武英茹 李媛媛 李寧 郭丁丁 郭福貴 蘭子君 趙琳儒 倪艷

關(guān)鍵詞白子菜葉;干燥方式;采收時(shí)間;水溶性浸出物;總黃酮;多糖;紫云英苷;含量測定

白子菜Gynura divaricata（L.）DC.為菊科菊三七屬多年生草本植物，又名雞菜、白東楓、大肥牛、白背三七、白子草，主要分布于我國浙江、廣東、廣西、四川、福建及云南等地。其葉味咸、微辛，性寒[1]，于夏、秋兩季采收，曬干或晾干?！吨兴幋筠o典（上冊）》記載，白子菜能清熱、舒筋、止血、祛瘀，可治百日咳、風(fēng)濕痛、骨折、創(chuàng)傷出血、癰腫瘡癤等[1]?，F(xiàn)代研究表明，白子菜中主要含有黃酮及黃酮苷類、多糖類、生物堿類、揮發(fā)油等化學(xué)成分[2]，其中黃酮類和多糖類成分具有降血糖、降尿酸、降血脂、抗氧化等藥理作用，是其主要活性成分[3-4]。白子菜現(xiàn)被《福建省中藥材標(biāo)準(zhǔn)（2006 年版）》收錄，但其標(biāo)準(zhǔn)僅有白子菜水分、灰分及總黃酮含量測定項(xiàng)[5]，未見白子菜產(chǎn)地加工的相關(guān)描述。產(chǎn)地加工是中藥材生產(chǎn)過程中不可缺少的重要環(huán)節(jié)，可以保障中藥材的品質(zhì)[6]，其相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)的缺失可能會(huì)造成生產(chǎn)過程中有效成分的損失，從而影響藥材質(zhì)量和療效。

新鮮白子菜葉中水分含量較高（80%～90%），采摘后若不及時(shí)干燥或干燥方法不當(dāng)，則易發(fā)生變色或腐爛，從而影響其藥用價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值;此外，對(duì)于人工栽培的白子菜，不同的采收時(shí)間也可能會(huì)影響其質(zhì)量[7-8]。因此，科學(xué)規(guī)范的采收應(yīng)充分考慮藥材中有效成分的積累及藥材的生長規(guī)律。目前，關(guān)于白子菜采收時(shí)間和干燥方式的研究較少，雖有學(xué)者以總黃酮含量為指標(biāo)對(duì)白子菜的采收時(shí)間進(jìn)行了探討[7]，但除含有黃酮類成分外，多糖類成分也是白子菜的主要活性成分[9]，加之本課題組前期從白子菜50%乙醇提取物中分離得到了紫云英苷，并證實(shí)了該成分具有調(diào)節(jié)血糖、增強(qiáng)免疫力、抗炎、抗氧化等作用[10-12]，故僅以總黃酮為指標(biāo)進(jìn)行研究尚不夠全面。基于此，本研究采用2020 年版《中國藥典》（四部）通則“熱浸法”測定白子菜葉中的水溶性浸出物，采用紫外-可見分光光度法測定其中總黃酮及多糖的含量，采用高效液相色譜（high performance liquid chromatography，HPLC）法測定其中紫云英苷的含量，并以這些主要活性成分含量為指標(biāo)，篩選白子菜葉的最優(yōu)干燥方式及采收時(shí)間，旨在為規(guī)范其產(chǎn)地加工及控制其質(zhì)量提供依據(jù)。

1 材料

1.1 主要儀器

本研究所用主要儀器有UltiMate 3000 型HPLC 儀（美國Thermo Fisher Scientific 公司），1100 型HPLC 儀（美國Agilent 公司），SE402F 型十萬分之一電子分析天平[奧豪斯儀器（上海）有限公司]，F(xiàn)W-100 型高速萬能粉碎機(jī)、HH-1 型電熱恒溫水浴鍋（北京科偉永興儀器有限公司），DZF-6050 型真空干燥箱（南京沃環(huán)科技實(shí)業(yè)有限公司），U-1901 型雙光束紫外-可見分光光度計(jì)（北京普析通用儀器有限責(zé)任公司），LC-300B 型數(shù)控超聲波清洗儀（ 山東濟(jì)寧魯超超聲設(shè)備有限公司），EG720KG4-NA 型微波爐（廣東美的微波電器制造有限公司），LGJ-S20 型冷凍干燥機(jī)（北京四環(huán)起航科技有限公司）等。

