楊志剛,江青青,房余程,陳阿琴,成永旭,王愛民
1.上海海洋大學(xué)/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部淡水水產(chǎn)種質(zhì)資源重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 201306
2.上海海洋大學(xué)/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部魚類營(yíng)養(yǎng)與環(huán)境生態(tài)研究中心,上海 201306
3.上海海洋大學(xué)/水產(chǎn)科學(xué)國(guó)家級(jí)實(shí)驗(yàn)教學(xué)示范中心,上海 201306
4.鹽城工學(xué)院 海洋與生物工程學(xué)院,江蘇 鹽城 224000
水體pH 是水生動(dòng)物生長(zhǎng)存活的重要環(huán)境因子[1],其波動(dòng)可以對(duì)水生動(dòng)物的組織形態(tài)、代謝及基因表達(dá)產(chǎn)生直接影響[2]。相關(guān)研究指出魚類長(zhǎng)時(shí)間暴露于低pH 水體,會(huì)造成糖原分解變慢、糖異生途徑降低及肝糖原得不到及時(shí)補(bǔ)充[3]。
多環(huán)芳烴化合物 (Polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs) 是水環(huán)境中廣泛存在的持久性污染物[4]。其在水體環(huán)境、河口沉積物中,甚至水生生物中已被大量檢出[5],如太湖 (877~5 730 ng·g-1) 和鴨綠江沉積物 (68~1 500 ng·g-1)。高度城市化和工業(yè)化地區(qū)的PAHs 污染水平較高,例如珠江 (1 434~10 811 ng·g-1) 和澳門內(nèi)港 (294~12 714 ng·g-1)[6-8]。已有研究證實(shí)PAHs 對(duì)多種水生動(dòng)物具有明確的毒性作用[9-10]。菲 (Phenanthrene,PHE) 等PAHs 污染物進(jìn)入機(jī)體后,可直接作用于多環(huán)芳烴受體 (AHR),進(jìn)而轉(zhuǎn)移至細(xì)胞核,與芳香烴受體核轉(zhuǎn)位因子 (ARNT) 結(jié)合,AhR/ARNT的復(fù)合物進(jìn)而促進(jìn)細(xì)胞色素p450 1A1 (cyp1a1) 基因的表達(dá)[11],產(chǎn)生一些高度致癌性中間產(chǎn)物,最終導(dǎo)致細(xì)胞凋亡等[12-13]。
對(duì)于甲殼動(dòng)物而言,其脂肪常常存儲(chǔ)在肝胰腺的R 細(xì)胞中[14]。中華絨螯蟹 (Eriocheirsinensis) 是一種主要在長(zhǎng)江流域養(yǎng)殖的重要經(jīng)濟(jì)品種,“蟹黃”的質(zhì)量是消費(fèi)者重點(diǎn)關(guān)注的食用品質(zhì),其中含有大量的脂肪和膽固醇[15-16],而脂肪是重要的能量物質(zhì),因此能量代謝對(duì)于中華絨螯蟹而言十分重要。在現(xiàn)代養(yǎng)殖條件下,水生動(dòng)物由于環(huán)境因素的變化更容易發(fā)生脂質(zhì)代謝的變化[17]。隨著天氣和養(yǎng)殖密度等因素的變化,水體pH 也會(huì)隨時(shí)發(fā)生改變,且中華絨螯蟹作為典型的底棲生物,其生活在水體地表沉積物表面,非常容易接觸到PHE 和低pH 環(huán)境,在生產(chǎn)中若發(fā)生兩者聯(lián)合作用,會(huì)對(duì)養(yǎng)殖造成損失。為探究pH 和PHE 復(fù)合脅迫的毒性作用機(jī)制,本實(shí)驗(yàn)測(cè)定了不同pH 下PHE 進(jìn)入中華絨螯蟹機(jī)體后,對(duì)其重要的呼吸器官鰓和代謝器官肝胰腺的損傷情況,以及對(duì)能量代謝主要場(chǎng)所肝胰腺中相關(guān)生化指標(biāo)及基因表達(dá)的影響。
