錢玉磊 閆晉強 劉文睿 吳智明 謝大森 江彪
摘要:抗氧化(oxidation resistance,OXR)基因是含有TLDc結(jié)構(gòu)域的一類基因,能有效清除活性氧,在抗氧化過程中發(fā)揮著重要作用。基于葫蘆科基因組數(shù)據(jù)庫,從6個葫蘆科作物中共鑒定出37個OXR成員,其中冬瓜、西瓜、甜瓜、葫蘆和黃瓜均有6個成員,南瓜有7個成員。通過系統(tǒng)發(fā)育以及保守結(jié)構(gòu)域分析,將這些OXR成員分為 5個亞族:OXR1、OXR2、OXR3、OXR4和OXR5。OXR基因在染色體上呈不均勻分布,同一亞族OXR成員所編碼的氨基酸數(shù)、分子量、外顯子數(shù)、內(nèi)含子數(shù)以及保守基序的排列模式都極為相似,表明OXR基因具有高度保守性。順式作用元件分析結(jié)果顯示,OXR基因的啟動子區(qū)域含有多種順式作用元件以及MYB轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合位點?;驈?fù)制分析發(fā)現(xiàn),葫蘆科OXR2成員通過片段復(fù)制或全基因組復(fù)制發(fā)生了一定擴張,這些復(fù)制基因?qū)艿郊兓x擇。共線性分析結(jié)果顯示,在親緣關(guān)系較近的葫蘆科作物之間,OXR基因所在的共線性區(qū)塊較大。不同組織的表達譜分析結(jié)果顯示,葫蘆科OXR4成員有相似的表達模式,在葉片中表達量均較高;OXR2亞族內(nèi)復(fù)制基因出現(xiàn)了非對稱表達的現(xiàn)象。
關(guān)鍵詞:葫蘆科;OXR基因;保守結(jié)構(gòu)域;順式作用元件;生物信息學(xué);表達譜;親緣關(guān)系
中圖分類號:S188;S642.01 文獻標志碼:A
文章編號:1002-1302(2023)08-0051-10
基金項目:國家自然科學(xué)基金(編號:31972403、32102406);廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院中青年學(xué)科帶頭人項目(編號:R2020PY-JG003);廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院優(yōu)秀博士項目(編號:R2021YJ-YB2004)。
作者簡介:錢玉磊(1997—),男,河南鄭州人,碩士研究生,研究方向為蔬菜分子生物學(xué)。E-mail:qylei2022@163.com。
通信作者:江 彪,博士,研究員,研究方向為蔬菜遺傳育種與分子生物學(xué)。E-mail:jiangbiao@gdaas.cn。
植物受到脅迫刺激時,細胞內(nèi)的電子傳遞和氧化還原的動態(tài)平衡被破壞,導(dǎo)致細胞內(nèi)的氧由氧化態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)檫€原態(tài),從而產(chǎn)生過量的活性氧,造成蛋白質(zhì)、膜脂、DNA以及其他細胞組分嚴重損傷[1]。然而,活性氧也有對植物有利的一面,其可作為一種信號分子,協(xié)調(diào)細胞內(nèi)許多重要的信號傳導(dǎo),如蛋白質(zhì)的修飾、基因表達和激素調(diào)節(jié)、協(xié)調(diào)適應(yīng)或傳遞防御反應(yīng)等[2-4]。植物體內(nèi)具有復(fù)雜的活性氧清除系統(tǒng),主要包括保護酶系和抗氧化物質(zhì),使體內(nèi)活性氧產(chǎn)生與降解處于動態(tài)平衡,不對自身造成損傷[5]。
抗氧化(oxidation resistance,簡稱OXR)基因所編碼的蛋白質(zhì)含有保守結(jié)構(gòu)域TLDc[TBC (Tre2/Bub2/Cdc16),LysM (lysine motif),domain catalytic],可以影響氧自由基清除基因的表達,從而降低細胞中活性氧水平[6]。近年來,在擬南芥基因組中已鑒定出6個具有TLDc保守結(jié)構(gòu)域的OXR基因家族成員,其中AtOXR2是一種線粒體蛋白,過表達AtOXR2可以提高擬南芥的光合作用效率,增強對氧化脅迫的耐受能力[7]。在蔬菜作物中,張夢云等基于十字花科基因組數(shù)據(jù)庫,對7種十字花科植物基因組中的抗氧化基因進行了鑒定和生物信息學(xué)分析[8]。
