張 平
(泰山醫(yī)學(xué)院附屬泰山醫(yī)院分院職業(yè)病科,山東 泰安 271000)
熱休克蛋白(heat shock protein, HSP)是所有原核細胞和真核細胞在生理、病理及環(huán)境因素(高溫、缺氧或病毒感染)下均可產(chǎn)生的一組高度保守的蛋白質(zhì)分子家族。近年的研究發(fā)現(xiàn),HSP與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、腫瘤免疫與治療以及機體對腫瘤治療藥物耐藥性的發(fā)生和腫瘤的預(yù)后等都有密切關(guān)系[1]。對骨肉瘤患者進行微波原位熱療,治療后HSP70的表達率(30%~40%)較治療前(2%)明顯增高,且表達的強度也顯著增強[2]。但是目前,有關(guān)熱療對于HSP及腫瘤影響研究的溫度主要集中于42℃~45℃和60℃以上這兩個區(qū)域,對于(50±1)℃對HSP與腫瘤細胞的作用研究甚少,本實驗通過觀察同一熱療溫度即50℃時不同熱療時間對體外培養(yǎng)各腫瘤細胞熱休克蛋白表達的影響,目的在于探討各腫瘤細胞對熱耐受的敏感程度,為HSP在熱療對腫瘤的治療中發(fā)揮更重要的作用奠定基礎(chǔ)。
1.1材料
1.1.1細胞株 慢性髓系白血病敏感型細胞株(K562/S細胞)、人胃癌AGS細胞株(AGS細胞)、BALB/c小鼠來源的結(jié)腸癌細胞CT-26株(CT-26細胞)、乳腺癌藥物敏感細胞株MCF(MCF細胞)均由泰安市中心醫(yī)院中心實驗室提供。細胞用含10%胎牛血清的RPMI-1640完全培養(yǎng)基在37℃、5%CO2條件下常規(guī)培養(yǎng)。
1.1.2主要試劑 HSP70一抗:武漢博士德生物工程有限公司;HSP70SP免疫組化試劑盒:武漢博士德生物工程有限公司。0.4%多聚甲醛、PBS緩沖液、RPMI-1640完全培養(yǎng)基、無水乙醇、二甲苯、蘇木素染色劑、蒸餾水、中性樹脂封片劑; 5%胰蛋白酶:GIBCO公司產(chǎn)品;胎牛血清:杭州四季青生物公司。
1.1.3主要儀器 普通倒置光學(xué)顯微鏡(Olympus IX70);日本三洋MCO-175型CO2孵箱;電熱恒溫水浴鍋(北京市醫(yī)療設(shè)備廠,GB11240型號LSY);超速離心機(美國Sigama公司,3-18K);超凈工作臺(蘇州,SW-CT-1F);封口膜、精確水銀溫度計、6孔板、蓋玻片。
1.2方法
1.2.1細胞爬片的制作 取對數(shù)生長期的各腫瘤細胞胰蛋白酶消化(40 s)后加入10%RPMI-1640完全培養(yǎng)基,調(diào)制成2×105/ml,的細胞懸液,然后加入到內(nèi)置6片蓋玻片并已高壓滅菌的6孔板中,置于37℃、5%CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)約24小時至48小時,待細胞爬片至滿片的2/3時用于實驗 (K562/S細胞除外,為細胞涂片) 。
1.2.2分組 將各細胞爬片分為實驗組(50℃加熱)和對照組(37℃加熱)。實驗組:待細胞爬片至滿片的2/3時,取出6孔板,密封,在50℃水浴中加熱各時間段(5分鐘、10分鐘、20分鐘、30分鐘、50分鐘加熱組)。對照組:將同樣的細胞爬片在37℃水浴放置各時間段(5分鐘、10分鐘、20分鐘、30分鐘、50分鐘)。
1.2.3熱療方法 打開電熱恒溫水浴鍋,將溫度調(diào)節(jié)為50℃,并以精確水銀溫度計檢測調(diào)節(jié),每10分鐘測量一次,直至其穩(wěn)定在50℃。然后放入封閉的六孔板2分鐘后開始計時,分別于每個加熱時間點到達后取出六孔板,去除外封物,在無菌實驗臺內(nèi)吸去培養(yǎng)基,另加入新鮮培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時(K562/S細胞為加熱各時間段,復(fù)溫24小時后,做成細胞涂片)。
