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歸脾湯對慢性睡眠剝奪大鼠HPA軸功能及單胺類神經(jīng)遞質(zhì)的影響

2022-03-24 10:22黃俊山張一帆曾雪愛王秀峰陳銘奇
福建中醫(yī)藥 2022年2期
關(guān)鍵詞:下丘腦神經(jīng)遞質(zhì)劑量

張 敏,黃俊山,張一帆,曾雪愛,王秀峰,陳銘奇,張 婭

(1.福建省中醫(yī)藥科學(xué)院,福建 福州 350003;2.福建省中醫(yī)睡眠醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建 福州 350003;3.黃俊山福建省名老中醫(yī)藥專家傳承工作室,福建 福州 350003)

慢性失眠發(fā)生與下丘腦-垂體-腎上腺軸(HPA)及腦內(nèi)多種神經(jīng)遞質(zhì)密切相關(guān),病情大多反復(fù)難愈,根治困難。歸脾湯(Gui Pi Decotion,GPD)是臨床治療心脾兩虛型失眠的經(jīng)典方,廣泛應(yīng)用于臨床,但其治療慢性失眠的機(jī)制尚不明確。HPA 軸是最原始的內(nèi)源性晝夜節(jié)律調(diào)節(jié)系統(tǒng),其中促腎上腺皮質(zhì)激素釋放激素(CRH)、促腎上腺皮質(zhì)激素(ACTH)和皮質(zhì)醇(CORT)是HPA 軸重要的組成激素,與睡眠密切相關(guān)[1]。HPA 軸能調(diào)控腦內(nèi)多種神經(jīng)遞質(zhì),其失??蓪?dǎo)致單胺類遞質(zhì)如5-羥色胺(5-HT)、5-羥吲哚乙酸(5-HIAA)、甲腎上腺素(NE)和多巴胺(DA)等的改變。因此,本實(shí)驗(yàn)通過改良水平臺法建立大鼠慢性睡眠剝奪模型,探討GPD 對CRH、ACTH 和CORT 以及5-HT、5-HIAA、NE、DA 含量的影響。

1 材 料

1.1 實(shí)驗(yàn)動物 SPF 級SD 雄性大鼠48 只,8~9 周齡,體質(zhì)量(200±20)g,由上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動物有限公司提供,許可證號為SCXK(滬)2018-0006,在福建省中醫(yī)藥科學(xué)院比較醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)中心飼養(yǎng)1 周。飼養(yǎng)環(huán)境安靜,恒溫(22±1)℃,每日12 h 固定照明(8:00 開燈),并可自由攝取食物和水,合格證號為SYXK(閩)2016-0005。本實(shí)驗(yàn)獲得福建省中醫(yī)藥科學(xué)院動物倫理委員會批準(zhǔn)(審批號:FJATCMIAEC2020010)。

1.2 藥物與主要試劑 人參、木香、遠(yuǎn)志、當(dāng)歸、白術(shù)、茯神、黃芪、龍眼肉、炒酸棗仁、炙甘草(福建省鷺燕醫(yī)藥有限公司,批號:190601、1907028077、190901、190515、1905018082、190901、190522、190808、190620、190820-010);艾司唑侖(濟(jì)川藥業(yè)集團(tuán)有限公司,批號:20200501);CRH、ACTH、CORT 酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)試劑盒(美國Trust Specialty Zeal公司,型號:RG-28912、R6404、RG18882);水合氯醛(北京雷根生物技術(shù)有限公司,貨號:R00635);5-HT、5-HIAA、NE、DA 試劑盒(上海源葉生物科技有限公司,批號:B21833、B27047、B24713、B25300)。

1.3 主要儀器 Rayto RT-6100 酶標(biāo)分析儀(深圳雷杜生命科學(xué)股份有限公司);Rigol L3000 高效液相色譜儀(普源精電科技股份有限公司);Kromasil C18 反相色譜柱(荷蘭Nouryon 公司)。

2 方 法

2.1 實(shí)驗(yàn)方法

2.1.1 GPD 藥液的制備 稱取人參10 g,木香10 g,遠(yuǎn)志10 g,當(dāng)歸10 g,白術(shù)20 g,茯神20 g,黃芪20 g,龍眼肉20 g,炒酸棗仁20 g,炙甘草5 g。先量取10倍總量冷水浸泡30 min,武火煮沸后文火繼續(xù)煮20 min,過濾,收集濾液;次煎再加冷水沒過中藥,武火煮沸后文火繼續(xù)煮30 min,過濾。將兩份濾液合并,濃縮至1.86 g/mL GPD 藥液。將藥液與蒸餾水分別按1∶1及1∶3稀釋,可得0.93 g、0.47 g/mL GPD 藥液。

