劉 洋,劉婕婷,王迎斌
(1.蘭州大學(xué)第二醫(yī)院麻醉科,甘肅 蘭州 730030;2.蘭州大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院,甘肅 蘭州 730030)
腸缺血再灌注(ischemia-reperfusion,I/R)是一種致命疾病,死亡率高達(dá)60%~80%。腸道I/R 損傷可導(dǎo)致腸黏膜屏障受損,誘發(fā)嚴(yán)重的全身炎癥反應(yīng)及隨之而來(lái)的遠(yuǎn)端器官損傷。肺是腸I/R 的高敏感受累器官,其結(jié)構(gòu)和功能易受影響,引起急性肺損傷(acute lung injury,ALI)[1]。
富馬酸氯馬斯?。╟lemastine fumarate,CLE),是第二代的組胺1 受體(histamine 1 receptor,H1R)拮抗劑,在過(guò)敏性疾病的治療中應(yīng)用廣泛。研究發(fā)現(xiàn)在肺損傷的形成過(guò)程中H1R 介導(dǎo)的炎性反應(yīng)發(fā)揮重要作用,并且在肺缺血再灌注模型中CLE 發(fā)揮了抗炎作用并減輕了肺損傷[2]。臨床研究中,胃腸急危重癥開(kāi)腹手術(shù)前使用CLE 被證實(shí)具有肺保護(hù)作用[3]。但目前沒(méi)有確切的證據(jù)表明CLE 在腸I/R所致ALI 中發(fā)揮保護(hù)作用。因此本實(shí)驗(yàn)采用小鼠腸I/R 模型,以探討CLE 對(duì)該模型建立后肺組織的影響及可能機(jī)制。
1.1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 成年SPF 級(jí)雄性Balb/c 小鼠24只,購(gòu)自中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,體質(zhì)量18~25 g。飼養(yǎng)于蘭州大學(xué)第二醫(yī)院萃英實(shí)驗(yàn)平臺(tái)動(dòng)物房,室溫24~26 ℃,晝夜12 h 交替,可自由進(jìn)食、進(jìn)水。適應(yīng)1 周后進(jìn)入實(shí)驗(yàn)流程。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)已獲得蘭州大學(xué)第二醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(批號(hào):D2022-130)。
1.1.2實(shí)驗(yàn)試劑 富馬酸氯馬斯汀(批號(hào):S1847-04,上海藍(lán)木化工有限公司);MDA ELISA 試劑盒(批號(hào):16203A,上海優(yōu)選生物科技有限公司);SOD ELISA 試劑盒(批號(hào):13963A,上海優(yōu)選生物科技有限公司);GSH-px ELISA 試劑盒(批號(hào):20963A,上海優(yōu)選生物科技有限公司);NF-κB ELISA 試劑盒(批號(hào):15171B,上海優(yōu)選生物科技有限公司);TNF-α ELISA 試劑盒(批號(hào):29312B,上海優(yōu)選生物科技有限公司);TLR4 抗體(批號(hào):66350-1-Ig,Proteintech);二甲基亞砜(批號(hào):302A0327,Solarbio);蘇木素-伊紅染液(Solarbio);多聚甲醛(天津光復(fù))。
1.2.1分組與模型復(fù)制 將24 只Balb/c 小鼠隨機(jī)分為3 組(n=8):假手術(shù)組(Sham 組)、缺血再灌注組(I/R 組)和富馬酸氯馬斯汀預(yù)處理組(I/R+C組)。術(shù)前各組小鼠12 h 禁食,可自由攝水。術(shù)前1 h,I/R+C 組 腹 腔 注 射CLE 5 mg/kg,Sham 組 及I/R 組腹腔注射2% 二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)10 mL/kg。I/R 組及I/R+C 組參考文獻(xiàn)制備小鼠腸I/R 模型[4],缺血40 min,再灌注2 h;Sham 組行相同手術(shù)不做夾閉處理。過(guò)量麻醉致死,胸部用剪刀開(kāi)放“T”形切口,取雙側(cè)肺組織。
1.2.2肺組織病理學(xué)檢測(cè) 取4%甲醛浸泡左肺下葉肺組織,經(jīng)過(guò)脫水、石蠟包埋、切片(5 μm)、蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色,光鏡下觀察肺組織的病理變化。根據(jù)肺間質(zhì)水腫程度、肺泡內(nèi)炎性細(xì)胞浸潤(rùn)及肺泡內(nèi)滲出進(jìn)行肺損傷評(píng)分。標(biāo)準(zhǔn)如下[5]:0 分:正常,肺泡腔面積>85%;1 分:肺泡腔面積75%~85%;2 分:肺泡腔面積50%~75%;3分:肺泡腔面積25%~50%;4 分:肺泡腔面積0%~25%。