1.2.4免疫組織化學(xué)法檢測HSP70的蛋白表達 主要步驟為:復(fù)溫治療24 h后取出6孔板內(nèi)的細胞爬片PBS沖洗,0.4%多聚甲醛固定 (室溫1 h),3%H2O2滅活內(nèi)源性過氧化物酶,PBS沖洗,然后依次滴加封閉羊血清(A劑,藍色),HSP70一抗,二抗(B劑,黃色),辣根酶標記(C劑,橙色),以DAB顯色,經(jīng)蘇木素輕度復(fù)染、常規(guī)脫水、透明和封片后, 于顯微鏡下觀察并照相。陽性細胞的胞漿胞核染色呈棕黃色。計數(shù)100個細胞中的陽性細胞數(shù),隨機選擇5個視野,計算均值×100%為陽性細胞的比率。
1.3統(tǒng)計學(xué)分析 實驗所得數(shù)據(jù)應(yīng)用SAS 8.2統(tǒng)計軟件進行處理,計量資料利用ANOVA進行統(tǒng)計學(xué)分析,均數(shù)間的多重比較采用SNK法,顯著性水平取α=0.05。
將各腫瘤細胞加熱,免疫組化染色發(fā)現(xiàn),未進行熱療的細胞HSP70表達較低,為2%左右,熱療后HSP70的表達量明顯提高,且表達強度與加熱時間有較大的相關(guān)性。
50℃時,HSP70的陽性表達率隨時間的延長而提高,直至細胞受熱損傷嚴重未有表達功能而停止(表1)。以AGS細胞為例加熱5 min、10 min、20 min時,HSP70的陽性率依次升高,5 min時平均為20%,10 min時平均為36%,20 min時平均為96%,且表達的強度依次增加。但當(dāng)加熱到30分鐘時HSP70的陽性表達率反而明顯下降,為24%,當(dāng)加熱到50分鐘時HSP70的陽性表達率更加下降,為2%,此條件下HSP70的陽性表達率較低可能是因為細胞受熱而損傷較嚴重,未來得及表達HSP70即死亡所致(圖1)。其它腫瘤細胞HSP70的陽性表達率總趨勢與AGS細胞相似,均是在20 min時達到HSP70的陽性表達率的最高值,只是各時間段不同的腫瘤細胞HSP70表達的量有所差別,但差別沒有顯著性意義(P>0.05)。
表1 50℃ 加熱不同時間4種細胞HSP70的陽性表達率(%)
50℃×5 min(陽性表達率20%)
50℃×20 min(陽性表達率96%)
50℃×30 min(陽性表達率24%)
50℃×50 min(陽性表達率2%)
近年研究表明,熱療可以在腫瘤的放、化療中起到良好的增敏作用,但在廣泛的臨床應(yīng)用過程中發(fā)現(xiàn),隨熱療重復(fù)次數(shù)的增加,熱療效果反而下降,會出現(xiàn)所謂“熱耐受(thermotolerance) 或者誘發(fā)熱抗拒”現(xiàn)象,有研究表明腫瘤細胞的熱耐受與熱休克蛋白家族有關(guān), 尤其與熱休克蛋白70(HSP70)的關(guān)系密切[3]。HSP70的高度表達可提高腫瘤細胞的熱耐受性[4]。Roccheri 等[5]研究發(fā)現(xiàn),熱耐受現(xiàn)象的發(fā)生與HSP70的誘導(dǎo)表達相關(guān)。熱耐受不是細胞固有的特性,它不遺傳,是一種暫時現(xiàn)象,可能是熱療過程中腫瘤細胞內(nèi)產(chǎn)生的某些物質(zhì)降低了細胞對熱的敏感性。腫瘤細胞的熱應(yīng)激反應(yīng)后,最根本的變化是蛋白質(zhì)譜的改變,表現(xiàn)為正常蛋白質(zhì)合成被抑制,卻合成了一組特殊的高度保守的蛋白質(zhì)HSP或稱為應(yīng)激蛋白。HSP是高熱誘導(dǎo)的一種適應(yīng)性蛋白,屬于一種分子伴侶,主要功能在于當(dāng)細胞處于應(yīng)激狀態(tài)時,可糾正新合成蛋白質(zhì)的折疊和空間構(gòu)象錯誤,協(xié)助轉(zhuǎn)運蛋白質(zhì),抵抗應(yīng)激原引起的變性, 維持生理平衡,降低高熱誘導(dǎo)的細胞凋亡[6]。近年研究表明,HSP70作為蛋白成熟過程中的分子伴侶,參與蛋白質(zhì)的合成、加工、折疊及轉(zhuǎn)運等過程。HSP70在HSP家族的眾多成員中,是最出色的熱耐受預(yù)測因子[7]。加熱過程中,伴隨HSP70水平的升高,正常蛋白質(zhì)合成受到不同程度的抑制。隨著HSP70的產(chǎn)生,蛋白質(zhì)的生物合成逐漸恢復(fù),腫瘤細胞的自我保護機制開始啟動,從而引起腫瘤細胞對熱的敏感性下降。