課題組建立或優(yōu)化的山核桃其他分子標記[28-29,33]相比較,SSR標記多態(tài)性位點的比例較高,且能夠區(qū)分顯性純合位點及顯性雜合位點外,但其余各指標均不如顯性標記(表3)。SSR多態(tài)性產(chǎn)生的機制是因為DNA復制和修復過程中堿基的滑動、錯配或減數(shù)分裂過程中姊妹染色單體的不均等交換[34];山核桃EST-SSR標記檢測的位點數(shù)為1~3個,遠不如其他顯性標記。當然,多態(tài)性分析反映的是物種的遺傳多樣性,與該物種的本質(zhì)特性有關。因此,利用SSR分析研究遺傳多樣性時,為獲得一定數(shù)量的多態(tài)位點用于遺傳分析,通常所需的SSR引物較多。對山核桃而言,還需繼續(xù)開發(fā)SSR引物。
表3 山核桃各種分子標記擴增結(jié)果的比較Table3 Comparison among the amplification results of various molecular markers in Carya cathayensis
Silva等[35]通過研究甘蔗Saccharum sinensis EST,設計了20對EST-SSR引物,并利用這些引物研究了甘蔗栽培種和甘蔗屬Saccharum內(nèi)種間的多態(tài)性,結(jié)果表明EST-SSR具有較高的種間保守性。鑒于SSR標記的共顯性及種屬特異性,其開發(fā)的成本往往較高,因涉及文庫的構(gòu)建及序列的測定。本研究基于cDNA文庫構(gòu)建及部分測序結(jié)果,開發(fā)了27對山核桃EST-SSR引物,為后續(xù)SSR引物的進一步開發(fā)打下了實驗基礎。山核桃SSR標記的進一步開發(fā),可以在現(xiàn)有文庫cDNA測序的基礎上繼續(xù)進行。此外,黃有軍[36]以山核桃雌花成花過程的花芽RNA為材料,結(jié)合454測序,共獲得了1575個具有SSR堿基重復特點的序列。這些材料都可以作為山核桃EST-SSR標記進一步開發(fā)的數(shù)據(jù)源。
cDNA為基因表達過程產(chǎn)生的mRNA反轉(zhuǎn)錄而來,不含內(nèi)含子序列。不同物種同一基因cDNA序列進行比對時或多或少具有一定的相似性。因此,理論上基于EST序列開發(fā)的SSR引物對的通用性要優(yōu)于基于基因組文庫開發(fā)的SSR引物對,盡管仍存在種屬特異性的特點。本研究小組正在進行山核桃與美國山核桃Carya illinoinensis正反交研究,擬將從山核桃中開發(fā)的EST-SSR標記用于同屬兩物種正反交子代的分析,進一步驗證所開發(fā)標記的通用性。
本研究對山核桃EST-SSR標記進行了開發(fā),初步獲得27對可用的SSR引物。研究的實驗結(jié)果將為深入研究山核桃的遺傳多樣性、種質(zhì)資源評價等奠定基礎。
[1]HAYDEN M J, SHARP P J.Sequence-tagged microsatellite profiling (STMP): a rapid technique for developing SSR markers [J].Nucl Acids Res, 2001, 29: e43.
[2]HE C, POYSA V, YU K.Development and characterization of simple sequence repeat(SSR) markers and their use in determining relationships among Lycopersicon esculentum cultivars [J].Theor Appl Genet, 2003, 106 (2): 363-373.
[3]SHARMA V, BHARDWAJ P, KUMAR R, et al.Identification and cross-species amplification of EST derived markers in different bamboo species [J].Conserv Genet, 2009, 10: 721-724.
[4]劉貫水.毛竹SSR位點引物開發(fā)及部分竹種系統(tǒng)學分析[D].北京:中國林業(yè)科學研究院,2010.LIU Guanshui.Development of SSR Loci Primers in Phyllostachys heterocycla var.pubescens (Mazel) Ohwi and Phylogenetic Analysis in Bamboo Species [D].Beijing: Chinese Academy of Forestry, 2010.
[5]SCOTTKD, EGGLERP, SEATONG, etal.AnalysisofSSRsderivedfromgrapeESTs[J].TheorApplGenet, 2000, 100(5): 723-726.
[6]CORDEIRO G M, CASU R, MCLNTYRE C L, et al.Microsatellite markers from sugarcane (Saccharum spp.)ESTs cross transferable to erianthus and sorghum [J].Plant Sci, 2001, 160: 1115-1123.
[7]張智俊,管雨,楊麗,等.毛竹EST資源SSR標記分析與篩選[J].園藝學報,2011,38(5):989-996.ZHANG Zhijun, GUAN Yu, YANG Li, et al.Analysis of SSRs information and development of SSR markers from moso bamboo (Phyllostachys edulis) ESTs [J].Acta Hort Sin, 2011, 38 (5): 989-996.
