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大鼠缺血性腦卒中早期miR-27a表達(dá)與鐵死亡的關(guān)系

2022-06-21 02:18張婧孫輝朱禮軍馮子人杜琳孟愛(ài)國(guó)
天津醫(yī)藥 2022年6期
關(guān)鍵詞:過(guò)氧化物腦組織缺血性

張婧,孫輝,朱禮軍,馮子人,杜琳,孟愛(ài)國(guó)

2020 年我國(guó)40歲以上人群中卒中患者約1 780萬(wàn)人,其中新發(fā)腦卒中患者高達(dá)340萬(wàn)人[1]。臨床上針對(duì)缺血性腦卒中的治療主要為藥物溶栓療法和手術(shù)取栓治療[2],因時(shí)間窗等因素限制,只有少數(shù)患者可從中獲益。鐵死亡(Ferroptosis)是近年來(lái)新發(fā)現(xiàn)的一種非細(xì)胞凋亡性的程序性細(xì)胞死亡方式,是鐵依賴(lài)性的脂質(zhì)過(guò)氧化物積累的結(jié)果[3]。研究發(fā)現(xiàn),鐵死亡在神經(jīng)系統(tǒng)性疾病的發(fā)生發(fā)展過(guò)程中發(fā)揮重要作用,調(diào)控細(xì)胞鐵死亡可能會(huì)成為預(yù)防和治療腦卒中的新方法[4-5]。微小RNA(miRNA,miR)主要與靶基因mRNA的3'-非編碼區(qū)結(jié)合,通過(guò)降解靶基因mRNA或抑制其翻譯來(lái)控制靶基因在轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)[6]。本課題組前期研究表明,miRNA 參與調(diào)節(jié)了缺血性腦損傷的進(jìn)展,且miRNA表達(dá)的動(dòng)態(tài)變化與腦組織損傷進(jìn)展密切相關(guān)[7-8]。另有研究發(fā)現(xiàn),在大鼠腦皮層神經(jīng)元擬缺血損傷模型中,miR-27a 參與缺血性腦血管疾病發(fā)病過(guò)程[9]。然而miR-27a在其中具體的作用機(jī)制尚不清楚。本研究采用大鼠大腦中動(dòng)脈栓塞(MCAO)模型,觀察miR-27a 表達(dá)及鐵死亡變化情況,探討兩者間的關(guān)系。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 8 周齡SPF 級(jí)雄性SD 大鼠88 只,體質(zhì)量250~280 g,購(gòu)自北京華阜康科技有限公司,生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(京)2020-0004;大鼠飼養(yǎng)于華北理工大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,使用許可編號(hào):SYXK(冀)2015-0038。

1.2 試劑與儀器 線栓(L0000)購(gòu)自廣州佳靈生物技術(shù)有限公司;ago-miR-27a 以及antago-miR-27a 購(gòu)自廣州銳博生物科技有限公司;二甲基亞砜(DMSO)購(gòu)自梯希愛(ài)(上海)化成工業(yè)發(fā)展有限公司,鐵死亡特異性抑制劑Ferrostatin-1(純度≥90%,17729)購(gòu)自美國(guó)Cayman Chemical公司;TTC溶液購(gòu)自北京雷根生物技術(shù)有限公司;谷胱甘肽過(guò)氧化物酶4(GPX4)一抗購(gòu)自武漢ABclonal 公司;β-actin 一抗購(gòu)自北京博奧森;辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的抗兔IgG 二抗購(gòu)自北京中杉金橋;超敏ExPlus ECL化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑購(gòu)自北京莊盟國(guó)際生物基因科技有限公司;谷胱甘肽(GSH)、組織鐵和丙二醛(MDA)檢測(cè)試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所;RNA提取試劑盒購(gòu)自北京金百特生物技術(shù)有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒(ZR102-1)、2×SYBR qPCR Mix(熒光定量)試劑盒(ZF102-2)購(gòu)自北京莊盟國(guó)際生物基因科技有限公司。

