王慧,曹穎瑛,李燕,譚光國(guó),朱臻宇
1. 第二軍醫(yī)大學(xué)藥學(xué)院,上海 200433; 2. 北京中國(guó)人民解放軍總后勤部鄭常莊干部休養(yǎng)所,北京 100141
白假絲酵母是一種人類常見(jiàn)條件致病真菌,通常存在于正常人口腔、上呼吸道、腸道及陰道,在人體抵抗力下降時(shí)會(huì)引起感染甚至危及生命。近年來(lái),深部真菌感染日益成為醫(yī)院內(nèi)主要感染,其中白假絲酵母成為假絲酵母感染中最常見(jiàn)的病原[1]。
白假絲酵母是一種具有多種形態(tài)的真菌,形態(tài)有厚膜孢子、酵母、假菌絲、菌絲等。其中菌絲相與酵母相的轉(zhuǎn)化被認(rèn)為是影響致病的重要因素。已有許多研究證實(shí),不產(chǎn)生菌絲相的基因缺陷型白假絲酵母在動(dòng)物模型中致病性降低,而酵母相的白假絲酵母則有助于播散性感染[2]。生物被膜是由酵母細(xì)胞、菌絲和細(xì)胞外多聚基質(zhì)3部分組成的一種結(jié)構(gòu)群體[1]。在白假絲酵母中,生物被膜的形成會(huì)使其對(duì)一些臨床常用抗真菌感染藥物產(chǎn)生高度耐藥性。因此,白假絲酵母的形態(tài)變化對(duì)其在宿主環(huán)境下的生存、致病及耐藥性有很大意義。在白假絲酵母形態(tài)轉(zhuǎn)化過(guò)程中,能自發(fā)向細(xì)胞外釋放一些特定信號(hào)分子,調(diào)節(jié)微生物的密度變化,這類小分子物質(zhì)稱為群體感應(yīng)分子(quorum sensing molecule)。目前白假絲酵母中已確定的群體感應(yīng)分子有法尼醇(farnesol)、酪醇(tyrosol)和麝油酸(farnesoic acid)[3]。此外,不同形態(tài)的白假絲酵母對(duì)氨基酸的攝取不完全相同,甚至存在很大差異[4]。
在宿主中生存時(shí),受大量外界環(huán)境的影響,如宿主的免疫系統(tǒng)、滲透性、溫度、pH值、氧化水平、養(yǎng)分有效性、氧化還原態(tài)等,白假絲酵母會(huì)發(fā)生很大變化,承受極大的外界壓力。處于逆境中的白假絲酵母會(huì)于數(shù)分鐘內(nèi)在基因和代謝水平上作出適當(dāng)反應(yīng),最終使細(xì)胞獲得對(duì)逆境的抗性[5]。這些對(duì)外界環(huán)境產(chǎn)生的應(yīng)激性使白假絲酵母快速適應(yīng)外界環(huán)境,對(duì)其耐藥性的產(chǎn)生起一定作用。當(dāng)處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的白假絲酵母面臨高溫、NaCl、H2O2、CuSO4、高濃度乙醇、弱有機(jī)酸(山梨酸酯和苯甲酸)等脅迫時(shí),會(huì)不同程度引起細(xì)胞內(nèi)海藻糖(trehalose)濃度上升[5-7];受高滲和檸檬酸影響時(shí)會(huì)積累大量甘油(glycerol);受高溫和氧化應(yīng)激時(shí)會(huì)生成大量阿拉伯糖醇(D-arabitol)[8],這些化合物都對(duì)白假絲酵母的生物大分子有一定的保護(hù)作用。
白假絲酵母在生長(zhǎng)過(guò)程中,會(huì)產(chǎn)生一些有機(jī)化合物,分泌至胞外,其中部分為群體感應(yīng)分子。對(duì)這類化合物的提取和分離主要是收集培養(yǎng)上清液,再對(duì)培養(yǎng)上清液進(jìn)行一系列處理,然后供分析。
法尼醇是第1個(gè)被發(fā)現(xiàn)的白假絲酵母生長(zhǎng)過(guò)程中分泌的胞外群體感應(yīng)分子[9]。有文獻(xiàn)報(bào)道,它能影響白假絲酵母的雙相性和被膜生長(zhǎng),抑制芽管形成[10],抑制酵母向菌絲轉(zhuǎn)化[11],抑制被膜形成;同時(shí)也會(huì)增強(qiáng)由H2O2等引起的氧化性應(yīng)激下白假絲酵母的存活率[12],是目前發(fā)現(xiàn)的白假絲酵母中作用最強(qiáng)、研究最多的群體感應(yīng)分子。