[8]MARTIN H, JEROEN R V, ALBRECHT E, et al.Variation of DNA fingerprints among accessions within maize inbred lines and implications for identification of essentially derived varieties(Ⅱ)genetic and technical sources of variation in AFLP data and comparison with SSR data [J].Mol Breed, 2003, 12: 97-106.
[9]MAHMOOD A, BAENZIGER P S, BUDAK H, et al.The use of microsatellite markers for the detection of genetic similarity among winter bread wheat lines for chromosome 3A [J].Theor Appl Genet, 2004, 109 (7): 1494-1503.
[10]PIQUEMAL J, CINQUIN E, COUTON F, et al.Construction of an oilseed rape (Brassica napus L.) genetic map with SSR markers [J].Theor Appl Genet, 2005, 111 (8): 1514-1523.
[11]TAE-YOUNG H, TAKASHI S, MASAKAZU T.High-density integrated linkage map based on SSR markers in soybean [J].DNA Res, 2009, 16: 213-225.
[12]ENOKI H, SATO H, KOINUMA K.SSR analysis of genetic diversity among maize inbred lines adapted to cold regions of Japan [J].Theor Appl Genet, 2002, 104 (8): 1270-1277.
[13]ILPREET D, RIAR S, ACHIN S, et al.EST-SSR development from 5 Lactuca species and their use in studying genetic diversity among L.serriola biotypes [J].J Hered, 2011, 102 (1): 17-28.
[14]KIMURA T, SHI Yongzhong, SHODA M.Identification of Asian pear varieties by SSR analysis [J].Breed Sci,2002, 52: 115-121.
[15]EUJAYL I, SLEDGE M K, WANG L, et al.Medicago truncatula EST-SSRs reveal cross-species genetic markers for Medicago spp.[J].Theor Appl Genet, 2004, 108 (3): 414-422.
[16]陳海梅,李林志,衛(wèi)憲云,等.小麥EST-SSR標記的開發(fā)、染色體定位和遺傳作圖[J].科學通報,2005,50(20):2208-2216.CHEN Haimei, LI Linzhi, WEI Xianyun, et al.Development, chromosome mapping and mapping of EST-SSR markers in wheat[J].Chin Sci Bull, 2005, 50 (20): 2208-2216.
[17]莊麗芳,宋立曉,馮祎,等.小麥 EST-SSR標記的開發(fā)和染色體定位及其在追蹤黑麥染色體中的應用[J].作物學報, 2008, 34(6): 926-933.ZHUANG Lifang, SONG Lixiao, FENG Wei, et al.Development and chromosome mapping of 81 new wheat ESTSSR markers and application for characterizing rye chromosomes added in wheat [J].Acta Agro Sin, 2008, 34 (6):926-933.
[18]?,|,趙雪,李俠,等.大豆EST-SSR標記開發(fā)及與Genomic SSR的比較研究[J].中國油料作物學報,2009,31(2): 149-156.CHANG Wei, ZHAO Xue, LI Xia, et al.Development of soybean EST-SSR marker and comparison with genomic SSR marker [J].Chin J Oil Crop Sci, 2009, 31 (2): 149-156.
[19]洪彥彬,陳小平,劉海燕,等.源于大豆 EST的花生屬Arachis同源 SSR標記的開發(fā)及利用 [J].作物學報,2010, 36 (3): 410-421.HONG Yanbin, CHEN Xiaoping, LIU Haiyan, et al.Development and utilizaiton of orthologous SSR markers in arachis through soybean (Glycine max) EST [J].Acta Agr Sin, 2010, 36 (3): 410-421.
[20]YI G, LEE J M, LEE S, et al.Exploitation of pepper EST-SSRs and an SSR-based linkage map [J].Theor Appl Genet,2006, 114 (1): 113-130.
[21]忻雅,崔海瑞,盧美貞,等.白菜EST-SSR信息分析與標記的建立[J].園藝學報,2006,33(3):549-554.XIN Ya, CUI Hairui, LU Meizhen, et al.Data mining for SSRs in ESTs and EST-SSR marker development in Chinese cabbage [J].Acta Hort Sin, 2006, 33 (3): 549-554.
[22]朱宏波,方宣鈞,楊仁崔.利用水稻基因組序列數(shù)據(jù)開發(fā)SSR標記的方法[J].分子植物育種,2003,1(2):273-276.ZHU Hongbo, FANG Xuanjun, YANG Rencui.Developing SSR markers using public rice genome sequence data[J].Mol Plant Breed, 2003, 1 (2): 273-276.