1.2 主要藥品與試劑

D-無水葡萄糖對(duì)照品（批號(hào)110833-201506，純度≥99.5%）購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;蘆丁對(duì)照品（批號(hào)100080-202012，純度≥91.6%）購自中國食品藥品檢定研究院;紫云英苷對(duì)照品（批號(hào)PS011379，純度≥98.0%）購自成都普思生物科技股份有限公司;硫酸、苯酚、硝酸鋁、氫氧化鈉、乙腈均為色譜純，無水乙醇、磷酸均為分析純，水為超純水。

8 批白子菜葉（高15～20 cm的地上部分，取白子菜葉）分別于不同時(shí)間采自山西省運(yùn)城市稷山縣清河鎮(zhèn)稷王農(nóng)業(yè)示范園，經(jīng)山西省中醫(yī)藥研究院倪艷教授鑒定均為菊科菊三七屬多年生草本植物白子菜G. divaricata（L.）DC.的葉。8批白子菜樣品的來源信息見表1。

2 方法與結(jié)果

2.1 不同干燥方式樣品的制備

取白子菜葉樣品（編號(hào)S1），共7 份，每份50 g，洗凈、攤晾8 h 后，分別經(jīng)陰干、曬干、烘箱干燥（60、70、80 ℃）、微波干燥及冷凍干燥，均干燥至葉質(zhì)硬而脆且質(zhì)量恒定。將干燥后的樣品粉碎，過40 目篩，備用。不同干燥方式及干燥條件見表2。

2.2 不同采收時(shí)間樣品的制備

取8 批白子菜葉樣品，每份50 g，洗凈、攤晾8 h 后，于60 ℃干燥至質(zhì)量恒定，將干燥后的樣品粉碎，過40 目篩，備用。

2.3 水溶性浸出物的測定

參考2020 年版《中國藥典》（四部）通則“2201 浸出物測定法”項(xiàng)下“熱浸法”測定白子菜葉中的水溶性浸出物[13]：取樣品粉末（過50 目篩）2 g，精密稱定，置于250mL錐形瓶中，加水50 mL，密塞，稱定質(zhì)量，靜置1 h 后，連接冷凝回流管，加熱至沸騰，并保持微沸1 h 后放冷，再次稱定質(zhì)量，用水補(bǔ)足減失的質(zhì)量，搖勻，濾過，精密量取濾液25 mL，置于干燥至恒定質(zhì)量的蒸發(fā)皿中，水浴蒸干，于105 ℃干燥3 h 后，置于干燥器中冷卻30 min，迅速精密稱定質(zhì)量，并按下式計(jì)算水溶性浸出物含量（%）：水溶性浸出物含量（%）=[（m2-m0）×50]/（25×m1）×100%（式中，m0為蒸發(fā)皿質(zhì)量，m1為供試品質(zhì)量，m2為干燥后蒸發(fā)皿+供試品質(zhì)量）。每個(gè)樣品平行測定3次。

2.4 總黃酮含量的測定

采用紫外-可見分光光度法測定白子菜葉中總黃酮（以蘆丁計(jì)）的含量。

2.4.1 線性關(guān)系考察精密稱取蘆丁對(duì)照品10 mg，加80%乙醇，超聲（功率300 W，頻率25 kHz，下同）溶解并定容至10 mL，搖勻，即得蘆丁質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL的對(duì)照品溶液。分別吸取上述對(duì)照品溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL，置于25 mL量瓶中，加水至6 mL，加5%亞硝酸鈉溶液1 mL，搖勻，靜置6 min，加10%硝酸鋁溶液1 mL，搖勻，靜置6 min，加4%氫氧化鈉溶液10 mL，以80%乙醇定容，靜置15 min。以80%乙醇為空白對(duì)照，使用紫外-可見分光光度計(jì)于510 nm波長處測定吸光度[14]。以蘆丁對(duì)照品的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)（X）、吸光度為縱坐標(biāo)（Y）進(jìn)行線性回歸，得蘆丁的回歸方程為Y=0.478 5X-0.008 5（R 2=0.999 9），表明蘆丁檢測質(zhì)量濃度的線性范圍為0.008～0.048 mg/mL。