中華絨螯蟹 [(15.0 ± 2.3) g] 采集自上海崇明,運(yùn)送到上海海洋大學(xué)實(shí)驗(yàn)基地進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)開始前,所有的蟹均在含有碳過濾自來水 [溶解氧質(zhì)量濃度8.0~8.5 mg·L-1、pH 7.8、溫度 (20±2) ℃] 的脫氯水族箱 (100 cm×60 cm×50 cm) 中進(jìn)行為期1 周的馴化適應(yīng),水箱中間均放置幾個(gè)長(zhǎng)形拱狀瓦片作為隱蔽物。期間每2 d 投喂1 次商業(yè)飼料(浙江澳華公司),每天用虹吸法吸取多余餌料,每2 d進(jìn)行1 次水體更新。
為研究低pH 和PHE 的聯(lián)合效應(yīng),建立了階乘設(shè)計(jì):3 個(gè)pH 分別為5.5、6.5 和7.8 (5.5 為重度酸化,6.5 為中度酸化,7.8 為對(duì)照),2 個(gè)PHE 質(zhì)量濃度 (0 和50 μg·L-1),分別為對(duì)照組pH 7.8×PHE 0,處理組pH 7.8×PHE 50、pH 6.5×PHE 0、pH 6.5×PHE 50、pH 5.5×PHE 0、pH 5.5×PHE 50。酸化條件根據(jù)有關(guān)的研究和整個(gè)酸化環(huán)境的預(yù)測(cè)[15,18]設(shè)定。將PHE 按照0.02% (質(zhì)量分?jǐn)?shù)) 溶解在二甲亞砜(DMSO) 中,配制成1 mg·L-1的母液,在DMSO 體積分?jǐn)?shù)為 0.01%的情況下,向PHE 處理組中加入適量PHE 母液以達(dá)到目標(biāo)PHE 質(zhì)量濃度 (50 μg·L-1) 。實(shí)驗(yàn)中PHE 質(zhì)量濃度 (50 μg·L-1) 的設(shè)置是參考蝦蟹相關(guān)實(shí)驗(yàn)[18]和中國(guó)湖泊環(huán)境中的實(shí)際濃度[19],pH 的設(shè)定是基于本實(shí)驗(yàn)室的研究基礎(chǔ)以及深度酸化的探討[17]。健康蟹隨機(jī)分組 (每組3 個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)10 只蟹)。實(shí)驗(yàn)期間,使用便攜式pH 計(jì)(HQ40D,美國(guó)Hach) 每4 h 檢測(cè)1 次水體pH,用1 mol·L-1NaOH 和1 mol·L-1HCl 調(diào)節(jié)pH。每2 d 更換1 次脅迫水體,以保持實(shí)驗(yàn)性PHE 濃度。實(shí)驗(yàn)持續(xù)14 d,期間持續(xù)充氧,每周飼喂2 次商業(yè)飼料。
實(shí)驗(yàn)14 d 后,對(duì)中華絨螯蟹進(jìn)行4 ℃低溫麻醉,而后每池取3 只蟹解剖采集鰓和肝胰腺,分別置于固定液中保存用于顯微結(jié)構(gòu)的觀察,另外再采集3 只中華絨螯蟹肝胰腺置液氮速凍,-80 ℃保存待測(cè)。
1.4.1 組織染色與觀察
從不同的實(shí)驗(yàn)組中各采集3 只中華絨螯蟹,迅速取出肝胰腺和鰓組織,樣品置于Bouin 氏液里固定24 h,經(jīng)體積分?jǐn)?shù)為70%、80%、95%、100% 梯度乙醇脫水,然后用二甲苯透明,石蠟包埋,使用手搖式切片機(jī)切片,厚度約為5 μm,最后用蘇木精和伊紅進(jìn)行常規(guī)HE 染色,顯微鏡觀察并拍照 (Leica TCS SP8,德國(guó)) 。
1.4.2 能量代謝指標(biāo)的測(cè)定
肝胰腺樣品以無水乙醇作為勻漿介質(zhì),經(jīng)冰浴勻漿,離心提取上清后按試劑盒 (南京建成) 說明書測(cè)定甘油三酯(TG)、糖原 (Gly)、高密度脂蛋白膽固醇 (HDL-C) 和低密度脂蛋白膽固醇 (LDL-C)。
1.4.3 基因表達(dá)的測(cè)定