1.3 分組及給藥 將88只大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分成以下11組,每組8 只。實(shí)驗(yàn)1 設(shè)正常(control)組、假手術(shù)(Sham)組、模型組(按照缺血時(shí)間不同,分為6 h組、12 h組、24 h組、48 h組)。實(shí)驗(yàn)2設(shè)缺血48 h組(I 48 h組)、缺血48 h+Ferrostatin-1 組(I 48 h+Fer-1 組,于手 術(shù) 前2 h 腹腔注射0.5 mL 的Ferrostatin-1,按2 mg/kg 給藥)、缺血48 h+DMSO 組(I 48 h+DMSO組,于手術(shù)前2 h腹腔注射0.5 mL DMSO)。實(shí)驗(yàn)3設(shè)缺血48 h 組(I 48 h 組)、I 48 h+陰性對(duì)照(NC)組、缺血48 h+miR-27a激動(dòng)劑組(I 48 h+ago-miR-27a組)、缺血48 h+miR-27a抑制劑組(I 48 h+antago-miR-27a組);于術(shù)前7 d開(kāi)始向側(cè)腦室分別注射陰性對(duì)照試劑(20 μmol/L)、ago-miR-27a(20 μmol/L)、antago-miR-27a(20 μmol/L),每日1 次,連續(xù)5 d,給藥量為5μL。術(shù)后48 h處死大鼠并取材。

1.4 大鼠造模 利用2%戊巴比妥鈉(30 mg/kg)腹腔麻醉動(dòng)物。麻醉滿(mǎn)意后行頸正中切口,充分暴露頸動(dòng)脈后,小心將迷走神經(jīng)與頸總動(dòng)脈分離,結(jié)扎頸總動(dòng)脈和頸外動(dòng)脈,線栓經(jīng)頸內(nèi)動(dòng)脈至大腦中動(dòng)脈,形成大鼠半腦缺血。所有手術(shù)均為左側(cè)大腦中動(dòng)脈栓塞,模型組的缺血時(shí)間分別為6、12、24、48 h,經(jīng)藥物干預(yù)的大鼠缺血時(shí)間為48 h。假手術(shù)組只經(jīng)頸正中切口,不栓塞大腦中動(dòng)脈。成功造模標(biāo)志:術(shù)后清醒但不能直線行走,出現(xiàn)右側(cè)偏癱,神經(jīng)功能學(xué)評(píng)分1~4分。

1.5 腦組織TTC染色 大鼠在腦缺血后相應(yīng)時(shí)間點(diǎn),立即處死并于冰上取腦組織,迅速放入-20 ℃冰箱冷凍30 min,其后將冷凍的大鼠腦組織切成2 mm 厚的5個(gè)冠狀切片。隨后將腦片置于TTC 溶液中,37 ℃放置15 min,翻面繼續(xù)于TTC 染液中避光浸染15 min。染色完成后,腦組織通過(guò)4%多聚甲醛固定1 d,后拍照留存。使用Image J 軟件進(jìn)行分析以計(jì)算大鼠的腦梗死面積,用梗死面積的百分比(%)表示。缺血區(qū)面積比=(腦切片白色缺血區(qū)域面積)/(腦切片總面積)×100%。

1.6 Western blot檢測(cè)GPX4蛋白表達(dá) 稱(chēng)取凍存的腦組織,每50 mg加入0.2 mL組織裂解液(每1 mL組織裂解液中加入0.01 mL 的蛋白酶抑制劑)進(jìn)行組織蛋白提取。待蛋白提取完成后,對(duì)其進(jìn)行SDS-PAGE,后將膠中蛋白轉(zhuǎn)到PVDF 膜上。5%脫脂牛奶封閉2 h,洗膜后于GPX4 抗體(1∶1 000)中4 ℃孵育過(guò)夜。加入含有辣根過(guò)氧化物酶的二抗(1∶5 000)室溫孵育2 h,滴加配置好的ECL顯色液,后通過(guò)全自動(dòng)化學(xué)發(fā)光圖像分析儀掃描并保存結(jié)果圖像。經(jīng)Image J 軟件分析所顯出的蛋白圖像灰度值,以β-actin作為內(nèi)參蛋白,計(jì)算出目的蛋白的相對(duì)表達(dá)量。

1.7 腦組織GSH、組織鐵和MDA 含量檢測(cè) 稱(chēng)取0.1 g腦組織,加入0.9 mL 的勻漿介質(zhì),冰水浴中剪碎、研磨,制成10%的勻漿液,2 500 r/min離心15 min,吸取上清液。嚴(yán)格按照檢測(cè)試劑盒說(shuō)明進(jìn)行相應(yīng)操作,計(jì)算GSH、組織鐵和MDA含量。

