張永紅,賀興鄂,唐曉鵬,王文龍,羅開忠
(中南大學(xué) 湘雅二醫(yī)院肝病研究所,長沙 410011)
乙型肝炎病毒(hepatitis Bvirus,HBV)的持續(xù)感染與肝細胞肝癌(hepatocellular carcinoma,HCC)的發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān)[1]。雖然HBV感染引起HCC的發(fā)生機制尚未闡明,但研究發(fā)現(xiàn)HBV編碼的X蛋白(hepatitis B virus X protein,HBx protein)可反式激活宿主和病毒基因的啟動,具有廣泛的生物學(xué)活性,85%HCC患者的肝組織中含有特異性的HBx蛋白,提示HB x基因在HCC的發(fā)生中發(fā)揮著關(guān)鍵性作用[2~4]。釀酒酵母YKL-40蛋白在惡性腫瘤組織中常被激活,在腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移中發(fā)揮著重要的作用。我們通過小干擾RNA(small interfering RNA,siRNA)使HB x基因沉默,研究了HBx蛋白對YKL-40蛋白表達的影響,不僅對探討HBV相關(guān)性HCC的發(fā)生機制具有重要意義,還為通過阻斷HBx蛋白表達影響腫瘤相關(guān)基因的表達來防治HCC提供理論依據(jù)。
1.1.1 質(zhì)粒、菌株和腫瘤細胞:質(zhì)粒pRNAT-U6.1/Neo(GenScript)、大腸桿菌DH5α、人肝癌細胞系HepG 2.2.15細胞均為本實驗室保存。
1.1.2 試劑:T4 DNA連接酶、BamHI內(nèi)切酶、HindⅢ內(nèi)切酶、G418、小量質(zhì)粒DNA純化試劑盒等均購自Progmega公司;DNA marker和RT試劑盒購自Ferments公司;轉(zhuǎn)染脂質(zhì)體Lipofectamin 2000和Trizol regent購自Invitrogen公司;DMEM(高糖)和胎牛血清購自Gibco公司;鼠抗HBx一抗和鼠抗YKL-40一抗購自ABcam公司,鼠抗YKL-40一抗購自R&D公司,F(xiàn)ITC標(biāo)記兔抗鼠二抗、HRP標(biāo)記兔抗鼠二抗購自Santa Cruz公司;DAB染色試劑盒購自KPL公司。
1.2.1 siRNA表達模板的設(shè)計與合成:針對HBV基因組中X基因選取一段靶序列:5′TGCTAGGGTGTGCTGCCAACT 3′,再根據(jù)這段序列按照質(zhì)粒的要求設(shè)計一對siRNA模板,具有特殊的序列與結(jié)構(gòu),所表達的RNA為短發(fā)夾結(jié)構(gòu),見圖1。另外,作為陰性對照,設(shè)計一條隨機無關(guān)序列:5′CCTGCGTTGATGCCTTTGCCT 3′,根據(jù)這段序列再設(shè)計一對siRNA模板序列,由上海生工生物工程公司合成。
1.2.2 siRNA表達質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定:將上述合成的模板DNA鏈分別用水配成1μg/μl的溶液,各取5 μl,加入 2μl退火緩沖液(2 mol/L NaCl)和 8μl水,混勻后于95℃水浴5 min變性,自然冷卻退火成雙鏈DNA,與BamHⅠ和HindⅢ雙酶切的質(zhì)粒pRNAT-U6.1/neo連接,在T4連接酶作用下,16℃連接過夜;轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細菌,于Amp陽性的LB平板上37℃培養(yǎng)過夜;挑取生長良好的單個菌落接種于Amp陽性的LB液體培養(yǎng)基中擴增,提取質(zhì)粒測序鑒定。
