劉皎皎,李粉萍,楊躍青,何瑾瑜,曹雪艷,薛敬東,葉苗青
作者單位:陜西省中醫(yī)醫(yī)院肝病科,陜西 西安 710003
肝癌是我國常見惡性腫瘤之一,近年來其發(fā)病率呈逐漸升高趨勢,且在我國腫瘤致死原因中位居第二[1-2]。目前臨床常用的抗腫瘤藥物多是以傳統(tǒng)的核酸和蛋白質(zhì)為靶點的細胞毒性藥物,具有選擇性差、毒性作用強、作用機制單一、易產(chǎn)生耐藥性等特點,因此在中藥中尋找毒副作用小、療效顯著的抗腫瘤藥物已然是國內(nèi)外學(xué)者研究的熱點[3-4]。白花蛇舌草屬于茜草科耳草屬植物,全草入藥,研究表明,白花蛇舌草提取物(hedyotis diffusa extract,HDE)對肝癌HepG2 細胞有較好的生長抑制及凋亡誘導(dǎo)作用[5]。絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)通路與多種腫瘤(如肝癌)發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),其家族成員JNK、p38 與細胞分化、凋亡等有關(guān)[6]。然而,有關(guān)HDE 對肝癌細胞JNK/p38MARK通路的影響鮮有報道,因此本研究自2019 年8 月至2020 年4 月通過分析不同濃度HDE對肝癌細胞JNK/p38MARK 通路的影響,探討HDE抗癌的可能作用機制。
1.1 材料 肝癌QGY 細胞株(購買于中國科學(xué)院上海生物科學(xué)研究所);白花蛇舌草提取物(HDE)(10∶1)購自陜西昊辰生物科技有限公司;全反式維甲 酸(all-transretinoic acid,AT-RA)( 批 號H20093943,純度99.99%)購自成都恒瑞醫(yī)藥公司,二甲基亞砜(DMSO,批號Q2258)購自美國Sigma 公司,RPMI-1640培養(yǎng)基(批號NBC1255)購自美國Hyclone 公司,10%胎牛血清(批號42G5642)購自美國Gibco 公司,3-2(4,5-二甲基噻唑-2)-2-四甲基偶氮噻唑藍(MTT,批號M5176)購自美國Sigma 公司,胰蛋白酶(批號J1510032)購自廣州Ruka公司生產(chǎn);鼠抗人增殖細胞核抗原(PCNA)、凋亡相關(guān)蛋白B淋巴細胞瘤基因-2(Bcl-2)、Bcl-2 相關(guān)X 蛋白基因(Bax)、半胱氨酰天冬氨酸特異性蛋白酶3(caspase-3)、p-JNK、p-p38、β 肌動蛋白(β-actin)一抗及羊抗鼠二抗購自賽默飛世爾科技有限公司;AnnexinV-FITC/PI細胞凋亡雙染試劑盒(貨號HUDY03)購自上海碧云天公司。二氧化碳培養(yǎng)箱購自日本Sanyo 公司,Hochest33258 購自美國Sigma-Aldrich 公司;酶標儀(型號HBS-1096C)、凝膠成像系統(tǒng)(型號Gel Doc1000)購自美國Bio-Rad 公司;光學(xué)顯微鏡(型號WMSC-1037)購自上海無陌光學(xué)廠。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養(yǎng) 復(fù)蘇肝癌QGY 細胞,培養(yǎng)于含15%滅活胎牛血清、100 U/mL 青霉素、100 g/L 鏈霉素的RPMI-1640 培養(yǎng)基中,防止細菌污染,培養(yǎng)于37 ℃飽和濕度、5%二氧化碳、20%氧培養(yǎng)箱中,每2~3 天更換一次培養(yǎng)液,無菌操作,待細胞生長良好,且達對數(shù)生長期時進行后續(xù)實驗。
1.2.2 藥物處理及分組 取“1.2.1”中對數(shù)生長期的肝癌QGY 細胞,以密度為1×104個/孔接種于接種在96孔板中,分為對照組、陽性對照組、低中高HDE組。(1)對照組:RPMI-1640 培養(yǎng)基組;(2)陽性對照組:AT-RA(5μmol/L);(3)HDE 低、中、高劑量組:分別給予20、40、80 g/L HDE[7]。繼續(xù)培養(yǎng)48 h。