葫蘆科是世界上最重要的植物科之一,包含許多常見的蔬菜和瓜果,具有重要的經(jīng)濟價值。隨著基因組測序技術(shù)的發(fā)展,黃瓜(Cucumis sativus)[9]、甜瓜(C. melo)[10]、西瓜(Citrullus lanatus)[11]、葫蘆(Lagenaria siceraria)[12]、南瓜(Cucurbita moschata)[13]、冬瓜(Benincasa hispida)[14]等葫蘆科作物先后完成了全基因組測序,為系統(tǒng)研究葫蘆科作物的抗氧化基因家族奠定基礎(chǔ)。本研究通過系統(tǒng)鑒定6個葫蘆科作物抗氧化基因家族,并開展生物信息學(xué)分析和不同組織的表達譜分析,為深入闡明葫蘆科作物OXR家族的基因功能奠定理論基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 葫蘆科OXR成員的鑒定
從葫蘆科基因組數(shù)據(jù)庫(http://cucurbitgenomics.org/)下載黃瓜、甜瓜、西瓜、葫蘆、南瓜和冬瓜的基因組信息文件,Pfam網(wǎng)站(https://pfam.xfam.org/)下載TLDc保守結(jié)構(gòu)域的隱馬爾可夫模型(PF07534),使用hmmsearch指令,搜索閾值<0.000 01,在葫蘆科6種作物的蛋白序列文件中進行搜索。以已報道的6個AtOXR基因家族成員的蛋白質(zhì)序列作為查詢序列[7],與葫蘆科作物的所有蛋白質(zhì)序列進行BLASTP(檢索閾值<0.000 01)。將上述2種方法所鑒定到的候選葫蘆科OXR成員的蛋白序列提交至NCBI、Pfam和SMART數(shù)據(jù)庫,查詢結(jié)構(gòu)域特征,最后下載結(jié)果文件,并人為鑒定TLDc結(jié)構(gòu)域是否存在,最終確定葫蘆科OXR成員。
1.2 系統(tǒng)發(fā)育分析、保守結(jié)構(gòu)域分析和物理化學(xué)性質(zhì)分析
利用MEGA11中的ClustalW(默認設(shè)置)比對鑒定出的37個葫蘆科OXR成員和6個AtOXR成員的蛋白質(zhì)序列,構(gòu)建Neighbor-Joining樹,使用 1 000 個重復(fù)進行 bootstrap分析。根據(jù)擬南芥的分類方法將葫蘆科OXR成員分類[7],利用Evolview v3將分類結(jié)果及每個OXR成員的蛋白序列和TLDc 結(jié)構(gòu)域所在位置可視化[15],利用在線工具ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)預(yù)測OXR成員的分子量(MW)和等電點(PI)。
1.3 葫蘆科OXR成員的染色體定位
根據(jù)相應(yīng)的基因組注釋文件,提取37個OXR成員的基因位置信息,然后使用MG2C(http://mg2c.iask.in/mg2c_v2.1/)將其定位到相應(yīng)的染色體上。
1.4 保守基序和基因結(jié)構(gòu)分析
從基因組注釋文件中獲得OXR基因的外顯子和內(nèi)含子位置信息,將葫蘆科OXR成員和擬南芥OXR成員的蛋白質(zhì)序列提交MEME在線網(wǎng)站(https://meme-suite.org/meme/doc/meme.html),最大基序(motif)檢索數(shù)設(shè)置為15,利用CFVisual(https://github.com/ChenHuilong1223/CFVisual)將結(jié)果可視化。
1.5 啟動子分析
提取每個OXR成員起始密碼子前2 500 bp序列,提交PlantCare網(wǎng)站(http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/),獲得順式作用元件信息,然后以 R 4.1.3的tidyverse和ggplot2函數(shù)繪制啟動子熱圖。