使用TRIozl 法對(duì)肝胰腺樣本進(jìn)行RNA 的提取,使用HiScript?II 1st Strand cDNA Synthesis Kit (+gDNA wiper) (南京諾唯贊) 對(duì)RNA 進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄生成cDNA,根據(jù)已報(bào)道的相關(guān)基因序列設(shè)計(jì)引物 (表1) 用于熒光定量PCR 檢測(cè)。SYBR?PCR Kit (南京諾維贊) 用于熒光定量PCR 反應(yīng),反應(yīng)條件為:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 34 s,40 個(gè)循環(huán);95 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,95 ℃ 15 s?;?-??Ct方法,分析基因的相對(duì)表達(dá)水平[20]。
表1 引物名稱及序列Table 1 Primer names and sequnences
數(shù)據(jù)采用Levene 檢驗(yàn)法檢測(cè)方差齊次性,pH 和PHE 2 個(gè)因素共同脅迫采用SPSS 22.0 軟件進(jìn)行雙因素方差分析(Two-way ANOVA),同一因素脅迫采用SPSS 22.0 軟件進(jìn)行單因素方差分析 (One-way ANOVA),最后對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用Duncan's 法進(jìn)行多重比較,采用t檢驗(yàn)法檢測(cè)同一pH 下PHE的毒性。實(shí)驗(yàn)結(jié)果以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差 ()”表示,P<0.05 為統(tǒng)計(jì)學(xué)差異顯著。
中華絨螯蟹肝胰腺由柱狀上皮 (即肝小管) 構(gòu)成,管腔(Lumen,Lu) 結(jié)構(gòu)呈星型。PHE 脅迫下,pH 7.8 時(shí)肝胰腺星型結(jié)構(gòu)稍有改變,且基膜脫落,細(xì)胞頂端微絨毛(Microvilli,MV) 部分脫落、微絨毛黏膜 (Enteric coat,EC)完整但R 細(xì)胞處出現(xiàn)空泡 (圖1-a)。在pH 6.5 條件下,肝胰腺管腔擴(kuò)張,但基膜沒有明顯脫落,微絨毛黏膜部分破損、B 細(xì)胞部分破損 (圖1-b)。在pH 5.5 下,管腔結(jié)構(gòu)明顯擴(kuò)張,部分柱狀上皮細(xì)胞解體,細(xì)胞核固縮破碎,R 細(xì)胞出現(xiàn)萎縮、胞質(zhì)空泡化,微絨毛黏膜破損 (圖1-c)。
圖1 中華絨螯蟹肝胰腺和鰓組織暴露在 PHE (50 μg·L-1) 和 pH (7.8、6.5 和 5.5) 中14 d 后的病理變化注:a.pH 7.8×PHE 50 組肝胰腺;b.pH 6.5×PHE 50 組肝胰腺;c.pH 5.5×PHE 50 組肝胰腺;d.pH 7.8×PHE 50 組鰓;e.pH 6.5×PHE 50 組鰓;f.pH 5.5×PHE 50 組鰓。Fig.1 Pathological changes of hepatopancreas and gill tissues of E.sinensis after exposure to PHE (50 μg·L-1) and pH (7.8,6.5 and 5.5) for 14 dNote: a.Hepatopancreas in pH 7.8×PHE 50 group; b.Hepatopancreas in pH 6.5×PHE 50 group; c.Hepatopancreas in pH 5.4×PHE 50 group;d.Gill in pH 7.8×PHE 50 group; e.Gill in pH 6.5×PHE 50 group; f.Gill in pH 5.5×PHE 50 group.
