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利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)創(chuàng)制水稻品種GW2基因的突變體

2024-04-08 06:46顏靜宛陳子強(qiáng)周淑芬王鋒
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2024年3期
關(guān)鍵詞:突變水稻

顏靜宛 陳子強(qiáng) 周淑芬 王鋒

摘要:培育具有育種價(jià)值的GW2基因編輯的水稻優(yōu)異新品種在水稻育種中具有重要意義,利用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù),以生產(chǎn)上廣泛推廣應(yīng)用的13份水稻品種為材料,對(duì)粒質(zhì)量基因(GW2)進(jìn)行定向性狀改良,通過(guò)農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化創(chuàng)制出一批無(wú)T-DNA元件的水稻非轉(zhuǎn)基因GW2突變純合株系。結(jié)果表明:13份T0代水稻轉(zhuǎn)基因中,有28.0%~59.1%植株的GW2基因發(fā)生了突變,純合突變株數(shù)量占總突變株數(shù)量的35.0%,雙等位突變株數(shù)量占總突變株數(shù)量的14.2%,雜合突變株數(shù)量占總突變株數(shù)量的50.8%。此外,不同水稻品種發(fā)生的突變類(lèi)型也略有不同。對(duì)13份T2代非轉(zhuǎn)基因水稻GW2突變純合株進(jìn)行千粒質(zhì)量性狀的考種分析。與對(duì)應(yīng)的野生型親本品種相比,純合突變水稻植株的千粒質(zhì)量顯著提高10.81%~58.22%。本研究結(jié)果極大地豐富了GW2的突變類(lèi)型,為不同水稻品種的高產(chǎn)穩(wěn)產(chǎn)創(chuàng)造了重要的種質(zhì)資源,同時(shí)也為利用基因編輯提高水稻產(chǎn)量提供了有價(jià)值的育種信息。

關(guān)鍵詞:水稻;CRISPR/Cas9;基因編輯;粒質(zhì)量;GW2基因;突變

中圖分類(lèi)號(hào):Q344+.14;S511.01? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

文章編號(hào):1002-1302(2024)03-0073-06

水稻(Oryza sativa L.)是世界上種植最廣泛的作物之一,是全球超過(guò)35億人的主食,尤其是在亞洲。據(jù)預(yù)測(cè),到2050年,水稻產(chǎn)量必須增加約42%,才能跟上全球日益增長(zhǎng)的糧食需求。粒質(zhì)量是影響水稻產(chǎn)量潛力的重要農(nóng)藝性狀之一,一直是育種家的主導(dǎo)性狀[1]。研究發(fā)現(xiàn),水稻千粒質(zhì)量每提高1 g,可增加水稻產(chǎn)量400 kg/hm2[2]。因此,增加粒質(zhì)量對(duì)于水稻新品種的進(jìn)一步高產(chǎn)穩(wěn)產(chǎn)越來(lái)越重要[3]。因此,迫切需要我們運(yùn)用更精準(zhǔn)的技術(shù)和方法來(lái)創(chuàng)制高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)的水稻新品種。

近年來(lái),國(guó)內(nèi)外學(xué)者紛紛克隆出控制水稻粒型的基因,如GW2[4]、GW5[5]、TGW6[6]、GW8[7]等,其中水稻粒寬GW2基因已被Song等定位在第2號(hào)染色體,這是一個(gè)主要調(diào)控水稻粒寬和粒質(zhì)量的主效基因,GW2編碼的環(huán)型E3泛素連接酶通過(guò)將其底物靶向到蛋白酶體來(lái)調(diào)節(jié)蛋白水解,從而負(fù)向調(diào)節(jié)細(xì)胞的分裂[4]。大粒水稻中氨基酸殘基的缺失使得GW2無(wú)法結(jié)合底物,無(wú)法調(diào)控泛素介導(dǎo)的蛋白質(zhì)降解,從而增加谷殼細(xì)胞數(shù)量,使小穗殼更大、更寬,加快籽粒灌漿速度,增加水稻籽粒的寬度、質(zhì)量和產(chǎn)量。