[23]FRASER L G, HARVEY C F, CROWHURST R N, et al.EST-derived microsatellites from Actinidia species and their potential for mapping [J].Theor Appl Genet, 2004, 108 (6): 1010-1016.
[24]郭金劍,池偉,趙鑫珠,等.山核桃AFLP實驗技術體系的建立[J].浙江林學院學報,2008,25(4):532-537.GUO Jinjian, CHI Wei, ZHAO Xinzhu, et al.An AFLP analysis system for Carya cathayensis [J].J Zhejiang For Coll, 2008, 25 (4): 532-537.
[25]王正加,黃堅欽,郭傳友,等.山核桃RAPD反應體系的優(yōu)化[J].浙江林學院學報,2003,20(4):429-433.WANG Zhengjia, HUANG Jianqin, GUO Chuanyou, et al.The optimal reaction system of RAPD in Carya cathayensis [J].J Zhejiang For Coll, 2003, 20 (4): 429-433.
[26]沈林.無融合生殖連鎖分析模型:美國山核桃×山核桃雜種的實例研究[D].臨安:浙江農(nóng)林大學,2010.SHEN Lin.A Model for Linkage Analysis with Apomixis: A Case Study for Pecan × Hickory Hybrids [D].Lin’an:Zhejiang A&F University,2010.
[27]李元春.基于分子標記的山核桃生殖特性研究[D].臨安:浙江農(nóng)林大學,2011.LI Yuanchun.Molecular Marker Analysis of Parents and Their Semi-sib Progenies for the Reproduction in Hickory[D].Lin’an: Zhejiang A&F University, 2011.
[28]沈林,郭金劍,李陽,等.基于AFLP分析的山核桃群體結(jié)構(gòu)及遺傳多樣性[J].福建林業(yè)科技,2009,36(4):84-86.SHEN Lin, GUO Jinjian, LI Yang, et al.Population structure and genetic diversity of Carya cathayensis revealed by AFLP analysis [J].J Fujian For Sci Technol 2009, 36 (4): 84-86.
[29]郭金劍.山核桃群體結(jié)構(gòu)及多樣性的研究[D].臨安:浙江農(nóng)林大學,2008.GUO Jinjian.Study of Population and Diversity in Carya cathayensis Sarg.[D].Lin’an: Zhejiang A&F University, 2008.
[30]張彤,屈淑平,崔崇士.工業(yè)SRAP標記在蔬菜作物遺傳育種中的應用[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2009,40(1):119-122.ZHANG Tong, QU Shuping, CUI Chongshi.Application of SRAP marker on genetics and breeding of vegetable crops[J].J Northeast Agric Univ, 2009, 40 (1): 119-122.
[31]郭修武,張鵬翔,郭印山,等.應用 SRAP分子標記技術鑒定葡萄種間雜交后代[J/OL].分子植物育種:網(wǎng)絡版,2011,9:1389-1393.GUO Xiuwu, ZHANG Pengxiang, GUO Yinshan, et al.Authenticity identification of progenies from interspecific cross red Globe (Vitis vinifera) × Shuangyou (Vitis amurensis) by SRAP markers [J].Fenzi Zhiwu Yuzhong, 2011, 9:1389-1393.
[32]黃銀芝,周秦,黃有軍,等.山核桃脂肪代謝相關cDNA文庫的構(gòu)建[J].浙江農(nóng)林大學學報,2011,28(1):80-85.HUANG Yinzhi, ZHOU Qin, HUANG Youjun, et al.Construction of a fat metabolism-related cDNA library in Carya cathayensis [J].J Zhejiang A&F Univ, 2011, 28 (1): 80-85.
[33]李元春,沈林,曾燕如.山核桃SRAP體系的建立及與RAPD和ISSR標記的比較[J].浙江農(nóng)林大學學報,2011,28(3): 505-512.LI Yuanchun, SHEN Lin, ZENG Yanru.Establishment of a SRAP analysis protocol in Carya cathayensis and a comparison among SRAP, RAPD, ISSR analysis protocols [J].J Zhejiang A&F Univ, 2011, 28 (3): 505-512.
[34]POWELL W, MORGANTE M, ANDRE C, et al.The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) markers for germplasm analysis [J].Molr Breed, 1996, 2: 225-238.
[35]SILVA A G.Preliminary analysis of microsatellite markers derived from sugarcane expressed sequence tags (ESTs)[J].DNA Seq, 2004, 15 (1): 71-76.
[36]黃有軍.山核桃成花機理研究[D].南京:南京林業(yè)大學,2010.HUANG Youjun.Study on Mechanism of Floral Formation in Carya cathayensis [D].Nanjing: Nanjing Forestry University,2010.