中華絨螯蟹幼蟹的鰓由數(shù)條形狀規(guī)整的鰓絲以及一條鰓軸組成。鰓葉分為上皮層和血腔,而上皮層主要由角質(zhì)層、上皮細(xì)胞層以及基膜組成。通過HE 染色法對(duì)中華絨螯蟹鰓組織的形態(tài)結(jié)構(gòu)變化進(jìn)行觀察,所有處理組肝胰腺結(jié)構(gòu)均有不同程度的改變 (圖1)。PHE 脅迫下,pH 7.8 時(shí)鰓絲厚度變薄,局部基膜出現(xiàn)脫落,部分角質(zhì)層表皮分離,近鰓腔部分有血細(xì)胞存在 (圖1-d)。而在pH 6.5 條件下,鰓軸厚度變厚,但鰓絲的基膜完整,角質(zhì)層表皮平整(圖1-e) 。在pH 5.5 下,鰓絲形狀扭曲,部分角質(zhì)層表皮破損,基膜脫落,鰓軸出現(xiàn)空泡化 (圖1-f)。
如圖2-a 所示,在PHE 0 μg·L-1組中,中華絨螯蟹TG 濃度隨著pH 降低而顯著降低 (P<0.05)。而在PHE 50 μg·L-1組中,pH 6.5 處理時(shí),TG 濃度最高,且顯著高于單獨(dú)pH 6.5 處理 (P<0.05);pH 5.5 時(shí),TG 濃度最低,且低于pH 7.8 條件下的TG 濃度。pH 和PHE 的交互作用對(duì)中華絨螯蟹TG 濃度有顯著影響 (P<0.05,表2)。
圖2 不同 pH 條件下 PHE 濃度對(duì)中華絨螯蟹能量代謝指標(biāo)的影響注:數(shù)值表示為“平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤”(n=3);方柱上方不同大寫字母表示在PHE 0 μg·L-1 下差異顯著 (P<0.05);不同小寫字母表示在PHE 50 μg·L-1 下差異顯著 (P<0.05);*表示相同pH 下組間差異顯著 (P<0.05)。圖3 同此。Fig.2 Effect of PHE concentration on energy metabolism indexes of E.sinensis under different acidification conditionsNote: Values are represented as Mean±SE (n=3); different uppercase letters above the columns represent significant differences at PHE 0 μg·L-1(P<0.05); different lowercase letters represent significant differences at PHE 50 μg·L-1 (P<0.05); * represents significant differences between the two groups at the same pH values (P<0.05).The same case in Fig.3.
表2 pH 和 PHE 對(duì)中華絨螯蟹肝胰腺甘油三酯、高密度脂蛋白膽固醇、低密度脂蛋白膽固醇和糖原含量影響的雙因素方差分析Table 2 Two-way analysis of variance for influence of pH and PHE on contents of TG,HDL-C,LDL-C and Gly in E.sinensis hepatopancreas
與對(duì)照組 (pH 7.8×PHE 0) 相比,PHE 使得Gly 濃度顯著降低 (P<0.05),在PHE 0 μg·L-1組中,Gly 濃度也隨著pH 的降低而顯著下降 (P<0.05,圖2-b)。pH 和PHE 的交互作用對(duì)中華絨螯蟹Gly 濃度變化有顯著影響 (P<0.05,表2)。在PHE 50 μg·L-1組中,Gly 濃度隨著pH 降低而顯著下降(P<0.05),在pH 5.5 時(shí)達(dá)到最低,為所有實(shí)驗(yàn)組中的最低值 (P<0.05,圖2-b)。