1.8 qPCR 檢測(cè)miR-27a 的相對(duì)表達(dá)量 根據(jù)RNA 提取試劑盒說(shuō)明書(shū),嚴(yán)格進(jìn)行大鼠腦組織中總RNA的提取,在波長(zhǎng)為260 nm 和280 nm 處測(cè)量吸光度,計(jì)算RNA 純度和總量。經(jīng)反轉(zhuǎn)錄后得到cDNA,保存于-20 ℃冰箱。使用qPCR法進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增引物序列見(jiàn)表1。PCR條件:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃15 s,60 ℃30 s,72 ℃30 s,40 個(gè)循環(huán);72 ℃7 min。選擇U6 snRNA 作為miR-27a 檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)化內(nèi)參,使用相對(duì)定量2-ΔΔCt的循環(huán)閾值法計(jì)算miR-27a的相對(duì)表達(dá)量。

Tab.1 Primer sequences for qPCR表1 qPCR引物序列

1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 17.0 對(duì)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,結(jié)果數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布,多組結(jié)果比較用單因素方差分析,多重比較用LSD-t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 大鼠缺血性腦卒中早期腦組織中miR-27a 表達(dá)及鐵死亡水平變化 與Sham組比較,各模型組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分增加(P<0.05),提示造模成功,見(jiàn)圖1A。與Sham組比較,隨著缺血時(shí)間的延長(zhǎng),各模型組腦組織中miR-27a的表達(dá)增多,GPX4和GSH含量下降,組織鐵和MDA 的含量升高(P<0.05)。其中在缺血48 h 組變化最為明顯,在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中選擇此時(shí)點(diǎn)進(jìn)行缺血干預(yù)。與Control組相比,Sham組中上述結(jié)果變化差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。見(jiàn)圖1、2,表2。

Fig.1 Neurological function score and miR-27a expression in each group of rats圖1 各組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分和miR-27a表達(dá)情況

Tab.2 Comparison of GSH,Fe and MDA between the six groups of rats表2 6組中GSH、Fe及MDA水平比較(n=8,±s)

Tab.2 Comparison of GSH,Fe and MDA between the six groups of rats表2 6組中GSH、Fe及MDA水平比較(n=8,±s)

**P<0.01;a與Sham 組比較,b與6 h 組比較,c與12 h 組比較,d與24 h組比較,P<0.05。

組別Control組Sham組6 h組12 h組24 h組48 h組F GSH(μmol/L)372.0±39.0 378.0±40.0 291.0±35.0a 235.0±38.0ab 189.0±34.0abc 124.0±36.0abcd 59.931**Fe(μg/g)28.43±2.91 28.56±2.86 39.77±3.31a 47.67±3.26ab 56.33±3.74abc 61.05±3.86abcd 51.178**MDA(nmol/mg)3.63±0.49 3.58±0.57 5.17±0.73a 7.11±0.91ab 10.85±1.35abc 12.26±1.59abcd 39.492**

Fig.2 Expression of GPX4 protein in brain tissues of rats in each group of rats圖2 各組大鼠腦組織GPX4蛋白表達(dá)情況

2.2 Ferrostatin-1 可減輕缺血性腦卒中大鼠早期腦組織損傷 與I 48 h+DMSO 組比較,I 48 h+Fer-1 組大鼠腦梗死面積減小(P<0.01),同時(shí)GPX4 和GSH表達(dá)升高(P<0.05),而組織鐵及MDA 含量減少(P<0.05);與I 48 h 組相比,I 48 h+DMSO 組變化差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)圖3、4,表3。

Fig.3 Cerebral infarct area of rats in each group of rats圖3 各組大鼠腦梗死面積情況

Fig.4 The relative expression of GPX4 in each group of rats圖4 各組大鼠GPX4相對(duì)表達(dá)情況