1.6 復(fù)制基因分析及選擇壓力分析
使用MCScanX[16]中的detect_collinearity_within_gene_families.pl分析6個葫蘆科物種內(nèi)的OXR復(fù)制基因?qū)σ约胺荗XR復(fù)制基因?qū)Γ缓筇崛∷袕?fù)制基因?qū)υ诨蚪M中的位置信息,并利用Circos軟件[17]將復(fù)制基因?qū)梢暬?/p>
利用Muscle軟件分別比對復(fù)制基因?qū)Φ陌被嵝蛄校缓笥肞araAT[18]將氨基酸序列比對引導(dǎo)對應(yīng)的編碼序列比對,進一步使用KaKs_Kaculator 2.0[19]計算復(fù)制基因?qū)Φ腒a(非同義替換率)/Ks(同義替換率),通過Ka/Ks的值來判斷基因在進化過程中受到的選擇壓力。
1.7 共線性分析
利用葫蘆科作物的基因組文件及基因組注釋文件,使用JCVI[20]進行6個葫蘆科物種間的OXR基因共線性分析。
1.8 葫蘆科OXR成員在不同器官組織的表達譜分析
從葫蘆科基因組數(shù)據(jù)庫下載冬瓜、南瓜(PRJNA385310)、甜瓜(PRJNA383830)、黃瓜(PRJNA80169)和葫蘆(PRJNA387615)的不同組織(根、莖、葉、花)的表達譜數(shù)據(jù),分別以O(shè)XR1在根中的FPKM(fragments per kilobase of exon model per million mapped fragments)值為基準,計算OXR成員在根、莖、葉、花的相對表達量,使用TBtools中的HeatMap[21]繪制熱圖,將結(jié)果可視化。
2 結(jié)果與分析
2.1 葫蘆科OXR基因家族成員的鑒定
根據(jù)TLDc的隱馬爾可夫模型(PF07534),使用hmmsearch指令在葫蘆科6種作物全基因組中共搜索到37個候選OXR成員基因。同時,利用同源BLAST方法鑒定到38個候選OXR成員基因。隨后,將2種方法鑒定到的候選成員的蛋白質(zhì)序列提交數(shù)據(jù)庫進行確認,結(jié)果表明,hmmsearch指令鑒定到的成員都含有TLDc保守結(jié)構(gòu)域,同源BLAST檢測出的38個成員包含hmmsearch指令鑒定到的37個成員,另外1個候選OXR成員不含有TLDc保守結(jié)構(gòu)域,因此將其去除。最終,在葫蘆科6種作物中共鑒定出37個OXR成員,其中冬瓜、黃瓜、西瓜、甜瓜和葫蘆均有6個成員,南瓜有7個成員。
2.2 系統(tǒng)發(fā)育、保守結(jié)構(gòu)域和物理化學(xué)性質(zhì)分析
以葫蘆科37個OXR成員和擬南芥6個OXR成員的蛋白質(zhì)序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,可將葫蘆科OXR基因家族分為5個OXR亞家族,分別為OXR1亞族、OXR2亞族、OXR3亞族(AtOXR6歸入OXR3亞族)、OXR4亞族、OXR5亞族。葫蘆科6個作物在OXR1亞族、OXR3亞族、OXR4亞族和OXR5亞族均僅有1個成員。在OXR2亞族中,擬南芥僅有1個成員,而冬瓜、黃瓜、西瓜、甜瓜和葫蘆有2個成員,南瓜有3個成員。因此,相較于擬南芥,葫蘆科OXR2成員在進化史中有一定的擴張。
根據(jù)葫蘆科OXR成員所在亞家族,按照“物種拉丁名縮寫+亞家族+小寫字母”的形式命名。同一亞族OXR成員的TLDc結(jié)構(gòu)域的長度和位置相似,不同亞族的OXR成員的TLDc結(jié)構(gòu)域的位置和長度有差別(圖1),如OXR4亞族的TLDc結(jié)構(gòu)域的長度短于其他OXR族,且位于蛋白質(zhì)的中部,并不靠近C端。
理化性質(zhì)分析結(jié)果(表1)表明,葫蘆科作物OXR家族成員的氨基酸數(shù)量在232~1 059之間,等電點在4.65~7.07之間。分子量最小的是LsiOXR4,僅有25.64 ku,其開放閱讀框長度為 699 bp,編碼232個氨基酸;而分子量最大的CmaOXR4,有118.62 ku,其開放閱讀框長度達到 3 180 bp,編碼1 059個氨基酸。通過對比葫蘆科和擬南芥的OXR基因家族成員的氨基酸數(shù)發(fā)現(xiàn),同一亞家族內(nèi),除南瓜CmaOXR1和CmaOXR4外,其他葫蘆科OXR成員和擬南芥OXR成員的氨基酸數(shù)量相似。
