周成夷 么宗利 來(lái)琦芳 袁春營(yíng) 高鵬程 陸建學(xué) 李燕 周凱 劉一萌 孫真
摘要:基于菌藻平衡原理控制藍(lán)藻,可降低鹽堿地養(yǎng)殖池塘銅綠微囊藻(Microcystis aeruginosa)對(duì)養(yǎng)殖生物的危害。在實(shí)驗(yàn)室條件下,研究了鹽堿水中地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)對(duì)銅綠微囊藻生長(zhǎng)的抑制效果并探索其抑藻途徑。結(jié)果顯示,在碳酸鹽堿度6.4 mmol/L、鹽度3.5、pH 8.9的鹽堿水中,地衣芽孢桿菌對(duì)初始密度為1.0×106、6.0×106、20×106 個(gè)/mL的銅綠微囊藻均有明顯抑制作用,抑制率分別達(dá)到51.8%、71.1%、65.7%;地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液對(duì)銅綠微囊藻生長(zhǎng)也表現(xiàn)出顯著的抑制效果,其中無(wú)菌濾液加入量為實(shí)驗(yàn)水體2%時(shí)的抑制效果最好,培養(yǎng)6 d后藻密度僅為4.5×106 個(gè)/mL,處理組葉綠素a含量較對(duì)照組降低了58.8%,與銅綠微囊藻光合作用相關(guān)的PSBA1和PSBD1基因表達(dá)下降,光合作用途徑受到抑制;鹽堿水中地衣芽孢桿菌對(duì)銅綠微囊藻具有較好的抑制效果。
關(guān)鍵詞:地衣芽孢桿菌;銅綠微囊藻;藻類抑制;無(wú)菌濾液;鹽堿水
中圖分類號(hào):X835? ? ? ? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A? ? ? ? 文章編號(hào):1674-3075(2023)06-0136-06
我國(guó)有4 600 萬(wàn)hm2鹽堿水域,遍及19個(gè)?。▍^(qū)、市),主要分布在東北、華北、西北內(nèi)陸地區(qū)以及長(zhǎng)江以北沿海地帶;因其水質(zhì)類型多,水化學(xué)組成復(fù)雜,絕大部分長(zhǎng)期以來(lái)處于荒置狀態(tài),發(fā)展鹽堿地水產(chǎn)養(yǎng)殖,合理利用鹽堿水資源,不僅能夠拓展?jié)O業(yè)發(fā)展空間,對(duì)于鹽堿地的生態(tài)治理也有重要意義(來(lái)琦芳等,2021)。由于鹽堿水高pH、高碳酸鹽堿度、高離子系數(shù)以及水質(zhì)類型多的特點(diǎn),鹽堿池塘極易暴發(fā)藍(lán)藻水華,在水產(chǎn)養(yǎng)殖過程中控制藍(lán)藻成為丞待解決的水質(zhì)問題。
藻類通過光合作用為養(yǎng)殖水體提供充足的O2,但也會(huì)大量消耗水體中的CO2以及HCO3-,引起碳酸鹽體系失去平衡,導(dǎo)致水體pH升高,造成水環(huán)境惡化與水體功能下降(張小倩等,2017;Dos Santos et al,2020)。在鹽堿池塘養(yǎng)殖中,部分藻類會(huì)對(duì)養(yǎng)殖生物造成損害,如銅綠微囊藻(Microcystis aeruginosa)、三毛金藻(Prymnesiacee)以及裸甲藻(Gymnodinium aerucyinosum)等,銅綠微囊藻是鹽堿地藍(lán)藻水華的主要來(lái)源之一(許海等,2019)。在養(yǎng)殖進(jìn)程中,三毛金藻引起養(yǎng)殖魚類發(fā)病后很難治愈,因此常采用防治辦法,其中定期施用EM菌、光合細(xì)菌等是有效措施(石偉,2011)。裸甲藻屬于甲藻綱,喜高pH值、高溫,且大量繁殖后易形成紅褐色藻華,危害水生動(dòng)物,在鹽堿池塘防治中,常采用定期施加微生態(tài)制劑以保持水質(zhì),或施用三氯異氰尿酸消毒,同時(shí)補(bǔ)充有益菌等方法(孫煒等,2018)。銅綠微囊藻暴發(fā)可產(chǎn)生大量毒性較強(qiáng)的毒素,破壞生態(tài)系統(tǒng)結(jié)構(gòu)與平衡,造成養(yǎng)殖水環(huán)境pH升高,危害養(yǎng)殖生物(蘇發(fā)文等,2016)。水環(huán)境中一些細(xì)菌對(duì)藻類有抑制作用,這類細(xì)菌被稱作抑藻菌或溶藻菌,能夠在很大程度上改變?cè)孱惾郝浣Y(jié)構(gòu)(傅麗君等,2021)。有研究表明,淡水中的短短芽孢桿菌(張小倩等,2017)、枯草芽孢桿菌(Liu et al,2019)、放線菌(李漢全等,2015)等對(duì)銅綠微囊藻有良好的抑制效果;海洋溶藻細(xì)菌DHQ25的培養(yǎng)上清液能夠通過抑制藻類光系統(tǒng)來(lái)裂解塔瑪亞歷山大藻(Zhang et al,2014);海桿菌屬D-2對(duì)米氏凱倫藻有高效的抑制作用(杜文俊等,2021);而關(guān)于鹽堿水中菌抑藻的研究鮮有報(bào)道。
