楊明珠,陳曉春,張 媛,王秀麗,李俊平
(中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京 100081)
豬偽狂犬病是一種由偽狂犬病毒(Pseudorabies virus,PRV)感染引起的急性傳染病,對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害巨大,主要造成仔豬腹瀉、發(fā)熱、呼吸癥狀、神經(jīng)癥狀、衰竭死亡,生長豬呼吸困難、生長停滯,母豬不育、流產(chǎn)、死亡胎、木乃伊胎,康復(fù)豬可能存在潛伏感染,當(dāng)康復(fù)豬免疫低下,會(huì)存在排毒的風(fēng)險(xiǎn)[1]。2011年以來,偽狂犬病病毒變異株在我國暴發(fā)流行并不斷蔓延全國[2],研究發(fā)現(xiàn)其致病力顯著增強(qiáng),傳統(tǒng)疫苗Bartha-K61株不能提供完全的保護(hù),迫切需要研制出針對(duì)變異株的新型疫苗。同時(shí),隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,關(guān)于偽狂犬病的分子生物學(xué)研究取得了很大進(jìn)展。PRV含有多個(gè)復(fù)制非必需區(qū),容納外源基因的能力強(qiáng),其中有些基因與病毒的毒力有關(guān)而不參與病毒的復(fù)制[3],若通過基因工程技術(shù)將PRV的毒力基因失活或者缺失,或者將外源基因插入到PRV基因組中構(gòu)建重組病毒,不僅保持了原病毒的良好抗原性,還可以同時(shí)預(yù)防重組蛋白相關(guān)疫病,起到了一針多防的效果,大大提高生產(chǎn)效率,對(duì)多種病毒的防控具有重要意義。本研究在實(shí)驗(yàn)室前期對(duì)PRV研究的基礎(chǔ)上將綠色熒光蛋白標(biāo)記基因插入到PRV基因組的UL4-UL3基因間區(qū)域,構(gòu)建了能夠穩(wěn)定表達(dá)增強(qiáng)型綠色熒光蛋白(Enhance green fluorescent protein,EGFP)的重組偽狂犬病毒,并對(duì)其穩(wěn)定性、體外增殖特性進(jìn)行了研究,為下一步構(gòu)建重組偽狂犬活載體疫苗奠定了基礎(chǔ)。
1.1 試驗(yàn)材料
1.1.1 毒株與細(xì)胞 PRV-SX株為中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所在2012年于山西某豬場(chǎng)分離得到的一株高致病性流行毒株;rPRV-bc-8,是以PRV-SX株為基礎(chǔ)構(gòu)建的TK基因突變、US8與US9基因缺失的弱毒株。PK15細(xì)胞由中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所保存。
1.1.2 載體及質(zhì)粒 質(zhì)粒pMD-US6+7-EGFP-US2由實(shí)驗(yàn)室自行制備保存;pESAY-Blunt Simple Cliong kit購自北京全式金生物技術(shù)有限公司。全基因合成質(zhì)粒pUC-polyA-UL3訂購于北京六合華大基因科技股份有限公司。
1.1.3 主要試劑 Top10感受態(tài)細(xì)胞、質(zhì)粒小提試劑盒、質(zhì)粒小提中量試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;Axy Prep體液病毒DNA/RNA小量試劑盒購自康寧生命科學(xué)有限公司;快捷型瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒Ⅱ型購自北京百泰克生物技術(shù)有限公司,T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶SbfI、AflII購自NEB(北京)有限公司;Kod one購自東洋紡(上海)有限公司
1.2 方法
1.2.1 引物設(shè)計(jì)與合成 根據(jù)GeneBank上的PRV序列,自行設(shè)計(jì)合成系列擴(kuò)增及鑒定用引物(表1),用于擴(kuò)增左右同源臂以及鑒定重組病毒。
表1 同源臂擴(kuò)增及鑒定用引物Tab 1 Primers for homology arm amplification and identification
1.2.2 轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3的構(gòu)建 利用Axy Prep體液病毒DNA/RNA小量試劑盒提取PRV-SX株基因組,以其為模板用引物rPUL4F/rPUL4R擴(kuò)增左同源臂UL4基因,連接pEASY-Blunt Zero克隆載體,構(gòu)建pEASY-Blunt-UL4,測(cè)序正確后小提質(zhì)粒備用。將質(zhì)粒pMD-US6+7-EGFP-US2與質(zhì)粒pEASY-Blunt-UL4分別 經(jīng)SbfI/AflII雙酶切,回收目的片段后用T4連接酶連接,獲得轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-US2,再將質(zhì)粒PMD-UL4-EGFP-US2與質(zhì)粒pUC-polyA-UL3經(jīng)SpeI/EcoR I雙酶切,回收相應(yīng)片段后經(jīng)T4連接酶連接,獲得轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3(圖1),提取高濃度無內(nèi)毒素質(zhì)粒,以備轉(zhuǎn)染。
