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抗原刺激后小鼠CD4+T細(xì)胞IL-10受體Ⅰ表達(dá)情況的研究

2011-09-07 03:21:20楊芳莉刁騁韋星呈曾艷嚴(yán)丹丹
關(guān)鍵詞:尼龍免疫抑制無菌

楊芳莉,刁騁,韋星呈,曾艷,嚴(yán)丹丹

(沈陽醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,遼寧 沈陽 110034)

白細(xì)胞介素10(interleutin-10,IL-10) 是由 T淋巴細(xì)胞、B淋巴細(xì)胞、單核巨噬細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞產(chǎn)生的一種細(xì)胞因子[1-2]。也有研究指出調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞 (Treg)才是體內(nèi)IL-10的主要來源[3]。人類和小鼠的 IL-10 受體 (interleutin-10 receptor,IL-10R) 由 IL-10R1 和 IL-10R2 兩個亞單位組成。IL-10R2 不與 IL-10 發(fā)生結(jié)合,IL-10R1是IL-10R中與IL-10結(jié)合的亞單位,人類T淋巴細(xì)胞表面表達(dá)較高水平IL-10R1[4],活化后的T細(xì)胞IL-10R1表達(dá)水平有所下調(diào)[5]。與人類不同的是,小鼠靜息 T淋巴細(xì)胞表面不表達(dá) IL-10R1[6]。國外有報道指出小鼠CD8+T淋巴細(xì)胞接受抗原刺激后IL-10R1在細(xì)胞表面可有短暫的表達(dá)[7],但關(guān)于CD4+T淋巴細(xì)胞相關(guān)方面的報道較少。本實驗對抗原刺激后小鼠 CD4+T淋巴細(xì)胞表面 IL-10R1表達(dá)情況進(jìn)行檢測,為進(jìn)一步研究IL-10相關(guān)免疫疾病的發(fā)病及進(jìn)展提供有力支持。

1材料與方法

1.1 材料 試劑:小鼠 anti-CD4-FITC標(biāo)記熒光抗和 anti-IL-10R1-PE 標(biāo)記熒光抗體均購自 Biolegend公司;anti-CD28 和 anti-CD3 抗體購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司公司;RPMI-1640培養(yǎng)基和小牛血清購自GIBCO GRL公司;尼龍毛購自日本和光純藥工業(yè)株式會社 (WOKA)。實驗動物:SPF級6~8周齡 C57BL/6小鼠 (雌性)10只購于北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部實驗動物中心。

1.2 方法

1.2.1 小鼠脾細(xì)胞懸液的制備 處死小鼠,無菌條件下分離脾臟,注射器沖洗脾臟,無菌冷紅細(xì)胞裂解液處理后,洗滌細(xì)胞。加入適量PBS,充分混勻細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度至1×107cell/ml。

1.2.2 尼龍毛去除B細(xì)胞 稱取尼龍毛100 mg,充分填塞于5 ml注射器針筒內(nèi),用適量PBS平衡。將脾細(xì)胞懸液緩慢經(jīng)過尼龍毛,過濾兩次,將所得細(xì)胞重新調(diào)整濃度至1×106cell/ml。

1.2.3 流式細(xì)胞術(shù)無菌分選CD4+T淋巴細(xì)胞加入 anti-CD4-FITC 標(biāo)記抗體 1 μg/L × 106cells,室溫避光孵育30 min,500 r/min,離心5 min,清洗兩次后,500 μl PBS重懸細(xì)胞,經(jīng)流式細(xì)胞儀無菌分選,收集得到的CD4+T細(xì)胞,用加有10%小牛血清的RPMI-1640調(diào)整細(xì)胞濃度至1×106cell/ml。將細(xì)胞放置于24孔培養(yǎng)板中無菌培養(yǎng),1×105cell/孔。

1.2.4 抗原刺激 向各孔中分別加入 anti-CD3(1:200)和anti-CD28(1:200)多克隆抗體對細(xì)胞進(jìn)行刺激,并且無菌培養(yǎng)。

1.2.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測IL-10R1表達(dá)情況 抗原刺激后0 h,12 h,24 h,48 h,72 h分別收集細(xì)胞,無菌PBS清洗,1 500 r/min,離心5 min。將細(xì)胞重懸于100 μl PBS中,輕彈起細(xì)胞,加入anti-IL-10R1-PE 抗體 0.2 μg/L × 106cells,室溫避光孵育30 min,500 r/min,離心5 min,清洗兩次后,500 μl PBS重懸細(xì)胞。以未加任何抗體的細(xì)胞做空白對照。流式細(xì)胞分析術(shù)檢測CD4+T細(xì)胞表面IL-10R1表達(dá)情況。

2 結(jié)果

2.1 流式細(xì)胞術(shù)無菌分選CD4+T淋巴細(xì)胞結(jié)果(圖1) 從圖1可見大量CD4+T淋巴細(xì)胞被選出,符合進(jìn)一步實驗要求。