目前,鹽堿地水產(chǎn)養(yǎng)殖缺乏有效的藍(lán)藻處理方法,其中物理方法工作量大、且維持時(shí)間較短;而化學(xué)法容易留下殘留,污染養(yǎng)殖水體,對(duì)養(yǎng)殖生物的生長(zhǎng)不利。地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)是一種革蘭氏陽(yáng)性兼性厭氧菌,在生長(zhǎng)代謝中不僅能產(chǎn)生多種抗菌物質(zhì),同時(shí)能夠抑制病原微生物的生長(zhǎng)并改良水質(zhì)。有研究發(fā)現(xiàn),在淡水環(huán)境中的地衣芽孢桿菌能夠?qū)︺~綠微囊藻的生長(zhǎng)產(chǎn)生抑制效果,并控制其暴發(fā)(Liu et al,2019)。本文通過探究鹽堿水環(huán)境中地衣芽孢桿菌對(duì)銅綠微囊藻的抑制效果,以期為鹽堿地水產(chǎn)養(yǎng)殖控制藍(lán)藻暴發(fā)提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù),為鹽堿水質(zhì)調(diào)控提供新途徑。
1? ?材料與方法
1.1? ?實(shí)驗(yàn)材料
實(shí)驗(yàn)用地衣芽孢桿菌為經(jīng)鹽堿水篩選后保存的菌株,將未篩選的地衣芽孢桿菌菌粉加入到鹽堿水LB液體培養(yǎng)基中,30℃恒溫培養(yǎng)24 h,取1 mL加入到新的液體培養(yǎng)基中,重復(fù)篩選3次。取篩選培養(yǎng)后的菌液5 mL配置稀釋液,于鹽堿水LB固體培養(yǎng)基中涂布分離單株菌,將所得純菌株低溫保存。
銅綠微囊藻藻種來(lái)源于中國(guó)科學(xué)院淡水藻種庫(kù)(編號(hào):FACHB-905),將所得藻種在BG-11培養(yǎng)基中逐步擴(kuò)大培養(yǎng),以滿足實(shí)驗(yàn)所需。地衣芽孢桿菌采用LB培養(yǎng)基培養(yǎng)(曹禮等,2018);銅綠微囊藻采用BG-11培養(yǎng)基培養(yǎng)(邱森森等,2018);實(shí)驗(yàn)所用培養(yǎng)基均采取121℃滅菌20 min。
預(yù)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)地衣芽孢桿菌在鹽堿水中能正常生長(zhǎng),且10 h后達(dá)到指數(shù)生長(zhǎng)期,為7.1×106 CFU/mL。為了保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性,在預(yù)實(shí)驗(yàn)階段采用7.1×106 CFU/mL的地衣芽孢桿菌進(jìn)行多次重復(fù)實(shí)驗(yàn),取得較好效果,所得抑制率均大于50%。
實(shí)驗(yàn)所用鹽堿水均模擬河北鹽堿水的水質(zhì)組成進(jìn)行配置,碳酸鹽堿度6.4 mmol/L、pH 8.9、鹽度3.5,主要離子組成見表1。
1.2? ?銅綠微囊藻培養(yǎng)和生長(zhǎng)測(cè)定
1.2.1? ?微藻培養(yǎng)? ?將銅綠微囊藻轉(zhuǎn)接入1 L的三角燒瓶?jī)?nèi),在恒溫光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng),光暗周期為12 h:12 h,光照強(qiáng)度2 500 lx,溫度為(25±1)℃。
1.2.2? ?回歸曲線? ?取1 mL指數(shù)生長(zhǎng)期的銅綠微囊藻,參照馬欠等(2019)方法繪制吸光度值和藻細(xì)胞密度(0、0.3[×]105、0.68[×]105、3.2[×]105、2.4[×]106、8.2[×]106、2.2[×]107 個(gè)/mL)回歸曲線。所得回歸曲線用于計(jì)算水體中銅綠微囊藻的藻細(xì)胞密度(圖1)。
1.3? ?地衣芽孢桿菌抑藻實(shí)驗(yàn)
藍(lán)藻水華時(shí),藻細(xì)胞密度一般在10×106 個(gè)/mL(李穎等,2014),據(jù)此設(shè)置1×106、6×106、20×106 個(gè)/mL共3個(gè)藻細(xì)胞密度實(shí)驗(yàn)組。在250 mL錐形瓶中加入含有不同密度銅綠微囊藻藻液的配置鹽堿水100 mL,實(shí)驗(yàn)組加入地衣芽孢桿菌,濃度為7.1×106 CFU/mL,對(duì)照組不加菌。實(shí)驗(yàn)設(shè)3個(gè)平行,通氣培養(yǎng)7 d,每隔3 d測(cè)定銅綠微囊藻吸光度,根據(jù)生長(zhǎng)曲線計(jì)算銅綠微囊藻藻細(xì)胞密度。藻抑制率(蘇躍龍等,2014)計(jì)算如下:
IR = (1 - Nt/Mt)×100%? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?①