2.1.2 大鼠慢性睡眠剝奪模型制備 將48 只大鼠隨機(jī)分為正常對照組8 只及造模組40 只,造模組大鼠均通過改良水平臺法進(jìn)行慢性睡眠剝奪。參考文獻(xiàn)[2],造模組大鼠每天(16:00—次日10:00)睡眠剝奪18 h,次日(10:00—16:00)放回籠內(nèi)休息6 h,實(shí)驗(yàn)周期為21 d。正常對照組采用大平臺實(shí)驗(yàn)環(huán)境,不進(jìn)行任何處理,標(biāo)準(zhǔn)化飼養(yǎng)。若大鼠出現(xiàn)白天活動增加,夜間慵懶喜臥,晝夜節(jié)律紊亂,喜靜少動,飲食減少,體質(zhì)量降低,反應(yīng)遲鈍,時(shí)有焦慮易激惹現(xiàn)象,較正常對照組明顯不同,提示模型制備成功[2]。

2.1.3 分組與給藥 除正常對照組外,將造模成功的大鼠按分層隨機(jī)分組方法分為模型組、低劑量組、中劑量組、高劑量組及艾司唑侖組,每組8 只。造模第15 天,低、中、高劑量組分別以0.47、0.93、1.86 g/mL GPD(相當(dāng)于臨床人日用量的3、6、12倍),艾司唑侖組以0.009 mg/mL 艾司唑侖(相當(dāng)于人臨床日用量的6倍),正常對照組及模型組以生理鹽水,均按1 mL/100 g 體質(zhì)量灌胃。每天1 次,連續(xù)7 d。

2.1.4 組織標(biāo)本的采集 造模后21 d 給藥后開始禁食、禁水,24 h 之后用戊巴比妥鈉(1 mL/100 g)麻醉大鼠,腹主動脈采血;后斷頭,剪開頭皮,用血管鉗揭去顱骨和硬腦膜,剪斷雙側(cè)視神經(jīng)后用眼科鑷子迅速取出大鼠的整個腦組織;冰上剝離全腦,分離下丘腦和前額葉組織,用0.9%氯化鈉溶液沖洗干凈,放入事先進(jìn)行標(biāo)號處理的錫紙包裹好,存入液氮中,轉(zhuǎn)存于-80 ℃冰箱待測。

2.2 觀察指標(biāo)

2.2.1 大鼠一般狀態(tài)觀察 大鼠的精神活動狀態(tài)、皮毛顏色是否有光澤、進(jìn)食飲水量、對外界刺激的反應(yīng)及體質(zhì)量變化等。

2.2.2 血清和下丘腦中CRH、ACTH、CORT 含量測定 將下丘腦用PBS制成10%的組織漿液,低溫離心15 min,吸取上清液;血清低溫離心15 min,吸取上清液,嚴(yán)格按試劑說明書,采用ELISA 測定血清和下丘腦組織中CRH、ACTH、CORT 含量。

2.2.3 前額葉5-HT、5HIAA、DA、NE 含量測定 稱取約0.1 g 大鼠前額葉樣本,加入0.01mol/L HCLO4溶液進(jìn)行前處理,冰浴勻漿,冰水浴超聲30 min。8 000g離心10 min,取上清液,針頭式過濾器過濾后,制備成供試品溶液待測。精確稱取5-HT、5HIAA、DA、NE,分別用水溶解,定容成10 mL 配成標(biāo)準(zhǔn)品溶液后待測。色譜條件:Kromasil C18 反相色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動相的配制:20 mmol/L 磷酸二氫鉀的水溶液,流速0.8 mL/min,柱溫30 ℃,熒光激發(fā)波長為285 nm,發(fā)射波長為318 nm。用流動相過柱子,待基線穩(wěn)定后開始加樣。分別精密量取5-HT、5HIAA、DA、NE 標(biāo)準(zhǔn)品溶液、供試品溶液10 μL,注入高效液相色譜儀測定,即得。

2.2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 26.0 軟件分析。計(jì)量資料符合正態(tài)分布的以(xˉ±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD 檢驗(yàn);不符合正態(tài)分布的以中位數(shù)和四分位數(shù)來表示,采用非參數(shù)檢驗(yàn)。

3 結(jié) 果

3.1 各組大鼠一般狀態(tài) 正常對照組大鼠精神狀態(tài)佳,活動靈敏,毛發(fā)光澤干凈,飲食正常,白天慵懶喜臥,夜間興奮好動。模型組大鼠晝夜節(jié)律紊亂,精神倦怠,皮膚色澤暗淡,毛發(fā)枯燥,喜靜少動,飲食減少,體質(zhì)量降低,時(shí)有焦慮易激惹現(xiàn)象。經(jīng)治療后,GPD 各劑量組和艾司唑侖組大鼠一般狀態(tài)均有不同程度的改善。