1.2.3 細胞培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染:HepG2.2.15細胞使用含10%胎牛血清和G418(400μg/ml)的DMEM高糖培養(yǎng)基,置37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),細胞貼壁生長至80%~90%融合狀態(tài)時用0.25%胰酶消化進行傳代培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染前1 d用0.25%胰酶消化培養(yǎng)瓶中的細胞,用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基調(diào)整細胞密度為5×105/ml,于60 mm×25 mm細胞培養(yǎng)皿加入3 ml細胞懸液,培養(yǎng)24 h左右,使細胞全部貼壁;按照Lipofectamin 2000說明書,于2個細胞培養(yǎng)皿中分別轉(zhuǎn)染4μg質(zhì)粒pRNAT-Neg和pRNAT-HBx。24 h后細胞使用有限稀釋法,接種于96孔細胞培養(yǎng)板中,熒光顯微鏡下觀察綠色螢光蛋白(green fluorescent protein,GFP)表達,篩選出陽性單細胞克隆,建立穩(wěn)定細胞株,分別命名為2215-Neg和2215-HBx。將細胞設(shè)為空白對照組(2.2.15)、陰性對照組(2215-Neg)和實驗組(2215-HBx),按 1×106/孔接種于6孔細胞培養(yǎng)板中,每組3個平行孔,培養(yǎng)72 h收獲細胞。
1.2.4 RT-PCR檢測HB x與YKL-40 mRNA的表達水平:采用Trizol法分別提取細胞總RNA,各取5μg RNA按照RT-PCR試劑盒說明書進行逆轉(zhuǎn)錄獲得cDNA,然后PCR擴增目的片段。HB x基因的PCR上游引物為 5′ATGGCTGCTAGGGTGTGCTG 3′,下游引物為 5′CGACGTACAGAGGTGAGGCG 3′,擴增產(chǎn)物片段大小為233 bp;YKL-40的上游引物為5′GGATGGAACTTTGGGTCTCA 3′,下游引物為 5′GCTGTTTGTCTCTCCGTCCA 3′,擴增產(chǎn)物片段長度為154 bp;同時以3-磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)作為陽性內(nèi)對照,GAPDH的上游引物為5′CCACCCATGGCAAATTCCATG 3′,下游引物為 5′TCTAGACGGCAGGTCAGGTCCACC 3′,擴增片段長度為574 bp。PCR條件為94℃預(yù)變性3 min,94℃30 s,58℃ 30 s,72℃ 45 s,共 35個循環(huán),72℃延伸 7 min,PCR產(chǎn)物行2%瓊脂糖凝膠電泳。
1.2.5 Western blot檢測HBx與YKL-40蛋白的表達情況:每孔細胞收集后加入200μl細胞裂解液,200 W超聲破碎10 s,4℃、16 000 r/min離心2 min,取上清進行蛋白定量,按20μg/孔行12%SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉封閉2 h,加入一抗(1∶500稀釋),4℃過夜;PBS洗滌 3次,5 min/次,加入酶標(biāo)二抗(1∶500稀釋),室溫 2 h;PBS洗滌 3次,5 min/次,DAB染色。
1.2.6 細胞免疫熒光:細胞按上述3組于6孔板中進行細胞爬片,待細胞生長至50%~60%融合,取出玻片,PBS沖洗,4%多聚甲醛固定10 min;PBS洗2遍,加入透化液靜置10 min;PBS洗4遍,加入5%BSA封閉30 min;加入一抗(1∶50稀釋),室溫1 h;PBS洗4遍,加入熒光二抗(1∶50稀釋),避光1 h;PBS洗4次,熒光顯微鏡下觀察。
重組質(zhì)粒測序結(jié)果確定siRNA模板已正確插入質(zhì)粒,圖2所示為重組質(zhì)粒pRNAT-neg和pRNAT-HBx的測序圖譜中截取的siRNA模板(測的是反義鏈)。
質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后24 h即可觀察到GFP的表達,有限稀釋法于96孔板中篩選到陽性單細胞克隆,擴大培養(yǎng)即獲得穩(wěn)定細胞株2215-neg和2215-HBx,熒光顯微鏡下照相,可見空白2.2.15細胞無熒光蛋白表達,而穩(wěn)定細胞株2215-neg和2215-HBx均有GFP表達,見圖3。