法尼醇是揮發(fā)性的萜類化合物,因此常用氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)進(jìn)行檢測(cè)。 Hornby等[10]將收集的含法尼醇的培養(yǎng)上清液進(jìn)行過(guò)濾后直接進(jìn)樣,或采用乙酸乙酯液-液萃取,進(jìn)一步提純其中脂溶性有效成分,并分別采用反相高效液相色譜-質(zhì)譜(reversed-phase high performance liquid chromatography-mass spectrometry,RP-HPLC-MS)、衍生化GC-MS、薄層色譜法(thin layer chromatography,TLC)對(duì)法尼醇進(jìn)行鑒定。而Ghosh等[13]也是將培養(yǎng)上清液過(guò)濾后,用液-液萃取(乙酸乙酯)結(jié)合GC-MS方法來(lái)分離、檢測(cè)法尼醇。與Hornby等不同的是,樣品并未進(jìn)行衍生化處理,若采用己烷或乙酸乙酯/己烷(1∶4)萃取上清液,只適用于提取法尼醇;而用乙酸乙酯萃取,可同時(shí)提取白假絲酵母中苯乙醇(phenylethyl alcohol)、法尼醇、色醇(tryptophol)和酪醇4種小分子。Martins 等[14]采用頂空固相微萃取(headspace-solid phase microextraction,HS-SPME)/GC-MS同時(shí)測(cè)定浮游和被膜型白假絲酵母中異戊醇、2-苯乙醇、1-十二醇、橙花叔醇和法尼醇等醇類化合物。Gregus等[15]采用乙腈沉淀蛋白的方法處理樣品后,用超高效液相色譜-質(zhì)譜 (ultra-performance liquid chromatography-mass spectrometry,UPLC-MS)測(cè)定尼醇和酪醇。
Oh等[16]最早分離出麝油酸,并發(fā)現(xiàn)其能抑制酵母向菌絲轉(zhuǎn)化。與法尼醇相比,麝油酸的分泌有局限性,僅能在特定菌株中表達(dá),且作用相對(duì)較弱,僅為法尼醇的3%[3]。高濃度麝油酸可抑制白假絲酵母菌絲生長(zhǎng),但不抑制酵母生長(zhǎng)[16,17]。相對(duì)法尼醇,麝油酸對(duì)酵母向菌絲形態(tài)轉(zhuǎn)化的選擇性更強(qiáng)[18]。
Oh等[16]將培養(yǎng)上清液凍干,用甲醇復(fù)溶,離心后取上清液;再用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將甲醇溶液揮干,用己烷復(fù)溶;正相高效液相色譜(normal-phase high performance liquid chromatography,NP-HPLC)進(jìn)行分離,收集流出的有效成分;揮干,用0.1 ml的90%乙腈復(fù)溶,RP-HPLC進(jìn)行梯度洗脫,獲得麝油酸單體;并用GC-MS和核磁共振波譜(nuclear magnetic resonance,NMR)進(jìn)行結(jié)構(gòu)鑒定。
Chen等[19]指出,酪醇的分泌會(huì)促進(jìn)菌絲生長(zhǎng),從而縮短轉(zhuǎn)化時(shí)間。在利于菌絲生長(zhǎng)的條件下,酪醇還會(huì)縮短細(xì)胞發(fā)展成芽管的時(shí)間,促進(jìn)芽管形成,該作用在被膜生長(zhǎng)的早期和中期最為顯著[20]。