2.4.2 方法學(xué)考察（1）取上述蘆丁對(duì)照品溶液0.5mL，按“2.4.1”項(xiàng)下方法顯色后于510 nm 波長處連續(xù)測定吸光度6 次。結(jié)果顯示，蘆丁吸光度的RSD為0.02%（n=6），表明儀器精密度良好。（2）取白子菜葉（編號(hào)S1）粉末0.5 g，置于具塞錐形瓶中，加石油醚150 mL，超聲30 min，濾過，揮干石油醚，殘?jiān)?0%乙醇45 mL，超聲30 min，濾過，濾液用80%乙醇定容至50 mL，即得供試品溶液。取上述供試品溶液5.0 mL，置于25 mL 量瓶中，按“2.4.1”項(xiàng)下方法顯色后，分別在室溫下放置0、10、20、30、40、50、60 min 時(shí)于510 nm 波長處測定吸光度。結(jié)果顯示，蘆丁吸光度的RSD 為2.41%（n=7），表明供試品溶液于室溫下放置60 min 內(nèi)穩(wěn)定性良好。（3）取上述供試品溶液（編號(hào)S1）5.0 mL，共6 份，按“2.4.1”項(xiàng)下方法顯色后于510 nm波長處測定吸光度并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算樣品含量。結(jié)果顯示，蘆丁含量的RSD為2.83%（n=6），表明方法重復(fù)性良好。（4）精密稱取白子菜葉（編號(hào)S1）0.5 g，共9 份，分別精密加入一定量的蘆丁對(duì)照品溶液，按上述方法制備供試品溶液，再按“2.4.1”項(xiàng)下方法顯色后于510 nm波長處測定吸光度并計(jì)算加樣回收率，結(jié)果顯示，蘆丁的平均加樣回收率為103.60%（RSD=2.56%，n=9）。

2.4.3 總黃酮含量測定精密稱取待測白子菜葉粉末0.5 g，按“2.4.2（2）”項(xiàng)下方法制備供試品溶液，再按“2.4.1”項(xiàng)下方法顯色后于510 nm波長處測定吸光度并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算樣品含量。每個(gè)樣品平行測定3 次。

2.5 多糖含量的測定

采用紫外-可見分光光度法測定白子菜葉中多糖（以D-無水葡萄糖計(jì)）的含量。

2.5.1 線性關(guān)系考察精密稱取D-無水葡萄糖對(duì)照品10 mg，加80%乙醇，超聲溶解并定容至100 mL，搖勻，即得D-無水葡萄糖質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL 的對(duì)照品溶液。分別吸取上述對(duì)照品溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL，置于10 mL試管中，加水至2 mL，加5%苯酚溶液1 mL，搖勻，迅速精密加入濃硫酸5 mL，搖勻，避光靜置15min，取出。以水為空白對(duì)照，使用紫外-可見分光光度計(jì)于490 nm波長處測定吸光度[14]。以D-無水葡萄糖對(duì)照品的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)（X）、吸光度為縱坐標(biāo)（Y）進(jìn)行線性回歸，得D-無水葡萄糖的回歸方程為Y=11.458X+0.003（R 2=0.999 6），表明D-無水葡萄糖檢測質(zhì)量濃度的線性范圍為0.01～0.05 mg/mL。

2.5.2 方法學(xué)考察（1）取上述D-無水葡萄糖對(duì)照品溶液0.4 mL，按“2.5.1”項(xiàng)下方法顯色后于490 nm波長處連續(xù)測定吸光度6 次。結(jié)果顯示，D-無水葡萄糖吸光度的RSD為0.02%（n=6），表明儀器精密度良好。（2）取白子菜葉（編號(hào)S1）粉末0.5 g，置于錐形瓶中，加80%乙醇100 mL，加熱回流1 h，趁熱濾過，濾渣和濾器經(jīng)80%乙醇30 mL分3 次洗滌后移至燒瓶中，加水150 mL，加熱回流2 h，趁熱濾過，用少量熱水洗滌濾器，合并濾液及洗液，放冷，用水定容至250 mL，即得供試品溶液。取上述供試品溶液0.5 mL，置于具塞試管中，按“2.5.1”項(xiàng)下方法顯色后，分別在室溫下放置0、10、20、30、40、50、60min 時(shí)于490 nm波長處測定吸光度。結(jié)果顯示，D-無水葡萄糖吸光度的RSD為2.98%（n=7），表明供試品溶液于室溫下放置60 min 內(nèi)穩(wěn)定性良好。（3）取上述供試品溶液（編號(hào)S1）0.5 mL，共6 份，按“2.5.1”項(xiàng)下方法顯色后于490 nm波長處測定吸光度并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算樣品含量。結(jié)果顯示，D-無水葡萄糖含量的RSD為3.59%（n=6），表明方法重復(fù)性良好。（4）精密稱取白子菜葉（編號(hào)S1）0.5 g，共9 份，分別精密加入一定量的D-無水葡萄糖對(duì)照品溶液，按上述方法制備供試品溶液，再按“2.5.1”項(xiàng)下方法顯色后于490 nm波長處測定吸光度并計(jì)算加樣回收率。結(jié)果顯示，D-無水葡萄糖的平均加樣回收率為98.57%（RSD=1.66%，n=9）。