2.3 染色體定位
將37個葫蘆科OXR基因家族成員定位到相應(yīng)的染色體上,結(jié)果顯示OXR基因在染色體上呈不均勻分布。南瓜OXR基因分布于6條染色體上,葫蘆OXR基因分布于5條染色體上,冬瓜和甜瓜分布于4條染色體上,黃瓜和西瓜OXR基因位于3條染色體上。不同染色體上分布的OXR基因數(shù)量不同,最多有4個(黃瓜3號染色體)(圖2)。
2.4 基因結(jié)構(gòu)和保守基序分析
為了研究葫蘆科作物OXR基因家族成員的進化關(guān)系,對37個葫蘆科OXR成員和6個擬南芥OXR成員的外顯子和內(nèi)含子的數(shù)量及排列模式進行了分析。結(jié)果表明,位于不同亞家族的所有OXR成員的外顯子和內(nèi)含子的數(shù)量以及排列模式差異顯著,而同一亞族的葫蘆科OXR成員的內(nèi)含子-外顯子排列模式基本一致(圖3)。
根據(jù)MEME網(wǎng)站分析,在葫蘆科OXR成員和擬南芥OXR成員中共檢測到15個保守基序,每個OXR成員大致含有5~9個不等的保守基序,同一個亞族內(nèi)的OXR成員所含的保守基序的數(shù)量和保守基序的分布模式大致相同,推測同亞族的OXR可能發(fā)揮相似的功能。不同亞族的OXR成員的保守基序的分布模式有所不同,可能是造成其功能差異的主要原因。
2.5 啟動子分析
提取葫蘆科OXR基因起始密碼子前2 500 bp序列,提交至Plantcare網(wǎng)站,預(yù)測其順式作用元件(圖4)。共發(fā)現(xiàn)49種順式作用元件,主要分為4類:調(diào)控生長發(fā)育、光反應(yīng)、激素響應(yīng)和逆境脅迫相關(guān)。其中調(diào)控生長發(fā)育的元件包括對柵欄葉肉細胞分化、胚乳表達、晝夜節(jié)律、分生組織表達等調(diào)控元件,而在BhiOXR2a和CmeOXR2a中還發(fā)現(xiàn)有參與類黃酮生物合成的MYB結(jié)合位點。光反應(yīng)元件包含24個不同的元件,說明葫蘆科OXR基因家族可能廣泛參與了光調(diào)控途徑。多個葫蘆科OXR基因中有許多與脫落酸、赤霉素、水楊酸和生長素等植物激素響應(yīng)相關(guān)的順式作用元件。另外,OXR3亞族成員都具有參與脫落酸響應(yīng)的ABRE順式作用元件,數(shù)量1~4個不等,推測葫蘆科OXR3可能參與脫落酸的響應(yīng)。逆境脅迫相關(guān)元件主要包含多種非生物脅迫響應(yīng)元件(干旱、低溫、缺氧和創(chuàng)傷響應(yīng)元件)以及參與干旱誘導(dǎo)的MYB結(jié)合位點。
2.6 復(fù)制分析及基因選擇壓力分析
6個葫蘆科作物物種內(nèi)的共線性分析發(fā)現(xiàn),在葫蘆科OXR基因家族中,只有OXR2亞族發(fā)生了復(fù)制(圖5)。其中,南瓜OXR2復(fù)制基因?qū)^多,而冬瓜、黃瓜、甜瓜、西瓜和葫蘆由于近期沒有發(fā)生全基因組復(fù)制事件,其復(fù)制基因?qū)^少。
通過葫蘆科OXR2復(fù)制基因?qū)Φ腒a/Ks分析,發(fā)現(xiàn)Ka/Ks的值均小于1,表明這些復(fù)制基因?qū)κ艿郊兓x擇(表2)。在同義突變率Ks分析中,CmaOXR2b-CmaOXR2c復(fù)制基因?qū)Φ腒s值為0.364 422,南瓜近期發(fā)生特異的全基因組復(fù)制事件(specific whole-genome duplication,sWGD)的Ks值為0.32[13],二者相差不大。此外,CmaOXR2b-CmaOXR2c共線對所在的共線區(qū)塊所含的基因?qū)?shù)(183對)遠多于CmaOXR2a-CmaOXR2c共線對所在的共線塊所含的基因?qū)?shù)(72對),證實CmaOXR2b-CmaOXR2c是由南瓜的近期發(fā)生sWGD而產(chǎn)生的。
2.7 共線性分析