2.3 miR-27a促進(jìn)大鼠缺血性腦卒中早期鐵死亡和腦組織損傷 與I 48 h+NC組相比,I 48 h+ago-miR-27a組大鼠腦組織中miR-27a表達(dá)升高,腦梗死面積增加(P<0.05),神經(jīng)功能評(píng)分升高(P<0.05),GPX4和GSH 表達(dá)降低(P<0.05),但組織鐵及MDA含量增多(P<0.05);而給予antago-miR-27a 干預(yù)后,ago-miR-27a 作用被逆轉(zhuǎn);與I 48 h 組相比,I 48 h+NC 組中相關(guān)結(jié)果差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)圖5、6,表4。

Fig.5 The changes of GPX4 in each group of rats圖5 各組大鼠GPX4蛋白表達(dá)變化

3 討論

Tab.3 Comparison of GSH,Fe and MDA between the three groups of rats表3 3組中GSH、Fe及MDA水平比較(n=8,±s)

Tab.3 Comparison of GSH,Fe and MDA between the three groups of rats表3 3組中GSH、Fe及MDA水平比較(n=8,±s)

*P<0.05,**P<0.01;a與I 48 h+DMSO組比較,P<0.05。

組別I 48 h組I 48 h+DMSO組I 48 h+Fer-1組F GSH(μmol/L)124±36 113±38 267±65a 9.189*Fe(μg/g)61.05±3.86 65.52±5.50 39.68±3.67a 29.168**MDA(nmol/mg)12.26±1.59 11.85±1.60 7.63±1.43a 8.288*

Fig.6 The expression of miR-27a and changes of cerebral infarct size of rats in each group圖6 各組大鼠miR-27a表達(dá)和腦梗死面積變化

鐵死亡是由鐵和脂質(zhì)過(guò)氧化物的積累所引起的,當(dāng)細(xì)胞內(nèi)Fe2+增多時(shí),會(huì)引起細(xì)胞發(fā)生芬頓(Fenton)反應(yīng),產(chǎn)生大量的活性氧以及羥自由基等氧化物質(zhì);這些物質(zhì)會(huì)在細(xì)胞中與多不飽和脂肪酸結(jié)合,進(jìn)而形成大量脂質(zhì)過(guò)氧化物和MDA,最終導(dǎo)致鐵死亡的發(fā)生[10]。鐵螯合劑如去鐵胺、去鐵酮,鐵死亡抑制劑Ferrostatin-1 通過(guò)降低鐵和脂質(zhì)過(guò)氧化物抑制鐵死亡的發(fā)生。GPX4 是重要的抗氧化物,GSH 是其發(fā)揮作用的輔助因子,GSH 和GPX4 減少是引起鐵死亡產(chǎn)生的關(guān)鍵因素[11]。研究發(fā)現(xiàn),鐵死亡誘導(dǎo)劑Erastin 通過(guò)抑制胱氨酸/谷氨酸逆向轉(zhuǎn)運(yùn)體減少GSH合成,使得GPX4合成原料不足,活性下降,促進(jìn)鐵死亡[3]。鐵死亡誘導(dǎo)劑RSL3則直接抑制GPX4活性[12]。因此,鐵、MDA、GSH和GPX4被作為檢測(cè)鐵死亡的生物標(biāo)志物,其中前兩者為促鐵死亡因子,后兩者被視為抗鐵死亡因子。當(dāng)缺血性腦卒中發(fā)生時(shí),會(huì)引發(fā)腦組織中興奮性毒性反應(yīng),并誘導(dǎo)細(xì)胞中GSH 以及GPX4 產(chǎn)生減少[13-14];同時(shí),當(dāng)缺血性腦卒中發(fā)生后,腦組織中鐵和脂質(zhì)過(guò)氧化物積累增加[15-16],進(jìn)一步促進(jìn)鐵死亡的發(fā)生。因此,探究鐵死亡與缺血性腦卒中的關(guān)系,對(duì)缺血性腦卒中的機(jī)制研究以及防治均有重要意義。

Tab.4 Comparison of neurological function score and ferroptosis-associated indicators in brain tissue between the four groups of rats表4 4組中神經(jīng)功能評(píng)分和鐵死亡相關(guān)指標(biāo)的水平比較 (n=8,±s)

Tab.4 Comparison of neurological function score and ferroptosis-associated indicators in brain tissue between the four groups of rats表4 4組中神經(jīng)功能評(píng)分和鐵死亡相關(guān)指標(biāo)的水平比較 (n=8,±s)