2.5.3 多糖含量測定精密稱取待測白子菜葉粉末0.5g，按“2.5.2（2）”項(xiàng)下方法制備供試品溶液，再按“2.5.1”項(xiàng)下方法顯色后于490 nm波長處測定吸光度并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算樣品含量。每個(gè)樣品平行測定3次。

2.6 紫云英苷含量的測定

采用HPLC法測定白子菜葉中紫云英苷的含量。

2.6.1 色譜條件以Diamonsil C18（2）（4.6 mm× 250mm，5 μm）為色譜柱，以乙腈-0.1%磷酸溶液為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫（0～6.0 min，10%A→17%A;6.0～7.5 min，17%A→27%A;7.5～11.0 min，27%A→90%A;11.0～15.0 min，90%A→17%A）;流速為1.0 mL/min;檢測波長為348 nm;柱溫為35 ℃;進(jìn)樣量為10 μL。

2.6.2 溶液的制備（1）精密稱取紫云英苷對(duì)照品5mg，置于5 mL量瓶中，加甲醇溶解并定容，搖勻，精密移取0.8 mL，用甲醇定容至10 mL，制成紫云英苷質(zhì)量濃度為0.08 mg/mL 的對(duì)照品溶液。（2）取白子菜葉粉末1.0g，精密稱定，置于錐形瓶中，加50%乙醇20 mL，稱定質(zhì)量，超聲提取30 min，冷卻至室溫，再次稱定質(zhì)量，用50%乙醇補(bǔ)足減失的質(zhì)量，經(jīng)0.45 μm濾膜濾過，取濾液，即得供試品溶液。（3）以50%乙醇為空白對(duì)照溶液。

2.6.3 系統(tǒng)適用性試驗(yàn)精密吸取上述對(duì)照品溶液、供試品溶液和空白對(duì)照溶液，按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定，記錄色譜圖，詳見圖1。由圖1 可知，紫云英苷的分離度大于1.5，理論板數(shù)按紫云英苷峰計(jì)均大于2 500，空白對(duì)照溶液對(duì)測定無干擾。

2.6.4 線性關(guān)系考察精密吸取“2.6.2（1）”項(xiàng)下對(duì)照品溶液1、2、5、10、15、20 μL，按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定，記錄峰面積。以紫云英苷對(duì)照品的進(jìn)樣量為橫坐標(biāo)（X）、峰面積為縱坐標(biāo)（Y）進(jìn)行線性回歸，得紫云英苷的回歸方程為Y=35.266X-0.087（R2=0.999 8），表明紫云英苷檢測進(jìn)樣量的線性范圍為0.08～1.60 μg。

2.6.5 方法學(xué)考察（1）精密吸取“2.6.2（1）”項(xiàng)下對(duì)照品溶液10 μL，按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣測定6次，記錄峰面積。結(jié)果顯示，紫云英苷峰面積的RSD為0.59%（n=6），表明儀器精密度良好。（2）精密吸取“2.6.2（2）”項(xiàng)下供試品溶液（編號(hào)S1），分別于室溫下放置0、2、4、6、8、12、24 h 時(shí)按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定，記錄峰面積。結(jié)果顯示，紫云英苷峰面積的RSD 為1.76%（n=7），表明供試品溶液于室溫下放置24 h 內(nèi)穩(wěn)定性良好。（3）精密稱取白子菜葉（編號(hào)S1）1.0 g，共6份，按“2.6.2（2）”項(xiàng)下方法制備供試品溶液，再按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定，記錄峰面積并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算樣品含量。結(jié)果顯示，紫云英苷含量的RSD為3.60%（n=6），表明方法重復(fù)性良好。（4）精密稱取白子菜葉（編號(hào)S1）1.0 g，共9 份，分別精密加入一定量的紫云英苷對(duì)照品溶液，按“2.6.2（2）”項(xiàng)下方法制備供試品溶液，再按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定，記錄峰面積并計(jì)算加樣回收率。結(jié)果顯示，紫云英苷的平均加樣回收率為104.65%（RSD=6.91%，n=9）。