為研究OXR基因家族在葫蘆科內(nèi)的進化歷史,根據(jù)之前報道的物種分化樹將葫蘆科作物兩兩開展共線性分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn) 親緣關(guān)系越近 OXR所在的共線性區(qū)塊越大,如黃瓜和甜瓜、西瓜和葫蘆。ClaOXR1和ClaOXR3位于西瓜的10號染色體上,LsiOXR1和LsiOXR3位于葫蘆的3號染色體上,都在同一個較大的共線塊(OXR1+OXR3 block)中。此外,葫蘆科不同作物同一亞族成員間存在一定的共線性。不同作物OXR2a之間、不同作物OXR2b之間存在共線性,不同作物OXR2a和OXR2b間不存在共線性,說明在葫蘆科祖先物種中可能發(fā)生了古老的復(fù)制事件,產(chǎn)生了OXR2a和OXR2b(圖6)。
2.8 葫蘆科OXR基因家族的組織表達譜分析
基于葫蘆科基因組數(shù)據(jù)庫中已發(fā)表的表達譜數(shù)據(jù),分析OXR基因在不同組織中的表達模式。結(jié)果(圖7)顯示,不同亞族基因的表達模式有所差異,如冬瓜BhiOXR3在根、莖、葉、花中表達量無明顯差異,而BhiOXR4在葉片中表達量明顯高于其他組織。此外,不同作物相同亞族基因表達也存在一定的差異,冬瓜、葫蘆、甜瓜、黃瓜OXR4基因在葉片中表達量明顯高于其他組織,而南瓜OXR4基因則無明顯的葉片高豐度表達。值得注意的是,復(fù)制基因?qū)Γ˙hiOXR2a-BhiOXR2b、LsiOXR2a-LsiOXR2b、CsaOXR2a-CsaOXR2b、CmaOXR2b-CmaOXR2c)在不同組織中的表達存在較大差異,出現(xiàn)表達分化現(xiàn)象。
3 討論與結(jié)論
抗氧化(OXR)基因有助于保護真核生物免受活性氧的傷害[22]。目前,OXR基因家族已在擬南芥、小麥、向日葵和某些十字花科植物的基因組中被鑒定出來,并深入研究了部分基因的功能[7-8,23-25]。
然而,關(guān)于葫蘆科OXR家族基因的研究還未見報道。本研究基于葫蘆科基因組數(shù)據(jù)庫,從6個葫蘆科作物中共鑒定出37個OXR基因,其中冬瓜、黃瓜、西瓜、甜瓜和葫蘆均有6個OXR基因,而南瓜有7個OXR基因。
根據(jù)氨基酸序列和保守結(jié)構(gòu)域的相似性,葫蘆科OXR基因家族可分為5個亞家族,這一結(jié)果同擬南芥、向日葵和十字花科植物的分類結(jié)果相似[7-8,25]。同一亞家族的擬南芥 OXR基因和葫蘆科OXR基因編碼的氨基酸個數(shù)、開放閱讀框和分子量的大小都相似,其內(nèi)含子-外顯子的數(shù)量及保守基序相似,說明同一亞家族內(nèi)的OXR基因可能具有相似的生物學(xué)功能。
OXR基因的啟動子含有多種順式作用元件,表明OXR基因可能參與多種植物代謝調(diào)控途徑。過表達擬南芥OXR基因,可通過影響水楊酸代謝而清除多余的活性氧,從而能夠提高對氧化脅迫的耐受性[7,24]。葫蘆科OXR基因的啟動子區(qū)域包含調(diào)控生長發(fā)育、光反應(yīng)、激素響應(yīng)和非生物脅迫響應(yīng)相關(guān)元件,這一結(jié)果與之前報道的十字花科植物OXR基因和小麥OXR基因的順式作用元件[8,23]相似,說明葫蘆科OXR基因可能在抵御生物和非生物脅迫時發(fā)揮重要作用。
基因復(fù)制是植物基因組進化的主要驅(qū)動力,為遺傳革新、表型多樣性以及物種分化提供了大量的原始遺傳物質(zhì)[26-27]。葫蘆科OXR2亞族成員通過片段復(fù)制或全基因組復(fù)制發(fā)生了擴張,并且OXR2復(fù)制基因?qū)Φ腒a/Ks 比值均小于 1。Ka/Ks<1 表示基因受到純化選擇[28],說明葫蘆科OXR2亞族在進化上相對保守,有助于維持OXR2亞族成員功能的穩(wěn)定性。通過探尋OXR基因家族在葫蘆科內(nèi)的進化歷史,發(fā)現(xiàn) 6個葫蘆科作物的OXR2a和OXR2b相互之間都具有共線性關(guān)系,推測OXR2亞族的成員在這6個葫蘆科作物的祖先物種中通過古老的復(fù)制事件,產(chǎn)生了OXR2a和OXR2b等2個同源基因?qū)Γ殡S著葫蘆科物種的分化,OXR2a和OXR2b也被保留在了6個葫蘆科物種的基因組中。南瓜基因組中有3個OXR2基因,其中CmaOXR2b和CmaOXR2c是同源基因,這一發(fā)現(xiàn)進一步證實南瓜近期發(fā)生了sWGD事件[13]。