PCR產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果(圖4)顯示,GAPDH作為陽性內(nèi)對照,可見清晰條帶;實驗組細胞HB x和YKL-40的mRNA水平明顯低于空白對照組及陰性對照組,而空白對照組及陰性對照組HB x和YKL-40的mRNA水平無明顯差別,表明pRNAT-HBx可明顯抑制HepG2.2.15細胞中HB x的mRNA表達,YKL-40的mRNA水平隨HB x基因的下調(diào)而降低。
Western blot結(jié)果(圖 5)顯示,β-actin內(nèi)參照的表達均在同一水平,實驗組細胞HBx和YKL-40蛋白的表達明顯低于空白對照組及陰性對照組,而空白對照組及陰性對照組HBx和YKL-40蛋白的表達水平無明顯差別,表明pRNAT-HBx抑制了HepG2.2.15細胞中HBx蛋白的表達,YKL-40的蛋白水平隨HBx蛋白的下調(diào)而降低。
熒光顯微鏡下,空白對照組及陰性對照組細胞質(zhì)內(nèi)均有很強的綠色熒光,而實驗組細胞質(zhì)內(nèi)綠色熒光明顯減弱。提示HBx和YKL-40在各組細胞內(nèi)的蛋白表達情況與RT-PCR和Western blot結(jié)果一致,見圖6。
HB x基因是HBV基因組中最小的閱讀框架,在感染哺乳動物的HBV中高度保守,HBV感染后,病毒基因組常整合入宿主細胞基因組造成宿主細胞染色體不穩(wěn)定。X基因是最常被整合的基因,大多數(shù)肝癌細胞株及HCC都含有部分或全部的HB x基因,整合形式的X基因產(chǎn)生HBx蛋白,分子量約17 kDa[5]。作為一種反式激活因子,HBx蛋白能激活宿主細胞和病毒自身基因的轉(zhuǎn)錄,調(diào)控細胞凋亡,抑制細胞中受損DNA的修復(fù)反應(yīng)及激活細胞中信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路。HBx蛋白本身不能與雙鏈DNA直接結(jié)合,主要通過與宿主細胞中的蛋白發(fā)生相互作用,產(chǎn)生兩方面的效應(yīng):一是通過與一些轉(zhuǎn)錄調(diào)控蛋白的相互作用,在轉(zhuǎn)錄水平上激活或抑制某些基因的轉(zhuǎn)錄;二是通過直接與控制細胞活力和增殖能力的調(diào)控蛋白及一些未知的細胞蛋白之間的相互作用,影響宿主細胞中這些蛋白的功能[6]。
YKL-40又名人類軟骨糖蛋白-39,生理狀態(tài)下可由巨噬細胞、中性粒細胞、軟骨細胞、血管平滑肌細胞等分泌,在炎癥相關(guān)性疾病及乳腺癌、卵巢癌、小細胞肺癌、黑色素瘤等多種腫瘤組織中呈高表達,它在腫瘤細胞增殖、生存、侵襲力、腫瘤周圍的炎性反應(yīng)、血管形成、腫瘤細胞外基質(zhì)的重建以及腫瘤轉(zhuǎn)移中發(fā)揮著重要作用[7]。目前其對腫瘤細胞的具體作用機制還不十分清楚,有研究發(fā)現(xiàn)肝癌原發(fā)瘤細胞株H2-P中凋亡抑制基因Clusterin的導(dǎo)入可以明顯上調(diào)YKL-40蛋白的表達,促進腫瘤細胞的體外遷移和體內(nèi)成瘤及轉(zhuǎn)移;而且在肝癌原發(fā)瘤和轉(zhuǎn)移瘤組織中,YKL-40蛋白表達與Clusterin蛋白水平均密切相關(guān)。推測YKL-40可能是Clusterin基因作用的下游靶基因[8]。
HepG2.2.15細胞是轉(zhuǎn)染了克隆的HBV-DNA的肝癌細胞系[9],主要應(yīng)用于體外遺傳毒理學(xué)實驗、外源性生物異物的細胞毒性、HBV感染機制等方面的研究。由于整合了HBV全長基因組,HepG2.2.15細胞能夠穩(wěn)定表達HBx蛋白。
siRNA是一種小RNA分子,由Dicer(RNAaseⅢ家族中對雙鏈RNA具有特異性的酶)加工而成。RNA 干擾(RNA interference,RNAi)是一種強大的實驗工具,利用具有同源性的雙鏈RNA誘導(dǎo)序列特異的目標(biāo)基因的沉默,迅速阻斷基因活性。siRNA在RNA沉默通道中起中心作用,是對特定mRNA進行降解的指導(dǎo)要素。siRNA是RNAi途徑中的中間產(chǎn)物,是RNAi發(fā)揮效應(yīng)所必需的因子。siRNA只降解與其序列互補配對的mRNA,其調(diào)控機制是通過互補配對而沉默相應(yīng)靶位基因的表達,所以是一種典型的負調(diào)控機制。