圖1 流式細(xì)胞術(shù)分選CD4+T淋巴細(xì)胞結(jié)果圖(方框中為分選出的CD4+T淋巴細(xì)胞)

2.2 流式細(xì)胞術(shù)檢測刺激各個時段CD4+T淋巴細(xì)胞IL-10R1表達(dá)情況 (圖2) 從圖2可見,0 h時CD4+T淋巴細(xì)胞幾乎不表達(dá)IL-10R1,12 h時IL-10R1表達(dá)上升,24 h時達(dá)到高峰,48 h時IL-10R1表達(dá)開始下降,72 h時表達(dá)水平與0 h接近。

圖2 流式細(xì)胞術(shù)檢測刺激各個時段CD4+T淋巴細(xì)胞IL-10R1表達(dá)水平結(jié)果圖

3 討論

本研究中,小鼠CD4+T淋巴細(xì)胞未接受抗原刺激時不表達(dá)IL-10R1,因此不能與IL-10結(jié)合并接受IL-10對細(xì)胞的調(diào)控。但是這種來源于IL-10的免疫調(diào)控作用在小鼠體內(nèi)對T淋巴細(xì)胞并非無效,在抗原刺激后,小鼠CD4+T淋巴細(xì)胞開始逐漸表達(dá)IL-10R1,在24 h時達(dá)到頂峰,隨后受體的表達(dá)水平開始下降,在72 h后恢復(fù)到未接受抗原刺激時 (0 h的水平)??梢娫谛∈篌w內(nèi),IL-10作為一種重要的免疫抑制性調(diào)節(jié)因子,并不是始終直接對CD4+T淋巴細(xì)胞具有調(diào)節(jié)作用,這種直接的調(diào)節(jié)作用很可能體現(xiàn)在CD4+T淋巴細(xì)胞接受抗原刺激表達(dá)IL-10R1的短暫時間段內(nèi);在這個時間段內(nèi),IL-10也很有可能參與了CD4+T淋巴細(xì)胞的分化過程。與小鼠不同的是,人類CD4+T淋巴細(xì)胞在未接受抗原刺激時就表達(dá)高水平的 IL-10R1[4],在接受抗原刺激后 IL-10R1 的表達(dá)水平有所下降。也有研究指出活化后的單核巨噬細(xì)胞IL-10R1 表達(dá)水平上調(diào)[5],這提示在人類 IL-10 直接對T淋巴細(xì)胞的抑制作用隨著活化是逐漸減弱,通過對抗原提呈細(xì)胞的抑制來間接對活化的T淋巴細(xì)胞起到很好的調(diào)控作用??傊琁L-10在小鼠體內(nèi)和人類體內(nèi)都對活化后的CD4+T淋巴細(xì)胞起到直接的調(diào)節(jié)作用,因此可以在模型小鼠身上研究在IL-10R1表達(dá)這一時間段內(nèi) IL-10對 CD4+T淋巴細(xì)胞直接作用,為進(jìn)一步探討在人體中IL-10對CD4+T淋巴細(xì)胞的作用提供強(qiáng)有力的幫助,從而對進(jìn)一步揭示相關(guān)的自身免疫性疾病的發(fā)病機(jī)制和疾病進(jìn)展情況,尋找治療新靶點(diǎn)具有重要意義。

目前,IL-10基因作為系統(tǒng)性紅斑狼瘡 (systemic lupus erythematosus,SLE)遺傳候選基因,成為研究SLE發(fā)病機(jī)制的熱點(diǎn),同時也因其免疫抑制功能而成為研究其他自身免疫病發(fā)病機(jī)制的重要靶點(diǎn)。有人發(fā)現(xiàn)小鼠IL-10對小鼠B淋巴細(xì)胞的作用,在小鼠IL-10R1分子胞漿區(qū)呈區(qū)段分布,且靠近細(xì)胞膜的一段區(qū)域與抑制性調(diào)節(jié)有關(guān)[8]。還有人指出NZW狼瘡小鼠的IL-10R1基因在此區(qū)段具有突變,并且導(dǎo)致編碼氨基酸發(fā)生改變,這有可能使IL-10的免疫抑制功能受到影響,成為狼瘡發(fā)病的原因[6]。IL-10作為體內(nèi)重要的免疫調(diào)節(jié)性細(xì)胞因子,進(jìn)一步研究自身免疫病小鼠模型中IL-10通過IL-10R1對T淋巴細(xì)胞的調(diào)控機(jī)制,對揭示自身免疫性疾病的發(fā)病機(jī)制和指導(dǎo)臨床治療有重要意義。

[1]Ho AS,Moore KW.Interleukin-10 and its receptor [J].Ther Immunol,1994,1:173 -185.

[2]Moore KW,O’Garra A,de Waal Malefyt R,et al.Interleukin-10 [J].Annu Rev Immunol,1993,11:165 -190.

[3]Jankovic D,Kullberg MC,F(xiàn)eng CG,et al.Conventional T-bet-Foxp3-Th1 cells are the major source of host-protective regulatory IL10 during intracellular protozoan infection [J].J Exp Med,2007,204:273-283.

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