3.2 各組大鼠血清和下丘腦中CRH、ACTH、CORT含量比較 血清中上述指標(biāo)以中、低劑量組降低最為顯著,最接近正常對照組,下丘腦中上述指標(biāo)以中劑量組降低最為顯著,最接近正常對照組。據(jù)此推測慢性睡眠剝奪大鼠會引起HPA 軸功能亢進(jìn),見表1~表2。

3.3 各組大鼠前額葉5-HT、5-HIAA、NE、DA 含量比較 5-HT 和5-HIAA 升高以中劑量組效果最佳,最接近正常對照組,NE 和DA 降低分別以高劑量組和中劑量組效果最佳,最接近正常對照組,見表3。

表3 各組大鼠血漿中單胺類神經(jīng)遞質(zhì)含量比較(xˉ±s) ng/g

4 討 論

GPD 是臨床治療慢性失眠重要而有效的方劑,王燕等[3]以GPD 加減治療失眠患者32 例,總有效率為93.75%,證實(shí)本方能夠有效改善睡眠質(zhì)量?,F(xiàn)代研究表明:GPD 能明顯延長戊巴比妥鈉所致小鼠的睡眠時(shí)間,具有鎮(zhèn)靜催眠作用,能提高動物腦內(nèi)單胺類神經(jīng)遞質(zhì)5-羥色胺、多巴胺等含量,但其治療慢性失眠的作用機(jī)理尚不明確[4]。

本實(shí)驗(yàn)采用改良水平臺復(fù)制大鼠慢性睡眠剝奪模型,觀察不同劑量GPD 治療慢性失眠可能的作用機(jī)制。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:慢性睡眠剝奪大鼠晝夜節(jié)律紊亂,精神倦怠,皮膚色澤暗淡,毛發(fā)枯燥,喜靜少動,飲食減少,體質(zhì)量降低,提示模型制備成功。經(jīng)GPD 治療后,大鼠的一般狀態(tài)明顯改善,提示GPD 具有促眠作用。

CRH、ACTH 和CORT 是HPA 軸重要的組成激素,與睡眠密切相關(guān)。當(dāng)機(jī)體長期處于應(yīng)激狀態(tài)(如慢性睡眠剝奪)的情況下,會啟動激素級聯(lián)反應(yīng),使HPA 軸亢進(jìn),損傷腦組織[5]。臨床研究表明:在慢性失眠患者中,睡眠時(shí)間少于5 h 的患者,CORT 水平增加,總睡眠時(shí)間與CORT 成反比[6]。最新研究認(rèn)為HPA 軸對睡眠的影響主要取決于CRH,激活HPA 軸能使ACTH 和CORT 的濃度增加,產(chǎn)生覺醒效應(yīng)[7]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明模型組大鼠血清和下丘腦中CRH、ACTH 和CORT 含量均顯著升高,提示大鼠經(jīng)慢性睡眠剝奪后,HPA 軸功能亢進(jìn)。經(jīng)GPD治療后,血清和下丘腦中CRH、ACTH 和CORT 含量顯著降低,可推測GPD 可通過降低CRH、ACTH 和CORT 含量,負(fù)反饋調(diào)節(jié)HPA 軸而促睡眠,且以中劑量GPD 效果較優(yōu)。

此外,HPA 軸還受到多種神經(jīng)遞質(zhì)的調(diào)控,如5-HT、NE、DA 等。5-HT 能神經(jīng)元可以直接支配下丘腦室旁核分泌CRH,CRH 的釋放又受到5-HT受體的調(diào)控,影響HPA 軸功能;同時(shí)CRH、ACTH 和CORT 又能抑制5-HT 能神經(jīng)元細(xì)胞的活性,二者之間存在復(fù)雜的相互作用[8]。MENON 等[9]使用微透析技術(shù)證明單胺遞質(zhì)及其代謝產(chǎn)物在不同時(shí)長的睡眠剝奪期間發(fā)揮著重要作用。本實(shí)驗(yàn)通過HPLC 法檢測5-HT、5-HIAA、NE 和DA 含量,結(jié)果表明模型組5-HT 和5-HIAA 明顯下降,NE 和DA明顯升高。GPD 治療后能明顯升高5-HT 和5-HIAA 含量,降低NE 和DA 含量,提示GPD 能通過升高5-HT、5-HIAA 含量,降低NE、DA 含量而治療失眠,且以中劑量GPD 效果最佳。

綜上,GPD 能改善慢性睡眠剝奪大鼠一般狀態(tài),調(diào)節(jié)5-HT、5-HIAA、NE 和DA 含量,降低CRH、ACTH 和CORT 含量,負(fù)反饋調(diào)節(jié)HPA 軸,改善HPA軸功能亢進(jìn)狀態(tài),從而治療慢性失眠。然而,本實(shí)驗(yàn)因時(shí)間、技術(shù)有限,未對慢性睡眠剝奪大鼠的睡眠時(shí)相、腦電波特征進(jìn)行監(jiān)測,這值得今后深入研究,為GPD 的臨床使用提供科學(xué)依據(jù)。

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