基因編輯技術(shù)是近幾年來(lái)快速發(fā)展的熱門(mén)新型技術(shù),該技術(shù)通過(guò)核酸酶對(duì)目標(biāo)靶基因序列進(jìn)行精準(zhǔn)編輯,經(jīng)過(guò)編輯后的目標(biāo)序列可產(chǎn)生不同形式的突變類(lèi)型,如堿基的缺失、插入或替換等形式的突變,這些變異形式都具有可遺傳性[8-10]。相比傳統(tǒng)的ZFNs、TALENs技術(shù),基因編輯技術(shù)具有更精準(zhǔn)改良作物的重要農(nóng)藝性狀,可大大縮短培育新品種的時(shí)間,有利于基因功能研究和精確分子育種。在基因編輯技術(shù)中,CRISPR/Cas9系統(tǒng)由于載體易于構(gòu)建、編輯效率高等優(yōu)點(diǎn),成為當(dāng)前主流的基因編輯系統(tǒng)[11]。目前,CRISPR/Cas9系統(tǒng)已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于作物上,可以創(chuàng)造出更多、性狀更優(yōu)良的新品種,也可以為解決全球糧食安全問(wèn)題提供更廣闊的前景[12-16]。

本研究主要對(duì)生產(chǎn)推廣中應(yīng)用廣泛的13份水稻品種進(jìn)行基因編輯,利用構(gòu)建的CRISPR/Cas9系統(tǒng),對(duì)粒質(zhì)量基因(GW2)進(jìn)行定向改良,通過(guò)基因編輯創(chuàng)制出一批優(yōu)異的非轉(zhuǎn)基因水稻新品種,以期為進(jìn)一步開(kāi)展品種設(shè)計(jì)和育種價(jià)值奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

供試受體材料是目前生產(chǎn)上應(yīng)用廣泛的13份水稻品種,分別是:三系保持系50B;恢復(fù)系3550R、736R、5466R、615R、華占;常規(guī)秈稻品種福香9號(hào)、福泰8522、TN05、粵抗1522、福香98;常規(guī)粳稻品種臺(tái)粳9號(hào)、李粳2號(hào)。試驗(yàn)于2021年5月至2022年12月在福建省農(nóng)業(yè)科學(xué)院壽山基地試驗(yàn)田內(nèi)進(jìn)行,按照常規(guī)方法進(jìn)行正常田間種植及管理。

1.2 主要試劑

Golden DNA聚合酶,購(gòu)自北京天根生物科技有限公司;植物Cas9/gRNA質(zhì)粒構(gòu)建試劑盒,購(gòu)自北京唯尚立德生物科技有限公司;引物合成和DNA測(cè)序由福州尚亞生物技術(shù)有限公司完成;組織培養(yǎng)試劑,購(gòu)自Sigma公司。

1.3 載體和菌株

供試菌株為大腸桿菌DH5α和農(nóng)桿菌菌株EHA105,均購(gòu)自北京博邁德生物有限公司。

1.4 利用CRISPR/Cas9技術(shù)構(gòu)建基因敲除載體

利用植物Cas9/gRNA質(zhì)粒構(gòu)建試劑盒(VK005-01)設(shè)計(jì)引物,試劑盒步驟如下:oligo二聚體的形成;oligo二聚體插入到載體中;轉(zhuǎn)化;陽(yáng)性克隆的鑒定測(cè)序。構(gòu)建水稻粒質(zhì)量相關(guān)性狀的水稻基因編輯載體。

1.5 水稻遺傳轉(zhuǎn)化

以13個(gè)水稻供試轉(zhuǎn)化受體的成熟胚經(jīng)誘導(dǎo)后產(chǎn)生的愈傷組織作為轉(zhuǎn)化受體,水稻愈傷組織的誘導(dǎo)、繼代及與農(nóng)桿菌的共培養(yǎng),抗性愈傷組織的篩選、分化及生根等相關(guān)培養(yǎng)基和具體試驗(yàn)步驟參照筆者所在實(shí)驗(yàn)室的常用操作方法[17]進(jìn)行。