式中:IR為抑制率,Nt為處理組第t天藻細(xì)胞密度值,Mt為對(duì)照組第t天藻細(xì)胞密度值。
1.4? ?地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液抑藻實(shí)驗(yàn)
1.4.1? ?濾液制備? ?將濃度7.1×106 CFU/mL地衣芽孢桿菌菌液冷凍離心(日立CF15R)10 000 r/min,4 ℃離心10 min后收集上清液,用0.22 ?m濾膜過濾后得到無(wú)菌濾液,低溫保存(Akiyama et al,2001)。
1.4.2? ?抑藻實(shí)驗(yàn)? ?在250 mL錐形瓶中加入含有106 個(gè)/mL銅綠微囊藻藻液的配置鹽堿水100 mL,實(shí)驗(yàn)組分別按體積比0.5%、1%、2%加入地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液。在恒溫光照培養(yǎng)箱中通氣培養(yǎng)7 d,每隔3 d檢測(cè)實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組中藻細(xì)胞密度,實(shí)驗(yàn)設(shè)置3個(gè)平行。
1.5? ?銅綠微囊藻葉綠素a含量測(cè)定
根據(jù)抑藻實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在實(shí)驗(yàn)組中加入2%無(wú)菌濾液共培養(yǎng)7 d,每隔3 d測(cè)量實(shí)驗(yàn)組溶液葉綠素a含量。葉綠素a提取方法采用丙酮提取-反復(fù)凍融法(李孟珂等,2019),采用分光光度法測(cè)量銅綠微囊藻中葉綠素a的含量,計(jì)算公式如下:
C = 0.0604×A632-4.5224×A649+13.2969A665-1.7453×A696? ? ? ? ?②
式中:C為葉綠素a含量,A632、A649、A665、A696分別為632、649、665、696 nm的吸光度值。
1.6? ?地衣芽孢桿菌對(duì)銅綠微囊藻光合基因表達(dá)
實(shí)驗(yàn)在250 mL錐形瓶中進(jìn)行。為了探究地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液對(duì)銅綠微囊藻中與光合作用有關(guān)的PSBA1和PSBD1基因表達(dá)的影響,將銅綠微囊藻(初始密度為106 個(gè)/mL)與地衣芽孢桿菌的無(wú)菌濾液(加入量為2%體積)進(jìn)行共培養(yǎng),每隔3 d進(jìn)行取樣,每次取樣體積為50 mL。
1.6.1? ?總RNA提取? ?取50 mL的共培養(yǎng)液3 000 r/min 離心10 min,棄去上清。用TaKaRa Mini-BEST通用RNA提取試劑盒(中國(guó)大連)操作方法提取藻類RNA。
1.6.2? ?反轉(zhuǎn)錄合成cDNA? ?以銅綠微囊藻RNA為模板,根據(jù)RNA濃度測(cè)定結(jié)果,使用 PrimeScriptTM RT Master Mix(Perfect Real Time)(TaKaRa)反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA。
1.6.3? ?熒光定量PCR? ?采用TB Green premix Ex TaqTM(Tli RnaseH Plus)(TaKaRa) 試劑盒在CFX96 Real Time PCR Detection System(Bio-Rad) 上進(jìn)行熒光定量PCR分析。每個(gè)樣品重復(fù)3次,引物序列如表2。內(nèi)參基因?yàn)?6S rDNA基因,采用2-△△Ct法計(jì)算基因表達(dá)相對(duì)量(Zhang et al,2020)。
1.7? ?數(shù)據(jù)分析
統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SD)。所有數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布并通過方差齊性檢驗(yàn)。采用單因素方差分析(One-way ANOVA)各組別間差異,LSD法進(jìn)行多重比較,顯著性水平為P<0.05,統(tǒng)計(jì)分析使用SPSS 25.0軟件。
2? ?結(jié)果
2.1? ?地衣芽孢桿菌與銅綠微囊藻生長(zhǎng)