1.2.3 MTT 法檢測HDE 對QGY 細胞增殖能力的影響 取“1.2.2”各組QGY 細胞接種于96 孔板進行培養(yǎng),每個孔細胞密度為1×104個,每組設(shè)6個復(fù)孔,分別于培養(yǎng)12、24、48 h 后向各孔加入MTT 20 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h 后,棄去上清,加入150 μL DMSO,振蕩10 min,使藍紫色結(jié)晶充分溶解。全自動酶標儀測定570 nm 波長處吸光度A 值。細胞增殖抑制率=[1-藥物組A值/對照組A值]×100%。
1.2.4 Hoechest33258 熒光染色法檢測細胞凋亡形態(tài) 收集“1.2.2”中各組細胞,按照Hoechest33258熒光染色法說明進行操作,置于熒光顯微鏡下觀察48 h時的細胞凋亡形態(tài)并拍照。
1.2.5 流式AnnexinV-FITC/PI 雙染法檢測各組
QGY 細胞凋亡情況 取“1.2.2”中各組細胞,嚴格按照AnnexinV-FITC/PI 細胞凋亡雙染試劑盒說明書,胰酶消化細胞后生理鹽水洗滌后制成1×109個/升單細胞懸液,取其中100 μL 后加入5 μL AnnexinVFITC 與5μL PI 混合均勻,室溫避光孵育15 min,上流式細胞儀進行檢測培養(yǎng)48 h 各組QGY 細胞凋亡情況,并通過Modfir LT 軟件分析試驗結(jié)果。每組設(shè)置三個重復(fù)。
1.2.6 蛋白質(zhì)印跡法(Western blotting)檢測增殖、凋亡及JNK/p38MARK 通路相關(guān)蛋白表達變化 取“1.2.2”各組細胞,每組均設(shè)3個重復(fù),PBS洗滌2遍,冰上加裂解液,裂解30 min,離心取上清,通過蛋白提取試劑盒提取細胞總蛋白,BCA 試劑盒測定細胞總蛋白濃度,經(jīng)電泳、轉(zhuǎn)模、封閉后,添加(1∶500)鼠抗人PCNA、Bcl-2、caspase-3、JNK、p-JNK、p-p38、p38一抗,以β-actin為內(nèi)參,4 ℃過夜后,TBST洗膜3次,添加羊抗鼠二抗(1∶5 000)稀釋液孵育2 h,TBST 洗膜,ECL化學(xué)發(fā)光法顯色后,于凝膠成像儀中觀察蛋白表達并保存圖像。
1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 運用SPSS 20.0 統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行分析,計量資料以± s 表示,多組數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析,進行方差齊性檢驗,組間有差異采用LSD-t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 HDE 對肝癌QGY 細胞增殖的影響 與對照組比較,24 h 時HDE 組、陽性對照組QGY 細胞增殖增殖抑制率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),48、72 h時20、40、80 g/L HDE 組、陽性對照組QGY 細胞增殖抑制率均顯著升高(P<0.05);與陽性對照組比較,80 g/L HDE組QGY細胞增殖抑制率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。隨著培養(yǎng)時間的延長,20、40、80 g/L HDE組、陽性對照組QGY細胞增殖抑制率顯著升高(P<0.05)。見表1。
表1 QGY細胞增殖抑制率變化/(%,±s)
表1 QGY細胞增殖抑制率變化/(%,±s)