1.6 T0代基因編輯轉(zhuǎn)化體植株的PCR檢測(cè)

采用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)法提取水稻幼嫩葉片的基因組DNA[18]。設(shè)計(jì)潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶基因(Hpt)的PCR引物,引物編號(hào)及序列如下:hyg1,5′-TACACAGCCATCGGTCCAGA-3′;hyg2,5′-TAGGAGGGCGTGGATATGTC-3′。以提取的T0代各單株的基因組DNA為模板,通過(guò)PCR擴(kuò)增潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶基因(Hpt)鑒定轉(zhuǎn)基因植株。PCR擴(kuò)增程序:94 ℃ 3 min;94 ℃ 45 s,59 ℃ 45 s,72 ℃ 1 min,35個(gè)循環(huán);72 ℃,10 min。PCR產(chǎn)物大小為845 bp。同時(shí),設(shè)計(jì)粒質(zhì)量的CRISPR鑒定引物:gw2-1F,5′-GGTGAGGGTTTCATCTGCGG-3′;gw2-1R,5′-CCTACTCTCGCAACAACAAG-3′。PCR擴(kuò)增程序:94 ℃ 3 min;94 ℃ 45 s,59 ℃ 45 s,72 ℃1 min,35個(gè)循環(huán);72 ℃,10 min。PCR產(chǎn)物大小為432 bp。

1.7 系統(tǒng)分析T0代基因編輯轉(zhuǎn)化體的序列信息

對(duì)13份水稻T0代轉(zhuǎn)化苗進(jìn)行突變位點(diǎn)的測(cè)序,找出雙等位突變、雜合突變和純合突變的克隆,并對(duì)突變株的突變類(lèi)型進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

1.8 非轉(zhuǎn)基因水稻GW2突變體的鑒定及其千粒質(zhì)量性狀的考種分析

將PCR測(cè)序結(jié)果為突變類(lèi)型的T0代轉(zhuǎn)基因單株經(jīng)過(guò)自交結(jié)實(shí)后,得到的即為T(mén)1代種子。以T1代各單株的基因組DNA為模版,通過(guò)引物hyg1/hyg2進(jìn)行PCR擴(kuò)增Hpt基因,無(wú)目的條帶的單株即為無(wú)T-DNA元件的GW2突變體。

采用隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì)種植無(wú)T-DNA元件的T1代純合GW2突變株系及其對(duì)應(yīng)的親本對(duì)照品種,每個(gè)株系種植5行,每行種植7株。株行距為20 cm×20 cm,單本栽插。按照大田常規(guī)方法進(jìn)行田間管理。收獲成熟種子烘干后,從中隨機(jī)數(shù)取飽滿、無(wú)病種子1 000粒,用YTS-5D水稻數(shù)字化考種機(jī)(武漢谷豐光電科技有限公司)稱質(zhì)量(g),3個(gè)重復(fù)。數(shù)據(jù)使用GraphPad Prism軟件計(jì)算平均值、標(biāo)準(zhǔn)誤,采用單因素方差分析進(jìn)行比較。

2 結(jié)果與分析

2.1 T0代轉(zhuǎn)基因水稻植株的PCR檢測(cè)

用植物Cas9/gRNA質(zhì)粒構(gòu)建試劑盒(VK005-01)設(shè)計(jì)引物,根據(jù)試劑盒說(shuō)明書(shū)按步驟操作,進(jìn)行轉(zhuǎn)化,挑3~5個(gè)白色菌落搖菌后進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果均正確。將載體命名為CRISPR/Cas9-GW2。

用編輯載體CRISPR/Cas9-GW2轉(zhuǎn)化13個(gè)水稻受體材料,每個(gè)轉(zhuǎn)化受體各轉(zhuǎn)化30個(gè)克隆,分別提取這些克隆水稻轉(zhuǎn)化植株的基因組DNA,用PCR擴(kuò)增潮霉素基因。從轉(zhuǎn)基因植株中擴(kuò)增出目的條帶,說(shuō)明目的序列已經(jīng)整合到水稻基因組中。在13個(gè)水稻T0代轉(zhuǎn)化材料中,轉(zhuǎn)基因陽(yáng)性植株檢測(cè)結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)化陽(yáng)性率為60.0%~93.3%(表1)。其中,臺(tái)粳9號(hào)水稻轉(zhuǎn)基因苗中有28個(gè)克隆能擴(kuò)增出845 bp大小的DNA目標(biāo)條帶,而陰性對(duì)照則不能擴(kuò)增出目的基因大小的條帶,轉(zhuǎn)化陽(yáng)性率為93.3%。PCR檢測(cè)結(jié)果如圖1所示。