圖1 轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3的構(gòu)建示意圖Fig 1 Schematic diagram of the construction of the transfer plasmid pMD-UL4-EGFP-UL3
1.2.3 重組病毒的獲得 準(zhǔn)備一個(gè)鋪有PK-15細(xì)胞的24孔板,在細(xì)胞密度達(dá)90%左右時(shí),取rPRV-bc-8病毒液1 μL與2 μL轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3,利用脂質(zhì)體法共轉(zhuǎn)染細(xì)胞,待細(xì)胞病變達(dá)80%以上后于-80 ℃及室溫下凍融兩次收毒。將轉(zhuǎn)染后收集的病毒液接種于鋪有單層PK-15細(xì)胞的六孔板中,吸附1 h,棄去吸附液,每孔加入3 mL含有1%瓊脂與5%FBS的培養(yǎng)液,待培養(yǎng)液凝固后倒置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。接種24 h后在倒置熒光顯微鏡下觀察,挑選單個(gè)熒光蝕斑于0.5 mL DMEM培養(yǎng)液中,震蕩混勻后繼續(xù)接種于長至單層的PK-15細(xì)胞,如此純化4次后獲得純化病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3。
1.2.4 重組病毒的鑒定 將純化獲得的重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3利用DNA/RNA提取試劑盒提取其基因組,用引物PUL3F/PUL3R2進(jìn)行PCR鑒定,同時(shí)將野毒株P(guān)RV-SX株、親本株rPRV-bc-8利用相同的引物擴(kuò)增,比較擴(kuò)增結(jié)果。
1.2.5 體外增殖實(shí)驗(yàn) 將PRV-SX株、rPRV-bc-8以及rPRV-UL4-EGFP -UL3分別按0.1 MOI接種PK-15細(xì)胞,分別在12、24、32、40、48、56、64、72、80、88、96 h收集感染細(xì)胞,并分別測(cè)定TCID50,比較三種毒株在不同培養(yǎng)時(shí)間下的滴度并繪制增殖曲線。
1.2.6 重組病毒的遺傳穩(wěn)定性 將重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3在PK-15細(xì)胞上連續(xù)傳20代,分別提取重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3以及第5、10、15、20代重組病毒的DNA,按步驟1.2.4的方法進(jìn)行PCR鑒定。取重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3以及第20代重組病毒進(jìn)行熒光蝕斑觀察。
1.2.7 熒光蛋白濃度的測(cè)定 將親本株rPRV-bc-8、重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3分別按0.1 MOI接種PK-15細(xì)胞,分別在12、24、32、40、48、56、64、72、80、88、96 h收集感染細(xì)胞,離心取上清后通過分子熒光光譜儀進(jìn)行熒光蛋白濃度的測(cè)定并繪制曲線。
2.1 轉(zhuǎn)移質(zhì)粒的構(gòu)建 質(zhì)粒pEASY-Blunt-UL4經(jīng)SbfI/AflII雙酶切,切出997 bp和3956 bp兩個(gè)片段(圖2),與預(yù)期大小一致,經(jīng)測(cè)序確定結(jié)果與理論序列一致,表明質(zhì)粒pEASY-Blunt-UL4構(gòu)建成功;pMD-UL4-EGFP-US2經(jīng)SbfI/AflII雙酶切,得到大小約為997 bp和5261 bp的兩個(gè)片段(圖3),與預(yù)期大小一致,經(jīng)測(cè)序確定結(jié)果與理論序列一致,表明質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-US2構(gòu)建成功。質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3經(jīng)SpeI/EcoR I雙酶切得到大小約為1166 bp和5226 bp的兩個(gè)片段(圖4),與預(yù)期大小一致,經(jīng)測(cè)序確定結(jié)果與理論序列一致,表明質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3構(gòu)建成功。