在初始藻密度為1×106、6×106、20×106 個(gè)/mL組加入地衣芽孢桿菌,銅綠微囊藻生長(zhǎng)均出現(xiàn)抑制現(xiàn)象,處理第6天,3個(gè)組別抑制率分別為51.8%、71.1%、65.7%(圖2)。處理第3天,3個(gè)組別抑藻率出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05)。其中,6×106 個(gè)/mL密度組抑藻率最高,達(dá)到了53.2%;其次為20×106 個(gè)/mL組,抑制率為42.3%;1×106 個(gè)/mL組最低,僅34.1%。3個(gè)組別在第6天對(duì)銅綠微囊藻的生長(zhǎng)抑制作用與第3天趨勢(shì)一致。地衣芽孢桿菌對(duì)3種密度下銅綠微囊藻的抑制率在第6天均超過50%,抑制效果顯著。
不加無(wú)菌濾液的對(duì)照組,藻細(xì)胞密度快速上升(圖3),第6天達(dá)到了2.2×107個(gè)/mL;加入無(wú)菌濾液的實(shí)驗(yàn)組銅綠微囊藻生長(zhǎng)受到顯著抑制,其中2%實(shí)驗(yàn)組抑制效果最好,培養(yǎng)6 d后藻密度僅為4.5×106個(gè)/mL;0.5%處理組藻密度為1.13×107 個(gè)/mL,1%處理組藻密度為7.2×106 個(gè)/mL。
2.2? ?地衣芽孢桿菌與銅綠微囊藻葉綠素a含量
地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液對(duì)銅綠微囊藻葉綠素a含量也有顯著抑制效果(圖4)。相同培養(yǎng)條件下,實(shí)驗(yàn)組葉綠素a含量在第3天就出現(xiàn)抑制效果,相比對(duì)照組顯著減少,對(duì)照組在第6天達(dá)到了1.7 mg/L(P<0.05);而加入無(wú)菌濾液的實(shí)驗(yàn)組,葉綠素含量在第6天為0.7 mg/L,僅為對(duì)照組的58.8%,表現(xiàn)出顯著的抑制效應(yīng)(P<0.05)。
2.3? ?地衣芽孢桿菌與銅綠微囊藻光合作用基因表達(dá)
地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液抑制了銅綠微囊藻中光合作用相關(guān)PSBA1基因與PSBD1基因表達(dá)(圖5)。實(shí)驗(yàn)組的PSBA1基因表達(dá)在第3天開始出現(xiàn)顯著下降(P<0.05),僅為對(duì)照組的49.5%,在第6天有所恢復(fù),但仍顯著低于對(duì)照組(P<0.05);實(shí)驗(yàn)組的PSBD1基因表達(dá)則從第3天開始一直處于顯著下降狀態(tài)(P<0.05)。
3? ?討論
3.1? ?地衣芽孢桿菌的抑藻途徑與作用機(jī)制
抑藻菌對(duì)藻類的抑制途徑有2種,一種是通過細(xì)胞間直接攻擊抑制藻細(xì)胞;另一種是通過釋放活性物質(zhì)等間接攻擊抑制藻細(xì)胞(杜青波等,2017)。本實(shí)驗(yàn)范圍內(nèi),地衣芽孢桿菌抑藻途徑屬于間接抑制,其無(wú)菌濾液中含有的胞外活性物質(zhì)能降低銅綠微囊藻葉綠素a含量,使PSBA1與PSBD1基因表達(dá)下降,推測(cè)其作用機(jī)制主要是通過影響光合作用中的光系統(tǒng)Ⅱ來(lái)抑制銅綠微囊藻生長(zhǎng)。有研究發(fā)現(xiàn),B1芽孢桿菌分泌的抑藻物質(zhì)可以破壞球形棕囊藻細(xì)胞結(jié)構(gòu),損傷葉綠體,影響葉綠素a的合成(李薔,2012),這也可能是地衣芽孢桿菌無(wú)菌濾液降低葉綠素a含量的原因之一;PSBA1基因和PSBD1基因是編碼PS II反應(yīng)中心的重要成分,與藻類的光合作用密切相關(guān)。Qian等(2010)研究發(fā)現(xiàn),植物體中PSBA1和PSBD1基因表達(dá)下降能導(dǎo)致光合作用系統(tǒng)的電子傳遞鏈中斷,最終影響CO2固定過程;此外,賈雯等(2013)研究發(fā)現(xiàn),側(cè)孢短芽孢桿菌抑藻活性物質(zhì)的介入,導(dǎo)致銅綠微囊藻內(nèi)光系統(tǒng)的D1蛋白被破壞,電子傳遞鏈?zhǔn)茏?,從而抑制光合作用。微生物抑制藻類的機(jī)制,在生理水平上還包括細(xì)胞膜的損傷、脂質(zhì)過氧化、影響藻體活性氧清除或光合作用相關(guān)酶的活性等(Zeng et al,2021);在分子水平上,包括阻礙參與呼吸作用以及細(xì)胞增殖相關(guān)基因的表達(dá)(林澤宏,2020)。
3.2? ?不同環(huán)境條件下地衣芽孢桿菌的抑藻效果