2.2 T0代轉(zhuǎn)基因水稻GW2基因突變類(lèi)型分析

為了解T0代轉(zhuǎn)基因陽(yáng)性植株GW2基因的突變情況,用gw2-1F、gw2-1R特異引物PCR擴(kuò)增上述轉(zhuǎn)基因陽(yáng)性植株的GW2基因靶位點(diǎn)序列(圖2),并對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行測(cè)序鑒定,分析結(jié)果見(jiàn)表1。由統(tǒng)計(jì)結(jié)果可知,在13份T0代水稻轉(zhuǎn)基因中,有28.0%~59.1%植株的GW2基因發(fā)生了突變。純合突變株占總突變株數(shù)的35.0%,雙等位突變株占總突變株數(shù)的14.2%,雜合突變株占總突變株數(shù)的50.8%。不同品種發(fā)生的突變類(lèi)型也略有不同,8株736R突變株只產(chǎn)生1種純合突變類(lèi)型;8株李粳2號(hào)突變株也只產(chǎn)生1種雜合突變類(lèi)型;14株臺(tái)粳9號(hào)突變株中卻有3株純合突變株、5株雙等位突變株、6株雜合突變株。綜上,利用CRISPR/Cas9-GW2質(zhì)粒是可以有效編輯不同水稻品種的GW2基因。

2.3 非轉(zhuǎn)基因水稻GW2突變體的鑒定及其千粒質(zhì)量性狀的考種分析

將PCR測(cè)序結(jié)果為突變類(lèi)型的T0代水稻轉(zhuǎn)基因種子種植,自交結(jié)實(shí)后得到T1代種子,對(duì)其DNA基因組進(jìn)行潮霉素基因PCR檢測(cè),擴(kuò)增得到?jīng)]有潮霉素基因的單株,確定為不含T-DNA元件的非轉(zhuǎn)基因GW2突變體,圖3列出了臺(tái)粳9號(hào)T1代水稻轉(zhuǎn)化苗的潮霉素PCR檢測(cè)的結(jié)果,進(jìn)一步種植,自交結(jié)實(shí)得到T2代種子,對(duì)13份非轉(zhuǎn)基因水稻GW2突變純合株進(jìn)行千粒質(zhì)量性狀的考種分析。T2代種子的千粒質(zhì)量統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果見(jiàn)表2,與對(duì)應(yīng)的野生型品種相比,所分析的純合突變植株都顯著提高了水稻的千粒質(zhì)量,增幅為10.81%~58.22%。其中常規(guī)秈稻品種福香9號(hào)、 福泰8522、粵抗1522的純合突變株的千粒質(zhì)量都比親本增幅超過(guò)50%。