1.2.3肺濕干重比 取小鼠左肺上葉,稱重,記錄濕重(W);然后在恒溫80 ℃烤箱中干燥24 h 脫水,稱重,記錄干重(D)。計(jì)算濕重與干重(W/D)之比。
1.2.4肺組織標(biāo)本處理及ELISA 法檢測(cè) 取冷凍肺組織,充分破碎肺組織,低溫離心,收集上清。根據(jù)ELISA 試劑盒說(shuō)明檢測(cè)上清液中MDA、SOD、GSH-px、NF-κB 及TNF-α 水平。
1.2.5肺組織TLR4 蛋白Western blot 檢測(cè) 取冷凍肺組織,充分破碎肺組織,冰浴裂解,低溫離心,取上清液采用BCA 法進(jìn)行蛋白濃度測(cè)定。蛋白樣品經(jīng)煮沸變性,SDS-PAGE 電泳,蛋白轉(zhuǎn)印,5% 脫脂奶粉封閉,PVDF 膜一抗孵育過(guò)夜(TLR4,1∶1 000;β-actin,1∶4 000),二抗孵育1 h,TBST 浸洗。PVDF 膜滴加ECL 顯色液,曝光顯影。應(yīng)用Image J 軟件進(jìn)行蛋白條帶灰度值分析處理。
使用Graphpad prism 9.1.1 統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理。計(jì)量資料以(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),方差齊使用Ordinary ANOVA test,方差不齊使用Brown-Forsythe and Welch ANOVA test,P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
Sham 組肺組織完整,肺泡、肺間質(zhì)結(jié)構(gòu)清晰,未見(jiàn)明顯異常。與Sham 組比較,I/R 組肺損傷評(píng)分及W/D 比值明顯升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),可見(jiàn)肺泡內(nèi)出現(xiàn)滲出,肺泡存在破裂融合,肺間質(zhì)顯著增厚,伴有大量炎性細(xì)胞聚集浸潤(rùn)。與I/R 組比較,I/R+C 組肺損傷評(píng)分及W/D 比值降低,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),可見(jiàn)肺泡結(jié)構(gòu)基本存在,肺間質(zhì)水腫,伴有炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。見(jiàn)圖1及表1。
圖1 各組小鼠肺組織HE 染色(× 200,Bar= 50 μm)Fig 1 Microscopy of lung tissues of mice in various groups by HE(×200)
表1 各組肺損傷評(píng)分及肺濕重/干重比值(n=8,±s)Tab 1 The lung morphology and wet/dry ratio of mice in each group(n=8,±s)
表1 各組肺損傷評(píng)分及肺濕重/干重比值(n=8,±s)Tab 1 The lung morphology and wet/dry ratio of mice in each group(n=8,±s)
注:與Sham 組比較,*P<0.05;與I/R 組比較,#P<0.05。
組別Sham 組I/R 組I/R+C 組W/D 3.58±0.38 4.39±0.17*3.92±0.16*#16.85<0.0001 F P肺損傷評(píng)分0.25±0.45 3.33±0.49*1.50±0.67*#69.81<0.000 1
與Sham 組相比,I/R 組、I/R+C 組小鼠肺組織MDA 表達(dá)量明顯升高,SOD、GSH-px 表達(dá)量降低,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與I/R 組相比,I/R+C 組肺組織MDA 表達(dá)量降低,SOD、GSH-px 表達(dá)量升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表2。
表2 各組小鼠肺組織MDA、SOD 及GSH-px 的表達(dá)(n=8,±s)Tab 2 Expression levels of MDA,SOD and GSH-px in lung tissue of mice in each group(n=8,±s)