注:①與對照組比較,P<0.05。②與HDE(20 g/L)組比較,P<0.05。③與HDE(40 g/L)組比較,P<0.05。④與24 h 比較,P<0.05。⑤與48 h比較,P<0.05。
組別對照組陽性對照組HDE組6 20 g/L 40 g/L 80 g/L F值P值重復(fù)次數(shù)66 12 h 12.23±3.10 14.45±3.62 24 h48 h 16.56±3.15④19.27±3.33 60.43±17.09①②③④⑤64.63±17.15①②③④⑤36.56±10.03①④⑤50.59±13.87①②④⑤63.61±16.99①②③⑤12.50 0.000 12.36±3.13 13.15±3.17 13.78±3.33 0.50 0.739 33.37±11.36①④47.57±13.62①②④59.37±16.95①②③④11.48 0.000
2.2 細胞形態(tài)學(xué)觀察 對照組QGY 細胞呈淺藍色熒光,顏色分布均勻。經(jīng)不同濃度的HDE 處理后的QGY 細胞72 h 后均呈現(xiàn)出明顯的凋亡特征,隨著濃度的增加,細胞數(shù)量逐漸減少,呈現(xiàn)濃縮致密的固縮形態(tài)或顆粒狀態(tài)的凋亡細胞數(shù)增加,細胞核染色質(zhì)聚集,斷裂成塊狀,并伴有明顯的細胞碎片形成。見圖1。
2.3 不同濃度HDE 對肝癌QGY 細胞凋亡率的影響 與對照組(4.65±0.91)%相比,不同濃度HDE 組細胞凋亡率顯著升高(P<0.05),且隨HDE 濃度(20、40、80 g/L)升高細胞凋亡率逐漸升高[(15.83±3.11)%、(17.27±3.25)%、(20.69±4.03)%,P<0.05];與陽性對照組(20.73±4.05)%相比,HDE 為80 g/L時,細胞凋亡率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。
2.4 不同濃度HDE 處理對肝癌QGY 細胞增殖、凋亡相關(guān)蛋白表達影響 與對照組相比,HDE 組PCNA、Bcl-2 蛋白表達降低(P<0.05),Bax、caspase-3 蛋白表達升高(P<0.05),且呈劑量依賴性;與陽性對照組相比,HDE 為80 g/L 時,PCNA、Bcl-2、Bax、caspase-3 蛋白表達差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖2,表2。
表2 不同濃度HDE處理對肝癌QGY細胞增殖、凋亡相關(guān)蛋白表達影響/±s
表2 不同濃度HDE處理對肝癌QGY細胞增殖、凋亡相關(guān)蛋白表達影響/±s
注:PCNA為增殖細胞核抗原,Bax為Bcl-2相關(guān)X蛋白基因,caspase-3為半胱氨酰天冬氨酸特異性蛋白酶3,Bcl-2為B淋巴細胞瘤基因-2。①與對照組比較,P<0.05。②與HDE(20 g/L)組比較,P<0.05。③與HDE(40 g/L)組比較,P<0.05。
組別對照組陽性對照組HDE組20 g/L 40 g/L 80 g/L值F P值重復(fù)次數(shù)666 PCNA 1.08±0.23 0.39±0.07①②③Bax 0.19±0.04 0.41±0.08①②③caspase-3 0.22±0.05 0.90±0.15①②③Bcl-2 0.93±0.18 0.21±0.03①②③0.87±0.17①0.59±0.11①②0.23±0.04①②③45.96<0.001 0.96±0.19①0.85±0.17①②0.46±0.09①②③21.58<0.001 0.22±0.05①0.28±0.06①②0.39±0.08①②③14.30<0.001 0.35±0.07①0.55±0.11①②0.89±0.15①②③44.41<0.001
圖2 不同濃度HDE處理對肝癌QGY細胞增殖、凋亡相關(guān)蛋白表達