M: BM2000 DNA Marker;1:質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3圖2 pEASY-Blunt-UL4的Sbf I/Afl II雙酶切產(chǎn)物Fig 2 The double enzyme digestion results of pEASY-Blunt-UL4
M: BM2000 DNA Marker;1:質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-US2圖3 pMD-UL4-EGFP-US2的Sbf I/Afl II雙酶切產(chǎn)物Fig 3 The double enzyme digestion results of pMD-UL4-EGFP-US2
M: BM2000 DNA Marker;1:質(zhì)粒pMD-UL4-EGFP-UL3圖4 pMD-UL4-EGFP-UL3的Spe I/ EcoR I雙酶切產(chǎn)物Fig 4 The double enzyme digestion results ofpMD-UL4-EGFP-UL3
2.2 重組病毒的純化 將轉(zhuǎn)染所收的病毒液接種于鋪有單層PK-15細(xì)胞的六孔板,培養(yǎng)24 h后在倒置熒光顯微鏡下便能觀察到綠色熒光(圖5),初步判斷重組毒構(gòu)建成功。挑選單個(gè)熒光蝕斑于0.5 mL DMEM培養(yǎng)液中,震蕩混勻后繼續(xù)接種于長至單層的PK-15細(xì)胞,如此純化4次后獲得純化病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3(圖6)。
圖5 培養(yǎng)24 h后產(chǎn)生的綠色熒光(10×10)Fig 5 Green fluorescence after 24 h incubation(10×10)
圖6 純化得到的重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3Fig 6 Purified recombinant virus rPRV-UL4-EGFP-UL3
2.3 重組病毒的鑒定 取200 μL重組病毒液利用DNA/RNA提取試劑盒提取其基因組,利用引物PUL3F/PUL3R2進(jìn)行PCR鑒定,結(jié)果顯示rPRV-UL4-EGFP-UL3擴(kuò)增得到大小約為1710 bp的條帶,野毒株P(guān)RV-SX與親本毒rPRV-bc-8分別用相同的引物擴(kuò)增得到同樣的大小約為374 bp的條帶(圖7)。經(jīng)測(cè)序證明重組病毒基因組序列正確。
M: BM2000 DNA Marker;1:rPRV-UL4-EGFP-UL3;2:PRV-SX;3:rPRV-bc-8;4:Negative control圖7 重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3的PCR擴(kuò)增鑒定電泳圖Fig 7 Identification of recombinant virus rPRV-UL4-EGFP-UL3 by PCR
2.4 重組病毒的生長特性分析
2.4.1 體外增殖實(shí)驗(yàn) 將rPRV-bc-8以及rPRV-UL4-EGFP-UL3分別按0.1MOI接種PK-15細(xì)胞,分別在12、24、32、40、48、56、64、72、80、88、96 h收集感染細(xì)胞,并分別測(cè)定TCID50,比較兩種毒株在不同培養(yǎng)時(shí)間下的滴度并繪制增殖曲線(圖8)。結(jié)果表明重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3在細(xì)胞內(nèi)的增殖速度較快,接種后12 h內(nèi)滴度始終高于親本毒rPRV-bc-8,接種后40 h達(dá)到最高滴度108.3TCID50/mL,但是最高滴度的出現(xiàn)時(shí)間晚于親本毒,親本毒rPRV-bc-8于32 h達(dá)到最高滴度108.4TCID50/mL。重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3的病毒滴度平臺(tái)期較短,到達(dá)平臺(tái)后滴度下降的比親本毒快。
圖8 重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3與親本毒rPRV-bc-8感染PK15細(xì)胞的一步生長曲線Fig 8 One-step growth curve of recombinant virus rPRV-UL4-EGFP-UL3 and parental virus rPRV-bc-8 infecting PK15 cells
2.4.2 重組病毒的遺傳穩(wěn)定性 將重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3在PK-15細(xì)胞上連續(xù)傳20代,分別提取第5、10、15、20代重組病毒的DNA,以其為模板用引物PUL3F/PUL3R2進(jìn)行PCR擴(kuò)增鑒定,結(jié)果均擴(kuò)增得到大小約為1710 bp的目的條帶(圖9)。取重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3以及第20代重組病毒進(jìn)行熒光 蝕斑觀察,結(jié)果顯示重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3以及第20代重組病毒蝕斑大小相近,熒光亮度相似(圖10),表明重組病毒能夠穩(wěn)定遺傳。