Chen等[19]固相萃取、富集白假絲酵母培養(yǎng)液后,用RP-HPLC純化、制備酪醇,并對(duì)其結(jié)構(gòu)進(jìn)行NMR鑒定。Alem等[20]改良了上述方法,縮短了酪醇的出峰時(shí)間。Ghosh等[13]采用乙酸乙酯液-液萃取結(jié)合GC-MS的方法分離、鑒定酪醇,該法同樣可用于測(cè)定白假絲酵母中苯乙醇、法尼醇、色醇等其他小分子。魏昕等[21]將生物被膜培養(yǎng)上清液離心、抽濾后,采用HPLC檢測(cè)酪醇。Gregus等[15]將收集的液體用乙腈沉淀蛋白后,采用UPLC-MS測(cè)定酪醇,同時(shí)測(cè)定了法尼醇和酪醇。
有報(bào)道,苯乙醇和色醇在白假絲酵母中起抑制菌絲形成和細(xì)胞生長(zhǎng)的作用,但這2個(gè)化合物對(duì)白假絲酵母形態(tài)的影響機(jī)制尚不明確[3,22],但要達(dá)到500 μmol/L才能抑制絲化現(xiàn)象[22],所以其在正常濃度范圍內(nèi)抑制菌絲的作用有待進(jìn)一步研究。此外,研究還發(fā)現(xiàn)色醇具有細(xì)胞毒性[22]。Lingappa等[22]用氯仿萃取培養(yǎng)上清液,用MS鑒定這2種化合物。Hazen等[23]采用將上清液過(guò)濾后以GC方法測(cè)定苯乙醇和色醇。Kosalec等[24]采用液相色譜-質(zhì)譜(liquid chromatography-mass spectrometry,LC-MS)鑒別和定量色醇。Martins等[14]采用HS-SPME/GC-MS對(duì)苯乙醇等醇類進(jìn)行分析。Ghosh等[13]采用乙酸乙酯液-液萃取方法分離、提純苯乙醇和色醇,并將濃縮液用GC-MS進(jìn)行分析。
Hazen和Cutler[25]在白假絲酵母研究中發(fā)現(xiàn)了一種物質(zhì)并命名為MARS,它能耐高溫,70 ℃下放置30 min還能保持穩(wěn)定,但在分離48 h后或pH超出4~9.5時(shí),就會(huì)失去抑制絲化的活性。不僅白假絲酵母可分泌MARS,熱帶假絲酵母也可分泌。Hazen 和 Cutler將含MARS的組分用吡啶或乙醚萃取后,經(jīng)RP-HPLC進(jìn)一步純化、收集。經(jīng)鑒定,MARS有1個(gè)含氮雜環(huán)結(jié)構(gòu),能抑制假絲酵母中氨基酸攝取。但MARS分子結(jié)構(gòu)及其在調(diào)節(jié)白假絲酵母形態(tài)轉(zhuǎn)化中的作用仍需深入研究。
白假絲酵母代謝產(chǎn)生用于合成蛋白質(zhì)、核酸、類脂和多糖等的一些小分子物質(zhì),如氨基酸、核苷酸、有機(jī)酸和單糖衍生物等,與微生物細(xì)胞內(nèi)生物合成息息相關(guān)。要對(duì)這類物質(zhì)進(jìn)行分析,首先要進(jìn)行細(xì)胞破碎,目前主要方法有[26,27]化學(xué)試劑裂解、低滲溶液脹破、反復(fù)凍融和機(jī)械性方法,將細(xì)胞破碎后才能對(duì)胞內(nèi)代謝物進(jìn)行下一步研究。
氨基酸對(duì)白假絲酵母形態(tài)轉(zhuǎn)化起一定作用。有文獻(xiàn)報(bào)道,血清和氨基酸都是已知的能誘導(dǎo)白假絲酵母發(fā)生形態(tài)轉(zhuǎn)化的物質(zhì),但其分子機(jī)制仍不明確[28]。氨基酸種類或數(shù)量不足也會(huì)刺激白假絲酵母的形態(tài)變化。白假絲酵母的2種形態(tài)對(duì)各種氨基酸的攝取需求也不完全相同,甚至存在很大差異[4,29,30]。
早期,對(duì)白假絲酵母中氨基酸的分析方法主要是往培養(yǎng)基中加入放射性核素標(biāo)記的氨基酸(如L-3H-氨基酸),待菌體收集、洗滌完全后,吹干,轉(zhuǎn)移到閃爍瓶中,用液體閃爍計(jì)數(shù)器計(jì)數(shù)[6]。近年來(lái),色譜技術(shù)廣泛運(yùn)用于氨基酸的分析。Flynn等[31]采用柱前衍生化RP-HPLC對(duì)氨基酸進(jìn)行測(cè)定。