2.6.6 紫云英苷含量測定精密稱取待測白子菜葉樣品粉末1.0 g，按“2.6.2（2）”項(xiàng)下方法制備供試品溶液，再按“2.6.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測定，記錄峰面積并按標(biāo)準(zhǔn)曲線法計(jì)算樣品含量。每個(gè)樣品平行測定3次。

2.7 綜合評(píng)分的計(jì)算

采用層次分析法進(jìn)行綜合評(píng)價(jià)。本研究構(gòu)建的兩兩比較矩陣中，多糖、總黃酮、紫云英苷是發(fā)揮臨床作用的物質(zhì)基礎(chǔ)，其重要性高于水溶性浸出物;多糖、黃酮類成分的抗氧化、抗炎、增強(qiáng)免疫等作用與白子菜具有的清熱涼血、活血止痛功效契合，且總黃酮的作用強(qiáng)于多糖;紫云英苷具有的降血糖、降血脂作用與白子菜的藥理作用相對(duì)應(yīng)[15]。故總黃酮、多糖、紫云英苷及水溶性浸出物含量的相對(duì)重要性分別記1、3、5、7 分，矩陣結(jié)果見表3。

首先，按上述層次分析法計(jì)算各指標(biāo)成分的權(quán)重系數(shù)及隨機(jī)一致性比率（consistency ratio，CR）：CR=CI/RI[ 式中，CI（consistency index）為一致性指標(biāo)，RI（random consistency index）為隨機(jī)一致性指標(biāo)]。若CR<0.1，表示矩陣具有滿意的一致性，且權(quán)重計(jì)算正確[15]。

2.8 不同干燥方式對(duì)白子菜葉質(zhì)量的影響

按“2.1”項(xiàng)下方法制備不同干燥方式的白子菜葉樣品，記錄干燥時(shí)間并觀察其外觀性狀，分別按“2.3”“2.4.3”“2.5.3”“2.6.6”項(xiàng)下方法測定樣品中水溶性浸出物、總黃酮、多糖、紫云英苷的含量，并按“2.7”項(xiàng)下方法進(jìn)行綜合評(píng)價(jià)。采用Excel 2010 軟件錄入數(shù)據(jù)，利用SPSS 23.0 軟件進(jìn)行方差分析（下同）。

2.8.1 干燥時(shí)間及外觀性狀干燥時(shí)間以微波干燥最短，其次為80 ℃烘干，最長為陰干。陰干、微波干燥及冷凍干燥所得白子菜葉均呈深淺不同的綠色，而烘干所得白子菜葉的顏色較深;冷凍干燥所得白子菜葉的葉片平展，最接近鮮葉片，其余干燥方式所得白子菜葉的葉片均存在不同程度皺縮;80 ℃烘干及微波干燥所得白子菜葉有一定香氣且具咸味。結(jié)果見表4。

2.8.2 含量測定結(jié)果水溶性浸出物含量以曬干、微波干燥、冷凍干燥相對(duì)較高且3 種方式無明顯差異，80 ℃烘干最低;總黃酮含量以微波干燥最高，80 ℃烘干最低，且微波干燥明顯高于其他干燥方式;多糖含量以冷凍干燥最高，陰干最低，而冷凍干燥與其他5 種干燥方式（除陰干外）比較均無明顯差異;紫云英苷含量以陰干和微波干燥較高，80 ℃烘干最低，且陰干和微波干燥顯著高于其他干燥方式。結(jié)果見表5。

2.8.3 綜合評(píng)價(jià)按“2.7”項(xiàng)下方法計(jì)算得CR為0.043 8（<0.1），總黃酮、多糖、紫云英苷、水溶性浸出物含量的權(quán)重系數(shù)分別為0.563 8、0.263 4、0.117 8、0.055 0。陰干、曬干、60 ℃烘干、70 ℃烘干、80 ℃烘干、微波干燥、冷凍干燥的綜合評(píng)分分別為0.811 8、0.855 8、0.629 5、0.546 1、0.492 8、0.996 3、0.665 4 分，提示微波干燥所得白子菜葉的質(zhì)量較好。