本次研究發(fā)現(xiàn),指數(shù)生長(zhǎng)期的地衣芽孢桿菌對(duì)1.0×106、6.0[×]106、20[×]106 個(gè)/mL銅綠微囊藻均表現(xiàn)出抑制作用,抑制率分別為51.8%、71.1%、65.7%,表明在鹽堿水中地衣芽孢桿菌的抑藻效果明顯;但當(dāng)藻密度達(dá)到一定范圍后,抑藻效果有一定程度降低,推測(cè)其通過釋放胞外活性物質(zhì)影響銅綠微囊藻生長(zhǎng),進(jìn)而達(dá)到抑藻效果。銅綠微囊藻是極易暴發(fā)的藍(lán)藻,當(dāng)前缺乏有效防控方法。以環(huán)境友好的微生物控制池塘藻類暴發(fā),近年來(lái)受到了廣泛關(guān)注,芽孢桿菌(許艷婷等,2018)、酵母菌(陳明華,2019)等微生物對(duì)藻類均有一定的抑制效果。淡水環(huán)境中地衣芽孢桿菌Sp34對(duì)銅綠微囊藻抑制率達(dá)39.6%~75.2%(Liu et al,2019);枯草芽孢桿菌的抑制率在50%~60%,但在pH大于8的堿性環(huán)境下,枯草芽孢桿菌的生長(zhǎng)受到顯著影響(程新等,2017)。以菌抑藻為鹽堿池塘防控銅綠微囊藻提供了新途徑。對(duì)比田照輝等(2021)淡水培養(yǎng)基中的芽孢桿菌4 h進(jìn)入指數(shù)生長(zhǎng)期,本研究耗時(shí)10 h,表明鹽堿水環(huán)境對(duì)地衣芽孢桿菌生長(zhǎng)存在一定的影響,濃度可達(dá)到106 CFU/mL,說(shuō)明地衣芽孢桿菌對(duì)鹽堿水環(huán)境有較強(qiáng)的耐受適應(yīng)能力,今后應(yīng)加強(qiáng)對(duì)耐鹽堿性抑藻菌株的篩選。
本實(shí)驗(yàn)范圍內(nèi),與菌液對(duì)比,無(wú)菌濾液抑藻效果更為明顯,抑藻率最高可達(dá)79.5%。比較不同體積比的抑藻效果,2%在抑藻絕對(duì)量上具有優(yōu)勢(shì),而0.5%在抑藻相對(duì)量上具有優(yōu)勢(shì)。因此,在養(yǎng)殖生產(chǎn)中還需要進(jìn)一步確定適宜的無(wú)菌濾液濃度。
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(責(zé)任編輯? ?萬(wàn)月華)
Growth Inhibition of Microcystis aeruginosa by Bacillus licheniformis
in Saline-Alkaline Water
ZHOU Cheng‐yi1,2, YAO Zong‐li2, LAI Qi‐fang2, YUAN Chun‐ying1, GAO Peng‐cheng2,
LU Jian‐xue2, LI Yan2, ZHOU Kai2, LIU Yi‐meng2, SUN Zhen2
(1. Tianjin University of Science and Technology School of Oceanography and Environment,
Tianjin? ?300457, P.R. China;
2. Key Laboratory of Aquaculture on Saline-Alkaline Land , Ministry of Agriculture and Rural Affairs,
East China Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Fishery Engineering
Technology Research Center for Saline-Alkaline Waters, Shanghai? ?200090, P.R. China)
Abstract:Cyanobacteria such as Microcystis aeruginosa are the primary source of algal blooms in saline-alkaline ponds and endanger aquaculture organisms. Microbe-based algae control has attracted attention because of potential effectiveness, species specificity, and eco-friendliness. Previous research has shown that Bacillus licheniformis can inhibit M. Aeruginosa growth in fresh water. In this study, the growth inhibition of M. aeruginosa by B. licheniformis and its inhibition mechanism were investigated under laboratory conditions. We aimed to provide basic data for the control of cyanobacteria blooms in saline-alkaline aquaculture and propose a feasible method for regulating the quality of saline-alkaline water. In this study, there were two groups of experiments. One group was set as