2.5 不同濃度HDE處理對JNK/p38MARK通路相關(guān)蛋白表達影響 與對照組相比,HDE 組p-JNK、pp38 蛋白表達水平均顯著降低(P<0.05),且呈劑量依賴;與陽性對照組相比,HDE 濃度為80 g/L 時,p-JNK、p-p38 蛋白表達差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖3、表3。
表3 不同濃度HDE處理對JNK/p38MARK通路相關(guān)蛋白表達影響
圖3 不同濃度HDE處理對JNK/p38MARK通路相關(guān)蛋白表達影響
我國是肝癌高發(fā)國家之一,肝癌死亡率占我國全部惡性腫瘤死亡率的19%左右[8]。肝癌發(fā)病確切分子機制尚不清楚,多認為是多因素(如多基因突變、多條細胞信號傳導(dǎo)通路、腫瘤新生血管生成異常等)、多環(huán)節(jié)過程[9-10]。目前,分子靶向治療肝癌取得了一定成效,但化學(xué)抗腫瘤藥物研發(fā)成本昂貴且有較大的毒副作用[11-12],因此從天然產(chǎn)物及中草藥中挖掘低毒、高效抗腫瘤藥物意義重大。
白花蛇舌草是茜草科植物,具有清熱解毒、利尿消腫等作用,研究表明其對多種腫瘤細胞株具有誘導(dǎo)凋亡作用[13]。本研究發(fā)現(xiàn)當不同濃度HDE 作用于肝癌細胞株QGY,處12 h 時,細胞增殖抑制率與對照組差異無統(tǒng)計學(xué)意義,可能此時藥物還未發(fā)生作用,當處理24 h、48 h 時,細胞增殖抑制率隨濃度升高而增高,提示HDE 可抑制肝癌QGY 細胞增殖,且隨HDE 濃度的增加增殖抑制率升高。細胞凋亡是一個錯綜復(fù)雜過程,有較多蛋白、基因參與細胞凋亡啟動及執(zhí)行過程,在腫瘤進展中發(fā)揮重要作用[14]。本研究通過Hoechest33258 熒光染色法觀察得到,各濃度HDE 處理細胞48 h后均呈現(xiàn)出明顯的凋亡特征,隨著濃度增加,細胞數(shù)量逐漸減少,呈現(xiàn)濃縮致密的固縮形態(tài)或顆粒狀態(tài)的凋亡細胞數(shù)增加,細胞核染色質(zhì)聚集,斷裂成塊狀,并伴有明顯的細胞碎片形成。雙染試驗中不同濃度HDE 處理后QGY 細胞凋亡率均顯著升高,且呈濃度依賴性,80 g/L HDE對QGY細胞凋亡率的影響與陽性對照組相當,提示HDE 可誘導(dǎo)HDE 細胞凋亡。PCNA 是一種酸性核蛋白,對調(diào)節(jié)DNA 的復(fù)制意義重大,其與細胞增殖密切相關(guān),表達水平可在腫瘤癌變組織中顯著上升[15]。Bcl-2 是一種原癌基因,能抑制細胞凋亡[16]。Bax 是Bcl-2 家族中最主要的促進凋亡蛋白[17]。caspase3 是凋亡途徑關(guān)鍵執(zhí)行者[18]。本研究進一步探究顯示,HDE 處理組PCNA、Bcl-2 蛋白表達降低,Bax、caspase-3 蛋白表達升高,且呈劑量依賴性,提示HDE 可抑制肝癌QGY 細胞增殖、誘導(dǎo)凋亡。
MAPK 通路是一種重要的腫瘤信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,通常由JNK、p38 通路和細胞外信號調(diào)節(jié)激酶等通路組成[19-20]。賈蕾蕾、王愛玲[21]研究結(jié)果顯示,棉子酚可能通過MARK 信號通路中ERK、p38 的激活,緩解再灌注心肌組織氧化應(yīng)激損傷及凋亡損傷。本研究HDE 處理后,p-JNK、p-p38 蛋白表達水平均顯著降低,且隨HDE 濃度的增加而降低,猜測HDE 能顯著抑制JNK、p38 蛋白磷酸化,抑制JNK、p38 信號通路激活,進而發(fā)揮抑制QGY 細胞細胞增殖、促進QGY細胞細胞凋亡的抗腫瘤作用。
綜上所述,HDE能抑制人肝癌細胞株QGY細胞增殖,促進QGY 細胞凋亡,可能是通抑制JNK、p38MAPK 信號通路活化實現(xiàn)的。但本研究也存在一定不足,肝癌是多途徑過程,抑制MAPK通路激活可能僅為其中一條途徑,對HDE 抑制QGY 細胞增殖,促進凋亡的潛在機制尚有待進一步探索。
(本文圖1見插圖8-1)