海藻糖是化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定的非還原性二糖,由2個(gè)吡喃葡萄糖分子通過(guò)α-1,1-糖苷鍵連接而成[6]。它是細(xì)胞中的一種應(yīng)激代謝物,當(dāng)細(xì)胞處于長(zhǎng)時(shí)間饑餓、高滲、熱激以及孢子萌發(fā)時(shí),海藻糖含量會(huì)發(fā)生顯著變化,恢復(fù)正常環(huán)境后又迅速降解。因此,海藻糖含量的變化從某種程度上反映了機(jī)體對(duì)外界環(huán)境的響應(yīng),在對(duì)不同脅迫應(yīng)答中,海藻糖的積累被認(rèn)為起關(guān)鍵作用[5,7]。
Pfyffer等[32]采用熱乙醇將細(xì)胞破碎后,過(guò)濾取上清液,再經(jīng)三甲基硅烷衍生化后進(jìn)行GC分析,該法可同時(shí)測(cè)定甘油、核糖醇、阿拉伯糖醇和海藻糖。Cao等[33]和Lu等[34]將細(xì)胞以微波破碎后,收集上清液,用HPLC-MS分析海藻糖。Askew等[35]則用熱水萃取胞內(nèi)代謝物,取上清液后用酶法分析海藻糖和甘油。
白假絲酵母在生長(zhǎng)過(guò)程中會(huì)積累大量甘油和D-阿拉伯糖醇,造成哺乳動(dòng)物感染。在培養(yǎng)6 h后能產(chǎn)生最大量的甘油,在12 h產(chǎn)生最大量的D-阿拉伯糖醇和核糖醇。這些多元醇的釋放與胞外環(huán)境有關(guān)[36]。
1981年Bernard等[36]將細(xì)胞處理后,用三甲基硅醚衍生化,以α-甲基甘露苷作為內(nèi)標(biāo),通過(guò)GC定量測(cè)定D-阿拉伯糖醇。Pfyffer等[32]采用熱乙醇將細(xì)胞破碎,過(guò)濾取上清液,有效成分經(jīng)三甲基硅烷衍生化后進(jìn)行GC分析。該法可同時(shí)測(cè)定甘油、核糖醇、阿拉伯糖醇和海藻糖,但未能將核糖醇和阿拉伯糖醇分開(kāi),且甘油出峰時(shí)間較靠前,可能被衍生化試劑的峰掩蓋。Kayingo和 Wong[8]以α-甲基甘露苷和α-甲基葡萄糖苷作為內(nèi)標(biāo),通過(guò)GC分析同時(shí)測(cè)定D-阿拉伯糖醇、核糖醇、甘露醇和山梨醇(半乳糖醇),其中將D-阿拉伯糖醇和核糖醇(同分異構(gòu)體)分離;但該法未能檢測(cè)甘油,作者進(jìn)一步將樣品酶解后采用紫外吸光度法對(duì)甘油進(jìn)行定量。Wesolowski等[37]和Askew等[35]也采用酶法分析胞內(nèi)甘油。而Kayingo等[38]則采用放射性核素標(biāo)記甘油(14C-甘油),收集菌體后,轉(zhuǎn)移到閃爍瓶中,用液體閃爍計(jì)數(shù)器計(jì)數(shù)。
白假絲酵母的胞內(nèi)、外活性代謝物種類繁多(表1),功能非常復(fù)雜。作為生物體基因表達(dá)的終產(chǎn)物,活性代謝物的變化反映了細(xì)胞對(duì)基因或環(huán)境變化的最終響應(yīng)。通過(guò)對(duì)活性代謝物種類和含量的動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè),結(jié)合已有的代謝網(wǎng)絡(luò)數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行研究,將為深入探索白假絲酵母自身代謝調(diào)節(jié)機(jī)制提供新的思路。
表1白假絲酵母相關(guān)代謝物
Tab.1RelatedmetabolitesofCandidaalbicans
CompoundStructureMARSUnknown, containing an amine ringFarnesolTyrosol Farnesoic acidPhenylethyl alcoholTryptopholAmino acidGlycerolD-arabitolTrehalose
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