follows: three treatments with initial M. aeruginosa concentrations of 1×106, 6×106, and 20×106 cells/mL, and an initial concentration of B. licheniformis of 7.1×106 CFU/mL. The second group of experiments was set as follows: three treatments with an initial M. aeruginosa concentration of 1×106 cells/mL, and cell-free filtrates of B. licheniformis solution at concentrations of 0.5%, 1% and 2%. Each treatment was run in triplicate with a control, and the experiment lasted seven days. Cell density and absorbance of M. aeruginosa in each treatment was determined every three days. Growth of M. aeruginosa was significantly inhibited by B. licheniformis in saline-alkaline water under experimental conditions: carbonate alkalinity, 6.4 mmol/L; pH, 8.9 and salinity, 3.5. The inhibition rates of M. aeruginosa at initial M. aeruginosa concentrations of 1×106 cells/mL, 6×106 cells/mL and 20×106 cells/mL were, respectively, 51.8%, 71.1% and 65.7%, with normal M. aeruginosa growth in the control. The cell-free filtrate of B. licheniformis also showed a strong inhibitory effect on the growth of M. aeruginosa, and was most pronounced at the highest concentration (2%),with the M.aeruginosa concentration of 4.5×106 cells/mL after culture for 6 d. At a filtrate concentration of 2%, the chlorophyll-a content in the experimental group was 58.8% lower than that in the control group, a significant reduction. B. licheniformis affected the expression of key M. aeruginosa genes involved in photosynthesis, such as PSBA1 and PSBD1, with significant downward regulation. In conclusion, B. licheniformis was found to inhibit M. aeruginosa photosynthesis in saline-alkaline water, consequently inhibiting growth.
Key words:Bacillus licheniformis; Microcystis aeruginosa; algae inhibition; cell-free filtrate; saline-alkaline water
收稿日期:2022-04-14? ? ? 修回日期:2023-07-03
基金項(xiàng)目:國(guó)家重點(diǎn)研究計(jì)劃(NO.2020YFD0900400);中央級(jí)公益性科研院所基本科研業(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)(2021XT04,2020TD52)。
作者簡(jiǎn)介:周成夷,1996年生,男,碩士研究生,研究方向?yàn)辂}堿地水質(zhì)調(diào)控。E-mail:530495074@qq.com
通信作者:來(lái)琦芳,1970年生,女,研究員,主要從事鹽堿地水產(chǎn)養(yǎng)殖研究。E-mail:laiqf@ecsf.ac.cn