HDL-C 也有相似的結(jié)果,無論是否存在PHE,pH 的降低均可導(dǎo)致中華絨螯蟹HDL-C 濃度顯著降低 (P<0.05,圖2-c),且pH 和PHE 的交互作用也對(duì)中華絨螯蟹HDLC 濃度有顯著影響 (P<0.05,表2) 。
pH 和PHE 的交互作用對(duì)中華絨螯蟹的L D L-C濃度也有顯著影響 (P<0.05,表2)。在PHE 0 μg·L-1組中,與pH 7.8 相比,pH 6.5 及pH 5.5 條件下LDL-C濃度均出現(xiàn)了顯著降低 (P<0.05),且pH 5.5 組顯著低于pH 6.5 組 (P<0.05)。在PHE 50 μg·L-1組中,pH 6.5 及pH 5.5 條件下LDL-C 濃度也出現(xiàn)顯著下降 (P<0.05),但兩組間無顯著性差異 (P>0.05,圖2-d)。
實(shí)時(shí)熒光定量PCR 檢測(cè)了pH 和PHE 對(duì)中華絨螯蟹肝胰腺中的ahr、arnt、cyp1a1基因相對(duì)表達(dá)量的影響(圖3)。在PHE 0 μg·L-1組中,與pH 7.8 組相比,pH 6.5 組ahr基因表達(dá)量顯著降低 (P<0.05),而pH 5.5 組的ahr基因表達(dá)量則顯著升高 (P<0.05)。在PHE 50 μg·L-1組中,隨著pH 的降低,ahr基因表達(dá)量顯著升高 (P<0.05),且在pH 6.5 及pH 5.5 條件下,均顯著高于PHE 0 μg·L-1組(P<0.05,圖3-a)。pH 5.5×PHE 50 組的ahr基因表達(dá)量為所有組中最高。pH 與PHE 的交互作用對(duì)ahr基因的表達(dá)量具有顯著影響 (P<0.05,表3)。
圖3 不同 pH 條件下 PHE 濃度對(duì)中華絨螯蟹肝胰腺基因表達(dá)量的影響Fig.3 Effect of different PHE concentrations on expression of hepatopancreas genes in E.sinensis under acidification conditions
表3 pH 和 PHE 對(duì)中華絨螯蟹 ahr、arnt、cyp1a1 基因表達(dá)量影響的雙因素方差分析Table 3 Two-way analysis of variance for effects of pH and PHE on ahr,arnt and cyp1a1 gene expression of E.sinensis
PHE 0 μg·L-1組中,與對(duì)照組相比,pH 5.5 和pH 6.5 處理均未使arnt基因表達(dá)量出現(xiàn)顯著性變化 (P>0.05,圖3-b) 。而在PHE 50 μg·L-1組中,隨著pH 的降低,arnt基因的表達(dá)量隨之顯著升高 (P<0.05),且在pH 5.5 和pH 6.5 下,均顯著高于PHE 0 μg·L-1組 (P<0.05,圖3-b)。同樣,pH 與PHE 的交互作用對(duì)arnt基因的表達(dá)量也有顯著性影響 (P<0.05,表3)。pH 5.5×PHE 50 組的arnt基因表達(dá)量也為所有組中的最大值。
對(duì)于cyp1a1基因而言,在PHE 0 μg·L-1組中,與pH 7.8 組相比,pH 6.5 使cyp1a1基因的表達(dá)量顯著降低(P<0.05) ,而pH 5.5 處理使cyp1a1基因的表達(dá)量顯著升高(P<0.05,圖3-c)。在PHE 50 μg·L-1組中,pH 的降低使得cyp1a1基因的表達(dá)量顯著升高 (P<0.05,圖3-c),在pH 5.5 條件下,cyp1a1的基因表達(dá)量最高。pH 和PHE 對(duì)cyp1a1基因的表達(dá)量有顯著的交互作用 (P<0.05,表3)。