我們通過研究發(fā)現(xiàn)siRNA可明顯抑制HepG2.2.15細胞中HBx蛋白的表達,觀察到Y(jié)KL-40的mRNA、蛋白、細胞內(nèi)蛋白的表達水平也隨之相應(yīng)下調(diào),提示HBx蛋白可能在轉(zhuǎn)錄和翻譯水平雙方面影響YKL-40的蛋白表達。由此推斷HBx蛋白在HepG2.2.15細胞中對YKL-40蛋白具有一定的激活作用,從而抑制HBx蛋白的表達,其對YKL-40蛋白的激活作用減弱,致使YKL-40蛋白水平降低到接近原來的水平。根據(jù)HBx的生物功能和類似研究[10],猜測其可能通過NF-κB信號通路或者與蛋白翻譯相關(guān)因子相互作用來影響YKL-40蛋白的表達,這還有待進一步研究證實。
[1]Arbuthnot P,Kew M.Hepatitis Bvirus and hepatocellular carcinoma[J].Int JExp Pathol,2001,82(2):77-100.
[2]Hwang GY,Lin CY,Huang LM,et al.Detection of the hepatitis B virus X protein(HBVx)antigen and anti-HBVx antibodies in cases of humanhepatocellular carcinoma[J].JClin Microb,2003,41(12):5598-5603.
[3]Bonilla Guerrero R,Roberts LR.The role of hepatitis B virusintegrations in the pathogenesis of human hepatocellular carcinoma [J].J Hepatol,2005,42(5):760-777.
[4]Feitelson MA,Duan LX.Hepatitis Bvirus X antigen in thepathogenesis of chronic infections and the development of hepatocellular carcinoma[J].Am JPathol,1997,150(4):1141-1157.
[5]Seeger C,Mason WS.Hepatitis B virus biology[J].Microbiol Mol Biol Rev,2000,64(1):51-68.
[6]Tang H,Oishi N,Kaneko S,et al.Molecular functionsand biological roles of hepatitis B virus x protein [J].Cancer Sci,2006,97(10):977-983.
[7]Johansen JS,Jensen BV,Roslind A,et al.Serum YKL-40,a new prognostic biomarker in cancer patientsreview[J].Cancer Epidemiol Biomarkers Perv,2006,15(2):194-202.
[8]Lau SH,Sham JS,Xie D,et al.Clusterin plays an important role in hepatocellular carcinoma metastasis [J].Oncogene,2006,25(8):1242-1250.
[9]Sells MA,Chen ML,Acs G.Production of hepatitis B virus particles in HepG2 cells transfected with cloned hepatitis B virus DNA[J].Proc Natl Acad Sci USA,1987,84(4):1005-1009.
[10]Ren L,Chen XP,Zhang WG,et al.Hepatitis Bvirus X protein induces AFP expression by activation of NF-κB signaling pathway[J].Chin JGeneral Surg,2008,8(17):768-772.