表2 各組小鼠肺組織MDA、SOD 及GSH-px 的表達(dá)(n=8,±s)Tab 2 Expression levels of MDA,SOD and GSH-px in lung tissue of mice in each group(n=8,±s)
注:與Sham 組比較,*P<0.05;與I/R 組比較,#P<0.05。
組別MDA (nmol/mL)SOD (ng/mL)GSH-px (pg/mL)Sham 組I/R 組I/R+C 組563.70±35.70 299.10±15.49*354.80±30.29*#234.3<0.000 1 F P 5.37±0.43 11.37±0.74*7.40±0.65*#253.9<0.000 1 28.82±1.11 13.49±1.48*23.75±1.62*#235.8<0.000 1
與Sham 組 相 比,I/R 組、I/R+C 組 小 鼠 肺 內(nèi)NF-κB、TNF-α 含量明顯升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與I/R 組相比,I/R+C 組小鼠肺內(nèi)NF-κB、TNF-α 含量降低,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表3。
表3 各組小鼠肺組織NF-κB、TNF-α 含量(pg/mL,n=8,±s)Tab 3 Expression levels of NF-κB、TNF-α in lung tissue of mice in each group(pg/mL,n=8,±s)
表3 各組小鼠肺組織NF-κB、TNF-α 含量(pg/mL,n=8,±s)Tab 3 Expression levels of NF-κB、TNF-α in lung tissue of mice in each group(pg/mL,n=8,±s)
注:與Sham 組比較,*P<0.05;與I/R 組比較,#P<0.05。
組別Sham 組I/R 組I/R+C 組TNF-α 496.60±46.59 836.10±31.67*556.10±61.23*#188.6<0.000 1 F P NF-κB 592.50±43.33 1 204.00±47.79*725.60±87.76*#311.1<0.000 1
與Sham 組相比,I/R 組小鼠肺組織TLR4 蛋白表達(dá)量明顯升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與I/R 組相比,I/R+C 組肺組織TLR4 蛋白表達(dá)顯著減少,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表4及圖2。
表4 各組小鼠肺組織TLR4 蛋白的水平(n=4,±s)Tab 4 Expression levels of TLR4 in lung tissues of mice(n=4,±s)
表4 各組小鼠肺組織TLR4 蛋白的水平(n=4,±s)Tab 4 Expression levels of TLR4 in lung tissues of mice(n=4,±s)
注:與Sham 組比較,*P<0.05;與I/R 組比較,#P<0.05。
TLR4/β-actin 0.427±0.043 0.618±0.062*0.477±0.048#14.98 0.001 8組別Sham 組I/R 組I/R+C 組FP
圖2 各組小鼠肺組織TLR4 的表達(dá)Fig 2 Expression levels of TLR4 in lung tissues of mice
腸I/R 損傷是手術(shù)期間最常見(jiàn)的組織和器官損傷之一,如腹主動(dòng)脈瘤手術(shù)、心肺搭橋手術(shù)和腸移植手術(shù)[6]。腸I/R 損傷可產(chǎn)生活性氧(reactive oxygen species,ROS)、細(xì)胞因子和趨化因子,進(jìn)而激活免疫系統(tǒng),導(dǎo)致遠(yuǎn)端器官功能障礙,特別是在肺部,引發(fā)ALI[7]。
肺損傷中抗氧化系統(tǒng)和過(guò)量自由基產(chǎn)生之間的不平衡,是導(dǎo)致生物膜脂質(zhì)過(guò)氧化和嚴(yán)重細(xì)胞損傷的重要原因[8]。MDA 作為ROS 引起的脂質(zhì)過(guò)氧化的主要終產(chǎn)物之一,其水平升高提示機(jī)體的氧化應(yīng)激增強(qiáng);SOD 及GSH-px 是機(jī)體抗氧化酶系統(tǒng)重要組成,活性升高表示機(jī)體抗氧化能力的提升;兩者之間的平衡關(guān)系可以間接反映機(jī)體氧化應(yīng)激的程度[9]。研究發(fā)現(xiàn),肺組織中MDA、SOD 等因子參與了ALI 的發(fā)生及發(fā)展[10]。