為了研究OXR基因的表達特征,本研究從葫蘆科基因組數(shù)據(jù)庫下載冬瓜、南瓜、甜瓜、黃瓜和葫蘆不同組織的表達譜數(shù)據(jù)。表達譜分析發(fā)現(xiàn)不同亞族OXR基因的表達量有差異,表明它們在不同組織器官中的抗氧化作用機制不盡相同。葫蘆科OXR4亞族的基因的表達模式較為相似,暗示OXR4亞族的基因可能具有相似的抗氧化功能。喬鑫通過對梨等141種植物基因組中的不同類型的復(fù)制基因的鑒定和表達分析,發(fā)現(xiàn)復(fù)制基因廣泛存在非對稱表達現(xiàn)象(2個同源基因拷貝的表達水平己經(jīng)偏離了1 ∶1的對稱性表達模式)[27],然而葫蘆科OXR2亞族內(nèi)復(fù)制基因存在顯著的表達差異,也出現(xiàn)了非對稱表達的現(xiàn)象。這可能是由于基因復(fù)制發(fā)生后,2個同源基因拷貝在啟動子區(qū)域的分化導(dǎo)致它們之間的表達分化[29],但其表達產(chǎn)生分化的機制還需進一步解析。
綜上所述,本研究利用多種生物信息學(xué)分析網(wǎng)站和軟件,系統(tǒng)鑒定了6種葫蘆科作物的OXR基因,并綜合分析了葫蘆科OXR基因的系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系、物理化學(xué)性質(zhì)、染色體定位、基因結(jié)構(gòu)、保守基序、順式作用元件、在葫蘆科作物中的進化歷史和在不同組織中表達模式等。鑒定和分析結(jié)果為進一步研究葫蘆科作物OXR基因家族在響應(yīng)非生物脅迫方面的生物學(xué)功能奠定基礎(chǔ)。
參考文獻:
[1]李 格,孟小慶,蔡 敬,等. 活性氧在植物非生物脅迫響應(yīng)中功能的研究進展[J]. 植物生理學(xué)報,2018,54(6):951-959.
[2]Czarnocka W,Karpiński S.Friend or foe?Reactive oxygen species production,scavenging and signaling in plant response to environmental stresses[J]. Free Radical Biology and Medicine,2018,122:4-20.
[3]Foyer C H,Ruban A V,Graham N. Viewing oxidative stress through the lens of oxidative signalling rather than damage[J]. The Biochemical Journal,2017,474(6):877-883.
[4]Mittler R. ROS are good[J]. Trends in Plant Science,2017,22(1):11-19.
[5]趙 瀅,王振興,許培磊,等. 山葡萄雙豐和左優(yōu)紅葉綠素?zé)晒馓匦约盎钚匝醮x與低溫傷害的關(guān)系[J]. 園藝學(xué)報,2018,45(4):650-658.
[6]Finelli M J,Oliver P L.TLDc proteins:new players in the oxidative stress response and neurological disease[J]. Mammalian Genome,2017,28(9):395-406.
[7]Colombatti F,Mencia R,Garcia L,et al. The mitochondrial oxidation resistance protein AtOXR2 increases plant biomass and tolerance to oxidative stress[J]. Journal of Experimental Botany,2019,70(12):3177-3195.