鰓是甲殼動(dòng)物重要的呼吸器官,也是重要的滲透壓和離子調(diào)節(jié)器官[21],肝胰腺是中華絨螯蟹的主要消化腺,因而環(huán)境污染物很可能對(duì)中華絨螯蟹的鰓和肝胰腺造成組織損傷。本研究中,PHE 對(duì)中華絨螯蟹的鰓和肝胰腺均造成了一定程度的損傷,這與一些污染物造成中華絨螯蟹組織損傷的研究相一致[15]。肝胰腺作為甲殼類動(dòng)物的重要多功能器官,不僅參與食物消化吸收相關(guān)的消化酶的合成和分泌,且在能量代謝中具有重要作用[22]。中華絨螯蟹肝胰腺小管的R 細(xì)胞以及B 細(xì)胞頂端的微絨毛和微絨毛表面的黏膜對(duì)物質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)具有重要作用[14]。本研究中,不同pH 與PHE 聯(lián)合作用均對(duì)其造成不同程度的損傷,說明PHE 對(duì)中華絨螯蟹呼吸和消化系統(tǒng)產(chǎn)生了影響,從而影響其能量代謝。同時(shí)R 細(xì)胞是重要的脂肪和糖原貯藏場(chǎng)所,且能量的消耗往往會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞收縮和萎縮[23]。本研究中,在pH 7.8 及5.5 下,PHE 不僅使得肝小管細(xì)胞頂端的微絨毛和微絨毛表面的黏膜脫落破損,而且使得肝小管R 細(xì)胞萎縮、空泡化,說明在pH 7.8 及5.5 下,PHE 對(duì)中華絨螯蟹的糖代謝和脂代謝均產(chǎn)生了一定影響。因而相較于正常的pH,pH 6.5 在一定程度上緩解了PHE 對(duì)中華絨螯蟹的組織損傷,而pH 5.5 則加劇了PHE 對(duì)中華絨螯蟹肝胰腺的組織損傷,這也表明在極端環(huán)境下,生物體可能通過大量的能量消耗以抵御外界壓力[24]。
此外,肝胰腺還被認(rèn)為是多種環(huán)境應(yīng)激的關(guān)鍵靶器官[17]。研究表明,當(dāng)受到環(huán)境壓力時(shí),甲殼類動(dòng)物需要額外的能量來維持體內(nèi)平衡[25]。pH 作為水生動(dòng)物生長(zhǎng)發(fā)育重要的環(huán)境因子[26],其異常變化往往導(dǎo)致動(dòng)物機(jī)體代謝失調(diào),能量消耗增加[27]。TG、Gly、HDL-C、LDL-C 等物質(zhì)的動(dòng)態(tài)平衡對(duì)機(jī)體健康至關(guān)重要,它們?cè)跈C(jī)體的免疫反應(yīng)和抗氧化能力中發(fā)揮著重要作用[28-29]。本研究中,在pH 7.8 條件下,PHE 導(dǎo)致Gly 濃度顯著降低,說明糖類是中華絨螯蟹遭受環(huán)境壓力時(shí)優(yōu)先利用的物質(zhì)之一,這與對(duì)一些魚類的研究相一致[30]。與中華絨螯蟹暴露于苯并芘 (Bap)中的研究結(jié)果也類似[31],說明PAHs 會(huì)引起中華絨螯蟹的能量消耗。而不同的pH 與PHE 的聯(lián)合作用均使中華絨螯蟹肝胰腺Gly 顯著降低,尤其在pH 5.5 條件下,PHE 對(duì)Gly 的影響最為顯著,說明機(jī)體抵御環(huán)境壓力時(shí)會(huì)產(chǎn)生能量損耗[24]。
對(duì)于TG 而言,單獨(dú)的PHE 處理并未使中華絨螯蟹肝胰腺TG 發(fā)生顯著改變,甚至在pH 6.5 下,PHE 誘導(dǎo)TG 濃度較單獨(dú)PHE 處理組顯著升高,這可能是中度的酸化誘導(dǎo)了中華絨螯蟹對(duì)外界環(huán)境的積極響應(yīng),某種程度上減輕了PHE 的毒性,降低了脂質(zhì)的消耗[32]。但pH 5.5 與PHE 聯(lián)合脅迫時(shí),TG 濃度為所有組中最低,表明重度酸化加劇了PHE 對(duì)中華絨螯蟹糖代謝和脂代謝的影響。而HDL-C 和LDL-C 在膽固醇向組織運(yùn)輸?shù)倪^程中起著重要作用[33-34],其在其他動(dòng)物上的研究往往與“疾病”因素呈現(xiàn)負(fù)向關(guān)系[35]。本研究中,單獨(dú)PHE 處理使得中華絨螯蟹肝胰腺HDL-C 濃度較對(duì)照組顯著降低,表明低濃度的PHE 對(duì)中華絨螯蟹存在潛在風(fēng)險(xiǎn)。而不同程度pH 與PHE 的聯(lián)合作用均對(duì)中華絨螯蟹HDL-C 產(chǎn)生了顯著影響,尤其是pH 5.5×PHE 50 組,肝胰腺HDL-C 濃度為所有組中最低,表明酸化和PHE 協(xié)同處理對(duì)中華絨螯蟹能量代謝具有顯著影響。與之相似,酸化和PHE 的聯(lián)合作用也會(huì)使得LDL-C濃度顯著降低。