過(guò)度氧化應(yīng)激反應(yīng)是腸I/R 后的主要病理過(guò)程之一,腸I/R 局部氧自由基過(guò)度增加,隨血液循環(huán)播散至全身,激發(fā)鏈?zhǔn)街|(zhì)過(guò)氧化反應(yīng),作用于Ⅱ型肺泡上皮細(xì)胞,最終導(dǎo)致ALI[5]。研究發(fā)現(xiàn),小鼠腸I/R 模型中,肺水腫程度增加,肺損傷加重,肺內(nèi)MDA 增加,GSH 減少[5]。本實(shí)驗(yàn)建立小鼠腸I/R 模型發(fā)現(xiàn),小鼠肺組織結(jié)構(gòu)明顯破壞,W/D 比值升高,肺泡內(nèi)滲出增加,肺間質(zhì)增厚,并伴有大量炎性細(xì)胞聚集,肺內(nèi)MDA 表達(dá)明顯增加,SOD 及GSH-px 明顯降低,提示小鼠腸I/R后發(fā)生ALI 以及氧化應(yīng)激反應(yīng)。
CLE 為H1R 拮 抗 劑,H1R 拮 抗 劑 可 減 輕 氧 化 應(yīng)激反應(yīng),抑制線粒體ROS 的產(chǎn)生[11]。據(jù)報(bào)道,肥大細(xì)胞(mast cell ,MC)的激活加劇了腸I/R 誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激和ALI,MC 激活可促進(jìn)細(xì)胞內(nèi)活性氧自由基產(chǎn)生,促使SOD 活性降低,MDA 水平增高[12]。而在器官缺血再灌注模型中CLE 可通過(guò)下調(diào)H1R抑制MC 活化脫顆粒作用得到了證實(shí)[13]。本研究發(fā)現(xiàn)CLE 干預(yù)后,肺組織病理?yè)p傷減輕,W/D 比值降低,抑制了小鼠腸I/R 后肺組織MDA 的表達(dá),并增加了SOD、GSH-px 的表達(dá),提示CLE 可能通過(guò)抑制氧化應(yīng)激減輕ALI。
炎癥反應(yīng)是腸I/R 導(dǎo)致ALI 的另一重要原因。Toll 樣受體(toll-like receptors,TLRs)是模式識(shí)別受體,主要參與機(jī)體先天免疫過(guò)程。TLR4 是TLRs家族的成員,可以識(shí)別各種配體,并激活多種信號(hào)通路,包括MAPK 和NF-κB 通路蛋白,在調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)中發(fā)揮重要作用[14]。研究表明TLR4/NF-κB/TNF-α 信號(hào)傳導(dǎo)是調(diào)控腸I/R 誘導(dǎo)ALI 的關(guān)鍵途徑[15]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示,腸I/R 后肺組織TLR4 蛋白表達(dá)明顯升高,肺內(nèi)NF-κB、TNF-α 含量上調(diào),提示TLR4/NF-κB/TNF-α 炎性通路在ALI 中發(fā)揮重要作用。據(jù)報(bào)道,TLR4 基因敲除小鼠腸I/R 處理后,可減少肺內(nèi)炎性細(xì)胞的浸潤(rùn),從而減輕肺損傷,并且下調(diào)肺內(nèi)NF-κB 及血清TNF-α 水平[16]。最新研究表明,CLE 通過(guò)抑制TLR4 蛋白的表達(dá),減輕肺[17]、心?。?8]缺血再灌注后的炎癥反應(yīng),減輕組織損傷。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn)CLE 抑制了腸I/R 后肺組織TLR4 蛋白的表達(dá)并下調(diào)肺內(nèi)NF-κB 及TNF-α 水平,提示CLE 可能通過(guò)抑制TLR4/NF-κB/TNF-α通路,減輕小鼠腸I/R 致ALI的炎癥反應(yīng)。
本研究仍存在局限性,首先CLE 為H1R 拮抗劑,在本研究中未涉及H1R 在ALI中的作用研究,在后續(xù)研究中可選擇組胺受體基因沉默或敲除技術(shù)進(jìn)行鑒別研究。其次,本研究探討了氧化應(yīng)激及TLR4/NF-κB/TNF-α 信 號(hào) 通 路 在 腸I/R 后 致ALI作用,但其上游信號(hào)仍需進(jìn)一步研究。 綜上所述,CLE 可減輕小鼠腸I/R 后ALI,其機(jī)制可能與抑制肺組織氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)有關(guān)。
作者貢獻(xiàn)度說(shuō)明:
劉洋:全程參與動(dòng)物飼養(yǎng)、實(shí)驗(yàn)操作并撰寫(xiě)論文;劉婕婷:指導(dǎo)實(shí)驗(yàn)操作及數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析;王迎斌:指導(dǎo)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及論文修改。
所有作者聲明不存在利益沖突。