[8]張夢云,袁凌云,朱世東,等. 十字花科植物抗氧化基因(OXR)的鑒定與生物信息學(xué)分析[J/OL]. 分子植物育種,2021:1-11.(2021-08-26)[2022-12-20]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20210825.1923.021.html.
[9]Huang S W,Li R Q,Zhang Z H,et al. The genome of the cucumber,Cucumis sativus L.[J]. Nature Genetics,2009,41(12):1275-1281.
[10]Garcia-Mas J,Benjak A,Sanseverino W,et al. The genome of melon (Cucumis melo L.)[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2012,109(29):11872-11877.
[11]Guo S G,Zhang J G,Sun H H,et al. The draft genome of watermelon (Citrullus lanatus) and resequencing of 20 diverse accessions[J]. Nature Genetics,2013,45(1):51-58.
[12]Wu S,Shamimuzzaman M,Sun H,et al. The bottle gourd genome provides insights into Cucurbitaceae evolution and facilitates mapping of a Papaya ring-spot virus resistance locus[J]. The Plant Journal,2017,92(5):963-975.
[13]Sun H H,Wu S,Zhang G Y,et al. Karyotype stability and unbiased fractionation in the paleo-allotetraploid Cucurbita genomes[J]. Molecular Plant,2017,10(10):1293-1306.
[14]Xie D S,Xu Y C,Wang J P,et al. The wax gourd genomes offer insights into the genetic diversity and ancestral cucurbit karyotype[J]. Nature Communications,2019,10:5158.
[15]Subramanian B,Gao S H,Lercher M J,et al. Evolview v3:a webserver for visualization,annotation,and management of phylogenetic trees[J]. Nucleic Acids Research,2019,47(1):270-275.
[16]Wang Y P,Tang H B,de Barry J D,et al. MCScanX:a toolkit for detection and evolutionary analysis of gene synteny and collinearity[J]. Nucleic Acids Research,2012,40(7):49.
[17]Krzywinski M,Schein J,Birol I,et al. Circos:an information aesthetic for comparative genomics[J]. Genome Research,2009,19(9):1639-1645.[HJ2mm]
[18]Zhang Z,Xiao J F,Wu J Y,et al. ParaAT:a parallel tool for constructing multiple protein-coding DNA alignments[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,2012,419(4):779-781.
[19]Wang D,Zhang Y,Zhang Z et al. KaKs_Calculator 2.0:a toolkit incorporating gamma-series methods and sliding window strategies[J]. Genomics,Proteomics & Bioinformatics,2010,8(1):77-80.
[20]Tang H,Bowers J E,Wang X,et al. Synteny and collinearity in plant genomes[J]. Science,2008,320(5875):486-488.
[21]Chen C J,Chen H,Zhang Y,et al. TBtools:an integrative toolkit developed for interactive analyses of big biological data[J]. Molecular Plant,2020,13(8):1194-1202.
[22]Blaise M,Alsarraf H M A B,Wong Jaslyn E M M,et al. Crystal structure of the TLDc domain of oxidation resistance protein 2 from zebrafish[J]. Proteins,2012,80(6):1694-1698.
[23]李 寒,夏鵬亮,唐艷紅,等. 小麥OXR基因家族全基因組生物信息學(xué)及表達分析[J/OL]. 分子植物育種,2022:1-10.(2022-04-11)[2022-05-20]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20220411.0854.004.html.
[24]Mencia R,Céccoli G,F(xiàn)abro G,et al. OXR2 increases plant defense against a hemibiotrophic pathogen via the salicylic acid pathway[J]. Plant Physiology,2020,184(2):1112-1127.
[25]Torti P,Raineri J,Mencia R,et al. The sunflower TLDc-containing protein HaOXR2 confers tolerance to oxidative stress and waterlogging when expressed in maize plants[J]. Plant Science,2020,300:110626.
[26]Flagel L E,Wendel J F. Gene duplication and evolutionary novelty in plants[J]. The New Phytologist,2009,183(3):557-564.
[27]喬 鑫. 梨等植物基因組中重復(fù)基因的鑒定與進化分析 [D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2018:72-76.
[28]周至銘,楊佳寶,張 程,等. 向日葵LACS家族鑒定及響應(yīng)非生物脅迫表達分析[J]. 園藝學(xué)報,2022,49(2):352-364.
[29]Hahn M W. Distinguishing among evolutionary models for the maintenance of gene duplicates[J]. Journal of Heredity,2009,100(5):605-617.