在臨床應(yīng)用過程中發(fā)現(xiàn),在加熱溫度低于43℃(如溫和熱療即加熱溫度為42℃)或時間過長時,腫瘤細胞更易發(fā)生熱耐受[8]。崔曉波等[9]通過研究發(fā)現(xiàn)口腔鱗狀細胞癌CA9-22細胞在受到熱刺激后(42℃),HSP70在基因和蛋白水平上均明顯升高,熱療后2~4 h即明顯升高達到最高水平。一般而言,加熱的溫度偏低,時間越長,越易形成熱耐受。如39℃~42℃加溫時,加熱2~3小時,在加熱過程中即可誘發(fā)熱耐受[10]。為此,可通過提高加熱溫度或減少加熱時間來減少HSP70的表達,以避免腫瘤熱療過程中產(chǎn)生熱耐受。
本實驗表明,未進行熱療的細胞HSP70表達較低,為2%左右,熱療可以促進離體各腫瘤細胞HSP70表達增加,當(dāng)加熱溫度一定時,HSP70的陽性表達率和表達強度隨時間的延長而提高,在加熱到10分鐘時各腫瘤細胞中HSP70陽性表達尚不十分強(31%~40%),說明此時尚未產(chǎn)生“熱耐受”,在加熱到20分鐘時各腫瘤細胞中HSP70強陽性表達,但在加熱30分鐘后細胞大量壞死,HSP70陽性表達逐漸減弱,在50分鐘時HSP70陽性表達基本消失。本實驗為臨床上如何避免腫瘤熱療過程中產(chǎn)生熱耐受提供了一定的實驗依據(jù)。
[1] 顏士巖,張東生.熱休克蛋白在腫瘤治療領(lǐng)域中的研究進展[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報,2005,18(1):59-62.
[2] 魏紅梅,郭坤元.熱休克蛋白與腫瘤免疫[J].實用醫(yī)學(xué)雜志,2006,22(9):1092-1093.
[3] Xu M, Wright WD, Higashikubo R , et al . Intracellular distribution of HSP70 during long duration moderate hyperthermia [J]. Int J Hyperthermia, 1998, 14 (2): 211-225.
[5] Roccheri MC, Onorato K, Tipa C, et al. EGTA treatment causes the synthesis of heat shock proteins in sea urchin embryos [J]. Mole Cell Biol Res Commun, 2000, 3(5): 306-311.
[6] Macario AJ. Heat shock protein and molecular chaperones: implications for pathogenesis , diagnostics , and therepeutics [J]. Int J Clin Lab Res, 1995, 25 (2):59-70.
[7] Nollen EA, Brunsting J F, Roelofsen H, et al. In vivo chaperone activity of heat shock protein 70 and thermotolerance [J] . Mol Cell Biol, 1999, 19 (3): 206-2079.
[8] Xu M, Wright WD, Higashikubo R, et al. Chronic thermotolerance with continued cell proliferation[J]. Int J Hyperthermia, 1996, 12 (5): 645-660.
[9] 崔曉波,于兆衍,劉偉,等. 頭頸部鱗狀細胞癌細胞熱療后HSP70/HSP90的表達規(guī)律及其抑制對熱療療效的影響[J]. 中國耳鼻咽喉頭頸外科, 2010, 17(8): 396-398.
[10] 安曉汾.陳必良.溫和加熱誘導(dǎo)人卵巢癌細胞熱休克蛋白70的表達[J].細胞與分子免疫學(xué)雜志, 2002, 18(5): 468-470.
山東第一醫(yī)科大學(xué)(山東省醫(yī)學(xué)科學(xué)院)學(xué)報2012年3期