pH 和PHE 的聯(lián)合作用導(dǎo)致TG、Gly、HDL-C、LDL-C濃度的顯著變化,尤其在pH 5.5 的重度酸化條件下,PHE 顯著影響了中華絨螯蟹的能量代謝平衡。由此可見,不同環(huán)境應(yīng)激源可能會(huì)產(chǎn)生協(xié)同效應(yīng),從而影響甲殼動(dòng)物的能量代謝過程,這與銅 (Cu) 和土霉素 (Oxytetracycline)協(xié)同效應(yīng)誘導(dǎo)了草魚 (Ctenopharyngodonidella) 的脂質(zhì)代謝的研究結(jié)果相一致[36]。
本研究中,PHE 顯著促進(jìn)了arnt和cyp1a1基因的表達(dá),且酸化條件顯著提高了ahr和arnt基因的表達(dá),并最終導(dǎo)致cyp1a1基因表達(dá)量的顯著升高。Holen 和Olsvik[37]同樣發(fā)現(xiàn)PHE 對(duì)大西洋鱈 (Gadusmorhua)cyp1a1基因表達(dá)的誘導(dǎo),同時(shí)還發(fā)現(xiàn)脂多糖 (Lipopolysaccharide) 和PHE 的交互作用對(duì)cyp1a1基因的顯著誘導(dǎo)。Guo 等[38]報(bào)道了PAHs可以誘導(dǎo)菲律賓蛤仔 (Ruditapesphilippinarum) 中ahr基因的表達(dá);Liu 等[39]發(fā)現(xiàn)苯并芘 (BaP) 可顯著誘導(dǎo)櫛孔扇貝(Chlamysfarreri) 中ahr基因的表達(dá);低濃度BaP 可誘導(dǎo)櫛孔扇貝中ahr和arnt基因的表達(dá)[40];Lima 等[41]在牡蠣(Crassostreagasar) 中也發(fā)現(xiàn)pH 和PHE 協(xié)同效應(yīng)對(duì)cyp家族基因的誘導(dǎo)。這與本研究結(jié)果一致,本實(shí)驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)pH與PHE 協(xié)同作用可誘導(dǎo)中華絨螯蟹cyp1a1基因的表達(dá)。
ahr基因與脂類代謝以及能量代謝有重要關(guān)聯(lián),有研究指出ahr對(duì)哺乳動(dòng)物脂質(zhì)代謝具有調(diào)控作用[42],多氯聯(lián)苯或ahr配體暴露導(dǎo)致魚類肝糖原濃度降低的研究也有相關(guān)報(bào)道[43]。本研究也闡明了PHE 對(duì)中華絨螯蟹脂質(zhì)代謝產(chǎn)生影響的重要原因,而過度的酸化與PHE 產(chǎn)生交互效應(yīng),顯著影響了中華絨螯蟹的能量代謝。相關(guān)研究指出,在無脊椎動(dòng)物中,PAHs 的解毒代謝經(jīng)由I 相的AHR-ARNT 信號(hào)通路以及II 相的谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶 (GST) 代謝進(jìn)行,期間產(chǎn)生大量的活性中間體和活性氧 (Reactive oxygen species,ROS),干擾水生生物的正常生理功能[44]。因此,pH 和PHE 協(xié)同作用可能對(duì)中華絨螯蟹能量代謝及抗氧化系統(tǒng)產(chǎn)生影響。
本研究結(jié)果表明,從組織結(jié)構(gòu)方面,pH 6.5 可以緩解PHE 的毒性作用;從能量代謝、基因表達(dá)方面,隨著pH 的降低,PHE 毒性的影響也隨之增強(qiáng)。