2.4.3 熒光蛋白濃度的測(cè)定 將親本株rPRV-bc-8、重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3分別按0.1MOI接種PK-15細(xì)胞,分別在12、24、32、40、48、56、64、72、80、88、96 h收集感染細(xì)胞,離心取上清后通過分子熒光光譜儀進(jìn)行熒光蛋白濃度的測(cè)定并繪制曲線(圖11)。結(jié)果表明重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)EGFP蛋白的水平在感染細(xì)胞56 h后達(dá)到最高,熒光蛋白濃度達(dá)4793.9 ng/mL,之后進(jìn)入蛋白表達(dá)平臺(tái)期。
M:BM5000+ DNA Marker;1:rPRV-UL4-EGFP-UL3;2:rPRV-UL4-EGFP-UL3(P5);3:rPRV-UL4-EGFP-UL3(P10);4:rPRV-UL4-EGFP-UL3(P15);5:rPRV-UL4-EGFP-UL3(P20);6:PRV-SX;7:rPRV-bc-8;8:Negative control圖9 重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3各代次PCR擴(kuò)增鑒定電泳圖Fig 9 Identification of several generation of recombinant virus rPRV-UL4-EGFP-UL3 by PCR
圖10 第20代重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3感染PK15細(xì)胞Fig 10 The 20th generation recombinant virus rPRV-UL4-EGFP-UL3 infects PK15 cells
圖11 綠色熒光蛋白濃度測(cè)定結(jié)果圖Fig 11 Graph of green fluorescent protein concentration measurement results
豬偽狂犬病是危害我國養(yǎng)豬業(yè)的重要疫病,其弱毒疫苗自使用以來免疫保護(hù)效果良好且應(yīng)用廣泛,是理想的重組病毒載體。近年來,隨著對(duì)PRV分子生物學(xué)研究的深入,其作為重組病毒表達(dá)載體的類型越來越豐富,單毒力基因缺失及多毒力基因共缺失株的構(gòu)建為疫苗株的安全性提供了保障,同時(shí)通過對(duì)PRV基因組上復(fù)制非必需區(qū)進(jìn)行深入研究,可供外源基因插入的大量位點(diǎn)也逐漸被發(fā)掘,并通過多種成熟的重組技術(shù),如傳統(tǒng)同源重組技術(shù)、構(gòu)建PRV BAC、構(gòu)建PRV Fosmid文庫以及CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)等,實(shí)現(xiàn)了將多種豬的重大疫病病毒抗原基因作為外源基因成功插入到PRV的非必需區(qū),如將非洲豬瘟病毒的CD2V蛋白基因插入TK基因區(qū)域[4],將豬流行性腹瀉病毒S蛋白基因和豬輪狀病毒VP7 蛋白基因插入到gE基因區(qū)域[5],將豬圓環(huán)病毒2型的Cap蛋白基因插入PK-gG基因之間[6]、UL22-UL24基因之間[7]、US4-US6基因之間[8-9],將高致病性豬繁殖與呼吸綜合征病毒GP5基因插入到gG基因區(qū)域[10]等。
目前還沒有研究顯示PRV基因組上的UL4-UL3基因之間的區(qū)域是否可以作為外源基因插入位點(diǎn),但在同屬皰疹病毒火雞皰疹病毒的重組活載體疫苗研究中常將UL4-UL3基因之間的區(qū)域作為外源基因的插入位點(diǎn),并且外源基因在此位點(diǎn)具有良好的表達(dá)效果[11]。因此本實(shí)驗(yàn)選取PRV基因缺失株rPRV-bc-8基因組上的UL4-UL3基因之間的區(qū)域作為外源基因插入位點(diǎn),利用同源重組技術(shù)成功構(gòu)建了表達(dá)EGFP基因的重組病毒rPRV-UL4-EGFP-UL3。病毒傳至20代,經(jīng)鑒定及測(cè)序顯示基因位置插入正確且無突變;對(duì)綠色熒光表達(dá)情況的觀察說明EGFP基因能夠成功表達(dá);重組病毒在PK15細(xì)胞中的生長曲線表示重組病毒所達(dá)到的最高滴度與親本毒無差異,說明外源基因的插入對(duì)重組病毒的增殖影響不大;對(duì)重組病毒的外源蛋白表達(dá)量進(jìn)行了測(cè)定顯示該位點(diǎn)可以有效進(jìn)行外源基因的表達(dá)。因此將PRV基因缺失株rPRV-bc-8基因組上的UL4-UL3基因間區(qū)域作為外源基因插入的位點(diǎn)在理論以及實(shí)踐中是可行的,為下一步相關(guān)重組偽狂犬病毒的研發(fā)應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。