**P<0.01;a與I 48 h+NC組比較,b與I 48 h+ago-miR-27a 組比較,P<0.05。

組別I 48 h組I 48 h+NC組I 48 h+ago-miR-27a組I 48 h+antago-miR-27a組F神經(jīng)功能評(píng)分(分)2.63±0.52 2.63±0.52 3.63±0.52a 1.38±0.52ab 25.118**GPX4相對(duì)表達(dá)量0.42±0.07 0.39±0.08 0.22±0.04a 0.78±0.11ab 26.603**GSH(μmol/L)124.0±36.0 128.0±33.0 52.0±26.0a 263.0±44.0ab 18.617**Fe(μg/g)61.05±3.86 63.21±3.94 89.47±5.26a 45.67±4.52ab 50.491**MDA(nmol/mg)12.26±1.59 12.47±1.78 17.84±2.25a 7.82±1.31ab 16.170**

研究發(fā)現(xiàn),小鼠缺血性腦卒中模型中GSH 含量明顯減少,脂質(zhì)活性氧(ROS)的含量增加[17]。Tuo等[18]研究顯示,在單側(cè)短暫性大腦中動(dòng)脈閉塞存在的情況下,tau蛋白等與鐵水平的升高有關(guān)。研究發(fā)現(xiàn)使用Ferrostatin-1可抑制心肌細(xì)胞鐵死亡,減輕心肌損傷[19]。上述研究表明鐵死亡是一些疾病的重要病理因素之一,抑制鐵死亡的發(fā)生可減輕疾病的病理?yè)p傷。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),在缺血性腦卒中早期,大鼠腦組織中GPX4、GSH表達(dá)水平降低,而鐵和MDA含量升高,提示鐵死亡參與缺血性腦卒中的發(fā)生發(fā)展過(guò)程。本研究進(jìn)一步使用Ferrostatin-1 干預(yù)后發(fā)現(xiàn),其可使腦組織中GPX4、GSH表達(dá)水平升高,降低鐵和MDA含量,同時(shí)明顯減輕大鼠腦組織損傷。提示抑制鐵死亡的發(fā)生可減輕缺血性腦卒中損傷。

miR-27a 是miR-23a~27a~24-2 基因簇中 的 一員,在神經(jīng)系統(tǒng)疾病中發(fā)揮重要作用[20-21]。有研究報(bào)道,在大鼠腦皮層神經(jīng)細(xì)胞擬缺血損傷模型中,miR-27a 表達(dá)升高,可以參與缺血性腦血管疾病發(fā)病過(guò)程[22];而給予外泌體miR-27a 后可以明顯增加缺血的腦組織損傷[23],表明miR-27a 具有潛在的促腦缺血損傷作用。另有研究發(fā)現(xiàn)miR-27a可促進(jìn)鐵死亡的產(chǎn)生[24],故本研究推測(cè)miR-27a 可能與缺血性腦卒中過(guò)程中鐵死亡的發(fā)生有關(guān)。為了明確miR-27a 是否參與了缺血性腦卒中的病理過(guò)程,筆者觀察了miR-27a的表達(dá)變化,結(jié)果顯示,模型組大鼠腦組織中miR-27a表達(dá)出現(xiàn)顯著升高,抑制miR-27a 表達(dá)后,大鼠神經(jīng)功能評(píng)分降低,腦梗死面積明顯減小,而GPX4 和GSH 的產(chǎn)生增多,且鐵和MDA含量降低。而使用agomiR-27a 促進(jìn)miR-27a 表達(dá)具有相反的效果。提示miR-27a具有加重腦組織損傷的作用,該作用是通過(guò)促進(jìn)鐵死亡的發(fā)生實(shí)現(xiàn)的。

綜上所述,在大鼠缺血性腦卒中早期miR-27a的表達(dá)增多,其通過(guò)促進(jìn)鐵死亡的發(fā)生,從而加重腦組織損傷。本研究為探究miR-27a和鐵死亡在缺血性腦卒中過(guò)程中的機(jī)制以及臨床預(yù)防和治療缺血性腦卒中提供了新的方法和途徑,但miR-27a 與鐵死亡之間的具體作用機(jī)制還需更進(jìn)一步研究。

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