3 討論與結(jié)論

近年來(lái),隨著分子生物學(xué)的不斷發(fā)展,基因編輯技術(shù)特別是CRISPR/Cas9系統(tǒng)的不斷改進(jìn),使基因編輯成為一種簡(jiǎn)單、高效、易使用的多功能靶向遺傳操作工具。用CRISPR/Cas9系統(tǒng)來(lái)改良作物的性狀包括產(chǎn)量、品質(zhì)及生物和非生物脅迫抗性,有望加速作物改良和提高可持續(xù)農(nóng)業(yè)發(fā)展的潛力[19]。如在水稻中同時(shí)敲除3個(gè)與粒質(zhì)量相關(guān)的基因(GW2、GW5和TGW6)會(huì)促使籽粒質(zhì)量聚合,從而大大增加了粒質(zhì)量[20]。吳明基等通過(guò)CRISPR/Cas9編輯Badh2基因來(lái)改良優(yōu)質(zhì)粳稻品種的香味性狀[21]。尹麗穎等利用CRISPR/Cas9技術(shù)來(lái)創(chuàng)制出高效抗除草劑水稻[22]。Zhang等通過(guò)CRISPR/Cas9敲除Waxy,產(chǎn)生了直鏈淀粉含量低的大米,從而改善了大米的食用和烹飪質(zhì)量[23]。張?jiān)暗壤肅RISPR/Cas9基因編輯技術(shù)成功獲得恢復(fù)紅種皮表型的純合株系[24]。本研究利用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù),以生產(chǎn)上推廣應(yīng)用廣泛的13份水稻品種為材料,對(duì)粒質(zhì)量基因(GW2)進(jìn)行定向性狀改良,一般有28.0%~59.1%植株的GW2基因發(fā)生了突變,能非常有效地改良不同水稻品種的粒質(zhì)量性狀,說(shuō)明利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)是可以快速編輯不同背景不同地域的水稻品種的GW2基因,這也極大地突破和提高了水稻常規(guī)育種的進(jìn)程。但可能由于靶基因、靶位點(diǎn)、脫靶效應(yīng)等因素的影響,本研究所用的CRISPR/Cas9載體的編輯效率還不是非常高。隨著基因編輯器的不斷開(kāi)發(fā),Zeng等開(kāi)發(fā)出一套植物高效廣靶向胞嘧啶堿基編輯器PhieCBEs,平均編輯效率提高了3~8倍,展現(xiàn)出穩(wěn)定的編輯能力[25]。隨后,Tan等在2022年又開(kāi)發(fā)了一個(gè)強(qiáng)大的高效腺嘌呤堿基編輯器PhieABEs,可以接近100%的編輯效率,在編輯窗口中有高比例的純合堿基取代[26]。 Wei等也開(kāi)發(fā)出高效的腺嘌呤堿基編輯rABE8e,在水稻中表現(xiàn)出約100%的編輯效率和較高的純合替代率[27]。這些高效基因編輯器的開(kāi)發(fā),可實(shí)現(xiàn)多種形式精準(zhǔn)的基因修飾,滿足不同的基因編輯需求,從而為我們今后進(jìn)一步研究基因功能和分子育種奠定了基礎(chǔ)。

水稻產(chǎn)量是水稻重要的農(nóng)藝性狀,籽粒大小是決定水稻產(chǎn)量高低的重要因素之一,它不僅是糧食產(chǎn)量的組成部分,而且是決定市場(chǎng)價(jià)值的品質(zhì)性狀。本研究利用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)對(duì)不同水稻背景下的GW2位點(diǎn)進(jìn)行敲除,增產(chǎn)效果明顯,達(dá)到了預(yù)期的目的。發(fā)現(xiàn)不同水稻背景的突變類(lèi)型略有不同,可發(fā)生單堿基或多堿基的缺失或插入,所產(chǎn)生不同的突變類(lèi)型其千粒質(zhì)量的增產(chǎn)各不相同,即便不同水稻品種產(chǎn)生相同位點(diǎn)的突變類(lèi)型,其千粒質(zhì)量的增產(chǎn)也各不相同。在GW2基因同一個(gè)位點(diǎn)發(fā)生腺嘌呤單堿基的缺失(-A),恢復(fù)系品種3550R的千粒質(zhì)量增加10.81%,華占的千粒質(zhì)量增加17.42%;常規(guī)秈稻福泰8522的千粒質(zhì)量增加26.51%,福香9號(hào)的千粒質(zhì)量增加38.63%;而常規(guī)粳稻臺(tái)粳9號(hào)的千粒質(zhì)量增加30.07%。而在GW2基因同一位點(diǎn)發(fā)生胞嘧啶單堿基的插入(+C),保持系50B的千粒質(zhì)量增加36.32%,常規(guī)秈稻粵抗1522的千粒質(zhì)量則增加58.22%。由此推測(cè),這些不同背景的水稻品種突變后導(dǎo)致氨基酸移碼突變,從而使轉(zhuǎn)錄提前終止,編碼的蛋白跨膜螺旋結(jié)構(gòu)域發(fā)生了改變,從而導(dǎo)致GW2無(wú)法結(jié)合底物,代謝途徑可能存在顯著差異,因此當(dāng)GW2突變后,不同品種的GW2突變體加快谷粒灌漿的速度產(chǎn)生了極顯著差異。GW2基因是一種遺傳決定因子,是今后選育良種的理想遺傳資源,可用于定向改良更多生產(chǎn)上主推的水稻品種。此外,需要一個(gè)全面綜合的研究策略,通過(guò)多重基因組編輯系統(tǒng)構(gòu)建更多有利的遺傳決定因素,以便有目的地快速培育高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)的水稻品種,以應(yīng)對(duì)和保障未來(lái)的糧食安全。

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