2.9 不同采收時(shí)間對(duì)白子菜葉質(zhì)量的影響

按“2.2”項(xiàng)下方法制備不同采收時(shí)間的白子菜葉樣品，分別按“2.3”“2.4.3”“2.5.3”“2.6.6”項(xiàng)下方法測定樣品中水溶性浸出物、總黃酮、多糖、紫云英苷的含量，按“2.7”項(xiàng)下方法進(jìn)行綜合評(píng)價(jià)。

2.9.1 含量測定結(jié)果水溶性浸出物含量由高到低依次為9 月>8 月>3 月>7 月>6 月>4 月>10 月>5 月，總黃酮含量為8 月>6 月>5 月>7 月>9 月>10 月>4月>3 月，多糖含量為8 月>7 月>9 月>6 月>5 月>4月>10 月>3 月，紫云英苷含量為6 月>5 月≈7 月≈9月>8月>4月≈10月>3 月。結(jié)果見表6。

2.9.2 綜合評(píng)價(jià)按“2.7”項(xiàng)下方法計(jì)算得CR為0.043 8（<0.1），總黃酮、多糖、紫云英苷、水溶性浸出物含量的權(quán)重系數(shù)分別為0.563 8、0.263 4、0.117 8、0.055 0。3～10 月樣品的綜合評(píng)分分別為0.658 0、0.752 1、0.937 0、0.962 9、0.965 8、0.988 6、0.929 2、0.808 4 分，提示5～9月采收的白子菜葉質(zhì)量較好。

3 討論

3.1 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化

本課題組前期參考2020 年版《中國藥典》（一部）[14]，分別考察了甲醇、30%乙醇、40%乙醇、50%乙醇、60%乙醇、70%乙醇、80%乙醇等不同提取溶劑及超聲、回流提取對(duì)白子菜葉中總黃酮提取率的影響，結(jié)果顯示，當(dāng)以80%乙醇超聲提取時(shí)，總黃酮的提取率較高。同時(shí)，本課題組參考2020 年版《中國藥典》（一部）[14]，對(duì)多糖的提取時(shí)間進(jìn)行了考察，結(jié)果顯示，回流3 h 的多糖提取率較高。此外，本課題組還分別考察了不同色譜柱[AgilentPoroshell SB-C18（100 mm×2.1 mm，2.7 μm）、DiamonsilC18（2）（4.6 mm× 250 mm，5 μm）] 及不同流動(dòng)相（乙腈-0.1%磷酸溶液、甲醇-0.1%磷酸溶液），結(jié)果顯示，以Diamonsil C18（2）為色譜柱、乙腈-0.1%磷酸溶液為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫時(shí)，所得色譜峰峰形較好，且待測成分峰周圍無雜峰干擾。

3.2 含量測定結(jié)果分析

有研究發(fā)現(xiàn)，白子菜的水提取物及乙醇提取物具有顯著的降血糖作用[3]?？傸S酮及多糖是白子菜降血糖、降血脂的主要活性成分[3，17]。本研究結(jié)果顯示，微波干燥所得白子菜葉中水溶性浸出物、總黃酮、多糖及紫云英苷的含量均較高，且微波干燥的時(shí)間顯著短于其他干燥方式;80 ℃烘干所得各成分含量變化有所不同;綜合評(píng)價(jià)結(jié)果顯示，微波干燥所得白子菜葉的綜合評(píng)分（0.996 3分）最高，表明此法所得白子菜葉樣品質(zhì)量較好，這與微波干燥有利于保存多糖類、黃酮及黃酮苷類成分的結(jié)論一致[18]。8 月采收的白子菜葉中總黃酮、多糖及紫云英苷的含量均較高，3 月采收的白子菜葉中各成分含量均較低，提示不同采收時(shí)間樣品中各成分含量存在差異;綜合評(píng)價(jià)結(jié)果顯示，8 月采收白子菜葉的綜合評(píng)分（0.988 6 分）最高，除3、4、10 月外，其余采收時(shí)間白子菜葉的綜合評(píng)分均大于0.90 分，這與白子菜中總黃酮含量以5～9 月較高一致。

綜上所述，微波干燥所得白子菜葉的質(zhì)量較好，5～9 月采收較優(yōu)。